[go: up one dir, main page]

EA036645B1 - Производные пурина для лечения вирусных инфекций - Google Patents

Производные пурина для лечения вирусных инфекций Download PDF

Info

Publication number
EA036645B1
EA036645B1 EA201991767A EA201991767A EA036645B1 EA 036645 B1 EA036645 B1 EA 036645B1 EA 201991767 A EA201991767 A EA 201991767A EA 201991767 A EA201991767 A EA 201991767A EA 036645 B1 EA036645 B1 EA 036645B1
Authority
EA
Eurasian Patent Office
Prior art keywords
mmol
mixture
compound
mhz
nmr
Prior art date
Application number
EA201991767A
Other languages
English (en)
Other versions
EA201991767A1 (ru
Inventor
Жан-Франсуа Бонфанти
Фредерик Марк Морис Дубле
Вернер Эмбрехтс
Жером Мишель Клод Фортэн
Дэвид Крейг Мак Гоуен
Филипп Мюллер
Пьер Жан-Мари Бернар Рабуассон
Original Assignee
Янссен Сайенсиз Айрлэнд Юси
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=47178000&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=EA036645(B1) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Янссен Сайенсиз Айрлэнд Юси filed Critical Янссен Сайенсиз Айрлэнд Юси
Publication of EA201991767A1 publication Critical patent/EA201991767A1/ru
Publication of EA036645B1 publication Critical patent/EA036645B1/ru

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33Heterocyclic compounds
    • A61K31/395Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
    • A61K31/495Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having six-membered rings with two or more nitrogen atoms as the only ring heteroatoms, e.g. piperazine or tetrazines
    • A61K31/505Pyrimidines; Hydrogenated pyrimidines, e.g. trimethoprim
    • A61K31/519Pyrimidines; Hydrogenated pyrimidines, e.g. trimethoprim ortho- or peri-condensed with heterocyclic rings
    • A61K31/52Purines, e.g. adenine
    • A61K31/522Purines, e.g. adenine having oxo groups directly attached to the heterocyclic ring, e.g. hypoxanthine, guanine, acyclovir
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D473/00Heterocyclic compounds containing purine ring systems
    • C07D473/26Heterocyclic compounds containing purine ring systems with an oxygen, sulphur, or nitrogen atom directly attached in position 2 or 6, but not in both
    • C07D473/32Nitrogen atom
    • C07D473/34Nitrogen atom attached in position 6, e.g. adenine
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P29/00Non-central analgesic, antipyretic or antiinflammatory agents, e.g. antirheumatic agents; Non-steroidal antiinflammatory drugs [NSAID]
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02Immunomodulators
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D473/00Heterocyclic compounds containing purine ring systems
    • C07D473/02Heterocyclic compounds containing purine ring systems with oxygen, sulphur, or nitrogen atoms directly attached in positions 2 and 6
    • C07D473/16Heterocyclic compounds containing purine ring systems with oxygen, sulphur, or nitrogen atoms directly attached in positions 2 and 6 two nitrogen atoms
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D519/00Heterocyclic compounds containing more than one system of two or more relevant hetero rings condensed among themselves or condensed with a common carbocyclic ring system not provided for in groups C07D453/00 or C07D455/00
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07FACYCLIC, CARBOCYCLIC OR HETEROCYCLIC COMPOUNDS CONTAINING ELEMENTS OTHER THAN CARBON, HYDROGEN, HALOGEN, OXYGEN, NITROGEN, SULFUR, SELENIUM OR TELLURIUM
    • C07F9/00Compounds containing elements of Groups 5 or 15 of the Periodic Table
    • C07F9/02Phosphorus compounds
    • C07F9/547Heterocyclic compounds, e.g. containing phosphorus as a ring hetero atom
    • C07F9/6561Heterocyclic compounds, e.g. containing phosphorus as a ring hetero atom containing systems of two or more relevant hetero rings condensed among themselves or condensed with a common carbocyclic ring or ring system, with or without other non-condensed hetero rings
    • C07F9/65616Heterocyclic compounds, e.g. containing phosphorus as a ring hetero atom containing systems of two or more relevant hetero rings condensed among themselves or condensed with a common carbocyclic ring or ring system, with or without other non-condensed hetero rings containing the ring system having three or more than three double bonds between ring members or between ring members and non-ring members, e.g. purine or analogs

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Pain & Pain Management (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Abstract

Изобретение относится к производным пурина, способам их получения, фармацевтическим композициям и их применению при лечении вирусных инфекций.

Description

Настоящее изобретение относится к производным пурина, фармацевтическим композициям, лекарственным средствам и их применению при лечении вирусных инфекций.
Настоящее изобретение относится к применению производных пурина при лечении вирусных инфекций, иммунологических или воспалительных нарушений, в которые вовлечены модуляция или агонизм толл-подобных рецепторов (TLR). Толл-подобные рецепторы представляют собой первичные трансмембранные белки, характеризующиеся внеклеточным лейцин-богатым доменом и цитоплазматическим расширением, которые содержат консервативную область. Врожденная иммунная система может распознавать патогенассоциированные молекулярные паттерны посредством данных TLR, экспрессируемых на клеточной поверхности определенных типов иммунных клеток. При распознавании чужеродных патогенов активируется образование цитокинов и повышение уровня регуляции ко-стимулирующих молекул на фагоцитах. Это приводит к модуляции поведения Т-клеток.
Установлено, что большинство видов млекопитающих имеют от 10 до 15 типов толл-подобных рецепторов. В общей сложности у человека и мышей выявили 13 TLR (под названием TLR1-TLR13), а у других видов млекопитающих обнаружили эквивалентные формы многих из них. Тем не менее, эквиваленты определенных TLR, обнаруженных у человека, не присутствуют у всех млекопитающих. Например, ген, кодирующий белок, аналогичный TLR10 у людей, присутствует у мышей, но, по-видимому, в определенный момент в прошлом он был поврежден ретровирусом. С другой стороны, у мышей экспрессируются TLR11, 12 и 13, ни один из которых не представлен у человека. У других млекопитающих могут экспрессироваться TLR, которые не обнаружены у человека. Другие виды, не являющиеся млекопитающими, могут иметь TLR, отличные от таковых у млекопитающих, доказательством этому служит TLR14, который обнаружен у рыбы фугу. Это может осложнить способ применения подопытных животных в качестве моделей врожденного иммунитета человека.
Обзор по толл-подобным рецепторам смотрите, например, в следующей статье в журнале: Hoffmann, J.A., Nature, 426, р33-38, 2003.
Ранее были описаны соединения, проявляющие активность в отношении толл-подобных рецепторов, такие как производные пурина в WO 2006/117670, производные аденина в WO 98/01448 и WO 99/28321 и пиримидины в WO 2009/067081.
Тем не менее, существует острая необходимость в новых модуляторах толл-подобных рецепторов, характеризующихся предпочтительной избирательностью, более высокой активностью, более высокой стабильностью к инактивации в процессе метаболизма и улучшенным профилем безопасности по сравнению с соединениями известного уровня техники.
Настоящее изобретение относится к соединению, выбранному из группы, состоящей из:
- 1 036645
Кроме того, к настоящему изобретению относится фармацевтическая композиция для активации толл-подобного рецептора 7 (TLR7), содержащая соединение по настоящему изобретению или его фармацевтически приемлемую соль вместе с одним или несколькими фармацевтически приемлемыми наполнителями, разбавителями или носителями.
Частью настоящего изобретения также является лекарственное средство для активации TLR7, включающее соединение по настоящему изобретению или его фармацевтически приемлемую соль.
Настоящее изобретение также относится к применению соединения по настоящему изобретению или его фармацевтически приемлемой соли для активации TLR7.
Настоящее изобретение также относится к применению фармацевтической композиции, включающей соединение по настоящему изобретению или его фармацевтически приемлемую соль, для активации TLR7.
- 2 036645
Фармацевтически приемлемые соли соединений по настоящему изобретению включают их соли присоединения кислоты и основания. Подходящие соли присоединения кислоты образуются от кислот, которые образуют нетоксичные соли. Подходящие основные соли образуются от оснований, которые образуют нетоксичные соли.
Соединения по настоящему изобретению или любая их подгруппа могут быть составлены в различные фармацевтические формы для целей введения. В качестве подходящих композиций могут приводиться все композиции, обычно применяемые для системного введения лекарственных средств. Для получения фармацевтических композиций по настоящему изобретению эффективное количество конкретного соединения, необязательно в форме соли присоединения, в качестве активного ингредиента объединяют в однородную смесь с фармацевтически приемлемым носителем, при этом носитель может принимать широкое разнообразие форм в зависимости от формы препарата, необходимой для введения. Целесообразно, чтобы данные фармацевтические композиции находились в виде единичной лекарственной формы, подходящей, например, для перорального, ректального или чрескожного введения. Например, при получении композиций в пероральной лекарственной форме может применяться любая из общепринятых фармацевтических сред, такая как, например, вода, гликоли, масла, спирты и т.п. в случае пероральных жидких препаратов, таких как суспензии, сиропы, настойки, эмульсии и растворы; или твердых носителей, таких как крахмалы, сахара, каолин, разбавители, смазывающие средства, связующие, средства для улучшения распадаемости и т.п. в случае порошков, пилюль, капсул и таблеток. Благодаря своей простоте введения таблетки и капсулы представляют собой наиболее предпочтительные пероральные формы единицы дозирования, в случае которых очевидно применяются твердые фармацевтические носители. Также включены препараты твердой формы, которые незадолго до применения могут быть превращены в жидкие формы. В композициях, подходящих для чрескожного введения, носитель необязательно включает средство усиления проникновения и/или подходящее смачивающее средство, необязательно комбинированное с подходящими добавками любой природы в минимальных пропорциях, при этом добавки не оказывают никакого значительного вредного воздействия на кожу. Указанные добавки могут облегчать введение в кожу и/или могут быть полезными для получения необходимых композиций. Данные композиции могут вводиться различными путями, например, такими как через трансдермальный пластырь, точечно, в виде мази. Соединения по настоящему изобретению также могут вводиться посредством ингаляции или инсуффляции при помощи способов и составов, применяемых в данной области для введения таким путем. Таким образом, в основном соединения по настоящему изобретению могут вводиться в легкие в форме раствора, суспензии или сухого порошка.
Особенно предпочтительно составление вышеуказанных фармацевтических композиций в единичной лекарственной форме для простоты введения и равномерности дозирования. Единичная лекарственная форма, применяемая в данном документе, относится к физически отдельным единицам, подходящим в качестве единичных дозировок, при этом каждая единица содержит предварительно установленное количество активного ингредиента, рассчитанное для получения желаемого терапевтического эффекта в сочетании с необходимым фармацевтическим носителем. Примерами таких единичных лекарственных форм являются таблетки (включая таблетка с насечкой или таблетки, покрытые оболочкой), капсулы, пилюли, пакеты для порошкообразного продукта, пластинки, суппозитории, инъецируемые растворы или суспензии и т.п., и их отдельное кратное количество.
Специалисты в области лечения инфекционных заболеваний смогут определить эффективное количество исходя из результатов тестов, представленных далее в данном документе. В основном предполагается, что эффективное суточное количество может составлять от 0,01 до 50 мг/кг массы тела, более предпочтительно от 0,1 до 10 мг/кг массы тела. Может быть целесообразным введение необходимой дозы в виде двух, трех, четырех или более частей дозы при подходящих интервалах в течение дня. Указанные части дозы могут составляться в виде единичных лекарственных форм, например, содержащих от 1 до 1000 мг, и, в частности, от 5 до 200 мг активного ингредиента на единицу лекарственной формы.
Точная дозировка и частота введения зависит от конкретного применяемого соединения по настоящему изобретению, конкретного состояния, подлежащего лечению, тяжести состояния, подлежащего лечению, возраста, веса и общего физического состояния конкретного пациента, а также другой лекарственной терапии, которую может проходить человек, что является хорошо известным специалистам в данной области. Более того, очевидно, что эффективное количество может быть снижено или увеличено в зависимости от реакции человека, проходящего лечение, и/или в зависимости от оценки врача, предписывающего соединения по настоящему изобретению. Таким образом, вышеупомянутые диапазоны эффективного количества являются только рекомендациями и не предназначены для ограничения в той или иной мере объема или применения настоящего изобретения.
- 3 036645
Экспериментальная часть.
Общая схема получения конечных соединений (способ 1)
Получение промежуточного соединения А-1.
Диаминомалеононитрил (6 г, 55 ммоль) и триэтилортоформиат (9,2 мл, 55 ммоль) смешивали в 1,4диоксане (95 мл) и нагревали в условиях перегонки до тех пор, пока не собрали 65 мл 1,4диоксана/этанола. Реакционную смесь охлаждали до комнатной температуры и растворитель выпаривали в вакууме. Остаток очищали с помощью колоночной хроматографии с применением градиента 25% этилацетат в петролейном эфире с получением 5 г А-1.
Получение промежуточного соединения В-1.
Бензиламин (2,86 мл, 26,3 ммоль) добавляли по каплям к раствору А-1 (4,1 г, 25 ммоль) и анилина гидрохлорида (50 мг) в этаноле (80 мл), перемешивая при 10°С. Реакционную смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 18 ч. Реакционную смесь добавляли по каплям к 1 М NaOH (50 мл), перемешивая при 10°С, и полученную в результате суспензию перемешивали при комнатной температуре в течение 18 ч. Твердый продукт собирали фильтрацией, промывали водой и высушивали в вакууме. Титульное соединение В-1 (4 г) получали в виде твердого вещества практически белого цвета.
Получение промежуточного соединения С-1.
N-Бромосукцинимид (4 г, 22 ммоль) по частям добавляли к суспензии В-1 (4 г, 20 ммоль) в ТГФ (50 мл) и реакционную смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 10 мин. Растворитель выпаривали в вакууме и остаток экстрагировали из насыщенного водного раствора NaHCO3 (50 мл) с этилацетатом (300 мл), высушивали над Na2SO4, твердые вещества удаляли фильтрацией и растворители из фильтрата удаляли при пониженном давлении. Остаток очищали с помощью колоночной хроматографии с применением градиента дихлорметан - 5% метанол в дихлорметане. Наилучшие фракции объединяли, растворители удаляли при пониженном давлении с получением розового твердого вещества С-1 (3 г).
- 4 036645
Получение промежуточного соединения D-1.
Трихлорацетонитрил (4,8 г, 17,3 ммоль) добавляли к суспензии из С-1 (4 г, 14,4 ммоль) и Cs2CO3 (9,4 г, 29 ммоль) в толуоле (50 мл) и реакционную смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 48 ч. Данную смесь выливали в воду (100 мл) и экстрагировали этилацетатом (3x50 мл), высушивали над Na2SO4, твердые вещества удаляли фильтрацией и фильтрат концентрировали в вакууме. Остаток суспендировали в этаноле (20 мл) и перемешивали при комнатной температуре в течение 2 ч. Полученное в результате твердое вещество собирали фильтрацией и промывали метанолом с получением практически белого твердого вещества D-1 (2,7 г).
D-1 Е-1 F-1
Получение промежуточного соединения F-1.
Метоксид натрия (2,4 г, 0,06 моль) добавляли к суспензии D-1 (5 г, 12 ммоль) в метаноле (100 мл) и реакционную смесь нагревали с обратным холодильником в течение 16 ч. Смесь охлаждали в ледяной бане и гасили реакцию водой. Метанол выпаривали в вакууме и остаток экстрагировали этилацетатом. Органический слой высушивали и концентрировали с получением F-1 (4,6 г неочищенного продукта).
Получение промежуточного соединения G-1.
Промежуточное соединение F-1 (4,6 г, 15 ммоль) суспендировали в 6 н. HCl (водн.) (75 мл) и реакционную смесь перемешивали в течение 32 ч при комнатной температуре. Данную смесь нейтрализовали аммиаком и полученный в результате осадок собирали фильтрацией и промывали водой с получением G1 (3,2 г).
Получение промежуточного соединения Н-1.
н. NaOH (водн.) добавляли к раствору G-1 (1 г, 3,34 ммоль) в метаноле (50 мл) и реакционную смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 2 ч. Метанол удаляли при пониженном давлении и реакционную смесь подкисляли до рН 2 с помощью 2 н. HCl (водн.). Полученный в результате осадок собирали фильтрацией и промывали водой с получением Н-1 (0,95 г).
Получение промежуточного соединения I-1.
Смесь из Н-1 (500 мг, 1,4 ммоль), аминокетона 2 (284 мг, 1,6 ммоль) и EDCI (460 мг, 2,4 ммоль) в пиридине (10 мл) нагревали в микроволновой печи до 110оС в течение 0,5 ч. Смесь концентрировали с получением неочищенного продукта, который промывали ацетонитрилом (10 мл) и холодной водой с получением промежуточного соединения I-1 в виде грязно-белого твердого вещества (0,5 г).
Соединение 1.
NH4OAc (5 г) вносили в сосуд и нагревали в масляной бане до плавления. Затем добавляли I-1 (100 мг) и реакционную смесь нагревали в микроволновой печи в течение 1 ч при 180°С. Смесь выливали в воду и экстрагировали смешанным органическим растворителем (дихлорметан:изопропанол 3:1, 2x60 мл), высушивали и концентрировали. Неочищенный продукт очищали с помощью препаративной ВЭЖХ (высокоэффективной жидкостной хроматографии) с получением желтого твердого вещества 1 (105 мг).
- 5 036645
Соединение 2.
Соединение 2 синтезировали согласно процедуре для синтеза соединения 1 (230 мг).
Соединение 3.
Соединение 3 синтезировали согласно процедуре для синтеза соединения 1 (205 мг). Общая процедура получения аминокетонов.
Общая химическая схема & SOClj О СНзМг Ώ HCI/дмоксан Д
R—---------«- R—--------» R—С --------«- R—V
ОН толуол, С| Et2o, 0°С \=ΝΞΝ ТГФ, О’С \—CI дефлегмирование 12 3 4
NaN,
ДМСО, комнатная температура о
R—V ^N3
Нг. Pd/C
МеОН
Карбоновую кислоту (1) превращают в соответствующий хлорангидрид 2 с помощью тионилхлорида. Также возможно применение других хлорирующих средств, например оксалилхлорида или оксихлорида фосфора. Хлорангидрид (2) обрабатывают диазометаном при пониженной температуре с получением диазокетона (3). Диазокетон (3) превращают в альфа-хлоркетон (4) посредством присоединения хлористоводородной кислоты при низкой температуре. Хлор в альфа-хлоркетоне замещают азидом (4) из соответствующего источника азида, подобного натрия азиду, в присутствии, как правило, биполярного апротонного растворителя, например ДМСО.
Получение аминокетона 1.
Схема реакции
Этап 1.
К раствору А (15 г, 0,13 моль) в толуоле (50 мл) добавляли SOCl2 (15 мл). Реакционную смесь нагревали с обратным холодильником в течение 5 ч. Толуол удаляли при пониженном давлении. Получали хлорангидрид в виде коричневой жидкости (16 г) и непосредственно применяли на следующем этапе.
Этап 2.
К раствору В (16 г, 0,12 моль) в диэтиловом эфире (100 мл) добавляли CH2N2 (2 00 мл) при 0°С. Реакционную смесь перемешивали в течение 2 ч при данной температуре. Эфир удаляли в вакууме при комнатной температуре. Продукт очищали с помощью флеш-хроматографии (силикагель, элюент: петролейный эфир:этилацетат 10:1) с получением С (12 г).
1Н-ЯМР (CDCl3, 400 МГц): δ (м.д.) 5,18 (шир.с, 1Н), 2,65 (шир.с, 1Н), 1,45-1,81 (м, 8Н).
Этап 3.
К раствору С (12 г, 0,096 моль) в ТГФ (65 мл) добавляли по каплям 4 н. HCl/диоксан при 0°С. Реакцию контролировали с помощью ТСХ. Реакцию нейтрализовали с помощью NaHCO3 (насыщ. воды.). Смесь экстрагировали этилацетатом (2x150 мл), высушивали и концентрировали с получением D (11 г). Данный продукт сразу же применяли на следующем этапе.
1Н-ЯМР (CDCl3, 400 МГц): δ (м.д.) 4,10 (с, 2Н), 3,04 (квинтет, J=7,3 Гц, 1Н), 1,54-1,87 (м, 8Н).
Этап 4.
К раствору D (7,3 г, 0,05 моль) в ДМСО (30 мл) добавляли NaN3 (3,9 г, 0,06 моль). Реакцию перемешивали в течение ночи и контролировали с помощью ТСХ. Реакционную смесь выливали в воду (50
- 6 036645 мл) и экстрагировали этилацетатом (2x100 мл), высушивали над сульфатом натрия, удаляли твердые вещества путем фильтрации и удаляли растворители из фильтрата при пониженном давлении. Неочищенный продукт удаляли с помощью хроматографии с силикагелем с применением градиента петролейный эфир - этилацетат с получением Е (5,28 г).
1Н-ЯМР (CDCl3, 400 МГц): δ (м.д.) 3,93 (с, 2Н), 2,83 (квинтет, J=7,3 Гц, 1Н), 1,56-1,84 (м, 8Н).
Этап 5.
Смесь Е (3,28 г, 0,02 моль), конц. HCl (1,8 мл, 0,02 моль) и 1 г Pd/C (10%) в 30 мл метанола перемешивали в течение ночи в атмосфере водорода при 50 фунтов/кв.дюйм (344,7 кПа). Реакционную смесь фильтровали и концентрировали с получением аминокетона-1 (2 г).
1Н-ЯМР (MeOD, 400 МГц): δ (м.д.) 4,03 (с, 2Н), 3,01-3,12 (квинтет, J=7,3 Гц, 1Н), 1,67-1,98 (м, 8Н).
Аминокетон-2.
,ο '—nh2 ,НС1
Аминокетон 2
Аминокетон-2 получали в соответствии с процедурой для получения аминокетона-1.
Аминокетон-3.
Аминокетон-3 получали в соответствии с процедурой для получения аминокетона-1. Общая схема получения конечных продуктов (способ 2)
Получение соединения 4
Смесь С-1 (1,6 г, 5,78 ммоль) (ее синтез описан в WO 20060117670 на с. 59, 60: Получение 6, 7 и 8 соответственно для получения 5 амино-1-бензил-2-бром-1Н-имидазол-4-карбонитрила) и 2-цианоимидазола (592 мг, 6,35 ммоль) в NH3/MeOH (7 н.) (60 мл) перемешивали при 140°С в течение 48 ч в реакторе высокого давления. Выпаривали растворитель. Неочищенное соединение очищали с помощью колоночной хроматографии через колонку с силикагелем (15-40 мкм, 40 г) в DCM/MeOH/NH4OH 97/3/0,5^95/5/0,5) с получением соединения 4 (78 мг, выход 4,4%).
Альтернативный синтез соединения 1
SA
2- HCl (57% в НгО) NaF, ТГФ/МеОН
А ' Ж| J-1
EtONa/EtOH
С-1
Этап 1.
EtONa (904 мг; 13,3 ммоль) добавляли к раствору 2-цианоимидазола I-1 (0,7 г; 2,66 ммоль) и промежуточного соединения С-1 (736 мг; 2,66 ммоль) в EtOH (30 мл). Смесь перемешивали при 90°С в течение 16 ч. Удаляли растворитель при пониженном давлении. Неочищенный продукт очищали с помощью препаративной ЖХ (жидкостной хроматографии) (SiOH с зернами неправильной формы, 45 г Merck, подвижная фаза от 97/3/0,1 до 95/5/0,5) с получением 0,51 г SEM-защищенного этоксипромежуточного соединения в виде светло-желтого твердого вещества (выход 38%).
ВЭЖХ Rt (время удерживания) (мин)=7,45; MC М+(Н+): 506 способ (v2003v2002).
Этап 2.
NaF (170 мг; 4,05 ммоль) добавляли к раствору SEM-защищенного этоксипромежуточного соединения (0,41 г; 0,811 ммоль) в ТГФ (28 мл), HCl (37% в Н2О) (28 мл) и МеОН (10 мл). Смесь перемешива
- 7 036645 ли при 40°С в течение 16 ч. Смесь охлаждали до комнатной температуры (RT) и добавляли 10%-ный раствор K2CO3 до тех пор, пока рН раствора не стал щелочным. Водный слой насыщали порошком K2CO3 и продукт экстрагировали DCM/MeOH (5%) (3 раза). Объединенные органические слои высушивали над MgSO4, фильтровали и удаляли растворитель при пониженном давлении. Неочищенный продукт очищали с помощью ЖХ (SiOH с зернами неправильной формы 15-40 мкм, подвижная фаза DCM/MeOH/NH3 водн. от 95/5/0,5 до 90/10/0,5) с получением 120 мг соединения 1 в виде белого порошка (выход 43%).
Синтез промежуточных продуктов 2-цианоимидазола.
Синтез промежуточного соединения J-1
J-1
NaCN (360 мг; 7,35 ммоль) добавляли к суспензии циклопропанкарбоксальдегида (5 г; 71,3 ммоль) и тозилметилизоцианида (13,7 г; 69,9 ммоль) в EtOH (200 мл). Полученную в результате смесь перемешивали в течение 1 ч. при комнатной температуре. Растворитель удаляли при пониженном давлении и остаток промывали смесью гептан/эфир (1:1). Бежевый сухой порошок перемешивали в NH3/MeOH 7 н. (480 мл; 3,36 моль) и смесь перемешивали при 100°С в стальном сосуде высокого давления в течение 16 ч. Смесь охлаждали до комнатной температуры и растворитель выпаривали при пониженном давлении. iPr2O добавляли к остатку и твердое вещество отфильтровывали. Фильтрат выпаривали досуха и неочищенный продукт очищали с помощью препаративной ЖХ (SiOH с зернами неправильной формы 20-45 мкм, 1000 г DAVISIL). Подвижная фаза (0,5% NH4OH, 94% DCM, 6% МеОН). Отбирали очищенную фракцию и выпаривали до получения 4,9 г промежуточного соединения J-1a в виде коричневого масла (65% выход).
1Н-ЯМР (ДМСО-d6, 400 МГц): δ (м.д.) 8,60 (шир.с, 1Н), 7,58 (с, 1Н), 6,76 (с, 1Н), 1,85 (м, 1Н), 0,86 (м, 2Н), 0,71 (м, 2Н).
J-1a (4,84 г; 44,8 ммоль) в ТГФ (60 мл) добавляли по каплям к суспензии NaH (1,97 г; 49,2 ммоль) в ТГФ (200 мл) при 0°С в атмосфере N2. Смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 30 мин и SEM-Cl (9,9 мл; 55,9 ммоль) в ТГФ (20 мл) добавляли по каплям при 0°С. Смесь перемешивали при комнатной температуре в атмосфере N2 в течение 16 ч. Добавляли воду и экстрагировали продукт с помощью DCM. Органический слой высушивали над MgSO4, фильтровали и концентрировали при пониженном давлении. Неочищенный продукт очищали с помощью препаративной ЖХ (SiOH с зернами неправильной формы 20-45 мкм, 150 г Merck, градиент подвижной фазы от 50% DCM, 50% гептана до 100% DCM). Фракции, содержащие чистое соединение, объединяли и удаляли при пониженном давлении растворитель с получением 6,6 г J-1b в виде желтого масла (62%).
Смесь двух региоизомеров: 70/30.
Минорный региоизомер:
1Н-ЯМР (ДМСО-d6, 400 МГц): δ (м.д.) 7,64 (с, 1Н), 6,56 (с, 1Н), 5,34 (с, 1Н), 3,45 (т, J=8,08 Гц, 2Н), 1,73-1,78 (м, 1Н), 0,80-0,86 (м, 2Н), 0,72-0,74 (м, 2Н), 0,52-0,57 (м, 2Н), -0,04 (с, 9Н).
Основной региоизомер:
1Н-ЯМР (ДМСО-d6, 400 МГц): δ (м.д.) 7,56 (с, 1Н), 6,94 (с, 1Н), 5,20 (с, 1Н), 3,43 (т, J=8,08 Гц, 2Н), 1,73-1,78 (м, 1Н), 0,80-0,86 (м, 2Н), 0,72-0,74 (м, 2Н), 0,56-0,62 (м, 2Н), -0,04 (с, 9Н).
BrCN (6,11 г; 57,7 ммоль) добавляли к раствору DMAP (7,05 г; 57,7 ммоль) в ДМФА (60 мл) при 10°С. Реакция являлась экзотермической до 35°С и образовывался бледно-желтый осадок. Смесь охлаждали до 10°С и добавляли J-1b (5,5 г; 2 3,1 ммоль). Смесь перемешивали при 40°С в течение 6 ч. Добавляли воду и экстрагировали продукт с помощью Et2O (2 раза). Объединенные органические слои промывали солевым раствором, высушивали над MgSO4, фильтровали и растворитель удаляли при пониженном давлении.
Неочищенный продукт очищали с помощью препаративной ЖХ (SiOH с зернами неправильной формы 15-40 мкм, 220 г grace, подвижная фаза гептан/DCM от 50/50 до 10/90) с получением 2,2 г неочищенного J-1, которое дополнительно очищали с помощью препаративной ЖХ (SiOH с зернами неправильной формы 15-40 мкм, 90 г merck, подвижная фаза гептан/DCM 30/70) с получением 0,94 г J-1 в виде смеси двух региоизомеров (выход 15%).
ВЭЖХ Rt (мин)=6,11; МС М+ (Н+): 264 (способ V1004V1012).
- 8 036645
Альтернативный синтез промежуточного соединения J-1
BuLi (1,6 М в гексане) (11 мл; 17,6 ммоль) добавляли к раствору J-lb (3,5 г; 14,7 ммоль) в ТГФ (60 мл) при -50°С. Смесь перемешивали при той же температуре в течение 30 мин и добавляли ДМФА (1,7 мл; 22 ммоль). Смесь медленно нагревали до комнатной температуры в течение 1 ч, добавляли NH2OH-HCl (970 мг; 29,4 ммоль) и смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 16 ч. Добавляли воду и продукт экстрагировали DCM (3 раза), промывали солевым раствором, высушивали над MgSO4 и растворитель удаляли при пониженном давлении с получением 4,1 г (количественный выход) смеси изомеров K-1 в виде желтого масла.
ВЭЖХ Rt (мин)=5,30, 5,41 и 5,90; МС М+ (Н+): 282 (способ V2002V2002).
K-1 (3,1 г; 11 ммоль) растворяли в DCM (18 мл) и пиридине (19 мл) при комнатной температуре. Смесь охлаждали до 0°С и добавляли TFAA (4,6 мл; 33 ммоль). Смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 24 ч. Растворитель удаляли при пониженном давлении и остаток растворяли в AcOEt. Органический слой промывали водой и солевым раствором, высушивали над MgSO4, фильтровали и растворитель удаляли при пониженном давлении. Неочищенный продукт очищали с помощью препаративной ЖХ (SiOH с зернами неправильной формы 15-40 мкм, 90 г merck, подвижная фаза гептан/DCM от 30/70 до DCM 100%) с получением 2,14 г промежуточного соединения J-1 (73%) в виде смеси двух изомеров.
ВЭЖХ Rt (мин)=6,51; МС М+ (Н+): 264 (способ V2002V2002).
Общая схема получения конечных продуктов (способ 3)
Синтез промежуточного соединения N-1
В микроволновой печи СЕМ смесь М-1 (его синтез был, например, описан в WO 2006117670, на с. 57, 58 Получение 1-4 соответственно с получением 6-амино-9-бензил-2-хлор-7,9-дигидропурин-8-она) (9,7 г, 37,351 ммоль), NaCN (3,11 г, 63,50 ммоль) в ДМСО (100 мл) перемешивали при 150°С в течение 4 ч. Смесь выливали в воду и отфильтровывали, промывали водой и высушивали под вакуумом при 60°С с получением 8,6 г промежуточного соединения N-1.
ВЭЖХ Rt (мин.)=5,23; МС М+ (Н+): 251 (способ V2003V2002).
Синтез промежуточного соединения 0-1
FeCl3 (на кончике шпателя) добавляли к смеси N-1 (3,70 г, 147,84 ммоль) и NBS (26,2 г,147,845 ммоль) в CHCl3 (60 мл). Смесь перемешивали и нагревали с обратным холодильником в течение 3 ч, а затем охлаждали до комнатной температуры. Осадок отфильтровывали. Фильтрат выпаривали и очищали с помощью флеш-хроматографии через силикагель (15-40 мкм, 120 г, CH2Cl2/CH3OH 99-1) с получением 4,5 г неочищенного промежуточного соединения 0-1. Фракцию поглощали с помощью CH2Cl2 и осадок отфильтровывали с получением 1,8 г промежуточного соединения 0-1.
ВЭЖХ Rt (мин)=5,77; МС М+ (HCH3CN+): 370-372 (способ V2003V2002).
- 9 036645
Синтез промежуточного соединения Р-1
Смесь 0-1 (0,82 г, 2,491 ммоль), MeONa/MeOH (30 вес.% раствор) (1,15 мл, 6,228 ммоль) в МеОН (15 мл) перемешивали при 50°С в течение 2 ч. Добавляли NH4Cl (333 мг, 6,228 ммоль) и смесь перемешивали, и нагревали с обратным холодильником в течение 2 ч. Растворитель выпаривали при пониженном давлении. Неочищенный продукт очищали с помощью флеш-хроматографии через силикагель (1540 мкм, 90 г, CH2Cl2/CH3OH/NH4OH: 85-14-1). Собирали и концентрировали очищенные фракции при пониженном давлении с получением 0,55 г промежуточного соединения Р-1 (выход 74%).
ВЭЖХ Rt (мин)=4,46; МС М+ (Н+): 298 (способ V2003V2002).
Синтез промежуточного соединения Q-1
2-Бром-1-циклопропилпропан-1-он (104 мг, 0,589 ммоль) добавляли по каплям к смеси Р-1 (175 мг, 0,589 ммоль) и DBU (0,264 мл, 1,766 ммоль) в EtOH (5 мл). Смесь перемешивали и нагревали с обратным холодильником в течение 5 ч. Растворитель концентрировали при пониженном давлении. Неочищенный продукт очищали с помощью флеш-хроматографии через силикагель (15-40 мкм, 40 г, CH2Cl2/CH3OH/NH4OH: 95/5/0,1). Очищенные фракции собирали и концентрировали при пониженном давлении с получением 40 мг промежуточного соединения Q-1. Неочищенное соединение применяли непосредственно на следующем этапе.
ВЭЖХ Rt (мин)=5,35; МС М+ (Н+): 376 (способ V1005V1012).
Синтез конечного соединения 5
Смесь Q-1 (40 мг, 0,107 ммоль) в 6 н. HCl (1 мл) и диоксане (1 мл) перемешивали при комнатной температуре в течение 6 ч. Смесь частично выпаривали при пониженном давлении. Раствор охлаждали до 0°С, ощелачивали NaHCO3 и экстрагировали с помощью EtOAc-CH3OH (90-10). Объединенные органические слои высушивали над MgSO4, отфильтровывали и выпаривали при пониженном давлении. Неочищенный продукт очищали с помощью флеш-хроматографии через силикагель (15-40 мкм, 10 г, CH2Cl2/CH3OH/NH4OH: 88-12-0, 5). Собирали чистые фракции и концентрировали при пониженном давлении. Полученное в результате твердое вещество (35 мг) выкристаллизовывали из Et2O с получением 25 мг соединения 5 (выход 64%, Т.пл.>260°С).
Общая схема получения конечных продуктов (способ 4)
Si-
\
Синтез промежуточного соединения Т-1
R-1 s-1
S-1 (синтез описан в J. Med. Chem. 1996, 39, 13, 2586-2593) (1,14 г; 9,33 ммоль) добавляли по кап- 10 036645 лям к раствору R-1 (синтез описан в WO 2006/117670) (1,46 г; 8,89 ммоль) и анилина, HCl (18 мг; 0,14 ммоль) в EtOH (30 мл) при 10°С. Реакционную смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 20 ч. Водный раствор 3 М NaOH (30 мл) добавляли по каплям к раствору при 10°С и полученную в результате смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 1 ч. Водный слой экстрагировали с помощью DCM (3 раза). Объединенные органические слои промывали насыщенным водным раствором NaHCO3, высушивали над MgSO4, фильтровали и концентрировали в вакууме с получением 1,20 г Т-1 в виде коричневого твердого вещества (выход 63%). Т-1 применяли на следующем этапе без дополнительной очистки.
ВЭЖХ Rt (мин.)=4,45; МС М+ (Н+): 214 (способ V1010V1012).
Синтез промежуточного соединения U-1
Раствор NCS (475 мг; 3,56 ммоль) в ТГФ (10 мл) добавляли по каплям к раствору Т-1 (690 мг; 3,24 ммоль) в ТГФ (35 мл). Раствор перемешивали при комнатной температуре в течение 20 ч. в потоке N2. Раствор NCS (260 мг; 1,94 ммоль) в ТГФ (5 мл) добавляли по каплям к раствору. Раствор перемешивали при комнатной температуре в течение 16 ч в потоке N2. Смесь поглощали DCM, промывали насыщенным водным раствором NaHCO3, промывали солевым раствором, высушивали над MgSO4, фильтровали и выпаривали в вакууме с получением 950 мг коричневого твердого вещества. Неочищенный продукт очищали с помощью препаративной ЖХ (SiOH с зернами неправильной формы 15-40 мкм, 40 г Grace, жидкий образец, подвижная фаза: от 98% DCM, 2% МеОН до 90% DCM, 10% МеОН). Фракции, содержащие чистое соединение, объединяли и удаляли растворитель под вакуумом с получением 200 мг U-1 в виде коричневого твердого вещества (выход 25%).
ВЭЖХ Rt (мин)=5,13; МС М+ (Н+): 248-250 (способ V2012V2002).
Синтез промежуточного соединения W-1
Si-
EtONa (398 мг; 5,85 ммоль) добавляли к раствору U-1 (290 мг; 1,17 ммоль) и V-1 (270 мг; 1,21 ммоль) в EtOH (15 мл). Смесь перемешивали при 90°С в течение 16 ч. Растворитель удаляли при пониженном давлении. Неочищенный продукт очищали с помощью препаративной ЖХ (SiOH с зернами неправильной формы 15-40 мкм, 50 г merck, твердый образец, подвижная фаза 97/3/0,1). Фракции, содержащие чистое соединение, объединяли и удаляли растворитель с получением 210 мг W-1 в виде светложелтого твердого вещества (выход 37%).
ВЭЖХ Rt (мин)=6,68; МС М+ (Н+): 248-250 (способ V1010V1012).
Синтез соединения 9
W-1 3^· 9
NaF (91 мг; 2,18 ммоль) добавляли к раствору W-1 (210 мг; 0,44 ммоль) в HCl 37% в воде (15 мл) и МеОН (10 мл). Смесь перемешивали при 40°С в течение 16 ч. Смесь охлаждали до комнатной температуры и 10%-ный водный раствор K2CO3 добавляли до получения щелочного рН. Водный слой насыщали порошком K2CO3 и продукт экстрагировали с помощью DCM/MeOH (95/5) (3 раза). Объединенные органические слои высушивали над MgSO4, фильтровали и удаляли растворитель при пониженном давлении. Неочищенный продукт очищали с помощью препаративной ЖХ (SiOH с зернами неправильной формы 15-40 мкм, merck 10 г, подвижная фаза DCM/MeOH/NH3 водн. от 93/3/0,1 до 85/15/1). Фракции, содержащие чистое соединение, объединяли растворитель удаляли в вакууме и титульное соединение высушивали в вакууме в течение 16 ч при 60°С с получением 9,8 мг соединения 9 (6%) в виде светлокоричневого твердого вещества. Т.пл.>260°С.
- 11 036645
Общая схема получения конечных продуктов (способ 5)
HetAr-B(OH)2 соченатие Сузуки
Синтез промежуточного соединения Y-1
Метоксид натрия (30 вес.% в МеОН) (15,6 мл, 84,172 ммоль) добавляли по каплям к смеси XI (синтез описан в Bioorg. Med. Chem., 11, 2003, 5501-5508) (5,7 г, 16,834 ммоль) в МеОН (150 мл) при комнатной температуре. Смесь перемешивали при 60°С в течение 6 ч и затем охлаждали до комнатной температуры. Осадок отфильтровывали и высушивали с выходом Y-1 3,25 г. Неочищенное соединение применя ли на следующем этапе.
ВЭЖХ Rt (мин)=5,53; МС М+ (Н+): 290-292 (способ V2003V2002).
Синтез промежуточного соединения Z-1
Вос2О (3,0 г, 13,806 ммоль) добавляли в потоке N2 к смеси Y-1 (1,0 г, 3,4 52 ммоль), DMAP (42 мг, 0,345 ммоль) в ТГФ (10 мл) при комнатной температуре. Смесь перемешивали при 80°С в течение 2 ч. Смесь выливали в воду и экстрагировали EtOAc. Органический слой промывали водой, сушили над MgSO4, фильтровали и выпаривали растворитель. Неочищенный продукт очищали с помощью препаративной ЖХ на (SiOH с зернами неправильной формы 20-45 мкм, 450 г matrex). Подвижная фаза (градиент от 98% DCM, 2% AcOEt до 95% DCM, 5% AcOEt) с получением 0,825 г Z-1 (выход 49%, Т. пл.=159°С).
ВЭЖХ Rt (мин)=4,43; MC М+ (Н+): 490-492 (способ V2015V2007).
Синтез промежуточного соединения В-2
Раствор Z-1 (300 мг, 0,612 ммоль), А-2 (255 мг, 0,918 ммоль) и NaHCO3 (257 мг, 3,06 ммоль) в смеси диоксан/вода (4/1) (3 мл) дегазировали барботированием с помощью N2 в течение 10 мин. Добавляли тетракис(трифенилфосфин)палладий (142 мг, 0,122 ммоль) и смесь перемешивали при 100°С в течение 5 ч. Добавляли воду и EtOAc и декантировали слои. Водный слой экстрагировали с помощью EtOAc. Органические слои объединяли, сушили над MgSO4, фильтровали и растворитель выпаривали на следующем этапе без дополнительной очистки.
Синтез конечного соединения 23
- 12 036645
HCl 6 н. (10 мл) добавляли к раствору В-2 (0,7 г, 1,15 ммоль) в диоксане (7 мл) при 0°С. Смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 12 ч и затем охлаждали до 0°С и ощелачивали с помощью K2CO3. Смесь экстрагировали с помощью EtOAc+CH3OH (90-10). Объединенные органические слои сушили над MgSO4, фильтровали и выпаривали растворитель. Неочищенный продукт очищали с помощью препаративной ЖХ на (силикагель с зернами правильной формы 5 мкм 150x30,0 мм). Подвижная фаза (градиент от 0,3% NH4OH, 97% DCM, 3% МеОН до 1,4% NH4OH, 86% DCM, 14% МеОН) с выходом 67 мг конечного соединения 23 после кристаллизации из СН3ОН (выход 19%).
Общая схема получения конечных продуктов (способ 6)
Синтез промежуточного соединения С-2
Смесь Y-1 (0,53 г, 1,829 ммоль) в 6 н. HCl (5 мл) и диоксана (5 мл) перемешивали при комнатной температуре в течение 18 ч. Осадок отфильтровывали, промывали минимальным количеством холодного диоксана и сушили с получением 0,28 г неочищенного продукта С-2, который применяли на следующем этапе без дополнительной очистки.
ВЭЖХ Rt (мин)=4,96; МС М+ (Н+): 276-278 (способ V2003V2002).
Синтез промежуточного соединения D-2
NEt3 (0,187 мл, 1,345 ммоль) и затем Boc2O (0,215 г, 0,987 ммоль) добавляли к смеси С-2 (0,28 г, 0,897 ммоль) и DMAP (11 мг, 0,0897 ммоль) в ТГФ (3 мл) при комнатной температуре. Смесь перемешивали при 80°С в течение 2 ч. Добавляли воду и EtOAc. Слои декантировали. Органический слой сушили над MgSO4, фильтровали и растворитель испаряли с выходом 0,18 г промежуточного соединения D-2. Неочищенное соединение применяли непосредственно на следующем этапе.
ВЭЖХ Rt (мин)=6,31; МС М+ (Н+): 376-378 (способ V2002V2002).
Синтез конечного соединения 20 он I
Раствор D-2 (240 мг, 0,64 ммоль), Е-2 (107 мг, 0,96 ммоль) и NaHCO3 (269 мг, 3,2 ммоль) в смеси диоксан/вода (4/1) (3,2 мл) дегазировали барботированием N2 в течение 10 мин. Добавляли тетракис(трифенилфосфин)палладий (148 мг, 0,13 ммоль) и смесь перемешивали при 100°С в течение 16 ч. Добавляли воду и EtOAc и декантировали слои. Водный слой экстрагировали с помощью EtOAc. Органические слои объединяли, высушивали над MgSO4, фильтровали и растворитель выпаривали. Неочищенный продукт очищали на обратимой фазе с выходом 13 мг конечного соединения 20 (выход 6%).
Общая схема получения конечных продуктов (способ 7)
- 13 036645
Синтез конечного соединения 36
Смесь Z-1 (300 мг, 0,612 ммоль) и пиразола (417 мг, 6,123 ммоль) перемешивали при 180°С в течение 1 ч (микроволновый реактор biotage). Неочищенное соединение очищали с помощью хроматографии через колонку с силикагелем (15-40 мкм, 25 г) в CH2Cl2/MeOH/NH4OH 96/4/0,5 с получением после кристаллизации в диизопропилэфире и высушивания при разреженном давлении при 80°С 85 мг конечного соединения 36.
Общая схема получения конечных продуктов (способ 8) Синтез промежуточного соединения G-2
Раствор F-2 (50 г, 316,09 ммоль) в TFA (210 мл) перемешивали при комнатной температуре в течение 30 мин. Смесь охлаждали до 5°С, а затем добавляли дымящуюся HNO3 (19,5 мл, 426,73 ммоль) по каплям при 5°С. При добавлении температуру поддерживали на уровне 10-15°С. Удаляли ледяную баню, и после чего при достижении температуры 20°С проходила бурная экзотермическая реакция (от 20 до 45°С за 5 с). Смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 16 ч. Смесь выливали в смесь из воды и льда. Осадок отфильтровывали и промывали водой. Осадок высушивали под вакуумом при 50°С с получением 42 г (выход 65%) промежуточного соединения G-2. Данное промежуточное соединение применяли непосредственно на следующем этапе без какой-либо дополнительной очистки.
Синтез промежуточного соединения Н-2
N,N-Диметиланилин (76,7 мл, 0,61 моль) добавляли по каплям к POCl3 (93,7 мл, 1,01 моль) при 0°С. G-2 (41 г, 201,79 ммоль) добавляли по частям при 0°С, а затем смесь нагревали до 100°С в течение 2 ч. Раствор концентрировали в вакууме и удаляли остаточный POCl3 путем азеотропной перегонки с толуолом (3 раза). Полученное в результате масло поглощали раствором CH2Cl2-гептана (70-30) и фильтровали через стеклянный фильтр, содержащий SiO2. Фильтрат концентрировали и остаток очищали с помощью препаративной ЖХ на (SiOH с зернами неправильной формы 20-45 мкм, 1000 г davisil), подвижная фаза (80% гептан, 20% CH2Cl2). Собирали очищенные фракции и концентрировали с получением 37,8 г (выход 78%) промежуточного соединения Н-2.
Синтез промежуточного соединения I-2
Раствор NH3 2 M в iPrOH (115 мл, 229,31 ммоль) добавляли по каплям к раствору Н-2 (36,7 г, 152,87 ммоль) и Et3N (23,4 мл, 168,16 ммоль) в ТГФ (360 мл) (при добавлении температуру поддерживали на уровне RT с помощью бани с ледяной водой). Реакционную смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 5 ч. Смесь выпаривали досуха. Воду и EtOAc добавляли к остатку. Слои разделяли и водный слой экстрагировали с помощью EtOAc (дважды). Объединенные органические слои сушили над MgSO4, фильтровали и удаляли растворитель при пониженном давлении с получением 34,5 г (выход 100%) промежуточного соединения I-2.
Синтез промежуточного соединения J-2
Этилхлорформиат (13,5 мл, 138,90 ммоль) добавляли к раствору I-2 (39,8 г, 126,27 ммоль) и Et3N (26,5 мл, 189,40 ммоль) в ТГФ (1300 мл). Смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 6 ч
- 14 036645 и растворитель частично испаряли при пониженном давлении. Остаток поглощали CH2Cl2 и водой. Разделяли слои; водный слой экстрагировали CH2Cl2 (дважды). Объединенные органические слои высушивали над MgSO4, фильтровали и удаляли растворитель при пониженном давлении. Остаток очищали с помощью ЖХ (на SiOH зернах неправильной формы 20-45 мкм, 1000 г davisil), подвижная фаза (градиент от 85% гептана, 15% AcOEt до 80% гептана, 20% AcOEt). Очищенные фракции собирали и концентрировали с получением 35 г (выход 95%) промежуточного соединения J-2.
Синтез промежуточного соединения L-2
J-2 (5 г, 17,0 ммоль), К-2 (3,91 г, 17,0 ммоль), K2CO3 (5,90 г, 42,7 ммоль) и NaI (2,56 г, 17,0 ммоль) в ацетоне (130 мл) перемешивали при комнатной температуре в течение 18 ч. Раствор фильтровали и фильтрат выпаривали при пониженном давлении. Неочищенное соединение очищали с помощью препаративной ЖХ (SiOH с зерном неправильной формы 15-40 мкм, 120 г merck, твердая проба, подвижная фаза: гептан/EtOAc от 100/0 до 80/20) с получением промежуточного соединения L-2 в виде бледножелтого твердого вещества (выход 69%).
Синтез промежуточного соединения М-2
Реакцию завершали с получением двух партий по 2,7 г L-2.
Протокол для одной партии 2,7 г:
в запаянной пробирке L-2 (2,70 г, 6,12 ммоль) перемешивали в NH3 (7 М в МеОН) (50 мл) и ТГФ (50 мл) при комнатной температуре в течение 2 ч.
Смешивали две партии.
Смесь выпаривали в вакууме и остаток сушили с помощью азеотропной перегонки с EtOH (дважды) с получением желтого твердого вещества. Добавляли воду и EtOAc, слои разделяли и водный слой экстрагировали с помощью EtOAc (дважды). Объединенные органические слои сушили над MgSO4, фильтровали и выпаривали в вакууме с получением 4,9 г промежуточного соединения М-2 в виде желтого твердого вещества (выход 90%).
Синтез промежуточного соединения N-2
mCPBA (1,46 г, 5,93 ммоль) добавляли по частям к раствору М-2 (1 г, 2,37 ммоль) в CH2Cl2 (60 мл) при 0°С. Смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 20 ч. Водный раствор Na2S2O3 добавляли к смеси. Слои разделяли и водный слой экстрагировали с помощью CH2Cl2 (дважды). Объединенные органический слои промывали насыщенным водным раствором NaHCO3, сушили над MgSO4, фильтровали и удаляли растворитель при пониженном давлении с получением 980 мг промежуточного соединения N-2 в виде желтого твердого вещества (выход 91%). Промежуточное соединение N-2 применяли на следующем этапе без дополнительной очистки.
Синтез промежуточного соединения O-2
Смесь N-2 (500 мг, 1,10 ммоль) и пиразола (750 мг, 11,0 ммоль) перемешивали при 80°С в течение 45 мин. Полученную в результате смесь поглощали EtOAc и 1 М водным раствором HCl. Слои разделяли, органический слой сушили над MgSO4, фильтровали и сушили в вакууме с получением 550 мг желтого твердого вещества. Неочищенное соединение очищали с помощью препаративной ЖХ (SiOH с зерном
- 15 036645 неправильной формы 15-40 мкм, 25 г grace, твердая проба, подвижная фаза: градиент от
CH2Cl2/MeOH/NH3 водн. 97/3/0,03 до 80/20/0,3) с получением 370 мг промежуточного соединения О-2 в виде твердого белого вещества (выход 76%).
Синтез конечного соединения 37
Fe (280 мг, 5,01 ммоль) добавляли к смеси О-2 (365 мг, 827 мкмоль) в АсОН (17 мл) и воде (1,8 мл). Смесь энергично перемешивали при комнатной температуре в течение 64 ч. Реакционную смесь фильтровали через целитовую подушку, концентрировали в вакууме совместно выпаривали с толуолом (дважды) с получением темного остатка. Неочищенный продукт очищали с помощью препаративной ЖХ (SiOH с зерном неправильной формы 15-40 мкм, 25 г merck, твердая проба, градиент подвижная фаза: от CH2Cl2/MeOH/NH3 водн. от 96/4/0,4 до 80/20/3) с получением 250 мг белого твердого вещества, которое очищали снова с помощью препаративной ЖХ (SiOH с зерном неправильной формы 15-40 мкм, 25 г merck, твердая проба, градиент подвижной фазы: от CH2Cl2/MeOH/NH3 водн. 96/4/0,4 до 80/20/3) с получением 110 мг фракции 1 в виде белого твердого вещества (36%) и 25 мг фракции 2 в виде белого твердого вещества (8%). Общий выход: 45%. 8 мг фракции 2 сушили в вакууме в течение 16 ч при 40°С с получением 6 мг конечного соединения 37 в виде белого твердого вещества.
Синтез конечного соединения 38
38
LiOH (9 мг, 123 мкмоль) добавляли к суспензии 37 (15 мг, 41,1 мкмоль) в ТГФ (4 мл) и воде (5 мл). Реакционную смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 16 ч. 10%-ный водный раствор K2CO3 добавляли до щелочного рН. Водный слой насыщали порошком K2CO3 и продукт экстрагировали с помощью CH2Cl2/MeOH (9/1) (3 раза). Объединенные органические слои сушили над MgSO4, фильтровали и удаляли растворитель при пониженном давлении с получением 200 мг. Неочищенный продукт очищали с помощью препаративной ЖХ (X-Bridge-C18, 5 мкм, 30x150 мм, подвижная фаза: градиент от Н2О (0,1% муравьиная кислота)/MeCN 90/10 до 0/100) с получением 12 мг конечного соединения 38 в виде белого твердого вещества (83%).
Синтез конечного соединения 39
39
Dibal-H (1,2 М в толуоле) (0,2 мл, 240 мкмоль) добавляли по каплям к раствору из 37 (30 мг, 82,1 мкмоль) в ТГФ (3 мл) и толуола (1 мл) в атмосфере азота при 0°С. Раствор перемешивали при 0°С в течение 2 ч. Добавляли Dibal-H (0,2 мл, 240 мкмоль) и раствор перемешивали при комнатной температуре в течение 2 ч. Насыщенный водный раствор тартрата калия-натрия добавляли для нейтрализации реакции. Смесь разбавляли EtOAc с последующим энергичным перемешиванием в течение 30 мин. Органический слой отделяли от водного слоя, промывали солевым раствором, сушили над MgSO4, фильтровали и концентрировали в вакууме с получением 40 мг. Неочищенный продукт очищали с помощью препаративной ЖХ (SiOH с зерном неправильной формы 15-40 мкм, 4 г grace, твердая проба, градиент подвижной фазы: от CH2Cl2/MeOH/NH3 водн. от 96/4/0,04 до 80/20/2) с получением белого твердого вещества. Полученное белое твердое вещество сушили в вакууме в течение 16 ч при 40°С с получением 8 мг конечного соединения 39 (29%) в виде белого твердого вещества.
Синтез конечного соединения 40
(45 мг, 133 мкмоль) растворяли в HBr (30% в АсОН) (10 мл). Смесь перемешивали при комнат- 16 036645 ной температуре в течение 1 ч. Растворитель выпаривали и АсОН отгоняли азеотропно с толуолом (дважды) с получением 75 мг промежуточного соединения Р-2 в виде коричневого твердого вещества, которое применяли на следующем этапе без дополнительной очистки.
К суспензии NaH (53 мг, 1,33 ммоль) в ТГФ (4 мл) добавляли по каплям диэтилфосфит (0,130 мл, 1,33 ммоль) при комнатной температуре. Смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 1 ч. К смеси добавляли раствор Р-2 (64 мг, 133 мкмоль) в ТГФ (4 мл). Смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 16 ч. К суспензии NaH (53 мг, 1,33 ммоль) в ТГФ (4 мл) добавляли по каплям диэтилфосфит (0,130 мл; 1,33 ммоль) при комнатной температуре. Полученную в результате смесь добавляли к реакционной смеси. Полученную в результате реакционную смесь перемешивали при комнатной температуре в течение 1 ч. Добавляли воду и EtOAc, слои разделяли и промывали органический слой водным раствором NaHCO3 и солевым раствором, сушили над MgSO4, фильтровали и концентрировали в вакууме с получением 75 мг чистого масла. Неочищенный продукт очищали с помощью препаративной ЖХ (SiOH с зерном неправильной формы 15-40 мкм, 25 г merck, сухой ввод образца, градиент подвижной фазы: от CH2Cl2/MeOH 100/0 до 85/15) с получением 38 мг белого твердого вещества, которое растирали в пентане. Полученное в результате твердое вещество фильтровали и сушили в вакууме в течение 16 ч при 50°С с получением 28 мг конечного соединения 40 в виде белого твердого вещества (выход 40%).
Синтез конечного соединения 41
(590 мг, 1,29 ммоль) растворяли в HCl (37% в воде) (60 мл). Смесь перемешивали при 100°С в течение 16 ч. Растворитель выпаривали и Н2О азеотропно отгоняли с EtOH (дважды) с получением 605 мг конечного соединения 41 в виде белого твердого вещества (выход 100%).
Таблица 1
Соединение по настоящему изобретению
Структура Масса, точное значение Масса, найденное значение [М+Н] ЖХ-МС, время удерживания, способ Способ синтеза Т.пл. (°C) Н-ЯМР
1 H,N Н ' \ ,Ν, ν' \\ '' ____ >~N' 'т--Ц / N—·2_2 ^^—-2', ,ΝΗ 347,15 348 1,01, в 1,2 ХН-ЯМР (600 МГц, ДМС0-с1б) δ М.Д. 0,84 (шир.с, 2Н), 0,99 (д, J=6,7 Гц, 2Н), 2,00 (шир.с, 1Н), 3,16 (шир.с, 1Н) , 5,03 (шир.с, 2Н) , 7,08-7,21 (м, 2Н) , 7,24-7,35 (м, ЗН) , 7,36-7, 45 (м, ЗН) , 11,51 (шир.с, 1Н)
2 Η.Ν Н Αν Л)— fj X . ,· N-г Т_д/ HCl ЧЭ ' 383,15 384 1,18, В 1 ХН-ЯМР (400 МГц, ДМСО-бб) δ м.д. 5,08 (с, 2Н) , 7,04 (шир.с, 2Н), 7,29 (м, J=7, 3 Гц, 1Н) , 7,34 (т, J=7,3 Гц, 2Н) , 7, 40-7, 48 (м, ЗН), 7, 49-7, 56 (м, 2Н) , 7,97 (д, J=7,3 Гц, 2Н) , 8,20 (с, 1Н) , 11,28 (с, 1Н)
3 АА „ Х-П /\Жх N Н < Ж ·-·· HCI 375,18 376 1 ХН-ЯМР (ДМСО-dg, 400 МГц) : δ м.д. 14,45 (шир.с, 1Н), 11,49 (с, 1Н), 7,54 (с, 1Н) , 7,41 (Д, J=8 Гц, 2Н),7,31 (т, J=8 Гц, 2Н) , 7,28 (т, J=8 Гц, 1Н) , 7,14 (шир .с, 2Н) , 5,06 (с, 2Н) , 3,15 (м, 1Н), 2,08-2,06 (м, 2Н), 1,74-1,62 (м, 6Н)
4 Η,Ν Н w-vo Ν=Ζ \—J 4^,ΝΗ 307,12 308 1/87, V3018V3001 2 >260 ХН-ЯМР (ДМСО-dg, 400 МГц) : δ м.д. 12,34 (шир.с, 1Н), 10,32 (шир.с, 1Н), 7,22-7,44 (м, 5Н), 7,18 (с, 1Н) , 7,01 (с, 1Н) , 6,48 (шир.с, 2Н) , 5, 00 (с, 2Н)
- 17 036645
5 Η;Ν Η Ά-Ν--ο .^ν' ’---V ) Ν-^' \__/ (Ал ΝΗ τ 361,16 362 2,35, V3018V3001 3 >260 ХН-ЯМР (ДМСО-ds, 500 МГц) : δ м.д. 11,89 (шир.с, 1Н), 10,24 (шир.с, 1Н) , 7,21-7,40 (м, 5Н), 6,51 (шир.с, 2Н), 5,01 (с, 2Н) , 2,24 (с, ЗН) , 1,72-1,80 (м, 1Н) , 0, 65-0, 78 (м, 4Н)
6 ν Ο 375,18 376 2,52, V3018V3001 3 >260 хн-ямр (дмсо-а6, 500 МГц) : δ м.д. 11,85 (шир.с, 1Н), 10,26 (с, 1Н), 7,21-7,39 (м, 5Н), 6,51 (шир.с, 2Н), 5,02 (с, 2Н) , 2,65 (м, 2Н) , 1,78 (шир.с, 1Н) , 1, 17 (т, J=6, 5 Гц, ЗН) , 0,65-0,78 (м, 4Н)
Ί Η-Ν Η _ 0 g* ΓΛ /-Ν 4--V ) ν-2 \-~Ζ —ΝΗ Γ 335,15 336 2, 1, V3018V3001 3 230 хн-ямр (дмсо-а6, 500 МГц) : δ м.д. 11,98 (шир.с, 1Н), 10,27 (с, 1Н) , 7,20-7,40 (м, 5Н), 6,40 (с, 2Н) , 5,01 (с, 2Н) , 2,10 (шир.с, 6Н)
8 V /-г ·—σ у Ν-γ \—/ --4% Η 321,13 322 2,01, V3018V3001 3 ХН-ЯМР (500 МГц, ДМСО-06) δ м.д. 12,00-12,17 (м, 1Н) , 10,29 (с, 1Н) , 7,35-7,40 (м, 2Н) , 7,32 (т, J=7,41 Гц, 2Н) , 7,23-7,29 (м, 1Н), 6, 66-6, 90 (м, 1Н) , 6,44 (шир.с, 2Н), 5,00 (шир.с, 2Н) , 2,10-2,26 (м, ЗН)
9 η2ν Η α. Αν-.ο NV \\ / _— V- - #4_ ζ^Ν '--V Τ~ Ά -ЛИ 322,13 323 2,47, V3018V3001 4 >260 ХН-ЯМР (400 МГц, flMCO-d6) δ м.д. 10,38 (шир.с, 1Н), 8,56 (шир.с, 1Н) , 7,71 (д, J=7,07 Гц, 1Н) , 7, 09-7, 30 (м, 4Н) , 6, 45 (шир.с, 2Н), 4, 99 (с, 2Н) , 1,25 (шир.с, ЗН)
10 Η-Ν Η \^Ν·.^ο V V-n »=/=- ^ί^ΝΗ 355,18 356 1,86, V3018V3001 4 >260 ХН-ЯМР (500 МГц, MeOD) δ м.д. 6,83 (с, 1Н) , 3, 95 (дд, J=2,84, 11, 35 Гц, 2Н) , 3,87 (д, J=7,57 Гц, 2Н) , 3,36-3,44 (м, 2Н) , 2,25-2,37 (м, 1Н), 1,89-1,98 (м, 1Н) , 1,60 (дд, J=l,89, 12,93 Гц, 2Н), 1,41-1,52 (м, 2Н) , 0,88-0,96 (м, 2Н) , 0,71-0,77 (м, 2Н) .
11 ΊΑ· 1 %_ΛΛ Α -- 365,16 366 2,11, V3018V3001 2 >260 ХН-ЯМР (ДМСО-06, 500 МГц) : δ м.д. 10,47 (шир.с, 1Н), 7,22-7,38 (м, 5Н), 7,20 (с, 1Н) , 6,91 (с, 1Н) , 6,62 (шир.с, 2Н) , 4, 97 (с, 2Н) , 4,52 (т, J=5,4 Гц, 2Н) , 3,48 (т, J=5, 4 Гц, 2Н), 3,10 (с, ЗН)
12 Η,Ν Η V-Zs=f° Ν Ζ V Γ Ύ ΖΆ 2—Ν ' <' ) Ν=\ \ J 321,13 322 2, 06, V3018V3001 2 >260 ХН-ЯМР (flMCO-d6, 500 МГц): δ м.д. 7,16-7,33 (м, 5Н) , 7,10 (с, 1Н) , 6,84 (с, 1Н) , 6,24 (шир.с, 2Н) , 4,91 (с, 2Н) , 3,85 (с, ЗН)
15 %ν ACo, νΥ 319,12 320 2,3, Villa 6 ХН-ЯМР (flMCO-d6, 300 МГц): δ м.д. 10,25 (шир.с, 1Н) , 9,47 (с, 2Н) , 9,23 (с, 1Н) , 7,40 (т, J=7,2 Гц, 2Н) , 7,34 (т, J=7,2 Гц, 2Н), 7,27 (д, J=7,2 Гц, 1Н) 670 (с, 2Н) , 5,75 (с, 1Н) , 5,02 (с, 2Н)
- 18 036645
18 η2ν Η жж о 306, 12 307 2,45, Villa 6 ХН-ЯМР (ДМСО-de, 300 МГц): δ м.д. 11,10 (шир.с, 1Н), 10,20 (шир.с, 1Н), 7,43 (д, J=7,l Гц, 2Н) , 7,33 (т, J=7,l Гц, 2Н) , 7,26 (т, J=7, 1 Гц, 1Н) , 6,83 (д, J=l,5 Гц, 1Н) , 6,68 (шир.с, 1Н), 6,35 (с, 2Н) , 6,10 (д, J=l,5 Гц, 1Н) , 4,98 (с, 2Н)
19 HjN Η XVo /—Ν >--С 7 О Ν Η 307,12 308 1,82, Villa 6 ХН-ЯМР (ДМСО-de, 300 МГц): δ м.д. 12,97 (шир.с, 1Н), 10,25 (шир.с, 1Н), 8,02 (шир.с, 2Н), 7,18-7,44 (м, 5Н) , 6,42 (с, 2Н) , 4,95 (с, 2Н)
20 Η2Ν Η Х'чэ 307,11 308 2,57, Villa 6 ХН-ЯМР (ДМСО-de, 300 МГц): δ м.д. 10, 60 (шир.с, 1Н), 7,76 (шир.с, 1Н), 7,19-7,40 (м, 5Н), 7,00 (д, J=3,3 Гц, 1Н) , 6,66 (с, 2Н) , 6,59 (дд, J=3,3, 1,8 Гц, 1Н) , 5,0 (с, 2Н)
23 η2ν η Жж η ^=7 Ν 307,12 308 2,03, V3018V3001 5 >260 ХН-ЯМР (50 0 МГц, flMCO-d6) δ м.д. 12,84-13,37 (м, 1Н) , 10,30 (шир.с, 1Н) , 7,23-7,76 (м, 6Н), 6,70 (шир.с, 1Н), 6,49 (шир.с, 2Н) , 4,98 (с, 2Н)
24 Η2Ν Η lj XQP ΧΜΗ 362,16 363 2,20 V3018V3001 4 240 ХН-ЯМР (ДМСО-de, 400 МГц) : δ м.д. 12,25 (шир.с, 1Н), 7,18 (д, J=8,1 Гц, 1Н) , 6,99-7,14 (м, 4Н) , 6,50 (с, 2Н) , 4,94 (с, 2Н) , 3,93 (с, 2Н) , 3,01-3,07 (м, 2Н) , 2,72 (т, J=5,6 Гц, 2Н)
25 ’Vv ζ-Ο Χ--'ΝΗ 0 5НСОгН 390,19 391 2, 47 V3018V3001 4 196 ХН-ЯМР (ДМСО-de, 400 МГц) : δ м.д. 12,13 (шир.с, 1Н), 10,38 (шир.с, 1Н), 8,15 (шир.с, 0,49Н, пик соли формиата), 7, 39 (шир.с, 1Н), 7,187,34 (м, ЗН), 7,09 (шир .с, 2Н) , 6,5 0 (шир.с, 2Н) , 5, 01 (шир.с, 2Н) , 3, 71 (шир.с, 2Н) , 2,502,61 (м, 4Н) , 1,67 (шир.с, 4Н)
26 Η2Ν Η V ж, ,-— Ν _-4( ) Ж \=Ν 0 5 HCOiH 362,16 363 1, 90 V3018V3001 4 >260 ХН-ЯМР (ДМСО-de, 400 МГц) : δ м.д. 12,05 (шир.с, 1Н), 10,27 (с, 1Н) , 8,56 (д, J=l, 8 Гц, 1Н), 8,15 (с, 0,59Н, пик соли формиата), 7,70 (дд, J=8,2, 1,8 Гц, 1Н) , 7,20 (д, J=8,2 Гц, 1Н) , 6,93 (шир.с, 1Н), 6,49 (шир.с, 2Н), 4,97 (с, 2Н) , 2,41 (с, ЗН) , 1,78-1,90 (м, 1Н) , 0,70-0, 87 (м, 2Н) , 0,64-0,70 (м, 2Н)
27 Η,Ν Η L/Жо X X u ГЛ, Z~-N '---V I N—z \ ' 351,14 352 1,78 V3018V3001 2 260 ХН-ЯМР (flMCO-d6, 500 МГц): δ м.д. 10,37 (с, 1Н) , 7,23-7,38 (м, 5Н) , 7,21 (д, J=0, 9 Гц, 1Н) , 6,91 (д, J=0,9 Гц, 1Н), 6,58 (шир.с, 2Н), 4,96 (с, 2Н) , 4,81 (т, J=5, 7 Гц, 1Н) , 4,41 (т, J=5,7 Гц, 2Н) , 3,59 (кв ., J=5,7 Гц, 2Н)
- 19 036645
28 Η,Ν Η Ν=Λ ЧЭ -νη 363,18 364 2,51 V3018V3001 2 >260 ^-ЯМР (ДМСО-06, 500 МГц) : δ м.д. 11,78-12,24 (м, 1Η) , 10,28 (с, 1Η) , 7,07-7,47 (м, 5Η) , 6, 21-6, 93 (м, 3Η) , 5, 01 (с, 2Η) , 1,13-1,45 (Μ, 9Η)
29 Η,Ν Η 'к λΝ._Ο ν—/ \—У 349,17 350 2, 35 V3018V3001 2 >260 Ή-ΗΜΡ (ДМСО-с16, 500 МГц) : δ м.д. 11,80-12,14 (м, 1Η) , 10,41 (шир.с, 1Η) , 7,06-7,70 (Μ, 5Η) , 6, 65-6, 89 (μ, 1Η) , 6, 37-6, 62 (Μ, 2Η) , 4,89-5,21 (μ, 2Η) , 2,73-3,16 (μ, 1Η) , 1,04-1,31 (Μ, 6Η)
30 Ν=η \_—-/ ^'X-NH 335,15 336 2, 18 V3018V3001 2 >260 ХН-ЯМР (ДМСО-06, 500 МГц): δ м.д. 11,82-12,28 (м, 1Η) , 10,47 (шир.с, 1Н) , 7,08-7,56 (м, 5Η), 6, 63-7,01 (μ, 1Η) , 6, 38-6, 59 (Μ, 2Η) , 4,78-5, 07 (μ, 2Η) , 2,53-2, 69 (μ, 2Η) , 0,95-1,35 (Μ, 3Η)
31 Η,Ν Η 0-ΓζΛ /—Ν '--(' 7 Ν—Ζ \ / F 375, 11 376 2,38 V3018V3001 2 >260 ^-ЯМР (flMCO-d6, 500 МГц): δ м.д. 13, 07 (шир.с, 1Н) , 10, 46 (шир.с, 1Η) , 7,83 (с, 1Н) , 7,39 (д, J=8,2 Гц, 2H) , 7,32 (т, J=8,2 Гц, 2Н) , 7,26 (т, J=8,2 Гц, 1Н) , 6,65 (шир.с, 2Н) , 4,98 (с, 2Н)
32 Η,Ν Η /—Ν >--С ) Ν^,Ο 308,10 309 2, 06 V3018V3001 5 :Н-ЯМР (ДМСО-ds, 500 МГц) : δ м.д. 10,44 (шир.с, 1Н), 8,45 (с, 1Н) , 7,63 (С, 1Н) , 7,16-7,37 (м, 5Н) , 6,70 (шир.с, 2Н) , 4,96 (с, 2Н)
33 Η2χζ^° ”//г^ Ο=:Ν --С / γ 323,11 324 2,23 V3018V3001 5 >250 ХН-ЯМР (ДМСО-ds, 500 МГц): δ м.д. 10,72 (шир.с, 1Н), 7,11-7,56 (м, 5Н), 6,94 (шир.с, 2Н), 5,00 (шир.с, 2Н), 2,41 (с, ЗН)
34 Η,Ν Η \ζΝ4-Ο 0-VZA 2—ν '—е у X - 367,14 368 2,27 V3018V3001 5 >250 ХН-ЯМР (ДМСО-ds, 500 МГц): δ м.д. 10,71 (шир.с, 1Н), 7,16-7,49 (м, 5Н) , 6,96 (шир.с, 2Н), 5,01 (с, 2Н) , 3,72 (т, J=6,3 Гц, 2Н) , 3,24 (с, ЗН), 3,01 (т, J=6,3 Гц, 2Н)
35 VXo νΖζΑ, ' ___. >νζ-Ν_/Λ Л-N %=/ 321,13 322 2, 42 V3018V3001 7 >260 ^-ЯМР (ДМСО-dg, 500 МГц) : δ м.д. 10,31 (шир.с, 1Н), 8,24 (с, 1Н) , 7,51 (с, 1Н) , 7,18-7,40 (м, 5Н) , 6,78 (шир.с, 2Н), 4, 96 (С, 2Н) , 2,08 (С, ЗН)
36 Η,Ν Η λ<ν° α 307,12 308 2,25 V3018V3001 7 >260 ХН-ЯМР (HMCO-d6, 500 МГц): δ м.д. 10,33 (шир.с, 1Н), 8,46 (д, J=2,5 Гц, 1Н) , 7,70 (с, 1Н) , 7,20-7,40 (м, 5Н), 6,82 (шир.с, 2Н), 6,48 (д, J=3, 8 Гц, 1Н) , 4,97 (с, 2Н)
- 20 036645
37 η2ν Η О > °\ 365,12 366 2,24 V3018V3001 8 ХН-ЯМР (ДМСО-de, 400 МГц): δ (м.д.) 9,80 (шир.с, 1Н), 8,47 (д, 7=2,5 Гц, 1Н) , 7,99 (с, 1Н), 7,87 (д, 7=7,6 Гц, 1Н) , 7,70 (с, 1Н), 7, 65 (д, J=7 , 6 Гц, 1Н) , 7,50 (т, 7=7,6 ГЦ, 1Н) , 6,84 (шир.с, 2Н), 6, 43-6, 63 (м, 1Н) , 5,04 (с, 2Н) , 3,83 (с, ЗН)
38 А» 0-νζχ ζ—Ν 4—<! 7 Г ΑΝ >о но 351,11 352 2,27 V3014V3001 8 332 2Η-ΗΜΡ (flMCO-d6, 400 МГц): δ (м.д.) 13,01 (шир.с, 1Н) , 10, 46 (шир.с, 1Н) , 8,47 (с, 1Н) , 7,95 (с, 1Н) , 7,84 (д, 7=7,6 ГЦ, 1Н) , 7, 69 (с, 1Н) , 7, 60 (д, 7=7,6 Гц, 1Н) , 7,46 (т, 7=7,6 Гц, 1Н), 6,87 (шир.с, 2Н) , 6,48 (с, 1Н) , 5,03 (с, 2Н)
39 η2ν н С % но 337,13 338 1, 87 V3018V3001 8 ХН-ЯМР (ДМСО-de, 500 МГц): δ (м.д.) 10,28 (шир.с, 1Н), 8,46 (с, 1Н) , 7,70 (с, 1Н) , 7,10-7,37 (м, 4Н) , 6,82 (шир.с, 2Н) , 6,356,57 (м, 1Н) , 5,17 (Т, J=5,7 Гц, 1Н), 4,96 (с, 2Н) , 4,45 (д, 7=5,7 Гц, 2Н)
40 41 42 H-Ν н \__ф О Αφς Η,Ν Η 0-νΖλ An '—e 7 λ-n 4=/ 0 —У— он на 'он H.N Η lOA ν/ΧΓ < , 2=« V.NV о А) 457,16 401,10 338,12 458 402 339 2, 13 V3018V3001 5,40 V2012V2002 2,45 V3014V3001 8 8 7 218 101 ХН-ЯМР (ДМСО-de, 500 МГц): δ (м.д.) 10,41 (шир.с, 1Н), 8,46 (шир. с, 1Н) , 7,69 (с, 1Н) , 7,04-7,38 (м, 4Н), 6,85 (шир.с, 2Н), 6,47 (шир.с, 1Н), 4,95 (шир.с, 2Н) , 3,85 (квинтет, 7=7,0 Гц, 4Н), 3,18 (д, 7=21,4 Гц, 2Н) , 1, 06 (т, 7=7,0 Гц, 6Н) ХН-ЯМР (flMCO-d6, 400 МГц) : δ (м.д.) 10,43 (с, 1Н) , 8,46 (д, 7=2, 5 Гц, 1Н) , 7, 69 (с, 1Н) , 7,10-7,31 (м, 4Н) , 6,84 (шир.с, 2Н), 6,47 (дд, 7=2,5, 1,5 Гц, 1Н) , 6,29 (шир.с, 2Н) , 4,90 (с, 2Н) , 2,92 (д, 7=21,2 Гц, 2Н) ХН-ЯМР (flMCO-d6, 500 МГц): δ (м.д.) 10, 20 (шир.с, 1Н) , 8,37 (д, 7=2,2 Гц, 1Н) , 7,65 (с, 1Н) , 7,48 (д, 7=6,9 Гц, 1Н), 7,19 (т, 7=6,9 Гц, 1Н) , 6, 82-7, 00 (м, ЗН) , 6,44 (дд, 7=2,4, 1,7 Гц, 1Н) , 4,955,14 (м, 2Н) , 2,43 (с, ЗН)
43 h2n н АГ S00Q 1,.5 347,12 348 2,54 V3014V3001 7 ХН-ЯМР (ДМСО-de, 400 МГц): δ (м.д.) 12,48-13,42 (м, 1Н) , 9,90-10,57 (м, 1Н) , 8,44 (д, 7=9,1 Гц, 1Н), 7,37-7,99 (м, ЗН), 7,19 (т, 7=9, 1 Гц, 1Н), 6, 83 (т, 7=9,1 Гц, 1Н), 6,69 (шир.с, 1Н), 6,47 (шир.с, 2Н) , 5,12 (шир.с, 2Н)
44 А· „ СУСп ^^Χ-ο7 365,12 366 3, 05 V3014V3001 7 ХН-ЯМР (ДМСО-de, 400 МГц): δ (м.д.) 12,32-13,87 (м, 1Н) , 9,94-10,53 (м, 1Н) , 7,4-8,26 (м, 5Н) , 6,61-6,89 (м, 1Н) , 6,28-6,59 (м, 2Н) , 5, 05 (с, 2Н), 3,83 (с, ЗН)
- 21 036645
45 η2ν η ΙΑ^Ο nA A 351,11 352 2, 13 V3014V3001 7 ХН-ЯМР (ДМСО-06, 400 МГц): δ (м.д.) 13, Об (шир.с, 2Н) , 10,32 (шир.с, 1Н), 7,97 (с, 1Н) , 7,83 (д, J=7,6 Гц, 1Н) , 7, 69 (д, J=7, 6 Гц, 1Н) , 7,57 (шир.с, 1Н), 7, 46 (т, J=7,6 Гц, 1Н) , 6,72 (д, J=l,5 Гц, 1Н) , 6, 48 (с, 2Н) , 5,04 (с, 2Н)
H --- ,N Y < / Aoh
46 H;N H Α-Ά0 VA^ H A' \- /1¾ N<j/ о 337,13 338 1, 63 V3018V3001 7 >260 хн-ямр (дмсо-а6, 500 МГц): δ (м.д.) 12,48-13,52 (м, 1Н) , 9,83-10,74 (м, 1Н) , 7,01-7,98 (м, 5Н) , 6,22-6,84 (м, ЗН) , 5, 17 (т, J=5, 7 Гц, 1Н) , 4,97 (с, 2Н) , 4,44 (д, J=5,7 Гц, 2Н)
47 Η,Ν H \__ A АД 485,19 486 2, 11 V3018V3001 2 ХН-ЯМР (ДМСО-бб, 400 МГц): δ (м.д.) 10,45 (с, 1Н), 7,13-7,54 (м, 6Н), 6,94 (с, 1Н) , 6,62 (шир.с, 2Н) , 4, 98 (с, 2Н) , 4,33-4,48 (м, 2Н) , 3,82-4,02 (м, 4Н) , 1,76-1,92 (м, 2Н) , 1, 47-1, 66 (м, 2Н) , 1,15 (т, J=6,8 Гц, 6Н)
48 h2n η А% n”'u / \ J— N Vn Xc 347,12 348 1, 81 V3018V3001 8 хн-ямр (дмсо-А, 400 МГц) : δ (м.д.) 10,35 (шир.с, 1Н), 8,27-8,53 (м, 2Н), 7,77 (с, 1Н) , 7,67 (с, 1Н) , 7,47 (д, J=9, 1 Гц, 1Н) , 7,15-7,27 (м, 1Н), 6, 76-6, 88 (м, ЗН) , 6, 36-6, 53 (м, 1Н) , 5,09 (с, 2Н)
49 Av A v <A 368,13 369 1, 94 V3018V3001 8 >260 ХН-ЯМР (ДМСО-06, 500 МГц): δ (м.д.) 9, 42-10,55 (м, 1Н) , 8,35 (д, J=2,5 Гц, 1Н), 8,01 (д, J=5, 4 Гц, 1Н) , 7, 65 (с, 1Н) , 7,02 (д, J=5, 4 Гц, 1Н), 6,80 (шир.с, 2Н) , 6, 36-6, 55 (м, 1Н) , 5,07 (с, 2Н) , 3,81-3,96 (м, 6Н)
50 h2n h \__ZN A a yy 322,13 323 2,78 V3014V3001 8 >260 ХН-ЯМР (ДМСО-06, 500 МГц): δ (м.д.) 10,31 (шир.с, 1Н), 8,49 (д, J=8, 5 Гц, 2Н) , 7,71 (с, 1Н), 7, 65 (д, J=7, 6 Гц, 1Н) , 7,21 (д, J=7,6 Гц, 1Н), 6,82 (шир.с, 2Н), 6,50 (шир.с, 1Н), 4,95 (с, 2Н) , 2,39 (с, ЗН)
51 Η,Ν H \___ZN AA H /^N Ϊ J-o АД 347,15 348 2,35 V3018V3001 7 >260 А-ямр (дмсо-а6, 500 МГц) : δ (м.д.) 12,36-12,99 (м, 1Н) , 10,33 (шир.с, 1Н) , 6, 94-7,75 (м, 5Н) , 5, 99-6, 73 (м, ЗН) , 4,97 (с, 2Н) , 1,81-1,97 (м, 1Н) , 0,54-1,02 (м, 4Н)
52 но-\А^ -Д-0 351,14 352 1,93 V3018V3001 7 а-ямр (дмсо-а6, 400 МГц): δ (м.д.) 10,23 (шир.с, 1Н) , 7,68 (д, J=2,0 Гц, 1Н), 7,15-7,40 (м, 5Н) , 6,72 (д, J=2,0 Гц, 1Н) , 6,46 (с, 2Н) , 4,97 (с, 2Н) , 4,87 (т, J=5, 1 Гц, 1Н) , 4,17 (т, J=5, 1 Гц, 2Н) , 3,75 (кв., J=5,1 Гц, 2Н)
53 A h 2—n A АД 321,13 322 2,26 V3018V3001 7 192 А-ЯМР (ДМСО-de, 500 МГц): δ (м.д.) 12, 94 (шир.с, 1Н) , 10,28 (с, 1Н) , 7, 17-7, 49 (м, 6Н) , 6, 41 (шир.с, 2Н) , 4,97 (с, 2Н) , 2,28-2,39 (м, ЗН)
- 22 036645
54 A A- A !J=/ N V-N v7 435,21 436 1,32 V3018V3001 2 211 Ш-ЯМР (ДМСО-бб, 500 МГц): δ (м.д.) 11,90-12,42 (м, 1Н) , 10,14 (шир.с, 1H) , 7,85-8,01 (м, 1H) , 7,35-7,56 (м, 1H) , 6,21-7,07 (м, 4H) , 4, 65-4,77 (м, 2Н) , 3,86-3,94 (м, 2Η), 2,38-2,44 (м, 2Η) , 2,04 (с, 6Н), 1,77-1,89 (м, 1Н) , 0, 60-0, 92 (м, 4Н)
55 H,N H \__ZN o ChA Λ-Ν '--V 7 N=Z \_J Α-·ΝΗ Ao 0 404,17 405 2,80 V3014V3001 2 218 ^-ЯМР (ДМСО-de, 400 МГц): δ (м.д.) 12,52 (шир.с, 1Н) , 10,32 (с, 1Н) , 7,59 (с, 1Н) , 7,46-7,51 (м, 1Н) , 7,34-7, 45 (м, 2Н) , 7,12 (шир.с, 2Н) , 6,49 (с, 2Н) , 4, 94-5, 25 (м, 2Н) , 3,41 (т, J=7,l Гц, 2Н) , 3, 20-3, 29 (м, 2Н), 1,79 (квинтет, J=7,l Гц, 2Н), 1,64 (квинтет, J=7,1 Гц, 2Н)
57 Й , j €F Г A £3 r A 396,13 397 1,79 V3018V3001 2 >260 ^-ЯМР (flMCO-d6, 500 МГц): δ (м.д.) 12,47 (шир.с, 1Н), 10,30 (шир.с, 1Н) , 8,25 (шир.с, 1Н), 7,84 (д, J=8,2 Гц, 1Н) , 7,13 (шир.с, 2Н) , 6,90 (д, J=8,2 Гц, 1Н) , 6,50 (шир .с, 2Н) , 4,94 (шир.с, 2Н), 4,87 (шир.с, 2Н), 3,63 (с, ЗН)
58 ’ )____ Nx- 0 OH / r4 >V \ /^0 О /% —N 382,11 383 2,00 V3014V3001 2 >260 2Н-ЯМР (flMCO-d6, 500 МГц): δ (м.д.) 11, 87-13, 45 (м, 2Н) , 10,50 (шир.с, 1Н), 8,27 (шир.с, 1Н), 7,83 (д, J=7,6 Гц, 1Н) , 7,22 (шир. с, 2Н) , 6,86 (д, J=7, 6 Гц, 1Н) , 6,61 (шир .с, 2Н) , 4,94 (шир.с, 2Н) , 4,77 (шир.с, 2Н)
60 Ж «N \--/ /,.—у H '^A-n 402,19 403 2, 61 V3014V3001 2 242 ХН-ЯМР (ДМСО-А 400 МГц) : δ (м.д.) 8,98-12,14 (м, 1Н) , 8,21 (с, 1Н) , 6, 04-7,47 (м, 6Н) , 4,95 (шир.с, 2Н), 4,02 (шир.с, 2Н), 3,13 (шир.с, 2Н), 2,79 (шир.с, 2Н) , 1, 67-1,97 (м, 1Н) , 0,42-0,94 (м, 4Н)
61 AXA® < /- N 2>h ^Ά- 385,23 386 2, 14 V3014V3001 2 ш-ямр <дмсо-а6, 400 МГц) : δ (м.д.) 11,85 (шир.с, 1Н), 10,32 (с, 1Н) , 7,09 (с, 2Н) , 6,46 (с, 2Н) , 3,81 (т, J=7,2 Гц, 2Н) , 2,30-2,48 (м, ЮН), 2,27 (с, ЗН) , 1,74 (квинтет, J=7,2 Гц, 2Н) , 1,49 (квинтет, J=7,2 Гц, 2Н) , 1,20-1,36 (Μ, 2Н)
- 23 036645
62 'ν—ч о 410,25 411 1, 67 V3018V3001 2 174 ХН-ЯМР (ДМСО-сЦ, 500 МГц): δ (м.д.) 11,91 (шир.с, 1Н), 10,29 (шир.с, 1Н), 6,84 (шир.с, 1Н) , 6,49 (шир.с, 2Н), 3,79 (т, J=6, 9 Гц, 2Н) , 2,52-2,70 (м, 6Н) , 1,80-1,90 (м, 1Н), 1,71 (шир.с, 5Н) , 1,39-1,52 (м, 2Н) , 1,17-1,38 (м, 5Н) , 0,51-0,91 (м, 4Н)
63 А-Г /=Ν V ? \__/ ^,ΝΗ 315,14 316 2, 37 V3014V3001 2 >260 ХН-ЯМР (ДМСО-бб, 400 МГц): δ (м.д.) 12,35 (шир.с, 1Н), 10,24 (шир.с, 1Н), 7,11 (шир.с, 2Н), 6,44 (с, 2Н) , 3,78-3,87 (м, 2Н), 3,70 (д, J=7,l Гц, 2Н) , 3,24 (т, J=10,9 Гц, 2Н), 1,99-2,18 (м, 1Н) , 1,08-1,76 (м, 4Н)
Аналитические методики.
Все соединения исследовали посредством ЖХ-МС. Применяли следующие методики ЖХ-МС.
Способ VILLA.
Все анализы проводили с применением квадрупольного ЖХ/MSD серий Agilent 1100, соединенного с системой для жидкостной хроматографии (ЖХ) серий Agilent 1100, состоящей из насоса для двухкомпонентных смесей с дегазатором, автоматического устройства подготовки и отбора проб, термостатированной колонки, детектора на диодной матрице. Масс-спектрометр (МС) применяли с источником электрораспылительной ионизации при атмосферном давлении (API-ES). Капиллярное напряжение устанавливали на 3000 В, напряжение фрагментора до 70 В и температуру квадруполя поддерживали при 100°С. Значения потока и температуры сушильного газа составляли 12,0 л/мин и 350°С соответственно. Азот применяли в качестве газа-распылителя при давлении 35 фунтов/кв.дюйм (241,3 кПа) изб. Сбор данных проводили с помощью программного обеспечения Agilent Chemstation.
В дополнение к общей методике анализы осуществляли на колонке YMC pack ODS-AQ C18 (длиной 50 мм х внутр. диам. 4,6 мм; размером частиц 3 мкм) при 35°С со скоростью потока 2,6 мл/мин. Градиентное элюирование проводили от 95% (вода+0,1% муравьиная кислота)/5% ацетонитрил до 5% (вода+0,1% муравьиная кислота)/95% ацетонитрил за 4,80 мин, конечную композицию подвижной фазы удерживали дополнительно в течение 1,00 мин. Стандартный объем вводимой пробы составлял 2 мкл. Диапазоны измерений устанавливали на 190-400 нм для UV-PDA-детектора и 100-1400 масса/заряд для МС-детектора.
Способ В система ACQUITY UPLC с SQD-детектором.
Подвижная фаза: А: метанол, В: 10 мМ ацетат аммония в 90% воды и 10% ацетонитрил.
Колонка: тип колонки: колонка Aquity UPLC ВЕН С18 1,7 мкм 2,1х50 мм (Waters № 186002350), температура: 70°С. Программа градиента. Поток: 0,7 мл/мин, остановка сбора данных: 1,8 мин. Время остановки: 2 мин.
Время (мин.) % А % В Скорость потока (мл/мин.)
0, 00 5 95 0, 7
1,301 95 5 0, 7
1, 50 95 5 0, 7
1,70 5 95 0, 7
2, 00 5 95 0, 7
Объем вводимой пробы: 0,75 мкл. Тип ввода пробы: неполная петля с переполнением иглы.
Начальная длина волны: 210 нм. Конечная длина волны: 400 нм. Разрешающая способность: 1,2 нм. Частота ввода проб: 20 точек/с.
МС-способ.
Функция 1.
Режим ионизации: ES+. Формат данных: центроид.
Начальная масса: 160. Конечная масса: 1000.
Время сканирования (с): 0,1. Время начала (мин.): 0,0. Время завершения (мин.): 2,0. Напряжение на конусе (В): 30.
Функция 2.
Режим ионизации: ES-. Формат данных: центроид. Начальная масса: 160. Конечная масса: 1000.
Время сканирования (с): 0,1. Время начала (мин.): 0,0. Время завершения (мин.): 2,0. Напряжение на конусе (V): 30. Поток в МС: 7 00 мкл/мин.
Общая процедура VDR1 (для методик V100xV10xx.olp и V200xV20xx.olp).
ВЭЖХ измерения осуществляли с применением системы Alliance НТ 2795 (Waters), состоящей из
- 24 036645 насоса для четырехкомпонентных смесей с дегазатором, автоматического устройства подготовки и ввода пробы, диодно-матричного детектора (DAD) и колонки, как указано в соответствующих способах ниже, колонку поддерживают при температуре 30°С. Поток из колонки разделяли к МС-спектрометру. МСдетектор оснащали источником ионизации электрораспылением. Напряжение капиллярной иглы составляло 3 кВ, а температуру источника поддерживали на уровне 100°С на LCT (времяпролетный массспектрометр с интерфейсом Zspray™ от Waters - для методик V100xV10xx.olp), и 3,15 кВ при 110°С на ZQ™ (простой квадрупольный масс-спектрометр с интерфейсом Zspray™ от Waters - для методик V200xV20xx.olp). Азот применяли в качестве распылительного газа. Сбор данных проводили с помощью системы обработки данных Waters-Micromass MassLynx-Openlynx.
Общая процедура VDR2 (для методик V300x V30хх.olp).
Измерение с помощью ЖХ проводили с применением системы для UPLC (сверхэффективной жидкостной хроматографии) Acquity (Waters), состоящей из насоса для двухкомпонентных смесей с дегазатором, автоматического дозатора, диодно-матричного детектора (DAD) и колонки, как определено в соответствующих способах ниже, причем колонку выдерживали при температуре 40°С. Поток из колонки разделяли к МС-детектору. МС-детектор оснащали источником ионизации электрораспылением. Напряжение капиллярной иглы составляло 3 кВ, и температуру в Quattro (тройном квадрупольном массспектрометре от Waters) поддерживали при 130°С. Азот применяли в качестве распылительного газа. Сбор данных проводили с помощью системы обработки данных Waters-Micromass MassLynx-Openlynx.
Способ V1005V1012.
В дополнение к общей методике VDR1: обращенно-фазовую ВЭЖХ выполняли на колонке Waters X-bridge (3,5 мкм, 4,6x100 мм) со скоростью потока 0,8 мл/мин. Две подвижные фазы (подвижная фаза А: 100% 7 мМ ацетат аммония; подвижная фаза В: 100% ацетонитрил) применяли для соблюдения условия градиента от 80% А до 20% В (удерживание в течение 0,5 мин) до 90% В за 4,5 мин, 90% В в течение 4 мин, и повторное уравновешивание при исходных условиях в течение 3 мин. Применяли объем вводимой пробы 5 мкл. Напряжение на конусе составляло 20 В для режима положительной и отрицательной ионизации. Масс-спектры получали сканированием от 100 до 1000 за 0,4 с с применением времени задержки 0,3 с между сканированиями.
Способ V1004V1012.
В дополнение к общей методике VDR1: обращенно-фазовую ВЭЖХ выполняли на колонке Kromasil C18 (3,5 мкм, 4,6x100 мм) со скоростью потока 0,85 мл/мин. Три подвижные фазы (подвижная фаза А: 100% 7 мМ ацетат аммония; подвижная фаза В: 100% ацетонитрил; подвижная фаза С: 0,2% муравьиной кислоты +99,8% воды сверхвысокой очистки) применяли для соблюдения условия градиента от 35% А, 30% В и 35% С (удерживание в течение 1 мин) до 100% В за 3 мин, 100% В в течение 4,5 мин и повторно с исходными условиями в течение 3 мин. Применяли объем вводимой пробы 5 мкл. Напряжение на конусе составляло 20 В для режима положительной и отрицательной ионизации. Масс-спектры получали сканированием от 100 до 1000 за 0,4 с с применением времени задержки 0,3 с между сканированиями.
Способ V1010V1012.
В дополнение к общей методике VDR1: обращенно-фазовую ВЭЖХ выполняли на колонке Waters Atlantis C18 (5 мкм, 3,9x100 мм) со скоростью потока 0,8 мл/мин. Три подвижные фазы (подвижная фаза А: 100% 7 мМ ацетата аммония; подвижная фаза В: 100% ацетонитрил; подвижная фаза С: 0,2% муравьиной кислоты+99,8% воды сверхвысокой очистки) применяли для соблюдения условия градиента от 50% А и 50% С (удерживание в течение 1,5 мин) до 10% А, 80% В и 10% С за 4,5 мин, удерживание 4 мин, и повторное уравновешивание с исходными условиями в течение 3 мин. Применяли объем вводимой пробы 5 мкл. Напряжение на конусе составляло 20 В для режима положительной и отрицательной ионизации. Масс-спектры получали сканированием от 100 до 1000 за 0,4 с с применением времени задержки 0,3 с между сканированиями.
Способ V2002V2002+LCpos_court.olp.
В дополнение к общей методике VDR1: обращенно-фазовую ВЭЖХ выполняли на колонке Kromasil C18 (3,5 мкм, 4,6x100 мм) со скоростью потока 0,8 мл/мин. Три подвижные фазы (подвижная фаза А: 100% 7 мМ ацетат аммония; подвижная фаза В: 100% ацетонитрил; подвижная фаза С: 0,2% муравьиной кислоты+99,8% воды сверхвысокой очистки) применяли для соблюдения условия градиента от 35% А, 30% В и 35% С (удерживание в течение 1 мин) до 100% В за 4 мин, 100% В в течение 4 мин и повторно уравновешивали с исходными условиями в течение 2 мин. Применяли объем вводимой пробы 10 мкл. Напряжение на конусе составляло 20 В для режима положительной и отрицательной ионизации. Массспектры получали сканированием от 100 до 1000 за 0,4 с с применением времени задержки 0,3 с между сканированиями.
Способ V2003V2002.
В дополнение к общей методике VDR1: обращенно-фазовую ВЭЖХ выполняли на колонке XBridge C18 (3,5 мкм, 4,6x100 мм) со скоростью потока 0,8 мл/мин. Две подвижные фазы (подвижная фаза А: 100% 7 мМ ацетат аммония; подвижная фаза В: 100% ацетонитрил); применяли для соблюдения условия градиента от 80% А, 20% В (удерживание в течение 0,5 мин) до 10% А, 90% В в течение 4,5 мин,
- 25 036645 удерживание при 10% А и 90% В в течение 4 мин и повторно уравновешивали с исходными условиями в течение 3 мин. Применяли объем вводимой пробы 10 мкл. Напряжение на конусе составляло 20 В для режима положительной и отрицательной ионизации. Масс-спектры получали сканированием от 100 до
1000 за 0,4 с с применением времени задержки 0,3 с между сканированиями.
Способ V2012V2002.
В дополнение к общей методике VDR1: обращенно-фазовую ВЭЖХ выполняли на колонке Waters Atlantis C18 (5 мкм, 3,9x100 мм) со скоростью потока 0,8 мл/мин. Три подвижные фазы (подвижная фаза А: 100% 7 мМ ацетат аммония; подвижная фаза В: 100% ацетонитрил; подвижная фаза С: 0,2% муравьиной кислоты+99,8% воды сверхвысокой очистки) применяли для соблюдения условия градиента от 50% А, 0% В и 50% С (удерживание в течение 1,5 мин) до 10% А, 80% В и 10% в течение 3,5 мин, удерживали при данных условиях в течение 4 мин и повторно уравновешивали с исходными условиями в течение 3 мин. Применяли объем вводимой пробы 10 мкл. Напряжение на конусе составляло 20 В для режима положительной и отрицательной ионизации. Масс-спектры получали сканированием от 100 до 1000 за 0,4 с с применением времени задержки 0,3 с между сканированиями.
Способ V2015V2007.
В дополнение к общей методике VDR1: обращенно-фазовую ВЭЖХ выполняли на колонке Supelco Ascentis Express C18 (2,7 мкм, 3,0x100 мм) со скоростью потока 0,7 мл/мин. Две подвижные фазы (подвижная фаза А: 100% 7 мМ ацетат аммония; подвижная фаза В: 100% ацетонитрил) применяли для соблюдения условия градиента от 80% А и 20% В (удерживание в течение 0,5 мин) до 5% А и 95% В в течение 2,5 мин, удерживали в течение 4,5 мин и возвращали к исходным условиям в течение 1,5 мин, и удерживали в течение 1 мин. Применяли объем вводимой пробы 5 мл. Напряжение на конусе составляло 20 В для режима положительной и отрицательной ионизации. Масс-спектры получали сканированием от 100 до 1000 за 0,4 с с применением времени задержки 0,3 с между сканированиями.
Способ V3018V3001.
В дополнение к общей методике VDR2: обращенно-фазовую UPLC проводили на колонке Waters Acquity ВЕН (мостиковый гибрид этилсилоксана/силикагеля) С18 (1,7 мкм, 2,1x100 мм) со скоростью потока 0,343 мл/мин. Две подвижные фазы (подвижная фаза А: 95% 7 мМ ацетат аммония/5% ацетонитрил; подвижная фаза В: 100% ацетонитрил) применяли для осуществления условия градиента от 84,2% А и 15,8% В (удерживание в течение 0,49 мин) до 10,5% А и 89,5% В, удерживали в течение 2,18 мин и приводили к начальным условиям в течение 0,73 мин, удерживали в течение 0,73 мин. Применяли объем вводимой пробы 2 мкл. Напряжение на конусе составляло 20 В для режима положительной и отрицательной ионизации. Масс-спектры получали сканированием от 100 до 1000 за 0,2 с с применением времени задержки 0,1 с между сканированиями.
Способ V3014V3001.
В дополнение к общей методике VDR2: обращенно-фазовую ВЭЖХ выполняли на колонке Т3 с HSS (высокопрочный диоксид кремния) от Waters (1,8 мкм, 2,1x100 мм) со скоростью потока 0,35 мл/мин. Две подвижные фазы (подвижная фаза А: 95% 7 мМ ацетат аммония/5% ацетонитрил; подвижная фаза В: 100% ацетонитрил) применяли для осуществления условия градиента от 99% А (удерживание в течение 0,5 мин) до 15% А и 85% В в течение 4,5 мин, удерживали в течение 2 мин и приводили к начальным условиям в течение 0,5 мин, удерживали в течение 1,5 мин. Применяли объем вводимой пробы 2 мкл. Напряжение на конусе составляло 20 В для режима положительной и отрицательной ионизации. Масс-спектры получали сканированием от 100 до 1000 за 0,2 с с применением времени задержки 0,1 с между сканированиями.
Биологическая активность соединений по настоящему изобретению.
Описание анализов биологической активности.
Анализы с помощью репортерного гена для оценки активности TLR7 (24 ч).
Способность соединений активировать TLR7 человека оценивали с помощью клеточного анализа с применением репортерного гена с применением клеток HEK293, временно трансфицированных посредством экспрессирующего вектора TLR7 или TLR8 и репортерного конструкта NFB-luc. В одном случае конструкт экспрессии TLR экспрессирует соответствующую последовательность дикого типа или мутантную последовательность, содержащую делецию во втором богатом лейцином повторе (dlRR2) TLR. Как ранее указывалось, такие мутантные белки TLR более восприимчивы к активации агонистом (документ US 7498409).
Кратко, клетки HEK293 выращивали в среде для культивирования (DMEM, дополненная 10% FCS и 2 мМ глутамина). Для трансфекции клеток в 10 см чашках клетки отделяли трипсином-EDTA, трансфицировали смесью из плазмиды CMV-TLR7 или плазмиды TLR8 (750 нг), плазмиды NFB-luc (375 нг) и реагента для трансфекции и инкубировали 24 или 48 ч при 37°С в увлажненной атмосфере 5% СО2. Трансфицированные клетки затем отделяли трипсином-ЭДТА, промывали в PBS и ресуспендировали в среде до плотности 1,67x105 клеток/мл. 30 мкл клеток затем распределяли в каждую лунку в 384луночных планшетах, где уже содержалось 10 мкл соединения в 4% ДМСО. После 6 ч инкубации при 37°С, 5% СО2 определяли люциферазную активность путем добавления 15 мкл субстрата Steady Lite Plus
- 26 036645 (Perkin Elmer) в каждую лунку и считывали показания, полученные на устройстве для считывания микропланшетов ViewLux ultraHTS (Perkin Elmer). Кривые доза-эффект были составлены исходя из измерений, выполненных в четырех параллельных анализах. Для каждого соединения определяли значения самых низких эффективных концентраций (LEC), определенных как концентрация, которая индуцирует эффект, который по меньшей мере в два раза выше допустимого отклонения анализа. Токсичность соединения определяли одновременно с применением одинаковых серий разбавления соединения - 30 мкл на лунку с клетками, трансфицированных только конструктом CMV-TLR7 (1,67х105 клеток/мл), в 384луночных планшетах. Жизнеспособность клеток измеряли после 6 ч инкубации при 37°С, 5% СО2 посредством добавления 15 мкл ATP lite (Perkin Elmer) на лунку и считывания показаний с устройством для считывания микропланшетов ViewLux ultraHTS (Perkin Elmer). Данные указывали как CC50.
Анализ продуцирования интерферона в клетках человека РВМС (PBMC-HUH7_EC50).
Активация TLR7 человека приводит к усиленному продуцированию интерферона плазмацитоидными дендритными клетками, присутствующими в крови человека. Способность соединения индуцировать выработку интерферона оценивали посредством изучения противовирусной активности в системе репликона HCV после инкубации в присутствии кондиционированных сред из мононуклеарных клеток периферической крови (РВМС). Анализ репликона HCV основан на конструкте бицистронной экспрессии, как описано у Lohmann et al. (Science (1999) 285: 110-113; Journal of Virology (2003) 77: 3007-15 3019) с модификациями, описанными Krieger et al. (Journal of Virology (2001) 75: 4614-4624). При анализе применяли стабильно трансфицированную клеточную линию Huh-7 luc/neo, содержащую РНК, кодирующую бицистронный конструкт экспрессии, содержащий участки дикого типа NS3-NS5B типа 1b HCV, транслируемые на участке внутренней посадки рибосомы (IRES) у вируса энцефаломиокардита (EMCV), при этом предварительно вводили репортерный ген (люцифераза светлячка) и селективный маркерный ген (neoR, неомицин-фосфотрансфераза). Конструкт фланкирован 5' и 3' NTR (нетранслируемые участки) из HCV типа 1b. Непрерывное культивирование клеток с репликонами в присутствии G418 (neoR) зависит от репликации РНК HCV. Для анализа кондиционированных сред клеточной культуры применяли стабильно трансфицированные клетки с репликонами, которые автономно и интенсивно реплицируют РНК HCV, кодирующую inter alia люциферазу. Кратко, РВМС получали из лейкоцитарных пленок по меньшей мере от двух доноров с применением стандартного протокола центрифугирования с фиколлом. Выделенные РВМС ресуспендировали в среде RPMI, дополненной 10% сывороткой АВ человека, и 2х105 клеток/на лунку распределяли в 384-луночных планшетах, содержащих соединения (общий объем 70 мкл). После инкубации в течение ночи 10 мкл надосадочной жидкости переносили в 384луночные планшеты, содержащие 2,2х103 клеток с репликонами/на лунку в 30 мкл (помещенные в планшеты за день до этого). После 24 ч инкубации репликацию определяли посредством анализа люциферазной активности с применением 40 мкл/на лунку субстрата Steady Lite Plus (Perkin Elmer) и измеряли посредством микропланшетного ридера с возможностью визуализации ViewLux ultraHTS (Perkin Elmer). Ингибирующую активность каждого соединения в отношении клеток Huh7-luc/neo записывали в виде величин ЕС50, определенных как концентрация соединения, нанесенного на РВМС, которая привела к снижению люциферазной активности на 50%, что, в свою очередь, свидетельствует о степени репликации РНК - репликона при переносе определенного количества среды для культивирования РВМС. Рекомбинантный интерферон а-2а (Roferon-A) применяли в качестве стандартного контрольного соединения. Все соединения продемонстрировали СС50>24 мкМ в ТОХ-анализе HEK293, описанном выше.
Анализ продуцирования интерферона в клетках человека РВМС (РВМС HEK-ISRE-luc LEC).
Активация TLR7 человека приводит к усиленному продуцированию интерферона плазмацитоидными дендритными клетками, присутствующими в крови человека. Способность соединения индуцировать выработку интерферона оценивали посредством определения интерферона в кондиционированных средах из мононуклеарных клеток периферической крови (РВМС). Наличие интерферона в образцах определяли с помощью репортерной клеточной линии для выявления интерферона, стабильно экспрессирующей репортерный конструкт с интерферон-стимулируемыми реагирующими элементами (ISRE)-luc. Элемент ISRE с последовательностью GAAACTGAAACT высокочувствителен к транскрипционному фактору STAT1-STAT2-IRF9, который активируется при связывании IFN-I с рецептором IFN (Clontech, PT3372-5W). Кратко, РВМС получали из лейкоцитарных пленок по меньшей мере от двух доноров с применением стандартного протокола центрифугирования с фиколлом. Выделенные РВМС ресуспендировали в среде RPMI, дополненной 10% сывороткой АВ человека, и 2х105 клеток/на лунку распределяли в 384-луночных планшетах, содержащих соединения (общий объем 70 мкл). После инкубации в течение ночи 10 мкл надосадочной жидкости переносили в 384-луночные планшеты, содержащие 5х103 HEKISREluc клеток/лунка в 30 мкл (помещенные в планшеты за день до этого). После 24 ч инкубации активацию элементов ISRE определяли посредством анализа люциферазной активности с применением 40 мкл/на лунку субстрата Steady Lite Plus (Perkin Elmer) и определяли посредством микропланшетного ридера с возможностью визуализации ViewLux ultraHTS (Perkin Elmer). Стимулирующую активность для каждого соединения на клетки HEK-ISRE-luc представили как LEC. LEC, в свою очередь, свидетельствует о степени активации ISRE при переносе определенного количества среды для культивирования РВМС.
- 27 036645
Рекомбинантный интерферон а-2а (Roferon-A) применяли в качестве стандартного контрольного соединения.
Значения LEC для соединений в табл. 2 на HEK293 TLR8-NFyB-1uc и HEK293 NFyB-Iuc были больше, чем наивысшая тестируемая концентрация (больше 10 мкМ для соединения 6 и больше 25 мкМ для всех других соединений).
Таблица 2
Биологическая активность соединений по настоящему изобретению
Структура TLR7wt_LEC 24 ч. (мкМ) TLR7dlRR2_LEC 24 ч. (мкМ) TLR7wt_LEC 48 ч. (мкМ) TLR7dlRR2_LEC 48 ч. (мкМ) PBMCHUH7_EC50 (μκΜ) PBMC ΗΕΚISRE-1UC (LEC; μκΜ)
1 ΗιΝ Н ' \ А о СТА' ф'Ф) 0, 33 8,25 0, 18 0,081 0,064
2 Η,Ν Η Φ-·Φ° Ы/ Vn д-A 4,72 1,2 0,531
3 Η,Ν Η 1 0 νΗ χγ >-Ν --Τ i να Ά-7 >24,59 7, 67 13,97
4 η2ν η t__ ν'^Ά _ U 7-\ /Л, Λ~Ν '—<' 7 Ν^/ \--/ ^,ΝΗ 0,077 1,23 0, 04 0, 16 0, 12
5 Η,Ν Η ΦΒ 2,2 21, 47 1, 13 0,2 0, 13
6 7 8 9 10 11 Η,Ν Ц Φφ-0 3—ν' 4—(' 7 Ν^' \---/ --φ^ΝΗΙ Η,Ν Η υΥυ »χ=' Ф Η,Ν Η Ν—/ \—/ -УЛ Η,Ν Η рФ ТУ» ¢-, Ν '--f 7“ Νφ Vn Φ·ΝΗ Η,Ν Η Ν\ /—'η Ν-Φ 'О ---'φ,Ν Η Η;Ν Η Α ;'^Ν\ -ΦΑ A Ν 0, 66 18,93 6, 32 >25 5, 91 0,88 >25 5, 36 0,34 1,46 0, 17 0,07 10, 13 0, 19 0,053 0, 64 0, 17 0, 05 0, 73 0, 33 0, 04 0, 88 0, 25 0, 03 0, 44 0, 32
12 η2ν Η φφο Ц / ,____ ΐΦν/Λ Ν^Ζ \=/ 8,08 0, 3 0, 59 0, 34
15 Η,Ν η \__/Ίχ-Ο 0-Φλ ν '—с / “=ΝΖ >24,59 10,57 >25 9, 75 16, 94
18 Η Ζ~Ν '—< ) >24,59 3, 23 20, 31 3,81 2, 58
19 φ» ууГ ел /-—ν —σ 7 Ο Ν Η >24,59 13,31 >25 16, 6 12,36
20 Η2Ν η φ° 0,5 6, 34 0, 5 0, 68
23 0,23 0, 007 0, 13 0, 12
- 28 036645
24 Η,Ν H u YAP γ,ΝΗ 1,81 0,11 0,046 0, 03
25 yn a J Ύ \=/ A--nh 2,46 0,39 0,006 0,007
26 H-N H Y' гл, Y YY г?—Anh 2,42 0,21 0,005 0,006
27 Η,Ν Ц Jyy N=\ \-Y ^_n 'oh 6, 03 0, 63 0,8 0, 43
28 Η,Ν H n—/ У—7 j^aa >25 8,77 >23,81 >23,81
29 h2n h W А- гл Y YJ N H 1,58 1, 66 0, 82
30 ACy /—N '--{· 7 n-—/ \=/ 12,71 0, 14 0, 17 0, 12
31 Η,Ν H W jyy NzY \=/ FjyA^,NH 23,23 0, 51 1/3 2,2
32 Uv AA _ Y“N '—< / N^O 6, 5 0, 97 1,51 0,97
33 Η,Ν H Yo γ 21,66 0, 98 0,81 0,52
34 h2n h AVo V Y ΓΧ Y Y=/ n^° 0 >25 1/21 0, 69 0,49
35 H2N H к Άο >Хл X» 0,36 0, 033 0, 17 0, 10
36 Η,Ν Η ν'' *Λ / _____ О 0,22 0, 017 0, 047 0,033
37 Η,Ν Η Ayo Ο Ao 0 \ 0,05 0, 01
38 H2N Η A α Ao но 0,38 >25
39 η2ν η Υγ 0- Υ но 0,05 0, 01
- 29 036645
40 ж V” ^₽ГОО-\ 0,03 0, 01
41 Η,Ν Н оN HCl он 0,03 0, 40
42 h2n Η ЙЖ н Λν \__/,'Ά η S «а/ 1,73 0, 45
43 Η,Ν Η ЖМ Νι у— N й—ж 4—СЗ J О 0,50 0, 15
44 Η,Ν Н ЙК н A X—(' / ν—Z \=/ , 0 0, 10 0, 04
45 Η,Ν Н ЖЖ0 ν^Άλ Г __ А ΖΆ н An х—σ / ГД N,ft ОН </ 0,58 1, 37
46 47 48 49 50 Η,Ν Н \ Ν о н /5/ X—е у ft N^ft >—ОН Η,Ν Η ЖСлл ~=f Ν \=/ Η,Ν Η νν° Α-,Γ /=Ж\ „А X--N.V ο Η,Ν η ЖЦЛ с ρ- Η,Ν Η \__ΖΝ θ ЖЛ- е 0, 21 14, 12 0, 01 0, 31 0, 03 0,03 1, 64 0,01 0,06 0,01
51 Η,Ν Η \ JVO Wa Η /—Ν '--V / ί 0,16 0, 17
52 Η;Ν Η Ж-Жо ”Wa An X—е у N=Z X / но-хиж 4,42 0,41 0, 42
53 Η,Ν Η Ato Λ 3,17 0,36 0, 76
54 HjV--\==0 Κν- %Жыг ж Аг \_А Αθ 16, 1 5, 65 0, 05 0, 07
55 Η,Ν Η w° NWy =fN \={ ^.NH Uo 0 4,11 0,06 1, 27 1, 16
- 30 036645
57 Αν 5 An —(, /А0 0 Ж An Α,ΝΗ 0,44 0,06 1,21 1, 38
58 Η,Ν Η А-АдА он Ν/ An V А Ж Α° ° N=f Άν Α-νη 0,99 0,06 2,75 2, 69
60 Η,Ν Η w° V V ы ,Αν R—ν /ίΛ (Ά. ΝΗ X—Ν \Ζ Η >25 1,25 0,034 0,019
61 η2ν η А/Жо Λ—Ν 5---·. ΝΑ \_ 4χ,.ΝΗ Ν—\ >25 9, 73 1,34 0, 95
62 Η,Ν Η V Αν А- Жэ 21,2 >25 0, 70 0, 72
63 Η2Ν Η AV A ~ Ж P NzV \__/ ^,NH >25 2,58 6, 72 4, 39
Все соединения тестировали в анализах с репортерным геном для оценки активности TLR8, и они показали LEC больше 17 мкМ.

Claims (5)

  1. ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ
    1. Соединение, выбранное из группы, состоящей из:
    - 31 036645
    или его фармацевтически приемлемая соль.
  2. 2. Фармацевтическая композиция для активации толл-подобного рецептора 7 (TLR7), содержащая соединение по п. 1 или его фармацевтически приемлемую соль, вместе с одним или несколькими фармацевтически приемлемыми наполнителями, разбавителями или носителями.
  3. 3. Лекарственное средство для активации TLR7, включающее соединение по п.1 или его фармацев тически приемлемую соль.
  4. 4. Применение соединения по п.1 или его фармацевтически приемлемой соли для активации TLR7.
  5. 5. Применение фармацевтической композиции по п.2 для активации TLR7.
EA201991767A 2011-11-09 2012-11-08 Производные пурина для лечения вирусных инфекций EA036645B1 (ru)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP11188511 2011-11-09

Publications (2)

Publication Number Publication Date
EA201991767A1 EA201991767A1 (ru) 2019-12-30
EA036645B1 true EA036645B1 (ru) 2020-12-03

Family

ID=47178000

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
EA201991767A EA036645B1 (ru) 2011-11-09 2012-11-08 Производные пурина для лечения вирусных инфекций
EA201490947A EA033830B1 (ru) 2011-11-09 2012-11-08 Производные аденина в качестве активаторов толл-подобных рецепторов tlr7

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
EA201490947A EA033830B1 (ru) 2011-11-09 2012-11-08 Производные аденина в качестве активаторов толл-подобных рецепторов tlr7

Country Status (29)

Country Link
US (4) US9556176B2 (ru)
EP (1) EP2776439B1 (ru)
JP (1) JP6349256B2 (ru)
KR (1) KR102025276B1 (ru)
CN (2) CN107011346B (ru)
AU (1) AU2012334127B2 (ru)
BR (2) BR122019020718B1 (ru)
CA (1) CA2850448C (ru)
CL (1) CL2014001205A1 (ru)
CY (1) CY1121452T1 (ru)
DK (1) DK2776439T3 (ru)
EA (2) EA036645B1 (ru)
ES (1) ES2690082T3 (ru)
HR (1) HRP20181497T1 (ru)
HU (1) HUE040541T2 (ru)
IL (1) IL232046A (ru)
IN (1) IN2014MN00862A (ru)
LT (1) LT2776439T (ru)
MX (1) MX347596B (ru)
MY (1) MY173422A (ru)
PH (1) PH12014501045B1 (ru)
PL (1) PL2776439T3 (ru)
PT (1) PT2776439T (ru)
RS (1) RS57851B1 (ru)
SG (1) SG11201401244TA (ru)
SI (1) SI2776439T1 (ru)
SM (1) SMT201800514T1 (ru)
UA (1) UA116083C2 (ru)
WO (1) WO2013068438A1 (ru)

Families Citing this family (43)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
TWI557117B (zh) 2008-12-09 2016-11-11 吉李德科學股份有限公司 用於製備可用作類鐸受體調節劑之化合物的中間體化合物
BR122019023564B1 (pt) 2011-04-08 2021-06-22 Janssen Sciences Ireland Uc Formas de dosagem contendo derivados de pirimidina para o tratamento de infecções virais
CA2850448C (en) 2011-11-09 2019-03-05 Janssen R&D Ireland Purine derivatives for the treatment of viral infections
KR102207888B1 (ko) 2012-07-13 2021-01-26 얀센 사이언시즈 아일랜드 언리미티드 컴퍼니 바이러스 감염증의 치료를 위한 거대환식 푸린
RS57225B1 (sr) 2012-10-10 2018-07-31 Janssen Sciences Ireland Uc Derivati pirolo[3,2-d]pirimidina za tretman viralnih infekcija i drugih bolesti
JP6297055B2 (ja) 2012-11-16 2018-03-20 ヤンセン・サイエンシズ・アイルランド・ユーシー ウイルス感染症の治療のための複素環置換2−アミノ−キナゾリン誘導体
KR102225233B1 (ko) 2013-02-21 2021-03-09 얀센 사이언시즈 아일랜드 언리미티드 컴퍼니 바이러스 감염의 치료를 위한 2-아미노피리미딘 유도체
EP2978429B1 (en) 2013-03-29 2017-02-22 Janssen Sciences Ireland UC Macrocyclic deaza-purinones for the treatment of viral infections
CA2912338C (en) 2013-05-24 2022-01-25 Janssen Sciences Ireland Uc Pyridone derivatives for the treatment of viral infections and further diseases
CN105473592B (zh) 2013-06-27 2018-10-26 爱尔兰詹森科学公司 用于治疗病毒感染和其他疾病的吡咯并[3,2-d]嘧啶衍生物
ES2701239T3 (es) 2013-07-30 2019-02-21 Janssen Sciences Ireland Uc Derivados de tieno[3,2-d]pirimidinas para el tratamiento de infecciones virales
GB201321737D0 (en) * 2013-12-09 2014-01-22 Ucb Pharma Sa Therapeutic Agents
TW202412806A (zh) 2014-07-11 2024-04-01 美商基利科學股份有限公司 用於治療HIV之toll樣受體調節劑
CN110305133A (zh) 2014-09-16 2019-10-08 吉利德科学公司 Toll样受体调节剂的固体形式
EP3226861A2 (en) * 2014-12-05 2017-10-11 Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) Compounds for treating cystic fibrosis
UA120450C2 (uk) * 2015-05-08 2019-12-10 Ф. Хоффманн-Ля Рош Аг Сполуки і похідні сульфонімідоїлпуринону для лікування і профілактики вірусної інфекції
GB201509893D0 (en) * 2015-06-08 2015-07-22 Ucb Biopharma Sprl Therapeutic agents
SG11201811448RA (en) 2016-07-01 2019-01-30 Janssen Sciences Ireland Unlimited Co Dihydropyranopyrimidines for the treatment of viral infections
KR102450287B1 (ko) 2016-09-29 2022-09-30 얀센 사이언시즈 아일랜드 언리미티드 컴퍼니 바이러스 감염 및 추가적인 질환의 치료를 위한 피리미딘 프로드러그
US10472361B2 (en) 2017-08-16 2019-11-12 Bristol-Myers Squibb Company Toll-like receptor 7 (TLR7) agonists having a benzotriazole moiety, conjugates thereof, and methods and uses therefor
US10508115B2 (en) 2017-08-16 2019-12-17 Bristol-Myers Squibb Company Toll-like receptor 7 (TLR7) agonists having heteroatom-linked aromatic moieties, conjugates thereof, and methods and uses therefor
US10494370B2 (en) 2017-08-16 2019-12-03 Bristol-Myers Squibb Company Toll-like receptor 7 (TLR7) agonists having a pyridine or pyrazine moiety, conjugates thereof, and methods and uses therefor
US10457681B2 (en) 2017-08-16 2019-10-29 Bristol_Myers Squibb Company Toll-like receptor 7 (TLR7) agonists having a tricyclic moiety, conjugates thereof, and methods and uses therefor
US10487084B2 (en) 2017-08-16 2019-11-26 Bristol-Myers Squibb Company Toll-like receptor 7 (TLR7) agonists having a heterobiaryl moiety, conjugates thereof, and methods and uses therefor
JP7328977B2 (ja) 2018-02-12 2023-08-17 エフ. ホフマン-ラ ロシュ アーゲー ウイルス感染の処置および予防のための新規のスルホン化合物および誘導体
TW202415645A (zh) 2018-03-01 2024-04-16 愛爾蘭商健生科學愛爾蘭無限公司 2,4-二胺基喹唑啉衍生物及其醫學用途
WO2019209811A1 (en) 2018-04-24 2019-10-31 Bristol-Myers Squibb Company Macrocyclic toll-like receptor 7 (tlr7) agonists
US11554120B2 (en) 2018-08-03 2023-01-17 Bristol-Myers Squibb Company 1H-pyrazolo[4,3-d]pyrimidine compounds as toll-like receptor 7 (TLR7) agonists and methods and uses therefor
JP7287708B2 (ja) 2019-02-08 2023-06-06 プロジェニア インコーポレイテッド Toll-like受容体7または8アゴニストとコレステロールの結合体およびその用途
LT3952995T (lt) 2019-04-12 2023-11-10 Riboscience Llc Bicikliniai heteroarilo dariniai kaip ektonukleotidų pirofosfatazės fosfodiesterazės 1 inhibitoriai
KR20220132592A (ko) 2020-01-27 2022-09-30 브리스톨-마이어스 스큅 컴퍼니 톨-유사 수용체 7 (TLR7) 효능제로서의 1H-피라졸로[4,3-d]피리미딘 화합물
US20230130516A1 (en) 2020-01-27 2023-04-27 Bristol-Myers Squibb Company 1H-PYRAZOLO[4,3-d]PYRIMIDINE COMPOUNDS AS TOLL-LIKE RECEPTOR 7 (TLR7) AGONISTS
JP7698653B2 (ja) 2020-01-27 2025-06-25 ブリストル-マイヤーズ スクイブ カンパニー トール様受容体7(TLR7)アゴニストとしての1H-ピラゾロ[4,3-d]ピリミジン化合物
CN115643805B (zh) 2020-01-27 2024-11-08 百时美施贵宝公司 作为Toll样受体7(TLR7)激动剂的1H-吡唑并[4,3-d]嘧啶化合物
CN115210236A (zh) 2020-01-27 2022-10-18 百时美施贵宝公司 作为Toll样受体7(TLR7)激动剂的1H-吡唑并[4,3-d]嘧啶化合物
CN115151547A (zh) 2020-01-27 2022-10-04 百时美施贵宝公司 作为Toll样受体7(TLR7)激动剂的1H-吡唑并[4,3-d]嘧啶化合物
KR20220132593A (ko) 2020-01-27 2022-09-30 브리스톨-마이어스 스큅 컴퍼니 톨-유사 수용체 7 (TLR7) 효능제로서의 1H-피라졸로[4,3-d]피리미딘 화합물
JP2023512208A (ja) 2020-01-27 2023-03-24 ブリストル-マイヤーズ スクイブ カンパニー トール様受容体7(TLR7)アゴニストとしての1H-ピラゾロ[4,3-d]ピリミジン化合物
CN115151546A (zh) 2020-01-27 2022-10-04 百时美施贵宝公司 作为Toll样受体7(TLR7)激动剂的C3-取代的1H-吡唑并[4,3-d]嘧啶化合物
US20230100429A1 (en) 2020-03-02 2023-03-30 Progeneer Inc. Live-pathogen-mimetic nanoparticles based on pathogen cell wall skeleton, and production method thereof
JP2023536954A (ja) 2020-08-04 2023-08-30 プロジェニア インコーポレイテッド 活性化部位が一時的に不活性化したトール様受容体7または8作用薬と機能性薬物の結合体およびその用途
EP4194006A4 (en) 2020-08-04 2024-12-04 Progeneer Inc. mRNA VACCINE WITH AN ADJUVANT CAPABLE OF KINETIC CONTROL
EP4194008A4 (en) 2020-08-04 2025-01-08 Progeneer Inc. Kinetically acting adjuvant ensemble

Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6028076A (en) * 1996-07-03 2000-02-22 Japan Energy Corporation Purine derivative
US6376501B1 (en) * 1997-12-22 2002-04-23 Japan Energy Corporation Type 2 helper T cell-selective immune response suppressors
US20070225303A1 (en) * 2004-03-26 2007-09-27 Haruhisa Ogita 8-Oxoadenine Compound
EP1939198A1 (en) * 2005-09-22 2008-07-02 Dainippon Sumitomo Pharma Co., Ltd. Novel adenine compound
WO2008114008A1 (en) * 2007-03-19 2008-09-25 Astrazeneca Ab 9-substituted-8-oxo-adenine compounds as toll-like receptor (tlr7 ) modulators
WO2009005687A1 (en) * 2007-06-29 2009-01-08 Gilead Sciences, Inc. Purine derivatives and their use as modulators of toll-like receptor 7
EP2138497A1 (en) * 2007-03-20 2009-12-30 Dainippon Sumitomo Pharma Co., Ltd. Novel adenine compound
WO2011049825A1 (en) * 2009-10-22 2011-04-28 Gilead Sciences, Inc. Derivatives of purine or deazapurine useful for the treatment of (inter alia) viral infections

Family Cites Families (78)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2610889B2 (ja) 1987-09-03 1997-05-14 日本臓器製薬株式会社 新規架橋アデニン誘導体
DE69736711T2 (de) 1996-08-28 2007-09-20 Pfizer Inc. Substituierte 6,5-heterobicyclische-derivate
CA2267103C (en) 1996-10-04 2006-05-30 Kyorin Pharmaceutical Co., Ltd. Pyrazolopyridylpyridazinone derivatives and process for the preparation thereof
AR012634A1 (es) 1997-05-02 2000-11-08 Sugen Inc Compuesto basado en quinazolina, composicion famaceutica que lo comprende, metodo para sintetizarlo, su uso, metodos de modulacion de la funcion deserina/treonina proteinaquinasa con dicho compuesto y metodo in vitro para identificar compuestos que modulan dicha funcion
US6339089B2 (en) 1997-08-13 2002-01-15 Fujirebio Inc. Pyrimidine nucleus-containing compound and a medicament containing the same for a blood oxygen partial pressure amelioration, and a method for preparing the same
AU732361B2 (en) 1997-11-28 2001-04-26 Dainippon Sumitomo Pharma Co., Ltd. Novel heterocyclic compounds
US6187777B1 (en) 1998-02-06 2001-02-13 Amgen Inc. Compounds and methods which modulate feeding behavior and related diseases
ATE245641T1 (de) 1998-02-17 2003-08-15 Tularik Inc Antivirale pyrimidinderivate
US6110929A (en) 1998-07-28 2000-08-29 3M Innovative Properties Company Oxazolo, thiazolo and selenazolo [4,5-c]-quinolin-4-amines and analogs thereof
JP4315300B2 (ja) 1998-08-10 2009-08-19 大日本住友製薬株式会社 新規なキナゾリン誘導体
JP4342007B2 (ja) 1998-08-10 2009-10-14 大日本住友製薬株式会社 キナゾリン誘導体
US6458798B1 (en) 1998-08-27 2002-10-01 Sumitomo Pharmaceuticals Company, Limited Bicyclic pyrimidine compounds and therapeutic use thereof
US6583148B1 (en) 1999-04-08 2003-06-24 Krenitsky Pharmaceuticals, Inc. Neurotrophic substituted pyrimidines
US6503908B1 (en) 1999-10-11 2003-01-07 Pfizer Inc Pharmaceutically active compounds
WO2002088079A2 (en) 2001-05-01 2002-11-07 Bristol-Myers Squibb Company Dual inhibitors of pde 7 and pde 4
AU2002364211A1 (en) 2001-12-21 2003-07-15 Bayer Pharmaceuticals Corporation Thienopyrimidine derivative compounds as inhibitors of prolylpeptidase, inducers of apoptosis and cancer treatment agents
US7091232B2 (en) 2002-05-21 2006-08-15 Allergan, Inc. 4-(substituted cycloalkylmethyl) imidazole-2-thiones, 4-(substituted cycloalkenylmethyl) imidazole-2-thiones, 4-(substituted cycloalkylmethyl) imidazol-2-ones and 4-(substituted cycloalkenylmethyl) imidazol-2-ones and related compounds
TW200407143A (en) 2002-05-21 2004-05-16 Bristol Myers Squibb Co Pyrrolotriazinone compounds and their use to treat diseases
AU2003242252A1 (en) 2002-06-07 2003-12-22 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. Bicyclic pyrimidine derivatives
EP1550662B1 (en) 2002-09-27 2012-07-04 Dainippon Sumitomo Pharma Co., Ltd. Adenine compound and use thereof
US8455458B2 (en) 2002-10-16 2013-06-04 Arthrodynamic Technologies, Animal Health Division, Inc. Composition and method for treating connective tissue damage
WO2005007672A2 (en) 2003-06-20 2005-01-27 Coley Pharmaceutical Gmbh Small molecule toll-like receptor (tlr) antagonists
JP2007504232A (ja) 2003-09-05 2007-03-01 アナディス ファーマシューティカルズ インク C型肝炎ウイルス感染治療用のtlr7リガンド及びそのプロドラッグの投与
EP1728793B1 (en) 2004-03-26 2016-02-03 Sumitomo Dainippon Pharma Co., Ltd. 9-substituted 8-oxoadenine compound
WO2007084413A2 (en) 2004-07-14 2007-07-26 Ptc Therapeutics, Inc. Methods for treating hepatitis c
KR100694123B1 (ko) 2004-07-30 2007-03-12 삼성전자주식회사 동영상 데이터와 어플리케이션 프로그램이 기록된 저장매체 및 그 재생 장치 및 방법
JP5031564B2 (ja) 2004-08-10 2012-09-19 ジヤンセン・フアーマシユーチカ・ナームローゼ・フエンノートシヤツプ Hiv抑制1,2,4−トリアジン−6−オン誘導体
WO2006050843A1 (en) 2004-11-09 2006-05-18 F. Hoffmann-La Roche Ag Aminoquinazolines compounds
US7498409B2 (en) 2005-03-24 2009-03-03 Schering Corporation Screening assay for TLR7, TLR8 and TLR9 agonists and antagonists
EA200702235A1 (ru) 2005-05-04 2008-04-28 Пфайзер Лимитед Производные 2-амидо-6-амино-8-оксопурина в качестве модуляторов toll-подобных рецепторов для лечения рака и вирусных инфекций, таких как гепатит с
AR054122A1 (es) 2005-05-12 2007-06-06 Tibotec Pharm Ltd Pirido[2,3-d]pirimidas utiles como inhibidores de hcv, y metodos para la preparacion de las mismas
US7994360B2 (en) 2005-05-16 2011-08-09 Xtl Biopharmaceuticals Ltd. Benzofuran compounds
CN101296907B (zh) 2005-09-01 2013-03-27 弗·哈夫曼-拉罗切有限公司 作为p2x3和p2x2/3调节剂的二氨基嘧啶类
WO2007056208A2 (en) 2005-11-02 2007-05-18 Cytovia, Inc. N-arylalkyl-thienopyrimidin-4-amines and analogs as activators of caspases and inducers of apoptosis and the use thereof
EP1970373A1 (en) 2005-12-02 2008-09-17 Mitsubishi Tanabe Pharma Corporation Alicyclic heterocyclic compound
AU2007216247A1 (en) 2006-02-17 2007-08-23 Pfizer Limited 3 -deazapurine derivatives as TLR7 modulators
US8673929B2 (en) 2006-07-20 2014-03-18 Gilead Sciences, Inc. 4,6-di- and 2,4,6-trisubstituted quinazoline derivatives and pharmaceutical compositions useful for treating viral infections
WO2008009078A2 (en) 2006-07-20 2008-01-24 Gilead Sciences, Inc. 4,6-dl- and 2,4,6-trisubstituted quinazoline derivatives useful for treating viral infections
BRPI0717907A2 (pt) 2006-12-07 2013-11-05 Genentech Inc "composto, composição farmacêutica, métodos para tratar um câncer, para inbir ou modular a atividade da lipídeo quinase, processo para a produçãoo de uma composição farmacêutica, uso de um composto e kit"
AU2007335962B2 (en) 2006-12-20 2012-09-06 Istituto Di Ricerche Di Biologia Molecolare P. Angeletti Spa Antiviral indoles
CN101790380B (zh) 2007-02-07 2013-07-10 加利福尼亚大学董事会 合成tlr激动剂的缀合物及其应用
JP2008222557A (ja) 2007-03-08 2008-09-25 Kotobuki Seiyaku Kk ピロロ[3,2−d]ピリミジン誘導体及びこれを有効成分とする医薬組成物
PE20081887A1 (es) 2007-03-20 2009-01-16 Dainippon Sumitomo Pharma Co Nuevo compuesto de adenina
ATE518840T1 (de) 2007-05-22 2011-08-15 Boehringer Ingelheim Int Benzimidazolonchymasehemmer
TW200922569A (en) 2007-08-10 2009-06-01 Genelabs Tech Inc Certain nitrogen containing bicyclic chemical entities for treating viral infections
WO2009032668A2 (en) 2007-08-28 2009-03-12 Irm Llc 2 -biphenylamino-4 -aminopyrimidine derivatives as kinase inhibitors
WO2009030998A1 (en) 2007-09-05 2009-03-12 Coley Pharmaceutical Group, Inc. Pyrimidine compounds as toll-like receptor (tlr) agonists
PE20091236A1 (es) 2007-11-22 2009-09-16 Astrazeneca Ab Derivados de pirimidina como immunomoduladores de tlr7
CN101910177B (zh) 2007-12-24 2013-08-28 泰博特克药品公司 作为丙型肝炎病毒抑制剂的大环吲哚
CA2713438A1 (en) 2008-02-07 2009-08-13 The Regents Of The University Of California Treatment of bladder diseases with a tlr7 activator
EP2271345B1 (en) 2008-04-28 2015-05-20 Merck Sharp & Dohme Corp. Hcv ns3 protease inhibitors
KR101450640B1 (ko) 2008-06-27 2014-10-14 교세라 가부시키가이샤 유저인터페이스생성장치
US8946239B2 (en) 2008-07-10 2015-02-03 Duquesne University Of The Holy Spirit Substituted pyrrolo, -furano, and cyclopentylpyrimidines having antimitotic and/or antitumor activity and methods of use thereof
UY31982A (es) 2008-07-16 2010-02-26 Boehringer Ingelheim Int Derivados de 1,2-dihidropiridin-3-carboxamidas n-sustituidas
JP5913093B2 (ja) 2009-05-21 2016-04-27 アストラゼネカ アクチボラグ 新規ピリミジン誘導体と、癌とさらなる疾患の治療におけるそれらの使用
US8637525B2 (en) 2009-07-31 2014-01-28 Bristol-Myers Squibb Company Compounds for the reduction of beta-amyloid production
TWI468402B (zh) 2009-07-31 2015-01-11 必治妥美雅史谷比公司 降低β-類澱粉生成之化合物
EP2491033A4 (en) 2009-10-20 2013-03-13 Eiger Biopharmaceuticals Inc AZAINDAZOLES FOR THE TREATMENT OF FLAVIVIRIDAE VIRUS INFECTION
KR101094446B1 (ko) 2009-11-19 2011-12-15 한국과학기술연구원 단백질 키나아제 저해활성을 가지는 2,4,7-치환된 티에노[3,2-d]피리미딘 화합물
JP2013032290A (ja) 2009-11-20 2013-02-14 Dainippon Sumitomo Pharma Co Ltd 新規縮合ピリミジン誘導体
DE102010040233A1 (de) * 2010-09-03 2012-03-08 Bayer Schering Pharma Aktiengesellschaft Bicyclische Aza-Heterocyclen und ihre Verwendung
WO2012066335A1 (en) 2010-11-19 2012-05-24 Astrazeneca Ab Phenol compounds als toll -like receptor 7 agonists
WO2012067269A1 (en) 2010-11-19 2012-05-24 Dainippon Sumitomo Pharma Co., Ltd. Aminoalkoxyphenyl compounds and their use in the treatment of disease
BR122019023564B1 (pt) 2011-04-08 2021-06-22 Janssen Sciences Ireland Uc Formas de dosagem contendo derivados de pirimidina para o tratamento de infecções virais
WO2012156498A1 (en) 2011-05-18 2012-11-22 Janssen R&D Ireland Quinazoline derivatives for the treatment of viral infections and further diseases
CA2850448C (en) 2011-11-09 2019-03-05 Janssen R&D Ireland Purine derivatives for the treatment of viral infections
MX357296B (es) 2012-02-08 2018-07-03 Janssen Sciences Ireland Uc Derivados piperidinopirimidinicos para el tratamiento de infecciones viricas.
DK3459942T3 (da) 2012-04-24 2021-03-08 Vertex Pharma DNA-PK-hæmmere
KR102207888B1 (ko) 2012-07-13 2021-01-26 얀센 사이언시즈 아일랜드 언리미티드 컴퍼니 바이러스 감염증의 치료를 위한 거대환식 푸린
WO2014023813A1 (en) 2012-08-10 2014-02-13 Janssen R&D Ireland Alkylpyrimidine derivatives for the treatment of viral infections and further diseases
EP2712866A1 (en) 2012-10-01 2014-04-02 Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) 1,2,4-triazine derivatives for the treatment of viral infections
EA034650B1 (ru) 2012-10-05 2020-03-03 Янссен Сайенсиз Айрлэнд Юси Ациламинопиримидиновые производные для лечения вирусных инфекций и других заболеваний
RS57225B1 (sr) 2012-10-10 2018-07-31 Janssen Sciences Ireland Uc Derivati pirolo[3,2-d]pirimidina za tretman viralnih infekcija i drugih bolesti
JP6297055B2 (ja) 2012-11-16 2018-03-20 ヤンセン・サイエンシズ・アイルランド・ユーシー ウイルス感染症の治療のための複素環置換2−アミノ−キナゾリン誘導体
KR102225233B1 (ko) 2013-02-21 2021-03-09 얀센 사이언시즈 아일랜드 언리미티드 컴퍼니 바이러스 감염의 치료를 위한 2-아미노피리미딘 유도체
EP2978429B1 (en) 2013-03-29 2017-02-22 Janssen Sciences Ireland UC Macrocyclic deaza-purinones for the treatment of viral infections
ES2701239T3 (es) 2013-07-30 2019-02-21 Janssen Sciences Ireland Uc Derivados de tieno[3,2-d]pirimidinas para el tratamiento de infecciones virales
WO2016007966A2 (en) 2014-07-11 2016-01-14 Northwestern University 2-imidazolyl-pyrimidine scaffolds as potent and selective inhibitors of neuronal nitric oxide synthase

Patent Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6028076A (en) * 1996-07-03 2000-02-22 Japan Energy Corporation Purine derivative
US6376501B1 (en) * 1997-12-22 2002-04-23 Japan Energy Corporation Type 2 helper T cell-selective immune response suppressors
US20070225303A1 (en) * 2004-03-26 2007-09-27 Haruhisa Ogita 8-Oxoadenine Compound
EP1939198A1 (en) * 2005-09-22 2008-07-02 Dainippon Sumitomo Pharma Co., Ltd. Novel adenine compound
WO2008114008A1 (en) * 2007-03-19 2008-09-25 Astrazeneca Ab 9-substituted-8-oxo-adenine compounds as toll-like receptor (tlr7 ) modulators
EP2138497A1 (en) * 2007-03-20 2009-12-30 Dainippon Sumitomo Pharma Co., Ltd. Novel adenine compound
WO2009005687A1 (en) * 2007-06-29 2009-01-08 Gilead Sciences, Inc. Purine derivatives and their use as modulators of toll-like receptor 7
WO2011049825A1 (en) * 2009-10-22 2011-04-28 Gilead Sciences, Inc. Derivatives of purine or deazapurine useful for the treatment of (inter alia) viral infections

Also Published As

Publication number Publication date
AU2012334127A1 (en) 2014-04-17
PL2776439T3 (pl) 2018-12-31
CN107011346A (zh) 2017-08-04
IL232046A (en) 2017-10-31
SI2776439T1 (sl) 2018-11-30
EA201991767A1 (ru) 2019-12-30
LT2776439T (lt) 2018-10-10
IN2014MN00862A (ru) 2015-04-17
PH12014501045B1 (en) 2019-01-16
CY1121452T1 (el) 2020-05-29
KR20140090185A (ko) 2014-07-16
BR112014011162A2 (pt) 2017-05-09
PH12014501045A1 (en) 2014-06-30
HUE040541T2 (hu) 2019-03-28
US20170283419A1 (en) 2017-10-05
JP2014534231A (ja) 2014-12-18
PT2776439T (pt) 2018-11-02
SG11201401244TA (en) 2014-09-26
WO2013068438A1 (en) 2013-05-16
CN104066733A (zh) 2014-09-24
MX347596B (es) 2017-05-03
EP2776439A1 (en) 2014-09-17
AU2012334127B2 (en) 2017-05-18
CA2850448A1 (en) 2013-05-16
CN107011346B (zh) 2020-06-16
US20190359614A1 (en) 2019-11-28
KR102025276B1 (ko) 2019-09-25
US20140323441A1 (en) 2014-10-30
EA201490947A1 (ru) 2014-08-29
MY173422A (en) 2020-01-23
US20220235052A1 (en) 2022-07-28
US9556176B2 (en) 2017-01-31
UA116083C2 (uk) 2018-02-12
US10280167B2 (en) 2019-05-07
BR122019020718B1 (pt) 2021-07-06
NZ623091A (en) 2016-08-26
CA2850448C (en) 2019-03-05
SMT201800514T1 (it) 2018-11-09
DK2776439T3 (en) 2018-10-22
US11104678B2 (en) 2021-08-31
RS57851B1 (sr) 2018-12-31
IL232046A0 (en) 2014-05-28
MX2014005619A (es) 2014-06-23
JP6349256B2 (ja) 2018-06-27
HRP20181497T1 (hr) 2018-11-30
EA033830B1 (ru) 2019-11-29
ES2690082T3 (es) 2018-11-19
CL2014001205A1 (es) 2014-08-01
EP2776439B1 (en) 2018-07-04

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EA036645B1 (ru) Производные пурина для лечения вирусных инфекций
JP6501948B2 (ja) ウイルス感染治療のための大環状デアザプリノン
KR102207888B1 (ko) 바이러스 감염증의 치료를 위한 거대환식 푸린
DK2694484T3 (en) PYRIMIDINE DERIVATIVES FOR TREATING VIRUS INFECTIONS
JP2020203929A (ja) ウイルス感染症および他の疾病の処置のためのピロロ[3,2−d]ピリミジン誘導体
JP2015506380A (ja) ウイルス感染の治療のためのピペリジノ−ピリミジン誘導体
HK1242310A1 (en) Purine derivatives for the treatment of viral infections
HK1197678A (en) Purine derivatives for the treatment of viral infections
HK1256490B (en) Pyrimidine derivatives for the treatment of viral infections
HK1242310B (zh) 用於治疗病毒感染的嘌呤衍生物
HK1192547B (en) Pyrimidine derivatives for the treatment of viral infections
HK1192547A (en) Pyrimidine derivatives for the treatment of viral infections
HK1208223A1 (en) 1,2,4-triazine derivatives for the treatment of viral infections
HK1208223B (en) 1,2,4-triazine derivatives for the treatment of viral infections
EA040150B1 (ru) Способ получения производных пирроло[3,2-d]пиримидина