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CN117025627A - 烟草氯离子通道蛋白NtCLC13及其编码基因和应用 - Google Patents

烟草氯离子通道蛋白NtCLC13及其编码基因和应用 Download PDF

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CN117025627A
CN117025627A CN202310785468.5A CN202310785468A CN117025627A CN 117025627 A CN117025627 A CN 117025627A CN 202310785468 A CN202310785468 A CN 202310785468A CN 117025627 A CN117025627 A CN 117025627A
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chloride channel
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Abstract

本发明公开了烟草氯离子通道蛋白NtCLC13及其编码基因和应用,属于植物基因工程技术领域。本发明克隆获得烟草氯离子通道蛋白NtCLC13的编码基因NtCLC13基因,而且利用亚细胞定位分析发现,烟草氯离子通道蛋白NtCLC13定位在细胞质中。利用CRISPR/Cas9技术,通过农杆菌转化法将构建的基因编辑载体转入烟草植株中,成功构建了NtCLC13基因敲除烟草植株。敲除株叶片氯离子含量显著降低,这使培育低氯烟草新品种成为可能,为改善我国部分烟区烤烟氯含量偏高的情况提供一个新的方向。同时丰富了烟草中氯离子调控的基因网络,对调控烟草中氯离子含量、进一步了解氯离子转运的分子调控有重要意义。

Description

烟草氯离子通道蛋白NtCLC13及其编码基因和应用
技术领域
本发明涉及烟草氯离子通道蛋白NtCLC13及其编码基因和应用,属于植物基因工程技术领域。
背景技术
已有的研究普遍认为,烟叶中的氯离子含量以0.3~0.8为宜,在含量达到1%时会影响阴燃持火性,进一步高于1%时会出现黑灰熄火现象;另一方面,烟叶中氯离子含量过高时会造成淀粉积累多,叶片肥厚而脆,吸湿性大,使得存放时颜色易变深,产生不良气味。总之,烟叶中氯离子含量对于烟叶质量具有较为重要的直接影响。目前,河南、云南等部分烟区烟叶中氯离子含量偏高,降低了烟叶的品质和产量,这成为了种植者和研究人员亟需解决的问题。
传统改善方式多是从栽培技术入手,通过优化田间管理措施、完善调制发酵技术来稳定和提升烟叶品质。但总体而言,这些措施并未从根本上改变这些烟叶质量偏低、工业实用性不强的局面。
随着基因组学尤其是基因编辑技术的快速发展,人们对于烟叶中氯离子积累与相关基因之间的关系认识越来越深入。基于已有研究已经知晓的是:对于氯离子通道蛋白(CLC,Chloride Channel)蛋白家族,拟南芥中有7个成员,研究表明AtCLCa在驱使硝酸盐进入液泡的过程中起到关键作用,而AtCLCb就没有这种功能;其他的AtCLC分布在其他细胞区间,AtCLCd和AtCLCf可能在转运高尔基囊泡网络中起到酸化作用;AtCLCe可能参与类囊体膜的阴离子渗透性;AtCLCg与AtCLCc功能一致,参与植物盐胁迫。2007年Anne Marmagne等人在研究拟南芥CLCf时发现(Two members of the Arabidopsis CLC(chloride channel)family,AtCLCe and AtCLCf,are associated with thylakoid and Golgi membranes,respectively,Journal of Experimental Botany,2007,58(12):3385-3393),AtCLCf定位于高尔基体膜上,并在功能上补充了编码高尔基相关蛋白的单CLC基因中中断的酵母gef1突变体。但总体而言,由于CLC家族蛋白功能的多样化,以及不同物种中CLC家族蛋白功能并不完全一致。仅就烟草品种改良而言,针对烟草中CLC家族蛋白的功能进行深入研究可能为烟草品种改良,甚至可为其他植物改良奠定理论基础和应用基础。因此,挖掘烟草中CLC家族蛋白成员及其相关功能,对调控烟草中氯离子含量、进一步了解氯离子转运的分子调控有重要意义。
发明内容
为解决上述问题,本发明的第一个目的是提供一种烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因,该基因能够编码烟草氯离子通道蛋白NtCLC13,进而对烟草中氯离子转运进行调控。
本发明的第二个目的是提供一种烟草氯离子通道蛋白NtCLC13,本发明通过实验证明NtCLC13蛋白参与烟草中氯离子的吸收转运,能通过调控该蛋白的表达对烟草中氯离子的含量进行调控。
本发明的第三个目的是提供烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因在调控烟草氯离子转运中的应用,通过实验证明调控NtCLC13基因的表达能影响烟草中氯离子的含量,丰富了烟草中氯离子调控的基因网络。
本发明的第四个目的是提供烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因在获得低氯烟草品种中的应用,通过CRISPR/Cas9基因编辑技术,将烟草植株中NtCLC13基因敲除,发现敲除株系的叶片中氯离子含量显著下降,获得低氯烟草品种。
为了实现上述目的,本发明烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因所采用的技术方案是:
一种烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因,其特征在于:其核苷酸序列为:
(1)SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列;
(2)SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列经取代和/或缺失和/或添加一个或多个核苷酸且表达相同功能蛋白的核苷酸序列。
上述技术方案的有益效果在于:本发明通过设计特异性引物,克隆获得了烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因,在烟草中通过抑制其表达,减少氯离子向地上部的转运,说明NtCLC13基因参与调控烟草中氯离子转运的过程。
为了实现上述目的,本发明烟草氯离子通道蛋白NtCLC13所采用的技术方案是:
一种烟草氯离子通道蛋白NtCLC13,其氨基酸序列为:
(1)SEQ ID NO.2所示的氨基酸序列;
(2)SEQ ID NO.2所示的氨基酸序列经取代和/或缺失和/或添加一个或多个氨基酸残基且功能相同的衍生蛋白。
上述技术方案的有益效果在于:NtCLC13蛋白被NtCLC13基因编码表达,经验证发现,烟草氯离子通道蛋白NtCLC13与烟草中氯离子吸收转运密切相关,抑制其表达,氯离子的从根部向地上部转运的能力降低,烟草叶片中的氯离子含量显著降低。
为了实现上述目的,本发明烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因在调控烟草氯离子转运中的应用所采用的技术方案是:
烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因在调控烟草氯离子转运中的应用。
上述技术方案的有益效果在于:本发明通过CRISPR/Cas9技术获得的NtCLC13基因敲除的烟草植株,NtCLC13基因敲除株在正常培养基中与对照组相比相差不大,加入盐胁迫后,NtCLC13基因敲除株生长与对照组相比明显受到抑制,根长变短,说明NtCLC13基因参与了烟草盐胁迫响应。
作为进一步地改进,抑制NtCLC13基因的表达,烟草叶片中氯离子的含量显著降低。
上述技术方案的有益效果在于:通过进一步检测发现,NtCLC13基因敲除株的叶片中氯离子含量显著下降,说明抑制NtCLC13基因表达,氯离子的从根部向地上部转运的能力降低。
为了实现上述目的,本发明烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因在获得低氯烟草品种中的应用所采用的技术方案是:
烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因在获得低氯烟草品种中的应用,通过抑制NtCLC13基因的表达,降低烟草叶片中的氯离子,获得低氯烟草品种。
上述技术方案的有益效果在于:本发明通过CRISPR/Cas9技术,在烟草中敲除NtCLC13基因,抑制其表达,获得NtCLC13基因敲除的烟草植株,检测发现所得的NtCLC13基因敲除株叶片中氯离子含量显著降低,可为培育低氯含量烟草新品种奠定良好基础,同时也为烟叶质量的稳定和卷烟质量的改善提供技术支撑。
作为进一步地改进,所述抑制NtCLC13基因的表达是构建基因编辑载体,对烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因进行敲除。
上述技术方案的有益效果在于:CRISPR/Cas9技术相较于传统基因干扰等,具有敲除效率高、操作简便的优势。
作为进一步地改进,基因编辑载体通过如下方法获得:将靶位点双链DNA连接至基因编辑空载体上,测序鉴定。
作为进一步地改进,靶位点双链DNA对应的sgRNA序列为:TCTCGGCGATAGTGCTCCAC。
上述技术方案的有益效果在于:使用上述sgRNA能实现烟草中NtCLC13基因的有效敲除,成功构建出NtCLC13基因敲除的烟草植株,为研究NtCLC13基因的功能奠定基础。
作为进一步地改进,所述低氯烟草品种通过以下方法获得:将基因编辑载体转化农杆菌作为侵染液,再转化烟草,通过筛选、鉴定获得叶片氯离子含量明显下降的烟草品种。
附图说明
图1为本发明实施例3中烟草NtCLC13蛋白的亚细胞定位图;
图2为本发明实施例3中NtCLC13基因敲除的靶位点选择示意图;
图3为本发明实施例3中NtCLC13基因T0代基因编辑植株敲除靶位点的测序结果图;
图4为本发明实施例3中NtCLC13基因编辑植株在盐胁迫下的表型;
图5为本发明实施例3中NtCLC13基因编辑植株叶片氯离子含量图(**代表p<0.01)。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明做进一步的详细说明。除特殊说明之外,各实施例、实验例及对比例中所用的设备和试剂均可从商业途径得到。
生物材料:
烟草品种:K326和中烟100,所使用的种子均由国家烟草基因研究中心提供。
载体:pCS1300获赠于武汉天问生物科技有限公司;CRISPR/Cas9载体由西南大学家蚕基因组生物学国家重点实验室提供。
菌株:Trans5α化学感受态细胞,购自北京全式金生物技术有限公司;GV3101农杆菌感受态细胞,购自上海唯地生物技术有限公司;引物的合成和DNA测序由北京六合华大基因科技股份有限公司提供完成。
实验试剂:RNA提取试剂盒(RNAprep Pure多糖多酚植物总RNA提取试剂盒)、基因组提取试剂盒(多糖多酚植物基因组DNA提取试剂盒)购自天根生化科技(北京)有限公司;荧光定量试剂盒、反转录试剂盒(Transcriptor First Strand cDNA Synthesis Kit)购自瑞士Roche公司;DNA扩增酶,购自北京全式金生物技术有限公司;限制性内切酶BsaI、质粒提取试剂盒和DNA胶回收试剂盒购自宝生物技术有限公司。
实验设备:PCR仪Tprofessional Thermocycler,Biometra公司;定量PCR仪LightCycler96,Roche公司。
实施例1烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因
本实施例中的烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因的核苷酸序列为:
(1)SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列;
(2)SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列经取代和/或缺失和/或添加一个或多个核苷酸且表达相同功能蛋白的核苷酸序列。
实施例2烟草氯离子通道蛋白NtCLC13
本实施例中的烟草氯离子通道蛋白NtCLC13的氨基酸序列为:
(1)SEQ ID NO.2所示的氨基酸序列;
(2)SEQ ID NO.2所示的氨基酸序列经取代和/或缺失和/或添加一个或多个氨基酸残基且功能相同的衍生蛋白。
实施例3烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因在获得低氯烟草品种中的应用
本实施例通过PCR成功克隆出NtCLC13基因,亚细胞定位发现烟草NtCLC13蛋白定位于细胞质中,为进一步挖掘其功能,构建NtCLC13基因的基因编辑载体,利用农杆菌转化法将基因编辑载体转化入烟草植株,成功构建了NtCLC13基因敲除的烟草植株。盐胁迫实验发现NtCLC13基因参与了烟草盐胁迫响应,对基因敲除株T1代进行培养,检测发现NtCLC13基因敲除株的叶片中氯离子含量显著下降。具体实施操作如下:
1、氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因克隆及亚细胞定位
1)NtCLC13基因的克隆
NtCLC13基因的克隆及获得过程如下所示:
(1)提取RNA,反转录cDNA
将K326种子消毒之后接种在MS培养基上进行萌发,发芽两周后,幼苗移栽到盆里,在培养温度为23~26℃的植物培养间进行培养,待烟苗长至六叶一心时转移至1/2MS液体培养基中继续培养,两周后选取根部进行取样,液氮速冻后备用,采用植物RNA提取试剂盒提取烟草根部总RNA。RNA提取时,参考试剂盒说明书操作即可,然后反转录为cDNA备用。
(2)设计引物,进行PCR扩增
PCR扩增引物序列如下:
NtCLC13-F:5’-ATGACGGGAGGCGAGTAC-3’(SEQ ID NO.3所示);
NtCLC13-R:5’-CTACATTGAAAAGATGC-3’(SEQ ID NO.4所示)。
以步骤(1)中反转录的cDNA为模板,利用上述引物进行PCR扩增。
PCR扩增体系为:5×GCL buffer 10μL,cDNA 2μL,上下游引物各1μL,dNTP 6μL,GXL DNA Polymerase 1μL,加灭菌水至50μL。
PCR扩增条件为:98℃、10sec;55℃、15sec,68℃、2min,30个循环。PCR产物进行琼脂糖电泳检测分析并用参照DNA胶回收试剂盒说明书纯化回收PCR扩增后产物。
纯化产物再连接至pFF19载体上,连接体系如下:DNA扩增产物,6μL;pFF19载体,1μL;混匀后,25℃连接25min。
将连接产物转化至大肠杆菌DH5α感受态细胞中,具体转化过程如下所示:
从-80℃冰箱中取出感受态细胞,置于冰上使其溶解,加连接产物于100μL DH5α感受态细胞中,轻弹混匀,冰浴20min;42℃水浴中热激90s,立即置于冰上2min;加入900μL平衡至室温的LB(不含抗生素)液体培养基,37℃摇荡培养1h;4000rpm离心3min,去部分上清,留100μL将沉淀混匀,均匀地涂布到LB固体平板(含50μg/μL卡那霉素)上,倒置培养皿,37℃培养过夜。
翌日,挑单克隆,送出测序。
测序结果及分析结果表明,NtCLC13基因基因编码区长度为2238bp个核苷酸;对该基因分析后可知,其所编码的NtCLC13蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示。
2)烟草NtCLC13蛋白的亚细胞定位
设计引物pCS1300S-NtCLC13F和pCS1300S-NtCLC13R,将NtCLC13克隆到含有GFP标签的pCS1300S载体上,引物序列为:
pCS1300S-NtCLC13F:5’-GCTTTCGCGAGCTCGGTACCATGACGGGAGGCGAGTAC-3’(SEQ IDNO.5所示);
pCS1300S-NtCLC13R:5’-CCCTTGCTCACCATGGATCCCATTGAAAAGATGC-3’(SEQ IDNO.6所示)。
注:划线部分为接头序列。
PCR扩增体系和反应程序同第1)部分NtCLC13基因的克隆中PCR扩增体系和反应程序。获得的PCR产物用In-Fusion酶连接至pCS1300载体上,连接体系如下:DNA扩增产物,2μL;pCS1300S载体2μL;In-Fusion酶1μL。混匀后,50℃连接15min。连接产物转化至大肠杆菌DH5α感受态中,挑取单菌落测序。
测序正确的质粒经质粒大提试剂盒提取高质量质粒,转化本氏烟原生质体,以线粒体marker做对照(红色),结果如图1所示,NtCLC13定位于细胞质中。
2、基因编辑载体的构建
为进一步了解NtCLC13基因在烟草氯离子吸收转运中的功能,构建了用于敲除NtCLC13基因的CRISPR/Cas9表达载体,实验过程如下:
首先,根据CRISPR/Cas9系统的识别特点设计靶位点,在NtCLC13基因的第1个外显子区域设计20bp的sgRNA靶点序列,如图2所示,sgRNA序列为:TCTCGGCGATAGTGCTCCAC(SEQID NO.7所示),设计敲除引物序列NtCLC13-T1_F和NtCLC13-T1_R如下:
NtCLC13-T1_F:GTGGAGCACTATCGCCGAGAtgcaccagccgggaat(SEQ ID NO.8所示);
NtCLC13-T1_R:ttctagctctaaaacGTGGAGCACTATCGCCGAGA(SEQ ID NO.9所示)。
设计反应体系,以获得靶位点的DNA双链(退火),20μL反应体系设计如下:Annealing Buffer for DNA OLigos(5×),4μL;上下游引物(NtCLC13-T1_F、NtCLC13-T1_R),各4μL(50μmoL/μL);Nuclease-free water补充至20μL。
反应程序为:95℃5min,每8s下降0.1℃,降至25℃;反应产物4℃保存备用,或者直接进行后续反应。
将上述退火产物与BsaⅠ酶切后的CRISPR/Cas9载体进行连接,并筛选获得用于敲除NtCLC13基因的CRISPR/Cas9表达载体,20μL连接体系设计如下:退火产物,6μL;酶切产物(BsaⅠ酶切后的CRISPR/Cas9载体),3μL;10×T4 DNA Ligase Buffer,2μL;T4 DNA Ligase,1μL;灭菌水补充至20μL,37℃连接3h。
连接产物转化至大肠杆菌感受态细胞中,通过挑取阳性克隆、扩大培养,提取质粒后,经PCR确认载体构建成功后,低温保存,用于农杆菌转化。
3、转基因植株的获得
将上述步骤所构建CRISPR/Cas9表达载体转化农杆菌,并进而转化烟草植株,构建NtCLC13基因敲除的转基因植株,实验过程如下:
(1)农杆菌的转化
从-80℃冰箱中取出农杆菌GV3101感受态细胞,在冰上冻融,待即将解冻时加入5μL已经构建好的基因编辑载体,轻弹混匀;冰浴30min,液氮中冻5min,然后在37℃水浴5min后立即放冰上;加入900μL的无抗生素的LB液体培养基,200rpm、振荡培养4h;然后将菌液4500rpm离心3min,弃一半体积的上清,重新悬浮后均匀涂于含有Rif(100μg/mL)、和Kan(50μg/mL)的LB固体培养基上,28℃倒置培养约2~3d,直至单菌落形成;挑取单菌落,扩培后对菌液进行PCR鉴定,鉴定正确的阳性克隆菌株,即为转化正确的工程菌。
(2)转化烟草植株
取生长一个月左右的烟草(中烟100)无菌苗叶片,用打孔器将叶片处理成直径0.5cm大小的叶盘,将处理后叶盘在MS固体培养基上预培养3d;将上述所制备转化后农杆菌工程菌,培养至OD600=0.6左右,4000rpm离心5min收集菌体,再用20mL的MS液体培养基悬浮菌体;然后将上述预培养后叶盘置于菌液中,侵染10min;用无菌的滤纸吸干浸染后叶盘周围多余的菌液,在MS+6-BA(2mg/L)+NAA(0.5mg/L)的固体培养基上暗培养3d;用含有Cef(400mg/L)的无菌水清洗叶盘,并用无菌滤纸吸去多余的液体,将叶盘转到含有6-BA(2mg/L)、NAA(0.5mg/L)、Cef(200mg/L)和Kan(50mg/L)的MS固体筛选培养基上,28℃光照培养;待不定芽长到0.5cm时,转移到含Cef(200mg/L)和Kan(50mg/L)的MS固体培养基上生根。
(3)基因编辑的鉴定
待生长一个月左右,取少量叶片,参照植物基因组提取试剂盒说明书提取DNA,通过PCR扩增、克隆、测序的方法,检测阳性转基因株系和突变形式。具体鉴定方法为:
在NtCLC13基因组上,设计一对检测引物,该引物位于敲除靶位点的两侧,具体为:
NtCLC13-J-F:5’-GGAGTGAGTACGGTGTGCCAGAAGGCGATTTAGAAAGC-3’(SEQ ID NO.10所示);
NtCLC13-J-R:5’-GAGTTGGATGCTGGATGGGCTGAAACTAACCCCGC-3’(SEQ ID NO.11所示)。
以T0代转基因株系DNA模板,进行PCR扩增。
PCR反应体系为:10×buffer 2μL,cDNA 1μL,上下游引物各0.5μL,dNTP 3μL,EazyTaq酶1μL,加灭菌水至20μL。
PCR扩增条件为:94℃预变性4min;94℃变性30s,56℃退火30s,72℃延伸40s,共25个循环;再72℃终延伸10min。PCR产物送Hi-tom测序。
分析测序结果如图3所示,在T0代植株中,检测到NtCLC13基因有在敲除的靶位点发生单碱基的缺失突变,而野生型植株的NtCLC13基因未检测到任何突变,这说明在T0代植株中已经成功实现了对NtCLC13基因进行了敲除,编辑植株命名为ntclc13-
4、NtCLC13基因编辑植株表型观察
(1)种子消毒
将中烟100(对照正常烟草植株)和ntclc13-编辑材料的种子经75%酒精消毒1-2min后用10%NaClO消毒10min,用灭菌水反复冲洗3-5次。
(2)盐胁迫表型观察
将已消毒的种子在加有200mM NaCl的1/2MS固体培养基上播种,不加盐的1/2MS固体培养基做对照,2-3周后观察平板上植株的表型。
结果如图4所示,正常培养基中ntclc13-植株生长与对照相比差别不大,加入盐胁迫后,ntclc13-植株生长与对照相比明显受到抑制,根长变短,说明NtCLC13基因参与了烟草盐胁迫响应。
5、NtCLC13基因编辑植株叶片氯离子含量检测
(1)水培试验
NtCLC13基因编辑植株T1代和对照中烟100植株种植于国家烟草基因研究中心植物培养间,培养条件为:温度(23±1)℃,相对湿度60%±2%,16h光照培养,8h黑暗培养。待烟苗长至六片真叶期,移至Hoagland’s营养液中继续培养,1周后更换一次营养液,再培养3d后取叶片进行后续氯离子含量的测定。叶片经液氮速冻后放-80℃冰箱保存。每个株系设置3个独立重复,每个重复至少选取3株长势一致的烟苗。
(2)氯离子含量测定
将保存的叶片样品冷冻干燥后,使用混合型振荡研磨仪对其研磨至粉末状,称取约0.0500g(精确至0.1mg)粉末,置于10mL 5%(体积分数)醋酸中,30℃震荡萃取30min,然后用定性滤纸过滤,滤液经稀释后用美国安莱立思Alalis MP6500型台式pH计测定氯离子含量。
结果如图5所示,NtCLC13基因编辑后,叶片中的氯离子含量显著下降(**代表p<0.01)。
综上所述,本发明通过对烟草NtCLC13基因的研究,发现NtCLC13蛋白定位在细胞质上;通过基因编辑技术获得NtCLC13基因敲除株,盐胁迫后,ntclc13-编辑植株生长受到抑制,根长与对照相比显著变短;编辑植株叶片中的氯离子含量显著下降,获得了烟叶氯离子含量降低的烟草植株。
最后说明的是:以上各实施例仅用以说明本发明的技术方案,而非对其限制;尽管参照前述各实施例对本发明进行了详细的说明,本领域的普通技术人员应当理解:其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改,或者对其中部分或者全部技术特征进行等同替换;而这些修改或者替换,并不使相应技术方案的本质脱离本发明各实施例技术方案的范围。

Claims (9)

1.一种烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因,其特征在于:其核苷酸序列为:
(1)SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列;
(2)SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列经取代和/或缺失和/或添加一个或多个核苷酸且表达相同功能蛋白的核苷酸序列。
2.一种烟草氯离子通道蛋白NtCLC13,其特征在于:其氨基酸序列为:
(1)SEQ ID NO.2所示的氨基酸序列;
(2)SEQ ID NO.2所示的氨基酸序列经取代和/或缺失和/或添加一个或多个氨基酸残基且功能相同的衍生蛋白。
3.一种如权利要求1所述的烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因在调控烟草氯离子转运中的应用。
4.根据权利要求3所述的烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因在调控烟草氯离子转运中的应用,其特征在于:抑制NtCLC13基因的表达,烟草叶片中氯离子的含量显著降低。
5.一种如权利要求1所述的烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因在获得低氯烟草品种中的应用,其特征在于:通过抑制NtCLC13基因的表达,降低烟草叶片中的氯离子,获得低氯烟草品种。
6.根据权利要求5所述的烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因在获得低氯烟草品种中的应用,其特征在于:所述抑制NtCLC13基因的表达是构建基因编辑载体,对烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因进行敲除。
7.根据权利要求6所述的烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因在获得低氯烟草品种中的应用,其特征在于:基因编辑载体通过如下方法获得:将靶位点双链DNA连接至基因编辑空载体上,测序鉴定。
8.根据权利要求7所述的烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因在获得低氯烟草品种中的应用,其特征在于:靶位点双链DNA对应的sgRNA序列为:TCTCGGCGATAGTGCTCCAC。
9.根据权利要求5~8任一项所述的烟草氯离子通道蛋白编码基因NtCLC13基因在获得低氯烟草品种中的应用,其特征在于:所述低氯烟草品种通过以下方法获得:将基因编辑载体转化农杆菌作为侵染液,再转化烟草,通过筛选、鉴定获得叶片氯离子含量明显下降的烟草品种。
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