JP2006506081A - 植物または植物細胞において遺伝子発現を制御する方法 - Google Patents

Abstract

遺伝子改変された植物または植物細胞を制御する方法であり、該方法は以下の工程を含む：（ａ）遺伝子改変された植物または植物細胞を提供し、該植物または植物細胞は、タンパク質の第１の断片を含有するかまたはそれから成る第１のポリペプチドをコードしている異種核酸を含有する、（ｂ）該遺伝子改変された植物または植物細胞の細胞内へ第２のポリペプチドを導入し、該第２のポリペプチドは（ｉ）該タンパク質の第２の断片および（ｉｉ）該遺伝子改変された植物または植物細胞の細胞内への該第２のポリペプチドの導入を可能にするペプチド配列、を含有し、それにより該第１の断片および該第２の断片は、共同して存在している場合にのみ、該タンパク質の所定の機能を共同して発生させる。

Description

本発明は遺伝子改変された植物または植物細胞を制御する方法、特に遺伝子改変された植物または植物細胞において目的の細胞プロセスを制御する方法に関する。本発明の方法は例外的な生物学的安全性を有する。本発明はさらに、該方法に適合させた遺伝子改変された植物、そして本発明の方法に従って制御されている遺伝子改変された植物に関する。さらに、本発明は目的の細胞プロセスを制御することにより、遺伝子改変された植物において産物を製造する方法に関する。本発明の方法は、過渡的にまたは安定に遺伝子改変された植物における導入遺伝子発現の選択的制御を可能にし、それにより、該植物において、それ以前には機能不可能である目的の細胞プロセスに、任意の所定の時間に、選択的にスイッチを入れることができる。

植物において制御可能な導入遺伝子発現システム
植物バイオテクノロジーにおける１つの主要な問題は、導入遺伝子発現の信頼可能な制御の達成である。植物における遺伝子発現の厳重な制御は、もし導入遺伝子の下流産物が、例えば、生分解性プラスチック（Ｎａｗｒａｔｈ、Ｐｏｉｒｉｅｒ＆Ｓｏｍｅｒｖｉｌｌｅ、１９９４、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．９１、１２７６０−１２７６４；Ｊｏｈｎ＆Ｋｅｌｌｅｒ、１９９６、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．９３、１２７６８−１２７７３；ＵＳ６１０３９５６；ＵＳ５６５０５５５）またはタンパク質毒素（ＵＳ６１４００７５）のように、生長抑止的または毒性であるとすれば必須である。植物における遺伝子発現を制御するために現存している技術は、通常、組織特異的および誘導可能プロモーターに基づいており、そして実際的にはそれらのすべては、誘導されない場合でさえも基礎発現活性を示すのが欠点であり、即ち、それらは「漏出性」である。組織特異的プロモーター（ＵＳ０５９５５３６１；ＷＯ０９８２８４３１）は強力な道具の代表であるが、それらの使用は、応用の非常に特異的領域、例えば、繁殖不能植物を産生するため（ＷＯ９８３９４６２）、または種子中で目的の遺伝子を発現するため（ＷＯ０００６８３８８；ＵＳ０５６０８１５２）に限定されている。誘導可能プロモーターはそれらの誘導条件に従って、２つの範疇に分割することができる：非生物的因子（温度、光、化学物質）により誘導されるもの、そして、例えば、病原体または害虫攻撃のような生物学的因子により誘導可能であるもの。第１の範疇の例は熱誘導可能（ＵＳ０５１８７２８７）および低温誘導可能（ＵＳ０５８４７１０２）プロモーター、銅誘導性システム（Ｍｅｔｔら、１９９３、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．９０、４５６７−４５７１）、ステロイド誘導性システム（Ａｏｙａｍａ＆Ｃｈｕａ、１９９７、Ｐｌａｎｔ Ｊ．１１、６０５−６１２；ＭｃＮｅｌｌｓら、１９９８、Ｐｌａｎｔ Ｊ．１４、２４７−２５７；ＵＳ０６０６３９８５）、エタノール誘導性システム（Ｃａｄｄｉｃｋら、１９９７、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈ．１６、１７７−１８０；ＷＯ０９３２１３３４）およびテトラサイクリン誘導性システム（Ｗｅｉｎｍａｎｎら、１９９４、Ｐｌａｎｔ Ｊ．５、５５９−５６９）である。植物のための化学的誘導性システムの領域における、最新の開発の１つは、グルココルチコイド デキサメタゾンによりスイッチを入れ、そしてテトラサイクリンによりスイッチを切ることが可能であるキメラプロモーターである（Ｂｏｈｎｅｒら、１９９９、Ｐｌａｎｔ Ｊ．１９、８７−９５）。化学的に誘導可能なシステムについての総説は、Ｚｕｏ＆Ｃｈｕａ（２０００、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｏｐｉｎ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．１１、１４６−１５１）を参照されたい。誘導可能プロモーターの他の例は、植物における病原性関連（ＰＲ）遺伝子の発現を制御するプロモーターである。これらのプロモーターは、病原体攻撃に応答した植物シグナル伝達経路の重要な成分であるサリチル酸、もしくは、ＰＲ遺伝子発現の引金を引くことができる他の化学化合物（ベンゾ−１，２，３−チアジアゾールまたはイソニコチン酸）で、植物を処理することにより誘導することが可能である（ＵＳ０５９４２６６２）。

ウイルス感染により提供されるウイルスＲＮＡ／ＤＮＡポリメラーゼを使用する、制御可能導入遺伝子発現システムが報告されている（例えば、ＵＳ６０９３５５４；ＵＳ５９１９７０５を参照されたい）。これらのシステムにおいて、組換え植物ＤＮＡ配列は、ウイルスＲＮＡ／ＤＮＡポリメラーゼにより認識されるウイルスゲノムからのヌクレオチド配列を含んでいる。これらのシステムの有効性は、トランスでの機能を提供する、ウイルスポリメラーゼの低い能力、およびＲＮＡ増幅以外のプロセスを制御することついて無力であることにより制限される。別の方法は、遺伝子改変された植物における生化学的プロセスのためのスイッチをコードしている異種核酸を提供する、遺伝子改変されたウイルスを使用することにより、トランスジェニック植物で目的のプロセスの引金を引くことである（ＷＯ０２０６８６６４）。

上に説明したシステムは、導入遺伝子発現の所望のパターンを得るための機会としては非常に興味のあるところではあるが、誘導剤（銅）またはその類似体（ステロイド制御可能システムの場合ではブラシノステロイド）は残留発現を起こすのに十分なレベルで植物組織中に存在することが可能であるので、発現パターンの厳密な制御が不可能である。加えて、化学誘導剤としての抗生物質およびステロイドの使用は望ましいものではなく、そして大規模応用は経済的に実行不可能である。導入遺伝子の制御手段として、ＰＲ遺伝子またはウイルスＲＮＡ／ＤＮＡポリメラーゼを使用する場合、偶然の病原体感染またはストレスが発現を起こすことができるので、導入遺伝子発現の厳密な制御に対する要求も満たされない。組織または器官特異的プロモーターは、特異的な器官または植物生長の段階に発現が限られ、スイッチを入れるべき導入遺伝子は随意に可能ではないので、非常に狭い領域の応用に制限されている。ＷＯ０２／０６８６６４に記載されているような組換えウイルススイッチは、これらの問題に取り組んでいるが、ウイルスベクター中の異種核酸は組換わることが可能であるため、厳密な環境安全要求を保証していない。

ウイルス遺伝子またはウイルスＲＮＡの変異型の発現によるウイルス耐性植物の設計を記載している、特許出願を含んだ多くの文献が存在する（例えば、ＵＳ５７９２９２６；ＵＳ６０４０４９６）。しかしながら、挑戦しているウイルスおよびトランスジェニックウイルスＲＮＡまたはＤＮＡ間の組換えによる新規ウイルス形成の可能性のため、こうしたウイルスの使用に付随する環境リスクが存在する（Ａｄａｉｒ＆ｋｅａｒｎｅｙ、２０００、Ａｒｃｈ．Ｖｉｒｏｌ、１４５、１８６７−１８８３）。

Ｈｏｏｙｋａａｓおよび共同研究者（２０００、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２９０、９７９−９８２；ＷＯ０１／８９２８３）は、植物細胞内へのアグロバクテリウム仲介レコンビナーゼ移行のため、Ｃｒｅレコンビナーゼとｖｉｒ遺伝子断片の翻訳融合の使用を記載している。Ｃｒｅ仲介植物内組換え事象は、選択可能表現型を生じた。Ｃｒｅレコンビナーゼの移行は、植物細胞中で目的のプロセスの引金を引くためのスイッチとして、移行タンパク質の最初の使用である。しかしながら、移行は必ずしもＤＮＡ転移を伴わないにもかかわらず、植物病原性の遺伝子改変された微生物（アグロバクテリウム）はスイッチングタンパク質Ｃｒｅレコンビナーゼの完全コード配列を所有しているので、このアプローチは高レベルの安全性を保証しない。さらに、目的のプロセスは、スイッチングタンパク質を受け取った細胞中でのみ引金を引くことができる。もし大きな集団の細胞を処理しなければならないならば、細胞の総数に対して、スイッチングタンパク質を受け取っている細胞の比は非常に小さくなる。Ｈｏｏｙｋａａｓの方法はそれ故、植物全体へ応用することができない。その代わりとして、その有用性は組織培養または細胞培養中の細胞へ限定される。さらに、この方法は細胞培養（実験室規模）に限定されているので、大規模または農場応用としての環境安全性の心配は生じない。

それ故、植物における目的の細胞プロセスのスイッチを入れる、環境的に安全な方法を提供するのが本発明の１つの目的であり、それにより、細胞プロセスは任意の所定の時間に、選択的にスイッチを入れることができる。植物全体で目的の細胞プロセスのスイッチを入れる方法を提供するのが、本発明の別の目的である。トランスジェニック植物において産物を生産する方法を提供するのが本発明の別の目的であり、ここにおいて産物の生産は、植物が所望の段階へ生長した後に選択的にスイッチを入れることができ、それにより、該細胞プロセスに必要な遺伝子材料および制御機能をコードしている遺伝子材料が一緒に環境中に広がらないという点において、本プロセスは環境的に安全である。

発明の一般的説明
前記の目的は、遺伝子改変された植物または植物細胞を制御する方法により達成され、該方法は以下の工程を含む：
（ａ）遺伝子改変された植物または植物細胞を提供し、該植物または植物細胞は、タンパク質の第１の断片を含有するかまたはそれから成る第１のポリペプチドをコードしている異種核酸を含有する、
（ｂ）該遺伝子改変された植物または植物細胞の細胞内へ第２のポリペプチドを導入する、該第２のポリペプチドは
（ｉ）該タンパク質の第２の断片および
（ｉｉ）該遺伝子改変された植物または植物細胞の細胞内への該第２のポリペプチドの導入を可能にするペプチド配列、を含有し、
それにより該第１の断片および該第２の断片は、共同して存在している場合にのみ、該タンパク質の所定の機能を共同して発生させる。好ましくは、この方法は植物細胞に対立するものとして、植物に対して実施する。

本発明はまた、本発明の方法により得られたまたは得ることが可能な遺伝子改変された植物またはその部分も提供する。該植物の好ましい部分は葉および種子である。種子は、最も好ましい植物の部分の例である。

本発明はまた、タンパク質の第１の断片を含有するかまたはそれから成る第１のポリペプチドをコードする異種核酸を含有する、遺伝子改変された植物または植物細胞の細胞も提供し、それにより該遺伝子改変された植物または植物細胞および該タンパク質の第１の断片が、該タンパク質の該第１の断片および第２の断片の所定の機能を発生するように適合され、それにより、該第２の断片を含有するかまたはそれから成る第２のポリペプチドを導入することにより、該第２の断片を、該遺伝子改変された植物または植物細胞の細胞へ提供することが可能である。

さらに、本発明は遺伝子改変された植物または植物細胞を制御するためのシステムを提供し、該システムは上に定義したような遺伝子改変された植物または植物細胞を含み、それにより、該第１の断片および第２の断片が共同して、該タンパク質の所定の機能を発生することが可能なように、該遺伝子改変された植物または植物細胞および該第２のポリペプチドは設計されている。

本発明は、全植物において有効であり、そして同時に、温室または農場でのように大規模で使用される場合においてさえ環境的に安全である、遺伝子改変された植物またはその細胞を制御する方法を最初に提供する。本発明は、タンパク質の第１の断片を含有するかまたはそれから成る第１のポリペプチドをコードしている異種核酸を含有する細胞内へ、第２のポリペプチドを導入することにより、遺伝子改変された植物またはその細胞を制御することを可能にする。該第２のポリペプチドは該タンパク質の第２の断片を含有し、それにより該第１の断片および該第２の断片は、共同して存在する場合にのみ、該タンパク質の所定の機能を共同して発生させる。該タンパク質の該所定の機能は、タンパク質の任意の機能であることができる。好もしくは、該機能は酵素活性である。該所定の機能は、該第１および該第２のポリペプチドが植物中に、好ましくは該植物の少なくとも１つの細胞中に一緒に存在する場合にのみ現れる。該タンパク質の該所定の機能は、該第２のポリペプチドが、該第１のポリペプチドをコードしている該異種核酸を含有していない植物または植物細胞に導入されても発生されない。さらに、該タンパク質の該所定の機能は、該植物の細胞に該第２のポリペプチドが導入されない限り、該第１にポリペプチドをコードしている該異種核酸を含有する植物では発生しない。

本発明の方法の工程（ａ）において、遺伝子改変された植物または遺伝子改変された植物細胞を提供する。植物が好ましい。高等植物、特に高等農作物植物が最も好ましい。該植物は、該植物の細胞が該遺伝子改変された植物を制御することに関与している異種核酸を含有するように遺伝子改変されている。工程（ａ）において提供された該植物は、トランスジェニック植物であることができ、それにより、該植物のほとんどまたは全ての細胞は、該細胞のゲノム内へ安定的に組み込まれている該異種核酸を含有する。該異種核酸は、核ゲノムまたはミトコンドリアまたは、好ましくは色素体のごとき細胞小器官のゲノム内へ安定的に組み込むことができる。色素体ゲノムへの該異種核酸の組み込みは、生物学的安全性の点から都合がよい。本発明の方法は、好ましくは、トランスジェニック植物で実施される。しかしながら、代わりに該植物は過渡的に修飾されてもよく、および／または該異種核酸は細胞（しかし他の細胞ではない）の分画に存在してもよい。過渡的に修飾された植物中の異種核酸は、細胞の該分画のゲノム中に安定的に組み込まれるか、またはエピソームに存在することができる。該植物の細胞の分画への該異種核酸の取り込みは、例えば、ウイルストランスフェクションまたはアグロバクテリウム仲介形質転換を使用して、該生物体を過渡的にトランスフェクトすることにより達成することができる。

該異種核酸は本発明の該第１のポリペプチドをコードしている。該第１のポリペプチドは、タンパク質の第１の断片を含有するかまたはそれから成っている。この目的のためには、該異種核酸は、該第１のポリペプチドを発現するためのプロモーターおよび発現に必要な他の制御要素を有していなければならない。該プロモーターは誘導可能、組織特異的または構成的プロモーターであることができる。もしそれが構成的プロモーターであるならば、該所定の機能は工程（ｂ）の実施により発生させることができる。もしプロモーターが誘導可能であるならば、該所定の機能を発生させるためには、該第２のポリペプチドに加えてさらなるシグナルを必要とすることができる。さらに、該第１のポリペプチドの発現は、さらなる要素に依存するように作製することができ、それにより本発明の方法の環境安全性をさらに増加させることができる。

本発明の方法の工程（ｂ）において、該第２のポリペプチドを、該遺伝子改変された植物または植物細胞の細胞内へ導入する。好ましくは、それは該異種核酸を含有する該植物の細胞内へ導入する。もし該植物がトランスジェニックであるならば、該第２のポリペプチドは、植物の任意の部分または任意の細胞へ原則として応用することができる。しかしながら、葉への応用が好ましい。もし該植物の細胞の分画のみが該異種核酸を含有しているとすれば、該第２のポリペプチドを、該第２のポリペプチドが該異種核酸を含有する細胞へ到達可能であるように植物へ応用する。

該第２のポリペプチドは（ｉ）該タンパク質の第２の断片を含有している。さらに、該第２のポリペプチドは最も好ましくは（ｉｉ）該遺伝子改変された植物または植物細胞の細胞内への該第２のポリペプチドの導入を可能にするペプチド配列を含有している。項目（ｉ）および（ｉｉ）のペプチド配列は重複することができる。

該第２のポリペプチドは、最も好ましくは工程（ｂ）において、該遺伝子改変された植物の細胞内へ、該第２のポリペプチドまたはその機能的部分をコードしている核酸が導入されないように導入する。もし該第２のポリペプチドの部分が該第１のポリペプチドと共同して該所定の機能を発生可能であるならば、それは機能的である。該第２のポリペプチドは、該植物の細胞へ直接に応用することができる。直接応用とは、第２のポリペプチドを応用するため、工程（ｂ）で使用される組成物中に、該第２のポリペプチドまたはその機能性部分をコードする核酸が含有されていないような、該第２のポリペプチドの応用を意味している。

該第２のポリペプチドを直接に応用することは、（ｉ）粒子（微粒子）銃、（ｉｉ）該植物の少なくとも一部への該ポリペプチドの応用により、または（ｉｉｉ）該植物の組織中へ、該ポリペプチド含有溶液を注入することにより、行うことができる。方法（ｉｉ）および（ｉｉｉ）において、該ポリペプチドは典型的には、植物の部分へ応用される液体（好ましくは水性）組成物（または溶液）に含まれている。こうした組成物は、例えば、ポリペプチドを含有する該組成物を該植物へ噴霧することにより応用することができる。さらに、該組成物は（ｉｉｉ）に従って注入することができる。

方法（ｉｉ）および（ｉｉｉ）のためには、該第２のポリペプチドは好ましくは、該遺伝子改変された植物または植物細胞の細胞内への、該第２のポリペプチドの導入を可能にするペプチド配列として、膜移行配列（ＭＴＳ）を含む。該膜移行配列は、該第２のポリペプチドへ共有結合でまたは非共有結合で結合することができる。該膜移行配列は、該第２のポリペプチドへ、該植物の細胞の原形質膜を通過する能力を授けるペプチドであることができる。多くのこうした膜移行配列が当該分野で知られている。しばしば、それらはいくつかの塩基性アミノ酸、特にアルギニンを含む。膜移行配列のサイズは大きく変化することができる、しかしながら、それらは典型的には３〜１００のアミノ酸、好ましくは５〜６０のアミノ酸を有することができる。該第２のポリペプチドは標準タンパク質発現技術により、例えば、大腸菌中で産生することができる。その発現後、該第２のポリペプチドの精製は好ましくは、特に該ポリペプチドをコードする核酸の除去または破壊により行う。核酸は、加水分解、好ましくはデオキシリボヌクレアーゼ（ＤＮａｓｅ）またはリボヌクレアーゼ（ＲＮａｓｅ）のごとき酵素で触媒することにより除去または破壊することができる。さらに、または加えて、該第２のポリペプチドから核酸を除去するために、クロマトグラフィー技術を使用することができる。該第２のポリペプチドは、例えば、該第２のポリペプチドを含有する液体組成物、好ましくは水性溶液で該植物を噴霧することにより、植物へ応用することができる。好ましくは、植物の細胞内へ該第２のポリペプチドが入ることを容易にするため処置、特に、植物細胞壁および／または外側植物層の通過を可能にする処置を講じる。こうした処置の例は、例えば、機械的にかき傷をつけることにより、植物の一部をわずかに傷つけることである。別の例は、植物細胞壁を弱くするかまたは穴を開けるための、セルロース分解酵素の使用である。

工程（ｂ）で細胞内へ該第２のポリペプチドを導入するために使用することができるさらなる技術は、宿主細胞内へポリペプチドを搬送することが可能な分泌システムを有する病原性微生物の使用である。該直接法におけるように、該第２のポリペプチドは、該第２のポリペプチドまたはその機能的部分をコードする核酸が導入されないように導入される。該第２のポリペプチドが該病原微生物中で発現でき、そして該植物の細胞内へ搬送できるように、該第２のポリペプチドは該微生物の核酸に発現可能なようにコードすることができる。こうした病原微生物の例は病原性または非病原性アグロバクテリウムであり、それにより、該第２のポリペプチドはＴｉ−プラスミドのＴ−ＤＮＡにはコードされてなく、好ましくは該第２のポリペプチドは用いられたアグロバクテリウムのＴｉ−プラスミド上にはコードされていない。病原微生物を使用して該遺伝子改変された植物または植物細胞の細胞内への該第２のポリペプチドの導入を可能にする、最も研究されたペプチド配列の例は、細菌細胞から植物細胞内へのタンパク質移行に必要とされるアグロバクテリウムのｖｉｒＥ２およびｖｉｒＦタンパク質またはその断片である（Ｖｅｒｇｕｎｓｔら、２０００、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２９０、９７９−９８２；ＷＯ０１８９２８３）。さらに、ボウデテラ属、エルウィニア属、シュードモナス属、ザントモナス属、エルシニア属の病原微生物を使用することができる。エルシニア属に基づいた分泌システムは、例えば、ＷＯ９９５２５６３に記載されている。

上に説明したような本発明の方法の工程（ｂ）を実施することにより、植物は該所定の機能を発生させることができる遺伝子材料と接触することがないため、非常に高レベルの生物学的安全性が達成される。その代わり、該所定の機能のための少なくとも１つの必須の成分が、該第２のポリペプチドとして（ゆえにコードしている遺伝子材料なしで）植物に好ましく提供される。

本発明の方法の工程（ｂ）を実行した後、該第１のポリペプチドの該第１の断片および該第２のポリペプチドの該第２の断片は、共同して存在する場合、該タンパク質の該所定の機能を共同して発生する。該所定の機能の発生は、該ポリペプチドまたは断片間の共有結合的または非共有結合的結合の形成により達成することができる。非共有結合的結合の形成は、お互いに特異的親和性を有する該ポリペプチドにより助力されることができる。好ましくは、インテイン仲介トランススプライシングにより、またはインテイン仲介親和性相互作用により、該第１のポリペプチドおよび該第２のポリペプチドは共同して該所定の機能を発生する。それ故、発生された所定の機能を有しているタンパク質は、本明細書においてまた「タンパク質スイッチ」とも称される。該タンパク質スイッチの該所定の機能は、例えば、目的の該細胞プロセスを制御するための他の成分に作用することができる、結合活性または酵素活性であってもよい。該タンパク質スイッチのさらなる所定の機能または活性は以下に説明されている。

該第１の断片および該第２の断片は一般に、機能が本発明の方法において（再）発生されるべきタンパク質の断片である。本発明の方法を実施することは典型的には、該第１（特に工程（ａ）を実施するための）および第２のポリペプチドをコードする核酸の産生を必要とする。該第１のポリペプチドをコードする配列は、工程（ａ）の該異種核酸にコード化されている。該第２のポリペプチドは別に、例えば、大腸菌のような細菌中で発現することができる。

該第１および第２の断片をコードする核酸を産生することは、該タンパク質をコードするヌクレオチド配列を２以上の断片に分割することを含むことができる。好ましくは、該タンパク質をコードする該ヌクレオチド配列は２つの断片に分割され、それ故、ヌクレオチド配列の５’および３’部分が得られる。該５’部分は該第１の断片に本質的に対応することができる。該５’および該３’部分はまた、該タンパク質をコードしている遺伝子から誘導することができる調節配列を含有することもできる。該ヌクレオチド配列は典型的には、所定の機能を有するタンパク質のコード配列（または読み取り枠）である。該断片を得るため、該ヌクレオチド配列は好ましくは、発現により得られる各々の断片が、他の断片の非存在下では該所定の機能を発生できないように分割される。各々の断片は、所定の機能を有するタンパク質の機能に必要な配列部分を含有する。例えば、もし該タンパク質が酵素であるならば、各々の断片は好ましくは、酵素の触媒または基質結合に必要なアミノ酸を含有する。もし該所定の機能の発生がすべての該断片を必要とすれば、該所定の機能を有するタンパク質は多くの方法で該断片へ分割することができる。該タンパク質について知られている構造的および機能的情報は、該ヌクレオチド配列の適した分割部位を見出すための助けとなることができる。どの場合においても、無作為に選択された部位で分割することにより発生された断片が、該ヌクレオチド配列によりコードされている所定の機能を発現できるかどうかを、容易に実験的に決定することができる。

もし所定の機能の発生がインテイン仲介トランススプライシングにより行われるならば、該第１および該第２の断片をコードしているヌクレオチド配列は、次ぎにインテイン断片をコードしている核酸と繋ぎ合わされる。その結果、該第１のポリペプチドをコードしている核酸および該第２のポリペプチドをコードしている核酸が得られる。該ポリペプチドはタンパク質トランススプライシングが可能であろう。該トランススプライシングにより、該第１および該第２の断片は、ペプチド結合形成により連結される。本発明で使用するためのトランススプライシングインテインは、真核生物、古細菌および真正細菌を含む、異なった生物体の核小体および細胞小器官ゲノムから選択することができる。本発明の実施のために使用することができるインテインは、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｅｂ．ｃｏｍ／ｎｅｂ／ｉｎｔｅｉｎｓ．ｈｔｍｌに掲げられている。また、本明細書に援用した文献に述べられているインテインも使用することができる。インテインの選択は、コンセンサス配列ならびに有効なトランススプライシングに必要とされる条件に依存してもよい。

目的の該細胞プロセスは、しばしば、該細胞プロセスが制御されるかまたはスイッチが入れられるべき該植物の細胞において、１以上の追加の異種核酸を必要とする（図８を参照されたい）。該タンパク質の該所定の機能は、該追加の異種核酸に作用し、目的の該細胞プロセスのスイッチを入れる。該追加の異種核酸は、該植物の全ての細胞または細胞の分画に存在することができる。それは、該生物体の核または細胞小器官ゲノムに安定に取り込まれることができる。本発明の該異種核酸に関するものは、一般に該追加の異種核酸にも適用される。好ましくは、該植物は該追加の異種核酸に関して、そして該異種核酸に関してトランスジェニックである。該異種核酸および該追加の異種核酸は、例えば、それら両方を含有する大きな異種構築物上で、本発明の工程（ａ）において一緒に該植物細胞内へ導入されることができる。

目的の該細胞プロセスに関しては、特定の制限は存在せず、そして本発明は非常に広範な応用性を有している。目的の該細胞プロセスは、該追加の異種核酸からの、または該追加の異種核酸を含む、ＤＮＡ、ＲＮＡまたはタンパク質の形成であることができ、または含むことができる。目的の該ＤＮＡ、該ＲＮＡまたは該タンパク質の形成を達成するためには、多くの可能性が存在する。発生される所定の機能を有する該タンパク質は、例えば、該追加の異種核酸、例えば、プロモーターに対して結合活性を有しているセグメントを含むことができる。該セグメントは次ぎに、例えば、該異種核酸の転写を誘導する転写因子として働くことができ、従ってＲＮＡおよび目的のタンパク質形成の引き金を引くことができる。

好ましくは、該タンパク質は、目的の該ＤＮＡ、該ＲＮＡまたは該タンパク質の形成の引き金を引くことが可能な酵素活性を有しているセグメントを有する。こうした活性の例は、部位特異的レコンビナーゼ、フリッパーゼ、リゾルバーゼ、インテグラーゼ、ポリメラーゼまたはトランスポザーゼの活性のようなＤＮＡまたはＲＮＡ修飾活性である。該酵素活性は該追加の異種核酸を修飾することができ、例えば、組換えにより、目的のタンパク質の発現を導いている。該タンパク質（該タンパク質スイッチ）がポリメラーゼ活性を有する態様において、該セグメントは、該追加の異種核酸のプロモーターに作用するＤＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼであることができる。該プロモーターは好ましくは、該植物の自然のポリメラーゼには認識されない。こうしたプロモーター−ポリメラーゼシステムの例は、Ｔ７プロモーター−Ｔ７ポリメラーゼのような、細菌、ウイルスまたはバクテリオファージプロモーター−ポリメラーゼシステムである。さらに、目的の該細胞プロセスは、該追加の異種核酸から、または該追加の異種核酸のＲＮＡ発現産物から、発現可能なオペロンの形成を導くこともできる。

さらに、該追加の異種核酸から形成された目的の該ＤＮＡ、該ＲＮＡまたは該タンパク質は、該植物の他の細胞へ伝搬することが可能であることもできる（例えば、ＤＮＡまたはＲＮＡウイルスベクター）。こうした細胞プロセスの重要な例は、該追加の異種核酸から、または該追加の異種核酸のＲＮＡ発現産物からの発現可能アンプリコンの形成である。該アンプリコンは、その活性化または形成が起こる細胞内で増幅することが可能である（増幅ベクター）。該アンプリコンは、目的の該細胞プロセスで発現されるべき目的の遺伝子を含有する、発現可能アンプリコンであることができる。さらに、該アンプリコンは、本発明の植物における細胞間移行または浸透移行が可能である。アンプリコンは、植物ＤＮＡまたはＲＮＡウイルスに基づくことができる。トバモウイルスのような植物ＲＮＡウイルスが好ましい。伝搬することが可能な目的の該タンパク質の増幅特性（下記参照）および該アンプリコンは、相乗的に挙動することができ、従って、該植物の重要な部分に伝搬する、非常に強い目的の細胞プロセスを可能にしている（例えば、該アンプリコンからの目的のタンパク質の非常に強い発現を導いている）。トバモウイルスに基づいたアンプリコンの工学は当該分野で既知である（例えば、Ｄａｗｓｏｎら、１９８９、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ、１７２、２８５−２９３；Ｙｕｓｉｂｏｖら、１９９９、Ｃｕｒｒ．Ｔｏｐ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．２４０、８１−９４を参照されたい；総説としては「植物ウイルスを用いた遺伝子操作」、１９９２、ＷｉｌｓｏｎおよびＤａｖｉｅｓ編、ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．を参照されたい）。

該所定の機能を有している該タンパク質は、以下のように、該追加の異種核酸からの、目的のＤＮＡ、ＲＮＡまたはタンパク質の形成のスイッチを入れることができる。該追加の異種核酸の配列部分は、該タンパク質の作用により転写プロモーターへ機能可能であるように連結することができ、例えば、目的の該タンパク質をコードしている配列またはＲＮＡアンプリコンとプロモーターを機能可能なように連結することにより、例えば、該追加の異種核酸から、目的のタンパク質の発現、またはＲＮＡウイルスアンプリコンの転写のスイッチを入れることを可能にする。実施するためにこの態様を減少させるいくつかの方法が存在する。該追加の異種核酸において、１つの選択肢は、下記の配列間の機能的連結を排除する配列遮断により、ＲＮＡアンプリコンをコードしている配列（または目的のタンパク質をコードしている配列）およびプロモーターを分離することである。該配列遮断は、該遮断が該所定の機能を有している該タンパク質のレコンビナーゼ機能により取り除くことが可能なように、組換え部位に隣接することができ、それによりレコンビナーゼは該組換え部位を認識することができる。それにより、ＲＮＡアンプリコンをコードしている配列の転写のための機能的連結を確立することができ、発現のスイッチを入れることができる。別の選択肢は、フリップ（ｆｌｉｐ）された配向での、および組換え部位に隣接した転写（例えば、プロモーターまたはプロモーター部分）に必要な配列部分を有することである。適した所定のレコンビナーゼ機能を有している該タンパク質の発生後、該レコンビナーゼは該配列部分をフリップさせて正しい配向へ戻すことができ、それにより機能的連結を確立することができる。

本発明の主たる態様において、目的の該細胞プロセスは、該追加の異種核酸からの目的のタンパク質の形成を含んでおり、それにより、目的の該タンパク質は植物内に伝搬することが可能である、即ち、その形成された細胞を離れそして該植物の他の細胞へ入ることが可能である（「伝搬性タンパク質」；もし伝搬性タンパク質がスイッチング機能を発揮することができれば、用語「タンパク質スイッチ」が伝搬性タンパク質にも適用される）。他の細胞において、該タンパク質（タンパク質スイッチ）は、特に追加の異種核酸を制御することにより、目的の細胞プロセスのスイッチを入れることができる。該細胞を離れることおよび他の細胞に入ることは、好ましくは、該植物中における、またはその部分における、細胞間移行または浸透移行を含む。該タンパク質（タンパク質スイッチ）は、好ましくは、該タンパク質スイッチが該細胞を離れることおよび他の細胞に入ることを可能にするタンパク質部分を含有する。該タンパク質部分は、ウイルス移動タンパク質またはウイルスコートタンパク質のドメインであることができる。さらに、該タンパク質部分は、細胞間移行または浸透移行が可能な、植物または動物転写因子、または植物または動物転写因子のドメインであることができる。さらに、該タンパク質部分は、植物または動物ペプチド細胞内メッセンジャー、または植物または動物ペプチド細胞内メッセンジャーのドメインであることができる。さらに、該タンパク質部分は、細胞間移行または浸透移行を可能にすることができる人工ペプチドであることができる。しかしながら、好ましくは、該タンパク質部分は、ウイルス移動タンパク質またはウイルスコートタンパク質またはウイルス移動タンパク質またはウイルスコートタンパク質のドメインであるかまたはそれらを含む。

伝搬可能な該タンパク質スイッチが、該異種核酸または該追加の異種核酸を含有する他の細胞へ入った場合、（追加の）異種核酸からの該タンパク質の発現のスイッチを入れる（誘導する）ことが可能であるのが好ましい（図８参照）。このタンパク質（タンパク質スイッチ）を使用することにより、本方法の方法は、該第２のポリペプチドにより外部から提供されたスイッチングシグナルを該植物中で増幅および伝搬することを可能にする。特に、もし該第２のポリペプチドが到達した細胞の数が少なければ、スイッチングシグナルは、該植物中のさらなる細胞へ効果的に運ばれる。該タンパク質スイッチが、該異種核酸からのそれら自身の発現を制御することを可能にするには、多くの方法が存在する。これらの方法は、前記工程（ｂ）の該ポリペプチドで用いることができる方法に対応している。

それ自身の発現を制御する能力は別にして、タンパク質スイッチ（該所定の機能を有している該タンパク質または該追加の異種核酸から発現された該タンパク質）は、好ましくは目的の細胞プロセスのスイッチを入れる能力を有している。細胞プロセスのスイッチを入れることが好ましいが、スイッチが入れられた細胞プロセスの最終結果はまた、植物の細胞プロセスを抑制またはスイッチを切ることでもあることができることは、当業者には明らかである。目的の該細胞プロセスのスイッチを入れることが可能であるために、該タンパク質スイッチは、該細胞プロセスを制御することが可能であるセグメントを有することができる。該セグメントは目的の該細胞プロセスに必要な核酸（特に、追加の異種核酸）を制御する、結合活性または酵素活性を有することができる。本発明の方法において、該タンパク質スイッチは、追加の異種核酸からのそれ自身の発現を制御することと同様に、該細胞プロセスのスイッチを入れることを達成することができる。この目的のため、該タンパク質スイッチは、該細胞プロセスを制御するためのセグメント、そして該タンパク質の該発現を起こすためのセグメントを有することができ、そのため、該２つのセグメントの制御機構は異なっていることができる。好ましくは、２つの制御機構は類似しているか同一であり、該制御タンパク質の１つのセグメントが、該細胞プロセスのスイッチを入れるため、および該タンパク質の発現を制御するために十分であることができる。従って、簡素化のため、該タンパク質スイッチは、最も好ましくは、細胞を離れそして該植物の他の細胞に入る能力を該タンパク質に賦与する、該１つのセグメントおよび部分を含有している。

しかしながら、本明細書に記載したようにスイッチが入れられた目的の細胞プロセスは、全植物に影響しなくてもよい。代わりに、目的の該細胞プロセスは、種子または葉のような該植物の一部へ制限されていてもよい。しかしながら、好ましくは、目的の細胞プロセスは該植物の実質的部分に影響する。該細胞プロセスのスイッチが入れられる植物の部分は、該第２のポリペプチドが応用される場所に、とりわけ依存している。一般に、目的の該細胞プロセスは、該第２のポリペプチドが応用される場所の近辺で最も強く、そして該場所からの距離が増加するにつれて減少することができる。該減少は、一般に異方性であり、該第２のポリペプチドが応用された該植物の組織の構造に依存することができる。例えば、もし目的の細胞プロセスのスイッチを入れるべき（例えば、目的の遺伝子の発現のスイッチが入れられるべき）であり、そして該第２のポリペプチドが植物の葉の分画に応用されるなら、目的の該細胞プロセスは典型的には、該葉の該分画内で、および該葉の該分画の近辺で生じる。好ましくは、目的の該細胞プロセスは該葉の主要な部分で起こる。より好ましくは、目的の該細胞プロセスはまた、新芽および他の葉でも起こる。より好ましくは、目的の該細胞プロセスは、該植物の主要な部分で起こる。目的の該細胞プロセス（例えば、目的の遺伝子の発現）の程度は、例えば、細胞型または組織型により、該植物内で変化することができる。明らかに、該第２のポリペプチドの応用は、植物の表面上の単一地点には通常限定されない。好ましくは、該第２のポリペプチドは該植物のいくつかの部分に応用される（さらに以下を参照されたい）。

本発明に従った細胞プロセスは、植物の細胞中における多工程生合成経路のような目的の全生化学的カスケードを含むかまたは起こすことができる。目的の細胞プロセスまたは生化学的カスケードは、該第２のポリペプチドへ暴露されるより前には、植物中で機能的ではない。本発明の方法は、これまで達成できなかった技術的精度および環境的安全性で、目的の細胞プロセスまたは生化学的カスケードに対する制御を提供することができる。その結果、一般にバイオテクノロジー、特に植物バイオテクノロジーにおける新規出願は、植物における基礎導入遺伝子発現、特に毒性物質または生分解性ポリマーを産生する場合のように、慣用的な技術により解決できなかった問題を解決するために利用可能である。さらに、本発明に従った正確な制御は、トランスジェニック植物が所望の段階まで生長することを可能にし、そこでは例えば、植物の生長を遅延させる基礎発現活性で植物に負担をかけることなく目的の細胞プロセスを実施するために、植物は最適である。細胞プロセスを効率的に実施するための植物の準備が整ったら、目的のプロセスのスイッチを入れることができ、そして高い効率で実施することができる。従って、本発明の方法は、多細胞生物体、特にトランスジェニック植物の生長時期および産生時期を安全に切り離すことを可能にする。さらに、目的の多細胞プロセスまたは生化学的カスケードのための多成分システムを設計することが可能であり、それにより、１以上の所望のプロセスまたはカスケードを、選択的にスイッチを入れることが可能である。

発明の詳細な説明
本発明の基礎は、好ましくは細菌仲介された、タンパク質スイッチ断片をコードしている核酸配列の搬送を伴わない、該タンパク質スイッチ断片の植物細胞内への搬送の使用である。本発明の一般的原理は図１に示されている。

本明細書において、前に記載したようなスイッチング機能を有しているタンパク質は、タンパク質スイッチと称される。従って、例えば、該第１および該第２の断片により共同して発生される、該所定の機能を有している該タンパク質、または該追加の異種核酸から発現される、目的の該タンパク質のような、本明細書に記載した多様なタンパク質がタンパク質スイッチと称される。これらのタンパク質スイッチのスイッチング機能は異なっていてもよい（例えば、酵素活性は異なっていてもよい）。好ましくは、目的のプロセスを最も効率的に制御することが可能であるので、スイッチング機能は同一のものであることができる（例えば、すべてのタンパク質スイッチは特異的レコンビナーゼ活性を有することができる）。特に、タンパク質スイッチのスイッチング機能は共通に、即ち、連続的よりもむしろ平行して作用することができる。

「スイッチ」機能のためのタンパク質の選択
本発明の該所定の機能または該タンパク質またはタンパク質スイッチにより不可逆的に引き金を引くことができる、数え切れない数の目的の細胞プロセスが存在する。タンパク質スイッチは、例えば、多くの異なった方法で目的の導入遺伝子の発現を制御できる。例えば、それはＤＮＡ組換えまたは転写、ＲＮＡプロセッシングまたは翻訳、タンパク質翻訳後修飾などの引き金を引くことができる。加えて、それは植物細胞内への搬送すると同時に導入遺伝子により活性化でき、そしてその後スイッチとして機能することが可能である。本発明において、活性タンパク質スイッチは、アグロバクテリウム−搬送タンパク質スイッチ断片（該第２の断片）および植物細胞によりコードされている該タンパク質スイッチの別の断片（該第１の断片）間の親和性相互作用により形成することができる。該相互作用は、該断片間のペプチド結合形成により（図２Ａおよび３Ｂ）またはなしで（図２Ｂおよび３Ｂ）、タンパク質スイッチ活性を回復することが可能である。明らかに、タンパク質スイッチの選択は、該植物中で制御されるべき細胞プロセスの設計／選択に依存している。該細胞プロセスは、該タンパク質スイッチが存在する細胞における、または該タンパク質スイッチにより侵入された細胞における、核酸再編成または修飾により制御、特にスイッチを入れることが可能である。こうした場合において、タンパク質スイッチは、部位特異的エンドヌクレアーゼ、レコンビナーゼ、メチラーゼ、インテグラーゼ、トランスポザーゼ、ポリメラーゼなどのようなＤＮＡまたはＲＮＡ修飾酵素を含むことができる。

本発明における他の可能な所定の機能には、ＤＮＡ制限および／またはＤＮＡ複製のごとき反応の引き金を引くことが含まれる。制限により引き金を引くことができる生化学的カスケードの例は２成分システムであり、ここにおいて、複製の起点を含み、そして核ゲノム内へ組み込まれているＤＮＡ配列が、ＤＮＡ切断頻度が小さい制限酵素により特異的に切り出されそして常染色体複製プラスミド内へ転換されて、タンパク質スイッチとして働いており、従ってカスケードの引き金を引いている。

本発明に従った細胞プロセスのための、有効な引き金を引く装置として使用することができるＲＮＡ分子に影響する、多くの反応（所定の機能）が存在する。これらには、なかでも、ＲＮＡ複製、逆転写、編集、サイレンシングまたは翻訳のごとき反応が含まれる。例えば、部位特異的レコンビナーゼ、インテグラーゼまたはトランスポザーゼがどのようにして、細胞、特に植物細胞において、ＤＮＡ切除、反転または挿入により目的のプロセスの引き金を引くことができるかを詳細に記載している豊富な従来の技術が存在する（Ｚｕｏ、Ｍｏｌｌｅｒ＆Ｃｈｕａ、２００１、Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．１９、１５７−１６１；Ｈｏｆｆ、Ｓｃｈｎｏｒｒ＆Ｍｕｎｄｙ、２００１、Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．４５、４１−４９；ＵＳ５２２５３４１；ＷＯ９９１１８０７；ＷＯ９９２５８５５；ＵＳ５９２５８０８；ＵＳ６１１０７３６；ＷＯ０１４０４９２；ＷＯ０１３６５９５）。バクテリオファージおよび酵母からの部位特異的レコンビナーゼ／インテグラーゼは、インビトロおよび植物および動物においてＤＮＡを操作するために広く使用されている。本発明での使用のために好ましいレコンビナーゼ−組換え部位は以下のようである：Ｃｒｅレコンビナーゼ−ＬｏｘＰ組換え部位、ＦＬＰレコンビナーゼ−ＦＲＴ組換え部位、Ｒレコンビナーゼ−ＲＳ組換え部位、ファージＣ３１インテグラーゼ認識ａｔｔＰ／ａｔｔＢ部位など。トランスポゾンは、植物における遺伝子機能の発見に広く使用されている。本発明での使用のために好ましいトランスポゾンシステムには、Ａｃ／Ｄｓ、Ｅｎ／Ｓｐｍ、「マリナー」ファミリーに属しているトランスポゾンなどが含まれる。

異種転写因子およびＲＮＡポリメラーゼもまた、本発明に従ったタンパク質スイッチに使用することができる。例えば、Ｔ７プロモーターの制御下の導入遺伝子を運んでいる植物の細胞内へのＴ７ポリメラーゼの搬送は、こうした導入遺伝子の発現を誘導することができる。

バクテリオファージプロモーター（例えば、Ｔ３、Ｔ７、ＳＰ６、Ｋ１１）の制御下にある目的の植物導入遺伝子の、植物の細胞中で組み立てられた対応するＤＮＡ／ＲＮＡポリメラーゼによる発現は、本発明で企図されているタンパク質スイッチの開発のための別の有効なアプローチであることができる。別の有用なアプローチはその活性化に異種または操作された転写因子を必要とする、異種またはキメラまたは他の人工プロモーターの使用であることができる。異種転写因子はまた、該転写因子−認識可能プロモーターの制御下にある目的の導入遺伝子の発現を誘導するために使用することも可能である。こうした転写因子の例には、限定されるわけではないが、酵母ＭＴ（メタロチオネイン）プロモーター中の酵母金属応答性ＡＣＥ１転写因子結合特異的配列（Ｍｅｔｔら、１９９３、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．９０、４５６７−４５７１）、融合した６−亜鉛フィンガータンパク質２Ｃ７およびヘルペス単純ウイルスＶＰ６転写因子活性化ドメインを有している転写因子のような、配列特異的ＤＮＡ結合ドメインおよび活性化ドメインを有している、異なったキメラ転写因子（Ｏｒｄｉｚ、Ｂａｒｂａｓ＆Ｂｅａｃｈｙ、２００２、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、９９、１３２９０−１３２９５）、完全長４３４リプレッサーおよびＶＰ１６転写活性化因子のＣ末端８０アミノ酸を有している転写因子（Ｗｉｌｄｅら、１９９４、Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌ．Ｂｌｏｌ．２４、３８１−３８８）、ステロイド誘導性システムに使用される転写因子（Ａｏｙａｍａ＆Ｃｈｕａ、１９９７、Ｐｌａｎｔ Ｊ．１１、６０５−６１２；ＭｃＮｅｌｌｉｓら、１９９８、Ｐｌａｎｔ Ｊ．１４、２４７−２５７；ＵＳ０６０６３９８５）またはテトラサイクリン誘導性システムに使用される転写因子（Ｗｅｉｎｍａｎｎら、１９９４、Ｐｌａｎｔ Ｊ．５、５５９−５６９）であることが可能である。いくつかの場合、導入遺伝子発現のために存在する誘導性システムを使用することができる。もしくは、転写因子が活性状態へ駆動されるために、活性化リガンド誘導剤が必要とされないであろうように、異種転写因子を修飾することができる。キメラ転写因子は、高度に配列特異的なＤＮＡ結合因子および高度に有効な活性化ドメインを併用することを可能にし、従って、植物細胞内へのこうした因子の搬送後に最大の所望の効果を可能にしているので、本発明での使用のためにはこれらは都合がよいであろう。

本発明で企図された別のタンパク質スイッチは、異種核酸の１以上の発現産物の翻訳後修飾を実行することができ、それは発現産物の活性化を導くことができる。ポリペプチド折り畳み、オリゴマー形成、標的化シグナルの除去、プロ酵素の酵素への変換、酵素活性の遮断などのごとき工程を制御することにより機能する、こうしたタンパク質スイッチの多くの可能な実行が存在する。例えば、もし遺伝子操作された宿主がプロ酵素を特異的に切断、従ってそれを活性な酵素へ変換するならば、もし、標的化モチーフを切断または修飾する宿主の能力のため、生成物が特定の細胞区画を標的化するならば、またはもし、特異的結合配列の除去のため、生成物が特異的に動員されるとすれば、植物の細胞内への部位特異的プロテアーゼの搬送は、目的の細胞プロセスの引き金を引くことができる。翻訳融合タンパク質の切断は、ウイルス部位特異的プロテアーゼにより認識されるペプチド配列を経て、または触媒ペプチドを経て達成することが可能である（Ｄｏｌｊａら、１９９２、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、８９、１０２０８−１０２１２；Ｇｏｐｈａｔｈら、２０００、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ、２６７、１５９−１７３；ＵＳ５１６２６０１；ＵＳ５７６６８８５；ＵＳ５４９１０７６）。本発明に応用可能な特異的プロテアーゼの他の例は、哺乳動物エンテロキナーゼ、例えば、配列ＤＤＤＫ−Ｉを認識し、そしてＬｙｓ−Ｉｌｅ結合を特異的に切断するヒトエンテロキナーゼ軽鎖（Ｋｉｔａｍｏｔｏら、１９９４、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．９１、７５８８−７５９２）；Ｇｌｙ−Ｇｌｙジペプチド間のタンパク質分解を触媒するが、切断部位の認識のために４アミノ酸を必要とする、Ｈｃ−Ｐｒｏのようなウイルスプロテアーゼ（Ｃａｒｒｉｎｇｔｏｎ ＪＣ＆Ｈｅｒｎｄｏｎ ＫＬ、１９９２、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ、１８７、３０８−３１５）；セムリキ森林ウイルスの部位特異的プロテアーゼ（Ｖａｓｉｊｅｖａら、２００１、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．２７６、３０７８６−３０７９３）；およびポリユビキチンプロセッシングに関与するプロテアーゼ、ユビキチン−カルボキシ末端ヒドロラーゼ（ＯＳａｖａら、２００１、Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ Ｒｅｓ Ｃｏｍｍｕｎ．２８３、６２７−６３３）である。

該第２のポリペプチド（タンパク質スイッチ断片）の植物細胞内への病原体仲介搬送
植物病原体は、植物細胞内へエフェクタータンパク質を搬送するための非常に有効なシステムを有している。多くの植物および動物の病原性細菌は、植物細胞内へ直接エフェクタータンパク質を搬送するための特殊化した分泌システムを使用する。こうした分泌システムに関する多くの記述が文献に存在する、例えば、グラム陰性細菌のＩＩＩ型分泌システム（Ｂｉｎｅｔら、１９９７、Ｇｅｎｅ、１９２、７−１１；Ｔｈａｎａｓｓｉ＆Ｈｕｌｔｇｒｅｎ、２０００、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１２、４２０−４３０；Ｂｕｔｔｎｅｒ＆Ｂｏｎａｓ、２００２、Ｔｒｅｎｄｓ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．１０、１８６−１９２；Ｂｕｔｔｎｅｒ＆Ｂｏｎａｓ、２００３、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｐｌａｎｔ Ｂｉｏｌ．６、３１２−３１９）、プロテオバクテリアのタイプＩＩ分泌システム（Ｓａｎｄｋｗｉｓｔ、２００１、Ｍｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．４０、２７１−２８３）。細菌からのタンパク質分泌の複数の経路がＴｈａｎａｓｓｉおよびＨｕｌｔｇｒｅｎの総説に記載されている（２０００、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１２、４２０−４３０）。異なった植物病原性細菌のＩＩＩ型分泌システムを、植物細胞内へ目的の異種タンパク質の搬送のために使用することが可能である。例えば、Ｈｒｐ遺伝子クラスター（ＩＩＩ型タンパク質分泌）がエルウィニア クリサンテミからクローン化されており（Ｈａｍら、１９９８、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、９５、１０２０６−１０２１１）；本発明に使用するために十分なシュードモナス シリンゲ分泌システムが詳細に説明されている（総説として、Ｊｉｎら、２００３、Ｍｉｃｒｏｂｅｓ Ｉｎｆｅｃｔ．５、３０１−３１０、を参照されたい）；ザントモナス カンペストリスの分泌システムは徹底的に研究されている（Ｍａｒｏｉｓら、２００２、Ｍｏｌ．Ｐｌａｎｔ．Ｍｉｃｒｏｂｅ Ｉｎｔｅｒａｃｔ．１５、６３７−６４６；Ｓｚｕｒｅｋら、２００２、Ｍｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．４６、１３−２３）。

好ましくは、宿主植物にほとんど損傷を与えない植物病原体を、本発明のために使用する。より好ましくは、宿主植物にどんな病気も起こさずに、目的の異種タンパク質を移送することができるように植物病原体を操作する。いくつかの非病原性細菌は、植物細胞内への目的の異種タンパク質の搬送に必要である、ＩＩＩ型分泌システムの一部のみを所有するように操作することが可能である。アグロバクテリウム ツメファシエンスおよびアグロバクテリウム リゾゲネスのようないくつかのグラム陰性細菌がよく研究されており、そして植物細胞内へ組換えＤＮＡを導入するために広く使用されている（Ｚａｍｂｒｙｓｋｉ、１９８８、Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｇｅｎｅｔ．２２、１−３０；Ｈｉｅｉ、Ｋｏｍａｒｉ＆Ｋｕｂｏ、１９９７、Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．３５、２０５−１８；Ｎｅｗｅｌｌ、２０００、Ｍｏｌ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．１６、５３−６５）。これらはＴ−ＤＮＡを多くの植物種の核内へ搬送することが可能であり、そしてこうした輸送の機構は合理的によく研究されている（Ｈｏｏｙｋａａｓ＆Ｂｅｉｊｅｒｓｂｅｒｇｅｎ、１９９４、Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌ．３２、１５７；Ｚｕｐａｎ＆Ｚａｍｂｒｙｓｋｉ、１９９５、Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌ．１０７、１０４１−１０４７；Ｈａｎｓｅｎ＆Ｃｈｉｌｔｏｎ、１９９６、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、９３、１４７８−１４８３）。アグロバクテリアはおそらく、本発明での使用のために最も研究されている。Ｈｏｏｙｋａａｓグループの論文（２０００、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２９０、９７９−９８２）は異種タンパク質Ｃｒｅレコンビナーゼの宿主細胞内へのアグロバクテリウム仲介輸送の可能性を示している。輸送は、Ｃｒｅと、アグロバクテリウムとの接触の間に、植物細胞内へのタンパク質移送に関与するビルレンス（Ｖｉｒｕｌｅｎｃｅ）タンパク質またはその一部との翻訳融合物を使用することにより達成された。Ｃｒｅレコンビナーゼ搬送は、該レコンビナーゼをコードするＤＮＡの輸送とは共役していなかったが、操作された標的細胞における組換え事象の引き金を引くには十分であった。植物細胞内へのポリペプチド（該第２のポリペプチド）の細菌仲介搬送のプロセスは、該タンパク質の遺伝子を運んでいる、操作された細菌細胞の利用能を必要とする（ＷＯ０１８９２８３）。こうしたプロセスは、影響された植物細胞中での選択可能な変化の引き金を引くには十分に有効であるが、該発明の応用可能性を著しく制限するいくつかの重大な欠点を有している。第１に、該ポリペプチドの全コード配列が植物病原性細菌中に存在しているので、導入遺伝子分離の制御が提供されない。第２に、タンパク質スイッチにより引き金が引かれる変化が、該ポリペプチドの主レセプターである細胞に限定されているので、実用的応用を有するのに十分なほど有効ではない。

タンパク質スイッチをコードしている導入遺伝子分離の制御
それ故、標的植物の各々のまたはほとんどの細胞へ該第２のポリペプチドを搬送する非常に有効な方法かまたは、タンパク質スイッチにより引き金が引かれる事象の有効な伝搬、または両方のアプローチの組み合わせが必要とされる。また、タンパク質スイッチシステムを安全にすること、該タンパク質タンパク質スイッチをコードする異種核酸の厳密な制御も望まれる。このことは、直接ポリペプチド応用（例えば、植物を該第２のポリペプチドを含んでいる溶液で処理すること）を使用することにより、または該第２のポリペプチドの細菌搬送を使用すること、それにより該タンパク質スイッチの一部のみが細菌により供給されるが、別の部分（該第１のポリペプチド）は標的化植物細胞によりコードされている、により達成することが可能である。

これらの問題に取り組むため、該タンパク質スイッチ、特に該所定の機能を有しているタンパク質の分離を制御するための、「開裂（ｓｐｌｉｔ）遺伝子」（または「開裂タンパク質」）アプローチを使用することが本明細書において提供される。この態様において、活性（機能性）タンパク質スイッチは、該第１および該第２のポリペプチドの、各々該第１および該第２の断片から、インテイン仲介タンパク質トランススプライシング（図２Ａおよび図３Ａ）、かまたは親和性相互作用（図２Ｂおよび図３Ｂ）により組み立てる。このことは、スイッチング機能を有するタンパク質の植物病原体仲介搬送に、特に重要な問題である。

本発明の実施例１において、図５に示された構築物を使用した、植物細胞における植物内インテイン仲介ＧＵＳトランススプライシングの有効性が示されている。トランススプライシングはＧＵＳ活性を非常に有効に回復し、それは対照実験からの活性に匹敵する。本発明の実施例２において、ｖｉｒＦタンパク質のＣ末端との翻訳融合物として、植物細胞内へＧＵＳタンパク質の一部を搬送することによる本アプローチの有効性が示されている（図６）。アグロバクテリウム分泌システムの助けによる、こうした融合物の搬送は、もしＧＵＳタンパク質の別の断片が、安定的に組み込まれたＴ−ＤＮＡにより植物細胞内でコードされているとしたら、またはアグロバクテリウムの別の株により同時搬送されていても、インテイン仲介トランススプライシングにより機能性ＧＵＳタンパク質の形成を導いている。両方の場合、タンパク質スイッチは連続的ＤＮＡ配列としては存在せず、そしてその使用はより良好に制御され、そして生物学的に安全である。

その活性の回復を伴うインテイン仲介トランススプライシングは、従来の技術で知られており、多くの刊行物に詳細に記載されている。タンパク質親和性相互作用および／またはトランススプライシングは、操作されたインテインを使用することにより達成することが可能である（図２Ａ）。インテインは、最初はタンパク質前駆体内の、フレーム内に埋め込まれたタンパク質配列として同定され、そしてタンパク質成熟過程の間に除去される（Ｐｅｒｌｅｒら、１９９４、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２２、１１２５−１１２７；Ｐｅｒｌｅｒ，Ｆ．Ｂ．１９９８、Ｃｅｌｌ、９２、１−４）。自己スプライシング反応に必要な全ての情報および触媒基は、インテインおよび２つの隣接するアミノ酸に存在する。タンパク質スプライシングの化学機構は、Ｐｅｒｌｅｒおよび共同研究者（１９９７、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｃｈｅｍ．Ｂｉｏｌ．１、２９２−２９９）により、およびＳｈａｏ＆Ｋｅｎｔ（１９９７、Ｃｈｅｍ．Ｂｌｏｌ．４、１８７−１９４）により詳細に記載されている。インテインは通常、ＮおよびＣ末端スプライシング領域および中心ホーミング（ｈｏｍｉｎｇ）エンドヌクレアーゼ領域または小さなリンカー領域を有している。これまで１００を超えるインテインが知られており、それは真核生物、古細菌および真正細菌を含む、異なった生物体の核および細胞小器官ゲノム中に分布している（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｅｂ．ｃｏｍ／ｎｅｂ／ｉｎｔｅｉｎｓ．ｈｔｍｌ）。インテインはトランススプライシングが可能であることが示された。中心ホーミングエンドヌクレアーゼ領域の除去は、インテイントランススプライシングには何の影響も与えなかった。このことは、インテインのＮ末端およびＣ末端断片が、別々の断片として同時発現され、そしてエクステイン（インテインの助けをかりて一緒に連結されるタンパク質断片）と融合された場合、インビボでトランススプライシングを実行することが可能な、トランススプライシングシステムを設計することを可能にした（Ｓｈｉｎｇｌｅｄｅｃｋｅｒら、１９９８、Ｇｅｎｅ、２０７、１８７−１９５）。また、結核菌ＲｅｃＡインテインのＮおよびＣ末端セグメントを用い、タンパク質トランススプライシングをインビトロで起こすのが可能であることも示されている（Ｍｉｌｌｓら、１９９８、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、９５、３５４３−３５４８）。この現象はまた、シネコシスチス種株ＰＣＣ６８０３のＤｎａＥタンパク質でも同定された（Ｗｕら、１９９８、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、９６、９２２６−９２３１）。逆のＤＮＡ鎖上、７００Ｋｂｐ以上離れて位置している２つの異なった遺伝子がこのタンパク質をコードしている。これらの遺伝子によりコードされた２つのインテイン配列が開裂ミニインテインを再構築し、そして大腸菌細胞中で試験した場合、タンパク質トランススプライシング活性を媒介できることも示された。同一起源のインテイン（シネコシスチス種株ＰＣＣ６８０３のＤｎａＥインテイン）が、大腸菌中、２つの非連結断片（Ｓｕｎら、２００１、Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．６７、１０２５−２９）および５−エノールピルビルシキメート−３−ホスフェートシンターゼ（ＥＰＳＰＳ）（Ｃｈｅｎら、２００１、Ｇｅｎｅ、２６３、３９−４８）から機能性除草剤耐性アセトラクテートシンターゼを産生するために使用された。

タンパク質断片のトランススプライシング（エクステイン共有結合形成を含む）は、開裂タンパク質の本来の機能を回復するのに必ずしも必要とされない。多くの場合、ペプチド結合形成を伴わないタンパク質断片間の親和性相互作用は、タンパク質機能を回復するために十分である（図２Ｂ）。このアプローチは、２以上の機能性ドメインを有しているタンパク質で最も成功する（インテイン仲介トランススプライシングの場合のように）。この場合、ドメインは２つの転写ベクター間のコード配列を開裂させることによりお互いに分離することが可能であり、タンパク質仲介親和性相互作用を通して一緒にする（図３Ｂ）。タンパク質ドメインは、相互作用するインテインを使用する必要なく相互作用することが可能である。タンパク質分解感受性リンカー領域により連結された、２つの構造ドメインから成っているＩＳ１０トランスポザーゼの活性を再構築する例が存在する（Ｋｗｏｎ、Ｃｈａｌｍｅｒｓ＆Ｋｌｅｃｋｎｅｒ、１９９５、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、９２、８２３４−８２３８）。ドメインの各々は別々には、トランスポザーゼ機能を提供することが不可能である。しかしながら、一緒に加えられた場合、それらはたとえリンカー領域により連結されていなくても転位を提供することが可能である。ペプチド結合形成なしで、単離された断片から再構築された機能性タンパク質の多くの他の例が存在する。機能性インシュリンレセプター結合部位の効率的な組み立てが、非機能性断片の単純な混合により達成された（Ｋｒｉｓｔｅｎｓｅｎら、２００２、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７７、１８３４０−１８３４５）。２つの不活性ペプチド断片の単純な混合による活性タンパク質の再構築は、ロイシンデヒドロゲナーゼ（Ｏｉｋａｗａら、２００１、Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．２８０、１１７７−１１８２）、Ｃａ^２＋結合タンパク質カルビンジンＤ２８ｋ（Ｂｅｒｇｇａｒｄら、２０００、Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｓｃｉ．９、２０９４−２１０８；Ｂｅｒｇｇａｒｄら、２００１、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、４０、１２５７−１２６４）、シロイヌナズナ発育制御因子ＣＯＰ１（Ｓｔａｃｅｙら、２０００、Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌ．１２４、９７９−９９０）、ジオパミンＤレセプター（Ｓｃａｒｓｅｌｌｉら、２０００、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．３９７、２９１−２９６）、マイクロプラスミノーゲン（Ｄｅ Ｌｏｓ Ｓａｎｔｏｓ、Ｗａｎｇ＆Ｒｅｉｃｈ、１９９７、Ｃｉｂａ Ｆｏｕｎｄ．Ｓｙｍｐ．２１２、７６−８３）および他の多くで示された。

ロイシンジッパードメインは、目的のタンパク質断片へ融合すれば、タンパク質ヘテロ２量体を形成することが特に興味深い（Ｒｉｅｃｋｅｒ＆Ｈｕ、２０００、Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．３２８、２８２−２９６；Ｌｉｕら、２００１、Ｃｕｒｒ．Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｅｐｔ．Ｓｃｉ．２、１０７−１２１）。興味深い例は、小さな分子とのタンパク質−タンパク質相互作用の制御である。例えば、Ｃｒｅレコンビナーゼは、２つの不活性断片に開裂された場合、２つの不活性断片間のヘテロ２量体化を通して活性補完の引き金を引く、小分子ラパマイシンの存在下、そのレコンビナーゼ活性の１００％を回復することが可能であるように操作された（Ｊｕｌｌｉｅｎら、２００３、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．３１、ｅ１３１）。ラパマイシンおよびその非毒性類似体はまた、条件的タンパク質スプライシングのためにも使用することが可能であり、それにより、それらはトランススプライシング反応の引き金を引く（Ｍｏｏｔｚら、２００３、Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１２５、１０５６１−１０５６９）。ラパマイシンまたはラパマイシン類似体のごとき小分子の助けを借りた、タンパク質−タンパク質相互作用調節のための同様のアプローチはいくつかの論文に記載されている（Ａｍａｒａら、１９９７、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、９４、１０６１８−１０６２３；Ｐｏｌｌｏｃｋら、２０００、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、９７、１３２２１−１３２２６；Ｐｏｌｌｏｃｋら、２００２、Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．２０、７２９−７３３）。デキサメタゾンおよびメトトレキセートのごとき多くの他の化学２量体化剤を、不活性タンパク質断片から活性ホモまたはヘテロ２量体を組み立てるために使用することが可能である（総説として：Ｐｏｌｌｏｃｋ＆Ｃｌａｃｋｓｏｎ、２００２、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．１３、４５９−４６７、を参照されたい）。

親和性相互作用は、天然に存在する相互作用タンパク質ドメインを使用することにより、または２−ハイブリッド（Ｆｉｅｌｄｓ＆Ｓｏｎ、１９８９、Ｎａｔｕｒｅ、３４０、２４５−２４６；Ｃｈｉｅｎら、１９９１、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８８、９５７８−９５８２；Ｙｅａｓｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌ Ｈａｎｄｂｏｏｋ、Ｃｌｏｎｔｅｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，ｉｎｃ．２０００）またはファージディスプレイシステムの助けを借りてそうしたドメインを同定することにより、効率的に操作可能である。例えば、ファージディスプレイは、目的のタンパク質断片へ高い親和性を有する５〜１２−ｍｅｒオリゴペプチドを選択するために使用することができる。いくつかのこうしたシステムは現在、商業的に入手可能である。ファージディスプレイは、短い可変５〜１２−ｍｅｒオリゴペプチドがバクテリオファージのコートタンパク質内へ挿入されている選択技術である。この可変オリゴペプチドをコードする配列は、バクテリオファージのコートタンパク質の対応する遺伝子中に含有されている。通常、７−ｍｅｒファージディスプレイライブラリーは、少なくとも１０^９の独立した、可変オリゴペプチド中に異なった組み合わせの７−ｍｅｒアミノ酸を運んでいるクローンを有している。ファージディスプレイは、バクテリオファージおよび目的のタンパク質間の親和性複合体を作製するために使用されてきており、「パニング」と呼ばれるインビトロ選択過程により、既定の標的タンパク質に対するペプチドリガンドの迅速同定を可能にしている（Ｐａｒｍｌｅｙ、Ｓｍｉｔｈ、１９８８、Ｇｅｎｅ ７３、３０５−３１８；Ｃｏｒｔｅｓｅら、１９９５、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ、６、７３−８０）。パニング過程後の作製されたファージ−タンパク質複合体は解離させることが可能であり、そして標的タンパク質に親和性を有するファージを増殖させることが可能である。通常、高い親和性を有するバクテリオファージを選るには、３つのパニングサイクルを必要とする。３回のラウンド後、個々のクローンは、ゲノムＤＮＡ中の可変領域の配列決定により特徴付けできる。該システムは、短いオリゴペプチドを同定するため、そしてタンパク質断片を結び合わせるための親和性タグとしてそれらを使用するために有効に応用することが可能である。

別のアプローチには、ロイシン−リッチリピート（Ｋｏｂｅ＆Ｄｅｉｓｅｎｈｏｆｅｒ、１９９４、Ｔｒｅｎｄｓ Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｓｃｉ．１９、４１５−４２１；Ｋｏｂｅ＆Ｋａｊａｖａ、２００１、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏｌ．１１、７２５−７３２）、亜鉛ジッパー（Ｇｒｏｓｓｌｅｙ、Ｍｅｒｉｋａ＆Ｏｒｋｉｎ、１９９５、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．１５、２４４８−２４５６）、アンキリンリピート（Ｔｈｏｍｐｓｏｎ、Ｂｒｏｗｎ＆ＭｃＫｎｉｇｈｔ、１９９１、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２５３、７６２−７６８）、クロモ（ｃｈｒｏｍｏ）ドメイン（Ｐａｒｏ＆Ｈｏｇｎｅｓｓ、１９９１、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、８８、２６３−２６７；Ｓｉｎｇｈら、１９９１、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１９、７８９−７９３）、そしてタンパク質−タンパク質相互作用に関与する多くの他のもの、のような天然に存在する相互作用ドメインの使用が含まれる。しかしながら、タンパク質−タンパク質相互作用に関与する可能性は、輸送性融合物を含む、操作されたタンパク質断片のみではなく、内在性タンパク質もまた考慮しなければならない。

遺伝子発現のような、目的の細胞プロセスのスイッチを入れるためのタンパク質−タンパク質相互作用の使用は、なかでも以下のような利点を有している：第１に、本システムは、目的の機能が高度に特異的なタンパク質−タンパク質またはタンパク質−核酸相互作用の結果であるので、高度に特異的にすることが可能であり、それはゼロレベルの非誘導状態および非特異的漏出性の不在により特徴付けられる。このことは、本質的に特異性が低く、そして特定の程度の漏出性を常に示す、小分子に基づいたスイッチのごとき従来のシステムとは対照的である。第２に、タンパク質スイッチまたはその断片は、該タンパク質または該断片をコードしている核酸ベクターを伴わずに、植物の細胞内へ直接搬送することが可能であり、それ故、該タンパク質の正確な投与量を可能にする。このことは、細胞内への直接タンパク質スイッチ搬送を、細胞中の必要とされるプロセスの引き金を引くために小分子を使用することの利点に匹敵するものにする。第３に、本システムは、問題の生物体が機能性タンパク質の発現に必要な完全遺伝子情報を含有しないことを可能にするので、目的のタンパク質またはタンパク質スイッチの完全遺伝子情報（線状核酸かまたは該核酸の断片の形で）を含有する従来の技術のシステムよりも、本質的に環境に安全である。分子生物学のセントラルドグマに従うと、生物学システムはタンパク質を核酸に逆翻訳できない。それ故、生きている生物体による、機能性特性の発現に十分な遺伝子情報の「逆操作」は不可能である。第４に、本システムはシステムの許可されていない使用を禁じるために使用することが可能な、特異的ロック（ｌｏｃｋ）を提供する。該ポリペプチドまたは該タンパク質断片を発現している生物体から抽出された粗タンパク質の成分としてのタンパク質スイッチ（特に、該第２のポリペプチド）の使用は、該抽出物の活性成分を同定することを実際的に非常に困難にしている。

目的の細胞プロセスの引き金を引くための植物内でのタンパク質スイッチの伝搬
ここでは、外部的に応用された第２のポリペプチドが到達できる植物の細胞数が少ない問題を克服するためのアプローチを提供する：該第２のポリペプチドは、植物細胞において、細胞間移行または浸透移行が可能なタンパク質スイッチの形成を導くことができる。さらに、該第２のポリペプチドは、目的の遺伝子またはその一部を発現し、そして該植物において細胞間移行または浸透移行が可能である、ウイルスに基づいたベクター（アンプリコン）の形成を導くことができる。これらのアプローチにおいて、ウイルスベクターかまたはタンパク質スイッチまたは両方の移動は、該植物の主要な部分、そして遺伝子改変された植物全てにわたった、細胞プロセスおよび／または生化学的カスケードの伝搬を導くことが可能である。

本発明の実施例３において、タンパク質スイッチは、ウイルスベクターの前駆体ベクターをウイルスベクターへ変換するためのインテグラーゼｐｈＣ３１を含有する。インテグラーゼは、インテグラーゼの２つの断片のインテイン仲介トランススプライシングにより機能性タンパク質を形成する２つの不活性断片へ開裂させる。該断片の１つは、アグロバクテリウムのタンパク質転位システムの助けを借りて、ｖｉｒＥ２断片とのタンパク質融合物（ｐＩＣＨ１５０８５−ＩＮＴ、図１２）として植物細胞内へ搬送し、一方、別の断片（ｐＩＣＨ１５０９９、図１２）は植物細胞によりコードされている。ウイルスベクターは増幅、細胞間移行および浸透移行が可能である。ｐＩＣＨＧＦＰｉｎｖのａｔｔＰおよびａｔｔＢ部位（図７Ａ）およびｐＩＣＨ１０９２１（図１３）間のインテグラーゼ仲介組換えは、該組換え部位に隣接したＤＮＡ断片の反転、そして目的の遺伝子（ＧＦＰ）（図７Ｂ）の増幅および発現が可能なウイルスベクターの形成を導く。このことは、本実施例におけるアクチン２プロモーターのような、問題とする植物中で活性なプロモーターに関してセンス配向で、ベクター増幅および浸透移行性輸送に必要なウイルス成分（３’ＮＴＲ−３’非翻訳領域；ＣＰ−コートタンパク質）を置くことの結果として達成される。それ故、他のウイルスベクター成分（ＲｄＲｐおよびＣＰ）と一緒に、それはｃＤＮＡを形成し、それはアクチン２プロモーター駆動転写により、増幅、細胞間移行および浸透移行が可能であるＲＮＡウイルスベクターを形成する。随意に、該ベクターはさらに、ＣＰ（コートタンパク質）遺伝子を除去することにより修飾することが可能である。ＣＰ遺伝子を欠くこうしたベクターは、それでもなお細胞間移行が可能であろう。

植物における非ウイルス遺伝子の発現のための、植物ウイルスに基づいた発現システムの構築は、いくつかの論文（Ｄａｗｓｏｎら、１９８９、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ、１７２、２８５−２９３；Ｂｒｉｓｓｏｎら、１９８６、Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ、１１８、６５９；ＭａｃＦａｒｉａｎｅ＆Ｐｏｐｏｖｉｃｈ、２０００、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ、２６７、２９−３５；Ｇｏｐｉｎａｔｈら、２０００、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ、２６７、１５９−１７３；Ｖｏｉｎｎｅｔら、１９９９、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、９６、１４１４７−１４１５２）および総説（Ｐｏｒｔａ＆Ｌｏｍｏｎｏｓｓｏｆｆ、１９９６、Ｍｏｌ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ、５、２０９−２２１；Ｙｕｓｉｂｏｖら、１９９９、Ｃｕｒｒ．Ｔｏｐ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ.Ｉｍｍｕｎｏｌ．２４０、８１−９４）に記載されており、そして当業者には容易に実行することが可能である。ウイルスベクターに基づいた発現システムは、植物核導入遺伝子と比較して著しく高い導入遺伝子産物の収率を与える。例えば、導入遺伝子的にコードされたタンパク質のレベルは、ウイルスベクターから発現した場合、全細胞性植物タンパク質含量の５〜１０％に達することが可能である（Ｋｕｍａｇａｉら、２０００、Ｇｅｎｅ、２４５、１６９−１７４；Ｓｈｉｖｐｒａｓａｄら、１９９９、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ、２５５、３１２−３２３）。ＲＮＡウイルスは、ＤＮＡウイルスと比較してより高い発現レベルを与えるので、ＲＮＡウイルスが最も適している。植物における導入遺伝子材料の浸透移行性発現に適したウイルスベクターを記載している、いくつかの公開された特許がある（ＵＳ５３１６９３Ｔ；ＵＳ５５８９３６７；ＵＳ５８６６７８５）。一般に、これらのベクターは、ウイルスタンパク質との翻訳融合物として（ＵＳ５４９１０７６；ＵＳ５９７７４３８）、追加のサブゲノムプロモーターから（ＵＳ５４６６７８８；ＵＳ５６７０３５３；ＵＳ５８６６７８５）、または独立したタンパク質翻訳のためのＩＲＥＳ（内部リボソーム侵入部位）要素を使用する多シストロン性ウイルスＲＮＡから（ドイツ特許出願ＤＥ１００４９５８７）、外来遺伝子を発現することが可能である。第１のアプローチ−組換えタンパク質とウイルス構造タンパク質の翻訳融合（Ｈａｍａｍｏｔｏら、１９９３、Ｂｉｏ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、１１、９３０−９３２；Ｇｏｐｉｎａｔｈら、２０００、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ、２６７、１５９−１７３；ＪＰ６１６９７８９；ＵＳ５９７７４３８）は、組換えタンパク質産物のかなりの収率を与える。しかしながら、組換えタンパク質がウイルスタンパク質から容易には分離できないので、このアプローチの有用性は限定されている。このアプローチの代替法は、ウイルス部位特異的プロテアーゼにより認識されるペプチド配列を経た、または触媒ペプチドを経た翻訳融合物を用いている（Ｄｏｌｊａら、１９９２、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、８９、１０２０８−１０２１２；Ｇｏｐｉｎａｔｈら、２０００、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ、２６７、１５９−１７３；ＵＳ５１６２６０１；ＵＳ５７６６８８５；ＵＳ５４９１０７６）。異種サブゲノムプロモーターに組み込まれたウイルスベクターを利用する発現プロセスは、現在までで最も高いレベルのタンパク質産生を提供する（ＵＳ５３１６９３１）。ウイルスベクターおよび多くの他の最も重大な欠点は、増幅されるべきＤＮＡのサイズに関してそれらの限定された収容力である。通常、安定な構築物は１ｋｂを超えない挿入物に適応する。Ｇ．ｄｅｌｌａ Ｃｌｏｐｐａら（ＷＯ９９３６５１）が内在性遺伝子をサイレンシングする目的で、植物ｃＤＮＡライブラリーを発現するためのＴＭＶに基づいたウイルスベクターの使用を記載しているように、植物機能性ゲノム科学のいくつかの領域においては、このことはそうした重大な制限ではないことができる。ヘルパーウイルスの使用する、２成分増幅システムは、わずかに良好な収容力を与えることができる（ＵＳ５８８９１９１）。植物ゲノム内へ安定に組み込まれている発現カセットに基づいた他のシステムは、アンプリコンに基づいたウイルスベクターの発現を駆動する、強力な３５Ｓプロモーターを含有している。これらのシステムは通常、転写後遺伝子スプライシング（ＰＴＧＳ）を受けやすい（Ａｎｇｅｌｌ＆Ｂａｕｌｃｏｍｂｅ、１９９７、ＥＭＢＯ Ｊ．１６、３６７５−３６８４）。こうしたサイレンシングを克服するため、ＰＴＧＳサプレッサーの使用は必要である（ＷＯ０１３８５１２）。こうしたシステムの助けを借りて目的のタンパク質の大規模産生を達成するためには、サイレントされたアンプリコンを運んでいる植物と、ＰＴＧＳサプレッサーの起源を運んでいる植物の交雑を実行することが必要である（Ｍａｌｌｏｒｙら、２００２、Ｎａｕｒｅ Ｂｌｏｔｅｃｈｎｏｌ．２０、６２２−６２５）。明らかに、こうしたシステムは融通性および導入遺伝子発現の厳密な制御を有せず、そして植物生長および発育を損なわないタンパク質の産生に限定されている。

我々のアプローチは、上記ウイルスベクターシステムの制限、特に、発現されるべき遺伝子のサイズのための制限された収容力、そして発現の制御における融通性の欠如を克服することを可能にする。我々の発明において、ウイルスベクター前駆体（またはプロベクター）は好ましくは、トランスジェニック植物の各々の細胞に存在する。大きな遺伝子（１ｋｂ以上）の発現の場合には、タンパク質スイッチ移動がウイルスベクター移動より好まれる。ウイルスベクターは細胞で効率的に増幅することが可能であり、そしてウイルスベクター挿入物のサイズは主として細胞間移行または浸透移行の能力に影響する。それ故、多くの細胞へまたは宿主植物の全ての細胞へまでも、ウイルスベクターを活性化することができる移動可能なタンパク質スイッチを提供することは、上記の問題を解決するであろう。加えて、宿主植物の全てではなくともほとんどの細胞において、こうしたウイルスベクターの増幅を開始させることが可能である効率的なスイッチング機能を有するシステムを提供するため、細胞間移行／浸透移行が可能なタンパク質スイッチが使用されている。

この目的のため、タンパク質スイッチは、該タンパク質の細胞間移行および／または浸透移行を可能にするタンパク質部分を含むことができる。細胞間輸送（ｔｒａｆｆｉｃｋｉｎｇ）が可能なこうしたタンパク質部分の例は、当該技術分野で既知である。植物転写因子、防御関連タンパク質およびウイルスタンパク質が原形質連絡を通して輸送することが可能であることの証拠が存在する（総説として：Ｊａｃｋｓｏｎ＆Ｈａｋｅ、１９９７、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｇｅｎｅｔ．Ｄｅｖ．７、４９５−５００；Ｄｉｎｇ，Ｂ．１９９８、Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．３８、２７９−３１０；Ｊｏｒｇｅｎｓｅｎ ＲＡ．２０００、Ｓｃｉ ＳＴＫＥ、５８、ＰＥ２；Ｇｏｌｚ＆Ｈｕｄｓｏｎ、２００２、Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ、１４、Ｓ２７７−Ｓ２８８、を参照されたい）。ＧＦＰを有するキュウリモザイクウイルスの３ａ移動タンパク質の融合物は、原形質連絡を通して隣接する細胞へ輸送することが可能なことが示されている（Ｉｔａｙａら、２００２、Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ、１４、２０７１−２０８３）。こうした融合物はまた、師部を通したトランスジェニック台木から非トランスジェニック穂木内への移動も示した。タバコモザイクウイルス（ＴＭＶ）の移動タンパク質、Ｐ３０は、原形質連絡を通して輸送し、そして原形質連絡のサイズに影響することにより、こうした移動が明記されていない、多くの他の大きな巨大分子の移動を容易にしている（Ｃｉｔｏｖｓｋｙら、１９９９、Ｐｈｉｌ．Ｔｒａｎｓ、Ｒ Ｓｏｃ．Ｌｏｎｄｏｎ Ｂ Ｂｉｏｌ．Ｓｃｉ．３５４、６３７−６４３；Ｄｉｎｇ、Ｉｔａｙａ＆Ｗｏｏ、１９９９、Ｉｎｔ．Ｒｅｖ．Ｃｙｔｏｌ．１９０、２５１−３１６）。Ｐ３０：ＧＦＰ融合物は、生理学的条件とは独立した細胞間の移動を示し、一方、原形質連絡を通した非標的化ＧＦＰ拡散は、植物細胞の生理学的状態に大きく依存した（Ｃｒａｗｆｏｒｄ＆Ｚａｍｂｒｙｓｋｉ、２００１、Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌ．１２５、１８０２−１８１２）。ＧＦＰと転写因子結節（ｋｎｏｔｔｅｄ）１との融合物はまた、細胞間輸送の能力を示した。ＧＦＰ：ＫＮ１融合タンパク質は、タバコ植物の、葉の内部組織から表皮への、表皮間および茎頂成長点内への移動を示した（Ｋｉｍら、２００２、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、９９、４１０３−４１０８）。原形質連絡は、こうした輸送に重要な役割を果たしており、そしてその生理学的状態および構造は、こうした輸送の効率に重要である。例えば、単純な原形質連絡は、タバコの葉の発育において非特異的輸送を可能にしているが、一方、分岐したものはそうではない（Ｏｐａｒｋａら、１９９９、Ｃｅｌｌ、９８、５−８）。タンパク質を含む巨大分子の輸送を可能にしていることは、原形質連絡の正常の機能のようであり、それが該分子の細胞間伝搬のための植物ウイルスの使用を行わせた（Ｆｕｊｉｗａｒａら、１９９３、Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ、５、１７８３−１７９４）。一般に、原形質連絡および師部が、情報巨大分子（タンパク質および核酸）の輸送および搬送に重要な役割を果たしていることは明らかである（Ｒｕｉｚ−Ｍｅｄｒａｎｏら、２００１、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｐｌａｎｔ Ｂｉｏｌ．４、２０２−２０９）。ククルビタ マキシマおよびリシヌム コムニスからの師部液汁タンパク質は、原形質連絡を通した細胞間輸送の能力を有している（Ｂａｌａｃｈａｎｄｒａｎら、１９９７、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．９４、１４１５０−１４１５５）。

図８は、本発明のタンパク質スイッチの細胞間移動が達成する可能性をスキーム的に示している。外部から搬送されたタンパク質スイッチ断片（即ち、該第２のポリペプチド）および細胞内で合成されるタンパク質スイッチは、転位または輸送シグナルのための、同一または異なったタンパク質セグメントの融合物であることが可能である。我々の実施例において（図８）、同一のタンパク質セグメント、例えば、レコンビナーゼまたはその断片は、トランススプライシングを仲介するためのインテイン断片と、または細胞間輸送のために提供されたタンパク質部分（ＴＰ）と融合される。小さなタンパク質（ＧＦＰのような、およびより小さい）に対しては、それらは単純な拡散を通した高度に効率的な細胞間移行が可能であってもよいので、ＴＰへの融合は必要ないであろうことは非常にもっともらしい。しかしながら、より大きなタンパク質スイッチに対しては、ＴＰまたはその活性断片との融合は都合がよい。細胞間輸送に関与するすべてのタンパク質の内、ウイルスタンパク質が最もよく研究されていることは明らかである。これらはタンパク質スイッチに含まれているべき最も好ましい候補である。図８に示されているように、外部から搬送されたタンパク質スイッチ断片は、細胞内タンパク質スイッチ断片による機能性補完後、同一の酵素活性を有しているが、しかし細胞間輸送が可能であるタンパク質スイッチ（レコンビナーゼ：ＴＰ）をコードしている導入遺伝子の発現の引き金を引く。輸送が可能である該タンパク質スイッチは、すべての影響を受けた細胞においてタンパク質スイッチ発現の引き金を引き、連鎖反応を示している。細胞における該タンパク質スイッチの入手可能性は、ウイルスベクターに基づいたアンプリコン形成を起こすＤＮＡ再配置による、細胞中での目的の遺伝子（ＧＯＩ）の発現の引き金を引くための必須条件である。アンプリコン安定性および細胞間移行は本システムでは必要ではないので、ウイルスプロベクターは各々の植物細胞中に存在することができ、そしてタンパク質スイッチの伝搬は、これらの細胞の各々において目的の遺伝子の発現の引き金を引くことができるので、こうしたアンプリコンから発現された目的の遺伝子のサイズは、効率的なＧＯＩ発現の制限因子ではない。しかしながら、好ましくは、アンプリコンの伝搬は効率的なＧＯＩ発現へ寄与している。

本明細書において企図されたタンパク質スイッチシステムの最終的目的は、植物生産システムにおける目的の細胞プロセスまたは目的の生化学反応カスケードの、操作上の制御である。生化学的カスケードは、最終的に特別な目的の生成物、効果または特性を得る、宿主産生システムにおける生化学反応の連鎖である。本明細書に記載されているアプローチは、融通が利くそして漏出がないことに加え、効率的な生産制御法を提供する。前に説明した２成分プロセスは、本質において「鍵−ロック」システムであり、それにより会社は、タンパク質スイッチ成分を販売することにより、生産するための利用手段を有効に制御することが可能である。

本発明における使用に好ましい植物には、既定の農業経済学的におよび園芸学的に重要な種が優先されるが、任意の植物種が含まれる。本発明で使用するための普通の農作物植物には、アルファルファ、大麦、インゲン豆、アブラナ、ササゲ、ワタ、トウモロコシ、クローバ、ハス、ヒラマメ、ルピナス、キビ、オート麦、ハマエンドウ、ピーナツ、米、ライ麦、シナガワハギ、ヒマワリ、スイートピア、大豆、モロコシライ小麦、クズイモ、ハッショウマメ、カラスノエンドウ、小麦、フジおよび堅果植物が含まれる。本発明の実施に好ましい植物種には、限定するわけではないが以下のものが含まれる：イネ科、キク科、ナス科およびバラ科を代表するもの。

さらに、上で特定したものに加えて本発明の使用に好ましい種は、以下の属の植物である：アラビドプシス（Arabidopsis）、アグロスチス（Agrostis）、アリウム（Allium）、アンチルリナム（Antirrhinum）、アピウム（Apium）、アラキス（Arachis）、アスパラガス（Asparagus）、アトローパ（Atropa）、アヴェナ（Avena）、バンブサ（Bambusa）、ブラッシカ（Brassica）、ブロムス（Bromus）、ブロワーリア（Browaalia）、カメリア（Camellia）、カンナビス（Cannabis）、カプシクム（Capsicum）、シセル（Cicer）、ケノポジウム（Chenopodium）、キコリウム（Chichorium）、シトラス（Citrus）、コフェア（Coffea）、コイックス（Coix）、ククミス（Cucumis）、クルクビタ（Curcubita）、シノドン（Cynodon）、ダクチリス（Dacrylis）、ダチュラ（Datura）、ダウカス（Daucus）、ジギタリス（Digitalis）、ジオスコレア（Dioscorea）、エラエイス（Elaeis）、エロイシネ（Eleusine）、フェスチュカ（Festuka）、フラガリア（Fragaria）、ゲラニウム（Geranium）、グリシネ（Glycine）、ヘリアンサス（Helianthus）、ヘテロカリス（Heterocallis）、ヘヴェア（Hevea）、ホルドイム（Hordeum）、ヒオスシアムス（Hyoscyamus）、イポモエア（Ipomoea）、ラクツカ（Lactuca）、レンス（Lens）、リリウム（Lilium）、リナム（Linum）、ロリウム（Lolium）、ロータス（Lotus）、リコペルシコン（Lycopersicon）、マジョラナ（Majorana）、マラス（Malus）、マンギフェラ（Mangifera）、マニホット（Manihot）、メジカゴ（Medicago）、ネメシア（Nemesia）、ニコチアナ（Nicotiana）、オノブリキス（Onobrychis）、オリザ（Oryza）、パニカム（Panicum）、ペラルゴニウム（Pelargonium）、ペニセタム（Pannisetum）、ペチュニア（Petunia）、ピサム（Pisum）、ファセオラス（Phaseolus）、フロイム（Phleum）、ポア（Poa）、プルナス（Prunus）、ラヌンキュラス（Ranunculus）、ラファナス（Raphanus）、リベス（Ribes）、リシナス（Ricinus）、ルーバス（Rubus）、サッカラム（Saccharum）、サルピグロッシス（Salpiglossis）、セカレ（Secale）、セネシオ（Senecio）、セタリア（Setaria）、シナピス（Sinapis）、ソラナム（Solanum）、ソルグム（Sorghum）、ステノタフルム（Stenotaphrum）、テオブロマ（Theobroma）、トリフォリウム（Trifolium）、トリゴネラ（Trigonella）、トリチカム（Triticum）、ヴィシア（Vicia）、ヴィグナ（Vigna）、ヴィチス（Vitis）、ゼア（Zea）、およびオリレアエ（Olyreae）、ファロイデアエ（Pharoideae）および多くの他のもの。

本発明の範囲内の植物種内で、食物または飼料連鎖内に含まれないものが、医薬および実用タンパク質産生のために特に好ましい。これらの中で、タバコ種は、うまく開発された発現ベクター（特にウイルスベクター）システムで容易に形質転換でき、そして培養できるので最も好ましい。

目的の細胞プロセスとして発現可能であり、そして本発明を使用して単離される、目的の遺伝子、その断片（機能性または非機能性）およびそれらの人工誘導体には、限定するわけではないが以下のものが含まれる：デンプン修飾酵素（デンプンシンターゼ、デンプンホスホリラーゼ、脱分岐酵素、デンプン分岐酵素、デンプン分岐酵素ＩＩ、顆粒結合デンプンシンターゼ）、スクロースリン酸シンターゼ、スクロース ホスホリラーゼ、ポリガラツロナーゼ、ポリフルクタン スクラーゼ、ＡＤＰグルコース ピロホスホリラーゼ、シクロデキストリン グリコシルトランスフェラーゼ、フルクトシル トランスフェラーゼ、グリコーゲン シンターゼ、ペクチン エステラーゼ、アプロチニン、アビジン、細菌レバンスクラーゼ、大腸菌ｇｌｇＡプロテイン、ＭＡＲＫ４およびオルソログ、窒素同化作用／代謝酵素、グルタミン シンターゼ、植物オスモチン、２Ｓアルブミン、タウマチン、部位特異的レコンビナーゼ／インテグラーゼ（ＦＬＰ、Ｃｒｅ、Ｒレコンビナーゼ、Ｉｎｔ、ＳＳＶＩインテグラーゼＲ、インテグラーゼｐｈｉＣ３１、またはそれらの活性断片または変異体）、イソペンテニル トランスフェラーゼ、Ｓｃａ Ｍ５（大豆カルモジュリン）、コレオプテランタイプ毒素または殺虫性の活性断片、ユビキチン複合体化酵素（Ｅ２）融合タンパク質、脂質、アミノ酸、糖、核酸およびポリサッカリドを代謝する酵素、スパーオキシドジスムターゼ、プロテアーゼの不活性プロ酵素形、植物タンパク質毒素、繊維産生植物における特質改変繊維、バチルス・スリンギエンシスからのコレオプテラン活性毒素（Ｂｔ２毒素、殺虫性結晶タンパク質（ＩＣＰ）、ＣｒｙｌＣ毒素、デルタエンドトキシン、ポリオペプチド毒素、プロトキシンなど）昆虫特異性毒素ＡａＩＴ、セルロース分解酵素、アシドテルムス セルロチカス（Ａｃｉｄｏｔｈｅｒｍｕｓ ｃｅｌｌｕｌｏｔｉｃｕｓ）からのＥ１セルラーゼ、リグニン修飾酵素、シンナモイル アルコール デヒドロゲナーゼ、トレハロース−６−リン酸 シンターゼ、サイトキニン代謝経路の酵素、ＨＭＧ−ＣｏＡリダクターゼ、大腸菌無機ピロホスファターゼ、種子保存タンパク質、エルウィニア ヘルビコーラ（Ｅｒｗｉｎｉａ ｈｅｒｂｉｃｏｌａ）リコペン シンターゼ、ＡＣＣオキシダーゼ、ｐＴＯＭ３６コードタンパク質、フィターゼ、ケトヒドラーゼ、アセトアセチルＣｏＡリダクターゼ、ＰＨＢ（ポリヒドロキシブタノエート）シンターゼ、アシルキャリアタンパク質、ナピン、ＥＡ９、非高等植物フィトエン シンターゼ、ｐＴＯＭ５コードタンパク質、ＥＴＲ（エチレンレセプター）、色素体ピルビン酸リン酸ジキナーゼ、線虫−誘導可能膜貫通細孔タンパク質、植物細胞の特質促進光合成または色素体機能、スチルベン シンターゼ、フェノールを水酸化可能な酵素、カテコール ジオキシゲナーゼ、カテコール ２，３−ジオキシゲナーゼ、クロロムコネート サイクロイソメラーゼ、アントラニレート シンターゼ、ブラッシカＡＧＬ１５タンパク質、フルクトース １，６−ジホスファターゼ（ＦＢＰａｓｅ）、ＡＭＶ ＲＮＡ３、ＰＶＹレプリカーゼ、ポチウイルスコートタンパク質、ＣＭＶコートタンパク質、ＴＭＶコートタンパク質、ルテオウイルス レプリカーゼ、ＭＤＭＶメッセンジャーＲＮＡ、突然変異体ゲミニウイルスレプリカーゼ、ウンベルラリア カリフォルニカ（Ｕｍｂｅｌｌｕｌａｒｉａ ｃａｌｉｆｏｒｎｉｃａ）Ｃ１２：０優先性アシル−ＡＣＰチオエステラーゼ、植物Ｃ１０またはＣ１２：０優先性アシル−ＡＣＰチオエステラーゼ、１４：０優先性アシル−ＡＣＰチオエステラーゼ（ｌｕｘＤ）、植物シンターゼ因子Ａ、植物シンターゼ因子Ｂ、Ｄ６−デサチュラーゼ、植物細胞中の脂肪酸のペルオキシソームβ−酸化に酵素活性を有するタンパク質、アシル−ＣｏＡオキシダーゼ、３−ケトアシル−ＣｏＡチオラーゼ、リパーゼ、トウモロコシアセチル−ＣｏＡ−カルボキシラーゼ、５−エノールピルビルシキメート−３−リン酸シンターゼ（ＥＰＳＰ）、ホスフィノトリシン アセチル トランスフェラーゼ（ＢＡＲ、ＰＡＴ）、ＣＰ４タンパク質、ＡＣＣデアミナーゼ、翻訳後切断部位を有するタンパク質、スルホンアミド耐性を与えるＤＨＰＳ遺伝子、細菌ニトリアーゼ、２，４Ｄモノオキシゲナーゼ、アセチルアセトン シンターゼまたはアセトヒドロキシ酸シンターゼ（ＡＬＳ、ＡＨＡＳ）、ポリガラクツロナーゼ、Ｔａｑポリメラーゼ、細菌ニトリアーゼ、制限エンドヌクレアーゼを含む、細菌またはファージの多くの他の酵素、メチラーゼ、ＤＮＡおよびＲＮＡリガーゼ、ＤＮＡおよびＲＮＡポリメラーゼ、逆転写酵素、ヌクレアーゼ（ＤＮａｓｅおよびＲＮａｓｅ）、ホスファターゼ、トランスフェラーゼなど。

我々の発明はまた、工業的酵素（セルラーゼ、リパーゼ、プロテアーゼ、フィターゼなど）および繊維性タンパク質（コラーゲン、クモ絹タンパク質など）を含む、商業的に価値のあるおよび医薬的に重要なタンパク質の分子農業および精製の目的のためにも使用することが可能である。任意のヒトおよび動物健康タンパク質を、我々の発明アプローチを使用して、発現そして精製することが可能である。目的のこうしたタンパク質の例には、なかでも、免疫応答性タンパク質（モノクローナル抗体、単鎖抗体、Ｔ細胞レセプターなど）、病原性微生物から誘導されるものを含む抗原、コロニー刺激因子、リラキシン、ソマトトロピン（ＨＧＨ）およびプロインシュリンを含むポリペプチドホルモン、サイトカインおよびそのレセプター、インターフェロン、成長因子および凝固因子、酵素的に活性なリソソーム酵素、線維素溶解性ポリペプチド、血液凝固因子、トリプシノーゲン、ａ１−アンチトリプシン（ＡＡＴ）、ヒト血清アルブミン、グルコセレブロシダーゼ、天然コレラ毒素Ｂならびに機能保存タンパク質様融合物、前記のタンパク質の突然変異体および合成誘導体、が含まれる。

ＤＥ１０２５４１６６およびＤＥ１０２５４１６５およびそこから派生したＰＣＴ特許出願は、本発明と組み合わせることができるさらなる実施例および開示を含んでいる。

植物細胞におけるアグロバクテリウム仲介過渡的発現後の、ＧＵＳのインテイン仲介トランススプライシング
ＧＵＳ遺伝子の５’末端を、プラスミドｐＩＣＢＶ３３（３５Ｓ−オメガリーダー−ｇｕｓコード配列−Ｉｃｏｎ ＧｅｎｅｔｉｃｓバイナリーベクターｐＩＣＢＶ２（図９））からのプライマーｇｕｓｉｎｔ５（ａｔｇ ｇａａ ｇｃａ ｇｔａ ｃｔｃ ｇａｃ ｇｔｃ ｇｃｃ ｔａａ ａｇａ ｇａｇ ｇｔｔ ａ）およびｇｕｓｐｒ３（ｇｇｃ ｃｔｇ ｔｇｇ ｇｃａ ｔｔｃ ａｇｔ ｃｔｇ）を使用するＰＣＲにより増幅した。ＧＵＳ遺伝子の３’末端は、プラスミドｐＩＣＢＶ３３（図９）からのプライマーｇｕｓｉｎｔ６（ｇｔｃ ｇａｇ ｔａｃ ｔｇｃ ｔｔｃ ｃａｔ ｇｇｃ ａａａ ｇａａ ｃｔｇ ｔａｃ ａｇｃ ｇ）およびｎｏｓｔｅｒｒｅｖ（ｔｃａ ｔｃｇ ｃａａ ｇａｃ ｅｇｇ ｃａａ ｃａｇ ｇ）を使用するＰＣＲにより増幅した。これらの断片を合わせ、そしてプライマーｇｕｓｐｒ３およびｎｏｓｔｅｒｒｅｖを使用して、ＰＣＲによる第２の増幅を行った。このＰＣＲの生成物をＢｓｐＨＩおよびＸｂａＩで消化し、そしてｐＩＣＢＶ３３にクローン化すると、プラスミドｐＩＣＨ８９８３（付表２）を得た。このプラスミドにおいては、天然のアミノ酸Ｉｌｅ３７０−Ｐｒｏ３７６が、シネコシスチス（Ｓｙｎｅｃｈｏｃｙｓｔｉｓ）ＤｎａＥエクステイン−インテインジャンクションから誘導された配列Ａｓｐ−Ｖａｌ−Ｇｌｕ−Ｔｙｒ−Ｃｙｓ−Ｐｈｅ−Ｈｉｓ−Ｇｌｙにより置換され、そしてＡａｔＩＩおよびＮｃｏＩ部位が、各々、この修飾の始まりおよび終わりに導入されていた。

シネコシスチスからのＤｎａＥインテインのＮ末端を含有するＤＮＡ断片を、プライマーｉｎｔＮｐｒ１（ｇｃ ａａｇｃｔｔ ｇａｃｇｔｃ ａａｇ ｔｔｔ ｇｃｇ ｇａａ ｔａｔ ｔｇｃ ｃｔｃ ａｇｔ）およびｉｎｔＮｐｒ２（ｔｃｃ ｃｔｇｃａｇ ｔｔａ ｔｔｔ ａａｔ ｔｇｔ ｃｃｃ ａｇｃ ｇｔｃ ａａｇ）を使用してゲノムＤＮＡ（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｅｎｔｅｒからの株ＰＣＣ６８０３）から増幅した。ＰＣＲ生成物はＨｉｎｄＩＩＩ−ＰｓｔＩ断片として、ｐＵＣ１９にクローン化すると、プラスミドｐＩＣＨ８９０１を得た。インテインのＣ末端部分は、プライマーｉｎｔＣｐｒ１（ｇｇ ｔｃｔａｇａ ａｔｃｇａｔ ｇ ｇｔｔ ａａａ ｇｔｔ ａｔｃ ｇｇｔ ｃｇｔ ｃｇ）およびｉｎｔＣｐｒ２（ｃｇ ｃｔｇｃａｇ ｃｃａｔｇｇ ｔｔ ａａａ ａｃａ ａｔｔ ｇｇｃ ｇｇｃ ｇａｔ ｃｇｃ）を使用して増幅し、そしてＰｓｔＩ−ＸｂａＩ断片として、ｐＵＣ１９にクローン化した（ｐＩＣＨ８９１２、図１１を参照されたい）。

ＧＵＳ遺伝子の５’−部分へのＮ−インテインの融合は、ｐＩＣＨ８９０１からのＡａｔＩＩ−ＸｂａＩ断片のｐＩＣＨ８９８３（図１０）へのクローニングにより行われ、プラスミドｐＩＣＨ９３０３８、図５）を得た。Ｃ−インテインはＧＵＳの３’部分へ、ＣｌａＩ−ＮｃｏＩ断片として融合し、プラスミドｐＩＣＨ９３１１（図５）を得た。両方の構築物はアグロバクテリウム仲介過渡的発現（Ｖａｑｕｅｒｏら、１９９９、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、９６、１１１２８−１１１３３）を使用して、ニコチアナ ベンタミアナ（Ｎｉｃｏｔｉａｎａ ｂｅｎｔｈａｍｉａｎａ）葉において過渡的に同時発現させた。ＧＵＳ発現は、色素生産性基質Ｘ−ｇｌｕｃ（５−ブロモ−４−クロロ−３−インドリル グルクロニド）を含んでいる溶液で葉を染色することにより検出した（Ｊｅｆｆｅｒｓｏｎ、１９８７、Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．Ｒｅｐ．５、３８７−４０５）。ＧＵＳ活性を示している青色は、両方の構築物を同時発現させた場合にのみ認識されたが、構築物を個々に発現させた場合は観察されなかった。

インテインＣ−ＧＵＳ３’融合タンパク質のＡｇｒｏ−搬送
ＧＵＳ遺伝子の開裂およびシネコシスチス開裂ＤｎａＥインテインへの融合は上記のように行った。インテインＣ−ＧＵＳ３’融合物の終止コドンに先だっているＸｈｏＩ部位をｐＩＣＨ９７２３（付表３）に導入した。アグロバクテリウム ツメファシエンスｖｉｒＦタンパク質の３７のＣ末端アミノ酸をコードしているＤＮＡを、２つの重複しているオリゴｖｉｒＦｐｒ３（ｇｃｔ ｃｔｃ ｇａｇ ｇｔｔ ａｔｇ ｇｃａ ｇａａ ｇｔｔ ｃｇｇ ｃｃｃ ａｔａ ｇｃｃ ｃｇａ ｔｃｃ ａｔｔ ａａａ ａｃｇ ｇｃｔ ｃａｃ ｇａｃ ｇａｔ ｇｃｇ ｃｇａ ｇｃｇ ｇａ）およびｖｉｒＦｐｒ４（ｃａｃ ｇｇａ ｔｃｃ ｔｃａ ｔａｇ ａｃｃ ｇｃｇ ｃｇｔ ｔｇａ ｔｃｇ ａｇｇ ｔｃｔ ｇｔｃ ｃｇｃ ｃｇａ ｃａｔ ｔａａ ｔｔｃ ｃｇｃ ｔｃｇ ｃｇｃ ａｔｃ ｇｔｃ ｇｔｇ ａｇ）を使用して合成した。断片をＸｈｏＩ−ＢａｍＨＩで消化し、そしてインテインＣ−ＧＵＳ３’融合物のフレーム内へライゲートし、プラスミドｐＩＣＨ１０１８１を得た。

ｐＩＣＨ１０１８１（図６）（３５Ｓ−ｐｒｏｍインテインＣ−ＧＵＳ３’−ｖｉｒＦ）のＨｉｎｄＩＩＩ（平滑末端化）−ＸｂａＩ断片をｐＩＣＢＶ１２（図９）ＸｈｏＩ（平滑末端化）−ＸｂａＩ内にクローン化すると、プラスミドｐＩＣＨ１０６５５（図６）、どんなＴ−ＤＮＡ配列も含んでいない小さなバイナリーベクター、を生じた。陰性対照として、ｖｉｒＦ配列を含んでいないインテインＣ−ＧＵＳ３’のために、同じことを行った（ｐＩＣＨ１０６６６、図６を参照されたい）。

エレクトロポレーションにより、ｐＩＣＨ１０６５５（図６）およびｐＩＣＨ１０６６６でアグロバクテリウム株ＧＶ３１０１を形質転換した。両方の構築物をニコチアナ ベンサミアナ葉内へ、ｐＩＣＨ９３０３（Ｔ−ＤＮＡ境界間に３５Ｓ−ｐｒｏｍ ＧＵＳ５’−インテインＮ ｎｏｓ−ｔｅｒｍ、図６参照）と一緒にａｇｒｏ−浸潤させた（Ｖａｑｕｅｒｏら、１９９９、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、９６、１１１２８−１１１３３）。従って、ＧＵＳ５’−インテインＮ部分はＤＮＡとして搬送され、そして植物細胞中で発現され、およびインテインＣ−ＧＵＳ３’−ｖｉｒＦ部分はタンパク質として搬送される。インテイン仲介タンパク質スプライシングが植物細胞内で起こり、そして機能性ＧＵＳ酵素を細構築する。ＧＵＳ発現は、色素生産性基質Ｘ−ｇｌｕｃ（５−ブロモ−４−クロロ−３−インドリル グルクロニド）を含んでいる溶液で葉を染色することにより検出した（Ｊｅｆｆｅｒｓｏｎ、１９８７、Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．Ｒｅｐ．５、３８７−４０５）。ＧＵＳ活性を示している青色は、５’および３’−ＧＵＳ両方を同時浸潤させた場合にのみ認識され、構築物を個々に発現させた場合、または陰性対照構築物（ｐＩＣＨ１０６６６）を使用した場合には観察されなかった。

植物ゲノム内へ安定に組み込まれたプロベクター部分から増幅ベクターを組み立てるための部位特異的ＤＮＡ組換えの使用：ＧＦＰ発現
２つのプロベクター部分を含むＴ−ＤＮＡを運んでいるバイナリーベクターｐＩＣＨＦＰｉｎｖ（図７）を、標準分子生物学技術（Ｍａｎｉａｔｉｓら、１９８２、分子クローニング：実験室マニュアル、コールドスプリングハーバー研究所、ニューヨーク）を使用して設計した。プロベクター要素およびそれらの構築の基本的原理および機能化の説明は、特許出願ＰＣＴ／ＥＰ０２／０３４７６（ＷＯ０２８８３６９）およびＤＥ１０１２１２８３に詳細に記載されている。ベクターは形質転換マーカー（ＮＰＴＩＩ遺伝子）、アラビドプシス アクチン２遺伝子の植物プロモーター（Ａｎら、１９９６、Ｐｌａｎｔ Ｊ．１０、１０７−１２１）が先立った、ＴＭＶの５’末端を運んでおり、そしてＲＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼ（ＲｄＲｐ）および移動タンパク質（ＭＰ）を含み、そしてサブゲノムプロモーターが続いている。ベクターはまた、目的の遺伝子（ＧＦＰ）を含んでいるプロベクターの３’末端、浸透移行を提供するウイルスコートタンパク質（ＣＰ）、およびウイルスベクターの３’非翻訳領域（３’ＮＴＲ）も含んでいる。３’プロベクターは２つの転写終止シグナルと一緒に、ファージインテグラーゼｐｈｉＣ３１（Ｔｈｏｍａｓｏｎ、Ｃａｌｅｎｄａｒ＆Ｏｗ、２００１、Ｍｏｌ．Ｇｅｎｅｔ．Ｇｅｎｏｍｉｃｓ、２６５、１０３１−１０３８）により認識される組換え部位により隣接されている。

インテグラーゼｐｈｉＣ３１、最初のシステインの位置で２つの部分に開裂され、そしてＤｎａＥインテイン部分に融合された。異なったオーバーハングを有する２つのＢｓａＩ−部位を導入しているインテイン挿入部位を、Ｃｙｓ−４０５のコドンのすぐ近くに先立つＰＣＲにより本来の構築物からのインテグラーゼ（Ｔｈｏｍａｓｏｎ、Ｃａｌｅｎｄａｒ＆Ｏｗ、２００１、Ｍｏｌ．Ｇｅｎｅｔ．Ｇｅｎｏｍｉｃｓ、２６５、１０３１−１０３８）内へクローン化した。対応するＢｓａＩ部位もまた、ＤｎａＥインテイン−Ｎ（図１０）およびインテイン−Ｃ（図１１）へ導入した。インテイン−Ｎを、ＢｓａＩ−ＢａｍＨＩ断片としてインテグラーゼ−Ｎへ融合し（ｐＩＣＨ１５０８５）、そしてインテイン−Ｃは、ＳｍａＩ−ＢｓａＩ断片として、ＰｓｔＩ（Ｔ４ポリメラーゼ平滑末端化）−ＢｓａＩ内で、インテグラーゼ−Ｃと融合した（ｐＩＣＨ１５０９９、図１２）。

Ａ．ツメファシエンス株ＧＶ３１０１（Ｇｅｎｅ Ｂａｎｋ 寄託番号００３０６５）からの完全ｖｉｒＥ−オペロンをＰＣＲにより増幅し、ＸｈｏＩ−ＸｂａＩ断片としてｐＩＣＢＶ３９（図９）、境界配列を有しない、従ってＤＮＡ輸送が妨げられているバイナリーベクター、内へクローン化した（構築物ｐＩＣＨ１５５３０）。開裂インテグラーゼのクローニングのための制限部位は、同時に、開始（ＮｃｏＩ）およびｖｉｒｅ２の末端に近接して（ｂｓｒＧＩ）導入した。対応する制限部位をまた、開裂インテグラーゼ−インテインの両方の部分に、ＰＣＲ反応により導入した。開裂インテグラーゼ部分を、このベクター内へクローン化し、タンパク質輸送に必要であるｖｉｒＥ２タンパク質の４７のＣ末端アミノ酸への融合物を導いた。

実験で使用された、別のベクターのＴ−ＤＮＡ領域の配列、ｐＩＣＨ１０９２１（図１３）は付表１に配列番号１として示されている。
ｐＩＣＨＧＦＰｉｎｖ、ｐＩＣＨ１０９２１およびｐＩＣＨ１５０８５−ＩＮＴのＴ−ＤＮＡを含んでいるトランスジェニックニコチアナ ベンタミアナおよびＮ．タバクム植物は、Ｈｏｒｓｅｈら（１９８５、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２２７、１２９−１３１）により記載されているように、葉円盤のアグロバクテリウム仲介形質転換により得られた。葉円盤を、構築物ｐＩＣＨ１７５４で形質転換したアグロバクテリウム株ＧＶ３１０１と３０分インキュベートした。選択剤を含まない培地（ＭＳ培地 ０．１ｍｇ／ｌ ＮＡＡ、１ｍｇ／ｌ ＢＡＰ）上で３日のインキュベーション後、形質転換体の選択は、１００ｍｇ／Ｌカナマイシンを補給した同一のＭＳ培地で実施した。アグロバクテリウムの生長を減じるため、培地にまた３００ｍｇ／Ｌ カルベニシリンおよび３００ｍｇ／Ｌ セファタキシムも補給した。再生体は、発根を誘導するため、同一の濃度の選択剤を含むが、ホルモン補給は行わないで、選択的ＭＳ培地上でインキュベートした。Ｔ２集団の分離における導入遺伝子の存在は、ＰＣＲ分析により確認した。

トランスジェニック植物の葉の、細胞透過性インテグラーゼへの暴露は、ａｔｔＰおよびａｔｔＢ部位間の部位特異的組換えを起こす。こうした組換えは、３’プロベクターの復帰を導き、従って、アクチン２プロモーター制御下のウイルスアンプリコンの完全ｃＤＮＡを作り出す（図７、Ｂ）。ＧＦＰを発現している、ＴＭＶに基づいたＲＮＡアンプリコンは、細胞間移行および浸透移行が可能である。ｐＩＣＨ１０９２１およびｐＩＣＨ１５０９９で形質転換したトランスジェニック植物間のハイブリッド子孫の葉を、ｐＩＣＨ１５０８５−ＩＮＴを運んでいるアグロバクテリアで浸潤した。Ｎ．ベンサミアナ植物におけるＧＦＰ発現は、ＵＶランプを使用して、またはＬＥＩＣＡ立体蛍光顕微鏡システム下で植物組織を分析することにより（４５０〜４９０ｎｍで励起、５００〜５５０ｎｍで発光）容易に検出することが可能である。我々の実験で使用したｓＧＦＰは青およびＵＶ光により励起可能である。

図１は本発明に従った方法のスキームである。 図２は、植物細胞中で、不活性タンパク質断片から活性タンパク質スイッチを発生させるための態様を示しているスキームである。Ａ：タンパク質断片のインテイン仲介トランススプライシングによる活性タンパク質の発生。Ｂ：タンパク質断片の親和性結合による活性タンパク質の発生。 図３は、インテイン仲介トランススプライシング（図３Ａ）または親和性相互作用（図３Ｂ）による、非機能性タンパク質断片からの機能性タンパク質（ＡＢ）の組み立てを示しているスキームである。断片Ａは、細胞内へ導入される、本発明の第２のポリペプチドである。断片Ｂは異種核酸から内部で発現される。 図４は、細胞間輸送、そして他の細胞中でそれ自身の発現を起こすことが可能であるタンパク質スイッチを経て、目的の細胞プロセスのスイッチを入れることを示している一般スキームである。ＰＳはタンパク質スイッチを表し、ＴＰは細胞間輸送（即ち、細胞を離れそして他の細胞に入ること）が可能な輸送タンパク質を表し、ＰＳ：ＴＰはＰＳ−ＴＰ融合タンパク質を表し、ｈＮＡは追加の異種核酸を表している。（Ａ）はＰＳ：ＴＰをコードする異種核酸、および追加の異種核酸ｈＮＡを表している。外部（第２の）ポリペプチドが導入されていないので、タンパク質スイッチは発現されず、そして目的の細胞プロセスのスイッチは入れられていない。（Ｂ）外部（細胞透過性）ポリペプチドが導入され、タンパク質スイッチＰＳ：ＴＰの発現を起こしている。タンパク質スイッチはそれが発現した細胞中でｈＮＡに作用することにより細胞プロセスを制御できる。さらに、タンパク質スイッチは、該外部から導入されたポリペプチドにより引き金が引かれた細胞を離れ、そして他の細胞へ入ることが可能である。他の細胞において、タンパク質スイッチはそれ自身の発現を誘導でき、そしてまたｈＮＡに作用することにより細胞プロセスを制御する。 図５は、ＧＵＳタンパク質のインテイン仲介トランススプライシングのために設計された構築物ｐＩＣＨ９３０３およびｐＩＣＨ９３１１を表している。 図６は、トランススプライシングに必要なタンパク質成分の１つ（ｐＩＣＨ１０６５５によりコードされている）のアグロバクテリウム仲介搬送を用いる、植物内インテイン仲介トランススプライシングのために設計された構築物ｐＩＣＨ１０１８１、ｐＩＣＨ１０６５５、ｐＩＣＨ１０６６６およびｐＩＣＨ９３９３を表している。 図７は、（Ａ）において、非機能性のＴＭＶに基づいたプロベクター、および（Ｂ）においてインテグラーゼ仲介組換えから生じる該構築物の機能性誘導体を表している。下部の矢印は、（Ｂ）で示した構築物から形成することが可能である、配向を含むＲＮＡおよびサブゲノム（ｓｇ）ＲＮＡを示している。ｓｇｐはサブゲノムプロモーターを表している。 図８は、細菌搬送タンパク質スイッチ断片（ＩＮＴ−Ｃ：ＲＥＣｆｒ．）が、内部でコードされた断片（ＲＥＣｆｒ．：ＩＮＴ−Ｎ）とのインテイン仲介トランススプライシングによる活性タンパク質スイッチ（レコンビナーゼ）形成後、標的化細胞内で組換え事象の引き金を引く態様を表している。該事象は、細胞間輸送が可能な細胞内タンパク質スイッチ（レコンビナーゼ：ＴＰ）の合成を導いている。細胞内タンパク質スイッチはさらに、組換え事象の引き金を引くことが可能で、植物ウイルスに基づいたプロベクターの再編成を導き、目的の遺伝子（ＧＯＩ）の発現を生じる。ＭＴＳ：膜移行配列；ＴＰ：細胞間輸送が可能なタンパク質；ＳＭ：選択可能マーカー；ＲＳ：部位特異的ＤＮＡレコンビナーゼ／インテグラーゼにより認識される組換え部位；ｔｅｒ１およびｔｅｒ２：転写終止領域；ＰＲＯＭ：植物で活性なプロモーター；ＲｄＲｐ：ウイルスＲＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼ；ＭＰ：移動タンパク質；３’ＮＴＲ：植物ＲＮＡウイルスの３’非翻訳領域。矢印はコードおよび調節配列の配向を示している。 図９はバイナリーベクターｐＩＣＢＶ２、ｐＩＣＢＶ１２、ｐＩＣＢＶ３３およびｐＩＣＢＶ３９を表している。 図１０は、ベクターｐＩＣＨ８９８３およびｐＩＣＮ８９０１を表している。 図１１は、ベクターｐＩＣＨ８９１２およびｐＩＣＨ９７２３を表している。 図１２は、ベクターｐＩＣＨ１５０９９、ｐＩＣＨ１５０８５およびｐＩＣＨ１５０８５−ＩＮＴを表している。Ｐａｃｔ２−ｉ−アラビドプシス サリアナＡＣＴＩＮ２遺伝子の第１のイントロンを有する転写プロモーター；ＰｈｉＣ３１−Ｎ−インテグラーゼｐｈｉＣ３１のＮ末端部分；ＰｈｉＣ３１−Ｃ−インテグラーゼｐｈｉＣ３１のＣ末端部分；インテイン−Ｎ−シネコシスチス種ＰＣＣ６８０３ ＤｎａＥインテインのＮ末端部分；インテイン−Ｃ−シネコシスチス種ＰＣＣ６８０３ ＤｎａＥインテインのＣ末端部分；ＮＬＳ−核局在化シグナル；ｖｉｒＥ−アグロバクテリアｖｉｒＥオペロン配列。 図１３は、ベクターｐＩＣＨ１０９２１のＴ−ＤＮＡ領域を表している。ＳＭ−選択可能マーカー（ＮＰＴＩＩ遺伝子）；ＲｄＲｐ：ウイルスＲＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼ；ＭＰ：移動タンパク質；３’ＮＴＲ：植物ＲＮＡウイルスの３’非翻訳領域；Ｐｎｏｓ−ノパリン シンターゼの転写プロモーター；Ｔｎｏｓ−ノパリン シンターゼの転写終結領域；Ｐａｃｔ２−アラビドプシス サリアナＡＣＴＩＮ２遺伝子の転写プロモーター；ＩＲＥＳｍｐ７５（ｃｒ）−クルシフェラセアＴＭＶ下部の移動タンパク質のＩＲＥＳ；ＡｔｔＰおよびＡｔｔＢ−インテグラーゼｐｈｉＣ３１により認識される組換え部位。

Claims (33)

1. 遺伝子改変された植物または植物細胞を制御する方法であって：
   （ａ）遺伝子改変された植物または植物細胞を提供し、該植物または植物細胞は、タンパク質の第１の断片を含有するかまたはそれから成る第１のポリペプチドをコードする異種核酸を含有する、
   （ｂ）該遺伝子改変された植物または植物細胞の細胞内へ第２のポリペプチドを導入する、工程を含み、該第２のポリペプチドは
   （ｉ）該タンパク質の第２の断片および
   （ｉｉ）該遺伝子改変された植物または植物細胞の細胞内への該第２のポリペプチドの導入を可能にするペプチド配列、を含有し、それにより該第１の断片および該第２の断片は、共同して存在している場合にのみ、該タンパク質の所定の機能を共同して発生させる、前記方法。
2. 工程（ｂ）において、該第２のポリペプチドまたはその機能性部分をコードする核酸が該遺伝子改変された植物の細胞内に導入されないように、該第２のポリペプチドが導入され、それにより、該第２のポリペプチドの一部は、もしそれが該第１のポリペプチドと共同して該所定の機能を発生することが可能であれば、機能的である、請求項１に記載の方法。
3. 該所定の機能が目的の細胞プロセスを制御する、請求項１または２に記載の方法。
4. 該植物の細胞が、該所定の機能により制御される追加の異種核酸を含有する、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
5. 該所定の機能が、該追加の異種核酸からＲＮＡおよび／またはタンパク質発現産物の形成を起こす、請求項４に記載の方法。
6. 該所定の機能が、該追加の異種核酸からまたはその発現産物から、発現可能なオペロンの形成を起こす、請求項４に記載の方法。
7. 該所定の機能が、該追加の異種核酸からまたはその発現産物から、発現可能なアンプリコンの形成を起こす、請求項４に記載の方法。
8. 該タンパク質の該所定の機能が、該追加の異種核酸からＤＮＡまたはＲＮＡアンプリコンの形成を起こし、それにより、該アンプリコンが１以上の以下の能力：複製、タンパク質発現、細胞間移行、浸透移行、感染性粒子組み立て、感染力、植物の遺伝子サイレンシング能力の抑制、植物の生理学的状態の修飾、を有する、請求項４または７に記載の方法。
9. 該追加の異種核酸が、該植物または植物細胞の核または色素体ゲノム中に安定に組み込まれている、請求項４〜８のいずれか１項に記載の方法。
10. 該植物の該所定の機能の発生が、該第１および該第２の断片の非共有結合的相互作用を含んでいる、請求項１〜９のいずれか１項に記載の方法。
11. 該非共有結合的相互作用が、お互いに特異的親和性を有するポリペプチドにより援助される、請求項１０に記載の方法。
12. 該非共有結合的相互作用が、該第１および該第２の断片へ融合されたロイシンジッパーポリペプチドにより援助される、請求項１０に記載の方法。
13. 該非共有結合的相互作用が、該第１および該第２の断片へ融合された２量体化剤ポリペプチドにより援助され、そしてラパマイシンまたはラパマイシン類似体のごとき２量体化剤により調節される、請求項１０に記載の方法。
14. 該タンパク質の該所定の機能の発生が、該第１および該第２の断片間の共有結合形成を含んでいる、請求項１〜１１のいずれか１項に記載の方法。
15. 該共有結合形成が、該第１および該第２の断片間のインテインに基づいた結合またはトランススプライシングを含んでいる、請求項１４に記載の方法。
16. 項目（ｂ、ｉｉ）の該ペプチド配列が、該植物細胞内への、または該遺伝子改変された植物の細胞内への、該第２のポリペプチドの導入を可能にするための膜移行配列であるかまたは該配列を含んでいる、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の方法。
17. 該第２のポリペプチドの該導入が、宿主細胞内へのポリペプチドの搬送のためのシステム有する、病原性微生物を使用して行われる、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の方法。
18. 該病原性微生物が、病原性または非病原性アグロバクテリウムである、請求項１７に記載の方法。
19. 該病原性微生物が、植物病原性であり、そしてＩＩＩ型分泌システムが賦与された病原性または非病原性細菌である、請求項１７に記載の方法。
20. 該植物病原性微生物が、以下の属：ボルデテラ、エルウィニア、シュードモナス、ザントモナス、エルシニア、の１つの病原性または非病原性細菌である、請求項１９に記載の方法。
21. 該第２のポリペプチドが、以下の群：核、色素体、ミトコンドリア、ゴルジシステム、液胞、から選択される細胞内小器官への輸送のための、１以上の通過またはシグナルペプチドを含有する、請求項１〜２０のいずれか１項に記載の方法。
22. 該タンパク質の該所定の機能が、以下の群：ＤＮＡ複製、ＤＮＡ組換え、転写、ＲＮＡ組換え、増幅、翻訳、から選択される、請求項１〜２１のいずれか１項に記載の方法。
23. 該タンパク質が、該植物において、または該植物の一部において、細胞間移行または浸透移行が可能である、請求項１〜２２のいずれか１項に記載の方法。
24. 該タンパク質が、ウイルス移動タンパク質のドメイン、ウイルスコートタンパク質のドメインまたは細胞間移行または浸透移行が可能である植物または動物転写因子のドメインを含んでいる、請求項２３に記載の方法。
25. 細胞間移行または浸透移行が可能である該ドメインが、人工的に設計したポリペプチドである、請求項２４に記載の方法。
26. 工程（ａ）で提供された該植物が、細胞の核ゲノム中に安定に組み込まれた該異種核酸を含んでいるトランスジェニック植物である、請求項１〜２５のいずれか１項に記載の方法。
27. 工程（ａ）で提供された該植物が、細胞の色素体ゲノム中に安定に組み込まれた該異種核酸を含んでいるトランスジェニック植物である、請求項１〜２５のいずれか１項に記載の方法。
28. 工程（ａ）で提供された該植物の細胞が、該異種核酸で過渡的に形質転換される、請求項１〜２５のいずれか１項に記載の方法。
29. 遺伝子改変された植物または植物細胞であって、タンパク質の第１の断片を含有するかまたはそれから成る第１のポリペプチドをコードする異種核酸を含有し、それにより、該遺伝子改変された植物または植物細胞およびタンパク質の該第１の断片は、該第１の断片および該タンパク質の第２の断片から、該タンパク質の所定の機能を発生するために適合され、それにより、該第２の断片を含んでいるかまたはそれから成っている第２のポリペプチドを導入することにより、該第２の断片を該遺伝子改変された植物または植物細胞の細胞へ提供することが可能である、前記遺伝子改変された植物。
30. 請求項１〜２８のいずれか１項に定義したようにさらに特徴付けられる、請求項２９に記載の遺伝子改変された植物。
31. 遺伝子改変された植物または植物細胞を制御するためのシステムであって、請求項２９または３０に記載の遺伝子改変された植物または植物細胞、および請求項１〜２８のいずれか１項に定義したような第２のポリペプチドを含み、それにより、該遺伝子改変された植物または植物細胞および該第２のポリペプチドは、該第１の断片および該第２の断片が該タンパク質の所定の機能を共同して発生可能なように、設計されている、前記システム。
32. 請求項２９または３０に記載の遺伝子改変された植物または植物細胞の細胞内へポリペプチドを導入するための組成物であって、それにより、該組成物が、請求項１〜２８のいずれか１項に定義したような第２のポリペプチドを含有し、該第２のポリペプチドは、請求項２９または３０に記載の遺伝子改変された植物または植物細胞中のタンパク質の所定の機能を発生するために適合されている、前記組成物。
33. 請求項１７〜２０のいずれか１項に定義したような細菌細胞。

Images