JP2009133740A - Immunochromatographic specimen - Google Patents
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Abstract
【解決課題】 検出感度を低下させること無く、種々の非特異因子に起因する非特異的反応を抑えることができるイムノクロマトグラフィー用試験片を提供すること。
【解決手段】 本発明は、少なくとも、被検出物と特異的に反応する特異的結合物が担持された不溶性担体と、メンブラン上に固定された被検出物と特異的に反応する特異的結合物から成るイムノクロマトグラフィー用試験片において、
前記不溶性担体が牛血清アルブミンでブロッキングされ、かつ、前記メンブランがカゼインでブロッキングされてなることを特徴とするイムノクロマトグラフィー用試験片である。
【選択図】 なし
To provide a test piece for immunochromatography capable of suppressing non-specific reactions caused by various non-specific factors without reducing detection sensitivity.
[MEANS FOR SOLVING PROBLEMS] At least an insoluble carrier carrying a specific binding substance that reacts specifically with an object to be detected, and a specific binding substance that reacts specifically with the object immobilized on the membrane. In an immunochromatographic test piece comprising
A test piece for immunochromatography, wherein the insoluble carrier is blocked with bovine serum albumin and the membrane is blocked with casein.
[Selection figure] None
Description
本発明は、イムノクロマトグラフィー分析に供するイムノクロマトグラフィー用キットを構成する試験片に関する。 The present invention relates to a test piece constituting an immunochromatography kit used for immunochromatography analysis.
抗原抗体反応の特異性を利用して試料中の被検物質を免疫学的に検出又は定量する免疫学的分析方法として、放射線免疫測定方法、酵素免疫測定法、凝集法など種々の測定法が用いられている。イムノクロマトグラフィー法は、毛細管現象によるメンブランを使用した検査方法であり、検出感度が高く、操作も簡単であるため、検査の迅速性を要するインフルエンザウィルス抗原特定検査、外来検査等での迅速な判定が求められる前立腺癌等の判定に用いられている。また、こうした医家向け以外にも、妊娠診断試薬等、一般ユーザー向けの診断試薬キットとしても使用されている。 As an immunological analysis method for immunologically detecting or quantifying a test substance in a sample using the specificity of an antigen-antibody reaction, there are various measurement methods such as a radioimmunoassay method, an enzyme immunoassay method, and an agglutination method. It is used. The immunochromatography method is a test method using a membrane due to capillary phenomenon, and it has high detection sensitivity and is easy to operate. Therefore, rapid determination in influenza virus antigen specific test, outpatient test, etc. that require rapid test is possible. It is used to determine required prostate cancer. In addition to those for doctors, they are also used as diagnostic reagent kits for general users such as pregnancy diagnostic reagents.
以下に、インフルエンザウィルス抗原検出検査法を例にして、イムノクロマトグラフィーの原理を説明する。抗原抽出液に懸濁した検体を固相支持体の試料添加部に添加すると、不溶性担体保持部の抗体感作金コロイドが検体中のインフルエンザウィルス抗原と免疫複合体を形成する。この免疫複合体は、毛細管現象により固相支持体上を移動し、支持体上の各保持部分で固定された抗インフルエンザウィルス抗体に捕捉され、赤色を呈する。この赤色が目視で確認された場合は、試料中にインフルエンザウィルス抗原が存在することが認定できる。また、未反応の抗体感作金コロイドは、金コロイドに感作されている抗体と反応する抗体に捕捉され、赤色を呈する。これによって、反応が正常に進んだことがわかる。このようにイムノクロマトグラフィーによる検出は、検出方法が簡単で、大がかりな装置を必要としないので広く用いられている。 In the following, the principle of immunochromatography will be described using the influenza virus antigen detection test method as an example. When the specimen suspended in the antigen extract is added to the sample addition part of the solid support, the antibody-sensitized gold colloid in the insoluble carrier holding part forms an immune complex with the influenza virus antigen in the specimen. This immune complex moves on the solid support by capillary action, is captured by the anti-influenza virus antibody fixed at each holding portion on the support, and exhibits a red color. When this red color is visually confirmed, it can be recognized that the influenza virus antigen is present in the sample. Further, the unreacted antibody-sensitized gold colloid is captured by the antibody that reacts with the antibody sensitized by the gold colloid, and exhibits a red color. This shows that the reaction has proceeded normally. Thus, detection by immunochromatography is widely used because the detection method is simple and does not require a large-scale apparatus.
ところで、イムノクロマトグラフィー装置試験片では、試料中に混在する蛋白質等の非特異因子の吸着のため、被検物質が存在しない場合にも検出部位の発色が発生するという問題がある。この非特異的吸着(非特異的反応ともいう)は、検出時のS/Nを下げるばかりでなく、偽陽性の原因にもなりうる。こういった現状から測定感度を下げることなく非特異的吸着を抑えたイムノクロマトグラフィー装置の開発が望まれている。 By the way, the immunochromatography apparatus test piece has a problem that coloring of a detection site occurs even in the absence of a test substance due to adsorption of non-specific factors such as proteins mixed in the sample. This non-specific adsorption (also referred to as non-specific reaction) not only lowers the S / N during detection but can also cause false positives. From this situation, it is desired to develop an immunochromatography apparatus that suppresses nonspecific adsorption without lowering the measurement sensitivity.
かかる従来からの問題点であった非特異物質による発色を抑えるための方法として、例えば、ブロッキング剤として、タンニン(特許文献1参照)やアミノ酸類を配合(特許文献2参照)したイムノクロマトグラフィー装置が提案されている。 As a method for suppressing color development due to a non-specific substance, which has been a problem in the past, for example, an immunochromatography apparatus in which tannin (see Patent Document 1) and amino acids are blended (see Patent Document 2) as a blocking agent is used. Proposed.
特許文献1に開示の発明は、タンニンを測定系に配合して、溶血が進んだ血液や潜血が存在する尿測定の際に非特異反応を抑えるものであり、非特異反応物質が、溶血ヘモグロビンである場合に限定されたものである。また、特許文献2に開示の発明は、展開剤中に両極性物質であるアミノ酸類を配合したものである。この発明は、非特異発色の一因である、不溶性担体と固相化抗体(抗原)との静電相互作用を抑えて、偽陽性反応を防止しようとするものである。しかしながら、非特異因子を充分に吸収できる量までアミノ酸を添加した場合に検出感度が低下してしまうといった問題があった。 The invention disclosed in Patent Document 1 contains tannin in a measurement system to suppress a nonspecific reaction during urine measurement in which blood or occult blood is advanced, and the nonspecific reaction substance is hemolyzed hemoglobin. It is limited to the case. The invention disclosed in Patent Document 2 is a product in which amino acids which are bipolar substances are blended in a developing agent. The present invention is intended to prevent false positive reaction by suppressing electrostatic interaction between an insoluble carrier and a solid-phased antibody (antigen), which is a cause of non-specific color development. However, there is a problem that the detection sensitivity is lowered when an amino acid is added to an amount capable of sufficiently absorbing the non-specific factor.
本発明は、上記に鑑み、検出感度を低下させること無く、種々の非特異因子に起因する非特異的反応を抑えることができるイムノクロマトグラフィー用試験片を提供することを目的とする。 In view of the above, an object of the present invention is to provide an immunochromatographic test strip that can suppress non-specific reactions caused by various non-specific factors without reducing detection sensitivity.
本発明者等は、鋭意検討を行い、検出系を構成する標識物質及びクロマト膜の各々に最適なブロッキング剤を適用することで、非特異物質の吸着による非特異反応を検出感度の低下を招くことなく達成できることを見出し本発明に想到した。 The present inventors have intensively studied and applied an optimum blocking agent to each of the labeling substance and the chromatographic membrane constituting the detection system, thereby causing a reduction in detection sensitivity of nonspecific reactions due to adsorption of nonspecific substances. The inventors have found out that the present invention can be achieved without any problem, and have arrived at the present invention.
即ち、本発明は、少なくとも、被検出物と特異的に反応する特異的結合物が担持された不溶性担体と、メンブラン上に固定された被検出物と特異的に反応する特異的結合物から成るイムノクロマトグラフィー用試験片において、前記不溶性担体が牛血清アルブミンでブロッキングされ、かつ、前記メンブランがカゼインでブロッキングされてなることを特徴とするイムノクロマトグラフィー用試験片である。 That is, the present invention comprises at least an insoluble carrier on which a specific binding substance that specifically reacts with an object to be detected is supported and a specific binding substance that specifically reacts with an object to be detected immobilized on a membrane. An immunochromatographic test strip, wherein the insoluble carrier is blocked with bovine serum albumin and the membrane is blocked with casein.
非特異物質の吸着を抑制する手段として、ブロッキング剤を適用すること自体は、上記背景技術からみても公知であるが、本発明は、一つの試験片に対して異なるブロッキング剤を適用するものであり、また、不溶性担体には牛血清アルブミン(以下、BSAという)のみを、クロマト膜にはカゼインのみを選択し適用部位に応じた最適なブロッキング剤を明示するものである。このようにすることで、非特異物質の吸着を抑制し、検出感度を最大限に増大させている。 As a means for suppressing the adsorption of non-specific substances, the application of a blocking agent itself is also known from the above background art, but the present invention applies a different blocking agent to one test piece. In addition, only bovine serum albumin (hereinafter referred to as BSA) is selected as the insoluble carrier, and only casein is selected as the chromatographic membrane, and the optimum blocking agent corresponding to the application site is clearly indicated. By doing so, the adsorption of non-specific substances is suppressed and the detection sensitivity is maximized.
この点、メンブランだけをブロッキングした場合には、条件によっては被検出物と特異的に反応する特異的結合物が担持された不溶性担体の非特異的吸着が生じることがある。非特異的吸着に関係するのはメンブランだけではなく、特異的結合物が担持された不溶性担体側にも原因があるので、該不溶性担体表面もブロッキングすることにより、確実に非特異的吸着を防止することができる。また、不溶性担体側をカゼインでブロックし、メンブラン側をBSAでブロックした、逆の形態にしても検出感度は低下する。更に、BSAとBSAの組み合わせ、カゼインとカゼインの組み合わせのような同じブロッキング剤を組み合わせでも良好な感度は得られない。 In this regard, when only the membrane is blocked, non-specific adsorption of an insoluble carrier carrying a specific binding substance that reacts specifically with the detected substance may occur depending on conditions. Non-specific adsorption is related not only to the membrane but also to the insoluble carrier side on which the specific binding substance is supported. By blocking the surface of the insoluble carrier, non-specific adsorption is surely prevented. can do. Moreover, even if the insoluble carrier side is blocked with casein and the membrane side is blocked with BSA, the detection sensitivity also decreases. Furthermore, even if the same blocking agent such as a combination of BSA and BSA or a combination of casein and casein is combined, good sensitivity cannot be obtained.
以下、本発明に係るイムノクロマトグラフィー用試験片の構成について説明する。本発明において、「被検出物」とは、免疫化学的反応(すなわち抗原抗体反応)等の特異的な反応により、特異的結合物と複合体を形成し得るものであれば特に制限されない。例えば、細菌由来の抗原、ウイルス由来の抗原、あるいは腫瘍マーカー抗原等が挙げられる。 Hereinafter, the configuration of the immunochromatographic test piece according to the present invention will be described. In the present invention, the “object to be detected” is not particularly limited as long as it can form a complex with a specific binding substance by a specific reaction such as an immunochemical reaction (that is, an antigen-antibody reaction). For example, antigens derived from bacteria, antigens derived from viruses, tumor marker antigens and the like can be mentioned.
被検出物と結合する、不溶性担体に担持された特異的結合物は、被検出物と、抗体抗原反応等の特異的な反応により結合する物質であればよく、例えば、抗原、ハプテン、抗体等が挙げられる。本発明においては、特異的結合物は、抗原、抗体などの免疫化学的成分が好ましい。抗原としては、PSA(前立腺特異抗原)、AFP(α−フェトプロテイン)、CEA(癌胎児性抗原)等の腫瘍マーカー、アデノウイルス、インフルエンザウィルス、C型肝炎ウイルス等のウイルス由来蛋白質、β2−ミクログロブリン、ヒトアルブミン、ヒトヘモグロビン等の血液由来たん白質等が挙げられる。抗体としては、IgG、IgM、IgA、IgE、IgDのいずれでも良く、また、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体のいずれでも良い。具体的には、抗PSA抗体、抗AFP抗体、抗CEA抗体、抗アデノウイルス抗体、抗インフルエンザウィルス抗体、抗C型肝炎ウイルス抗体、抗β2−ミクログロブリン抗体、抗ヒトアルブミン抗体、抗ヒトヘモグロビン抗体等が挙げられる。1種類の抗原に対して使用する抗体は1種類以上であれば良いが、抗原認識部位が異なる2種類の抗体を用いることがより好ましい。また、被検出物は1種類に限定されず、2種類以上であっても良い。 The specific binding substance supported on the insoluble carrier that binds to the detection target may be any substance that binds to the detection target by a specific reaction such as an antibody antigen reaction, such as an antigen, a hapten, an antibody, etc. Is mentioned. In the present invention, the specific conjugate is preferably an immunochemical component such as an antigen or an antibody. Antigens include tumor markers such as PSA (prostate specific antigen), AFP (α-fetoprotein), CEA (carcinoembryonic antigen), virus-derived proteins such as adenovirus, influenza virus, hepatitis C virus, β2-microglobulin And blood-derived proteins such as human albumin and human hemoglobin. The antibody may be any of IgG, IgM, IgA, IgE, and IgD, and may be any of a monoclonal antibody and a polyclonal antibody. Specifically, anti-PSA antibody, anti-AFP antibody, anti-CEA antibody, anti-adenovirus antibody, anti-influenza virus antibody, anti-hepatitis C virus antibody, anti-β2-microglobulin antibody, anti-human albumin antibody, anti-human hemoglobin antibody Etc. One or more antibodies may be used against one type of antigen, but it is more preferable to use two types of antibodies having different antigen recognition sites. Further, the detected object is not limited to one type and may be two or more types.
不溶性担体としては、その表面上に特異的結合物及びBSAを固定することができればよく、例えば、金コロイド等の金属コロイド、セレニウムコロイド等の非金属コロイド、着色樹脂粒子、染料コロイド及び着色リポソーム等の不溶性粒状物質等が挙げられるが、金属コロイド、特に金コロイドが好ましい。金コロイドを不溶性担体として使用する場合、その粒径は、特異的結合物やBSA等の固定性、不溶性担体の分散性、イムノクロマトグラフィー用試験片とした時の試薬感度等の観点から、好ましくは100nm以下であり、特異的結合物やBSAを不溶性担体に担持する時の精製の容易性の観点から、好ましくは10nm以上である。 As the insoluble carrier, it is only necessary to fix a specific binding substance and BSA on the surface thereof. For example, metal colloid such as gold colloid, non-metal colloid such as selenium colloid, colored resin particles, dye colloid and colored liposome Insoluble particulate materials, and the like, metal colloids, particularly gold colloids are preferred. When using colloidal gold as an insoluble carrier, the particle size is preferably from the viewpoints of immobilization of specific binding substances and BSA, dispersibility of the insoluble carrier, reagent sensitivity when used as a test piece for immunochromatography, etc. The thickness is 100 nm or less, and preferably 10 nm or more from the viewpoint of ease of purification when a specific binding substance or BSA is supported on an insoluble carrier.
ここで、不溶性担体のブロッキング剤であるBSAの好適な添加量は、不溶性担体の表面積1cm2当たり0.01〜50mgであり、好ましくは、0.01〜5mgである。0.01mg未満であると、試料中に混在する成分が不溶性担体に非特異的に吸着し、偽陽性化を起こしやすく、50mgを超えると、イムノクロマトグラフィー用試験片とした時の試薬感度が低下し、所望の効果が得られないと考えられる。 Here, the suitable addition amount of BSA which is a blocking agent for the insoluble carrier is 0.01 to 50 mg, preferably 0.01 to 5 mg per 1 cm 2 of the surface area of the insoluble carrier. If it is less than 0.01 mg, the components mixed in the sample adsorb nonspecifically to the insoluble carrier and easily cause false positives. If it exceeds 50 mg, the reagent sensitivity when used as a test piece for immunochromatography is lowered. However, it is considered that a desired effect cannot be obtained.
一方、メンブランは、毛細管現象により試料検体を吸収し流動させることができるものであれば、特に限定されるものではない。例えば、ニトロセルロース、酢酸セルロース、ナイロン、ポリエーテルスルホン、ポリビニルアルコール、ポリエステル、ガラス繊維、ポリオレフィン、セルロース、これらの混合繊維からなる人工ポリマーからなる群から選択される。 On the other hand, the membrane is not particularly limited as long as it can absorb and flow the sample specimen by capillary action. For example, nitrocellulose, cellulose acetate, nylon, polyethersulfone, polyvinyl alcohol, polyester, glass fiber, polyolefin, cellulose, or an artificial polymer composed of a mixed fiber thereof is selected.
メンブランをブロッキングするブロッキング剤であるカゼインの配合量は、クロマト膜の表面積1cm2当たり0.1〜100mgであり、好ましくは、0.1〜20mgである。0.1mg未満であると、試料中に混在する成分や特異的結合物が担持された不溶性担体がメンブランに非特異的に吸着し、偽陽性化を起こしやすく、100mgを超えると、イムノクロマトグラフィー用試験片とした時の試薬感度が低下する。 The amount of casein that is a blocking agent for blocking the membrane is 0.1 to 100 mg, preferably 0.1 to 20 mg per 1 cm 2 of the surface area of the chromatographic membrane. If it is less than 0.1 mg, an insoluble carrier carrying a component or a specific binding substance mixed in the sample is non-specifically adsorbed to the membrane and easily causes false positives. Reagent sensitivity when used as a test piece decreases.
本発明において各部位にブロッキングを行う方法としては、不溶性担体のブロッキングについては、特異的結合物を不溶性担体に担持した後に行えばよい。特異的結合物の担持は、不溶性担体の溶液(懸濁液)に、特異的結合物(抗体、抗原)を添加して、特定の時間、攪拌または静置して不溶性担体に特異的結合物を吸着させるものであるが、特異的結合物の不溶性担体への担持後、溶液系にBSA溶液(例えば、BSAを含むリン酸緩衝液)を添加することで、不溶性担体がBSAでブロッキングされた特異的結合物の懸濁液を得ることができる。あるいは、特異的結合物の不溶性担体への担持後、遠心分離を行い、不溶性担体に担持されていない特異的結合物を除去した後に、BSA溶液(例えば、BSAを含むリン酸緩衝液)を添加することで、不溶性担体がBSAでブロッキングされた特異的結合物の懸濁液を得ることができる。そして、試験片の作製においては、これをクロマトグラフィー媒体上に滴下、乾燥させるか、又は、適宜のパッドに懸濁液を塗布、乾燥させたものをクロマトグラフィー媒体に貼り着ければ良い。 As a method for blocking each site in the present invention, the blocking of the insoluble carrier may be performed after the specific binding substance is supported on the insoluble carrier. The specific binding substance is supported by adding the specific binding substance (antibody, antigen) to the solution (suspension) of the insoluble carrier and stirring or standing for a specific time to specifically bind the insoluble carrier. After the specific binding substance is supported on the insoluble carrier, the insoluble carrier is blocked with BSA by adding a BSA solution (for example, a phosphate buffer containing BSA) to the solution system. A suspension of specific binders can be obtained. Alternatively, after carrying the specific binding substance on the insoluble carrier, centrifuging to remove the specific binding substance not carried on the insoluble carrier, and then adding the BSA solution (for example, phosphate buffer containing BSA) By doing so, a suspension of the specific binding substance in which the insoluble carrier is blocked with BSA can be obtained. In preparing the test piece, it may be dropped on a chromatography medium and dried, or a suspension prepared by applying a suspension to an appropriate pad may be attached to the chromatography medium.
また、メンブランのブロッキングについては、メンブランをカゼイン溶液(例えば、カゼインを含むリン酸緩衝液)に浸漬し乾燥させることで可能である。カゼイン溶液に浸漬後、界面活性剤を含む緩衝液等で洗浄しても良い。カゼインの添加量は、カゼイン溶液の濃度及び浸漬時間により調整できる。 The membrane can be blocked by immersing the membrane in a casein solution (for example, a phosphate buffer containing casein) and drying it. After dipping in the casein solution, it may be washed with a buffer solution containing a surfactant. The amount of casein added can be adjusted by the concentration of the casein solution and the immersion time.
尚、イムノクロマトグラフィー用試験片においては、特異的結合物が固定された不溶性担体が保持された不溶性担体保持部の他、被検出物−特異的結合物複合体を捕捉するための特異的結合物が固定されている判定部(テストライン)や、判定部を通過した不溶性担体を捕捉する吸収部等から成る。また、試験片基材であるイムノクロマトグラフィー媒体には、通常、水溶液を吸収しないバッキングシートが用いられる。 In immunochromatographic test strips, in addition to an insoluble carrier holding part holding an insoluble carrier to which a specific binding substance is immobilized, a specific binding substance for capturing a detected substance-specific binding substance complex. Is composed of a determination unit (test line) in which is fixed, an absorption unit for capturing the insoluble carrier that has passed the determination unit, and the like. In addition, a backing sheet that does not absorb an aqueous solution is usually used for the immunochromatography medium that is the base material of the test piece.
以上説明したように、本発明のイムノクロマトグラフィー用試験片は、ブロッキング剤として、不溶性担体側にBSAを用い、メンブラン側にカゼインを用いて、不溶性担体とメンブランの両方をブロッキングすることにより、検出感度の低下を招くことなく非特異的吸着を抑制できる。 As described above, the immunochromatographic test strip of the present invention has a detection sensitivity by blocking both the insoluble carrier and the membrane using BSA as the blocking agent and casein on the membrane side. Nonspecific adsorption can be suppressed without incurring a decrease in.
以下に、本発明の好適な実施例を比較例と共に説明する。 In the following, preferred embodiments of the present invention will be described together with comparative examples.
〔実施例1〕
試験片の作製:以下の手順で、イムノクロマトグラフィー用試験片を作製した。
[Example 1]
Preparation of test piece : A test piece for immunochromatography was prepared according to the following procedure.
A.メンブランのブロッキング及び判定部の作製
メンブランとしてニトロセルロースからなるシート(ミリポア社製、商品名:HF120、300mm×25mm)を用いた。5重量%のイソプロピルアルコールを含むリン酸緩衝液(pH7.4)で1.0mg/mlの濃度になるようにマウス由来抗PSAモノクローナル抗体を希釈した。この溶液150μLをメンブラン上に300mm×1mmとなるように塗布し、50℃で30分間乾燥させた。乾燥後、0.5重量%のカゼイン(和光純薬工業社製)を含むリン酸緩衝液(pH7.4)100mlに室温で30分間浸漬し、ブロッキングを行った。ブロッキング後、0.05重量%のTween20を含有するリン酸緩衝液(pH7.4)で洗浄し、室温で一晩乾燥させた。尚、このときのブロッキング剤の添加量は、メンブランの表面積1cm2当たり6.7mgであった。
A. Membrane blocking and determination part preparation A sheet made of nitrocellulose (trade name: HF120, 300 mm × 25 mm, manufactured by Millipore) was used as the membrane. The mouse-derived anti-PSA monoclonal antibody was diluted with a phosphate buffer (pH 7.4) containing 5% by weight of isopropyl alcohol to a concentration of 1.0 mg / ml. 150 μL of this solution was applied on the membrane so as to be 300 mm × 1 mm, and dried at 50 ° C. for 30 minutes. After drying, it was immersed in 100 ml of a phosphate buffer solution (pH 7.4) containing 0.5% by weight of casein (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) at room temperature for 30 minutes for blocking. After blocking, it was washed with a phosphate buffer (pH 7.4) containing 0.05% by weight of Tween 20 and dried overnight at room temperature. At this time, the amount of the blocking agent added was 6.7 mg per 1 cm 2 of the membrane surface area.
B.不溶性担体への抗体の担持、ブロッキング及び標識固定部の作製
金コロイド分散液(田中貴金属工業社製:Auコロイド溶液−LC)0.5mlに、リン酸緩衝液(pH7.4)で0.1mg/mlの濃度になるように希釈したマウス由来抗PSAモノクローナル抗体を0.1ml加え、室温で10分間静置した。次いで、10重量%のBSAを含むリン酸緩衝液(pH7.4)を0.1ml加え、十分撹拌した後、8000×gで15分間遠心分離を行った。上清を除去した後、1重量%のBSAを含むリン酸緩衝液(pH7.4)を0.1ml加えた。以上の手順で抗PSAモノクローナル抗体を金コロイドで標識した標識物質を作製した。次に、この標識物質溶液をグラスファイバー製パッドに均一になるように添加した後、真空乾燥機にて乾燥させ、不溶性担体保持部を作製した。このときのブロッキング剤の添加量は、BSAの添加量として、金コロイドの表面積1cm2当たり0.5mgであった。
B. Preparation of antibody on insoluble carrier, blocking and preparation of label immobilization part Gold colloid dispersion (Tanaka Kikinzoku Kogyo Co., Ltd .: Au colloid solution-LC) 0.5 ml, phosphate buffer (pH 7.4) 0.1 mg 0.1 ml of mouse-derived anti-PSA monoclonal antibody diluted to a concentration of / ml was added and allowed to stand at room temperature for 10 minutes. Next, 0.1 ml of a phosphate buffer solution (pH 7.4) containing 10% by weight of BSA was added and stirred sufficiently, followed by centrifugation at 8000 × g for 15 minutes. After removing the supernatant, 0.1 ml of a phosphate buffer (pH 7.4) containing 1% by weight of BSA was added. A labeled substance obtained by labeling the anti-PSA monoclonal antibody with colloidal gold was prepared by the above procedure. Next, this labeling substance solution was uniformly added to a glass fiber pad and then dried with a vacuum dryer to prepare an insoluble carrier holding part. The addition amount of the blocking agent at this time was 0.5 mg per 1 cm 2 of the surface area of the gold colloid as the addition amount of BSA.
C.試験片の作製
次に、バッキングシートから成る基材に、上記で作製した判定部を有するメンブラン、溶性担体保持部、試料添加部であるサンプルパッド、展開した試料や不溶性担体を吸収するための吸収パッドを貼り合わせた。そして、裁断機で幅が5mmとなるように裁断し、イムノクロマトグラフィー用試験片とした。
C. Preparation of test piece Next, the base material composed of a backing sheet is made to absorb the membrane having the determination part prepared above, the soluble carrier holding part, the sample pad as the sample addition part, the developed sample and the insoluble carrier. The pads were pasted together. And it cut | judged so that a width | variety might be set to 5 mm with the cutting machine, and it was set as the test piece for immunochromatography.
検出感度の測定試験
上記のように作製した実施例1のイムノクロマトグラフィー用試験片に関し、その検出感度を比較検討した。検出に当たって、1%BSA、50mM塩化ナトリウムを含むリン酸緩衝液(pH7.4)を混合した展開液を作製し、これに被検物質(PSA)濃度の異なる複数の試料を100μLずつ混合し、複数の展開液を調製した。そして、PSA濃度の異なる展開液を試験片の試料添加に滴下して展開させ、15分後に目視判定をした。テストラインの赤い線を確認できるものを「+」、赤い線は確認できるが、非常に色が薄いものを「±」、赤い線を確認できないものを「−」とした。表1に結果を示す。
Measurement test of detection sensitivity The detection sensitivity of the immunochromatographic test piece of Example 1 produced as described above was compared and examined. For detection, a developing solution in which a phosphate buffer solution (pH 7.4) containing 1% BSA and 50 mM sodium chloride is mixed is prepared, and a plurality of samples having different test substance (PSA) concentrations are mixed with 100 μL each. A plurality of developing solutions were prepared. And the developing solution from which PSA density | concentration differs was dripped at the sample addition of the test piece, it was made to develop, and visual determination was carried out 15 minutes afterward. The test line that can confirm the red line is “+”, the red line can be confirmed, but the light color is “±”, and the red line that cannot be confirmed is “−”. Table 1 shows the results.
〔実施例2〕
実施例1でメンブランをブロッキングするカゼインの濃度を1.5%にし、金コロイドをブロッキングするBSAの量を2mlにしたこと以外は、実施例1と同様の方法でイムノクロマトグラフィー用試験片を作製した。このときのメンブランへのブロッキング剤の添加量はメンブラン1cm2当たり20.1mgであり、金コロイドへのブロッキング剤の添加量は金コロイド1cm2当たり10mgであった。検出感度の測定試験および判定は実施例1と同様の方法で行った。結果を表1に示した。
[Example 2]
A test piece for immunochromatography was prepared in the same manner as in Example 1 except that the concentration of casein blocking the membrane in Example 1 was 1.5% and the amount of BSA blocking gold colloid was 2 ml. . At this time, the amount of the blocking agent added to the membrane was 20.1 mg per cm 2 of the membrane, and the amount of the blocking agent added to the gold colloid was 10 mg per cm 2 of the gold colloid. The measurement test and determination of detection sensitivity were performed in the same manner as in Example 1. The results are shown in Table 1.
〔実施例3〕
実施例1でメンブランをブロッキングするカゼインの濃度を0.05%にし、金コロイドをブロッキングするBSAの濃度を1%にしたこと以外は、実施例1と同様の方法でイムノクロマトグラフィー用試験片を作製した。このときのメンブランへのブロッキング剤の添加量はメンブラン1cm2当たり0.7mgであり、金コロイドへのブロッキング剤の添加量は金コロイド1cm2当たり0.05mgであった。検出感度の測定試験および判定は実施例1と同様の方法で行った。結果を表1に示した。
Example 3
A test piece for immunochromatography was prepared in the same manner as in Example 1, except that the concentration of casein blocking the membrane in Example 1 was 0.05% and the concentration of BSA blocking gold colloid was 1%. did. At this time, the amount of the blocking agent added to the membrane was 0.7 mg per cm 2 of the membrane, and the amount of the blocking agent added to the gold colloid was 0.05 mg per cm 2 of the gold colloid. The measurement test and determination of detection sensitivity were performed in the same manner as in Example 1. The results are shown in Table 1.
〔実施例4〕
実施例1で、メンブランをブロッキングするカゼインの濃度を5%にしたこと以外は、実施例1と同様の方法でイムノクロマトグラフィー用試験片を作製した。このときのメンブランへのブロッキング剤の添加量はメンブラン1cm2当たり67mgであった(金コロイドへのブロッキング剤の添加量は実施例1と同じである)。検出感度の測定試験および判定は実施例1と同様の方法で行った。結果を表1に示した。
Example 4
In Example 1, a test piece for immunochromatography was prepared in the same manner as in Example 1 except that the concentration of casein blocking the membrane was 5%. At this time, the amount of the blocking agent added to the membrane was 67 mg per 1 cm 2 of the membrane (the amount of the blocking agent added to the gold colloid was the same as in Example 1). The measurement test and determination of detection sensitivity were performed in the same manner as in Example 1. The results are shown in Table 1.
〔比較例〕
実施例におけるメンブランのブロッキング剤と金コロイドのブロッキング剤の組合せに代えて、種々のブロッキング剤の組合せでブロッキング処理を行ったことを除いては、実施例と同様にしてイムノクロマトグラフィー用試験片を作製し、実施例と同様に検体を測定した。ブロッキング剤の添加量は、実施例1と同量となるようにした。また、試験片の製造工程も実施例1と同様に行った。
[Comparative example]
Test specimens for immunochromatography were prepared in the same manner as in the Examples except that the blocking treatment was performed with various combinations of blocking agents instead of the membrane blocking agents and colloidal gold blocking agents in the examples. The sample was measured in the same manner as in the example. The amount of blocking agent added was the same as in Example 1. Moreover, the manufacturing process of the test piece was also performed in the same manner as in Example 1.
表1から明らかなように、金コロイド側にBSAを用い、メンブラン側にカゼインを用いた組み合わせでブロッキングされた実施例に係る試験片のみがPSA抗原を検出できた。金コロイド側をカゼインでブロッキングし、メンブラン側をBSAでブロッキングする、所謂逆の形態にすると、検出は不可能であった。更に、BSAとBSAの組み合わせ、カゼインとカゼインの組み合わせといった、同じたんぱく質の組み合わせでも非特異反応に起因すると思われる反応が現れ、良好な結果は得られなかった。また、BSAの代わりにゼラチンを用いた場合も特異的な検出が不可能であった。但し、メンブラン側のBSAでのブロッキング量を多くした場合(実施例4)、感度においてわずかに劣る面がある。 As is clear from Table 1, only the test piece according to the example blocked with a combination using BSA on the gold colloid side and casein on the membrane side could detect the PSA antigen. Detection was not possible when the colloidal gold side was blocked with casein and the membrane side was blocked with BSA, the so-called reverse configuration. Furthermore, even with the same protein combination, such as a combination of BSA and BSA and a combination of casein and casein, a reaction that appears to be caused by a non-specific reaction appeared, and good results were not obtained. In addition, specific detection was impossible when gelatin was used instead of BSA. However, when the amount of blocking with BSA on the membrane side is increased (Example 4), there is a slightly inferior sensitivity.
Claims (3)
前記不溶性担体が牛血清アルブミンでブロッキングされ、かつ、前記メンブランがカゼインでブロッキングされてなることを特徴とするイムノクロマトグラフィー用試験片。 In an immunochromatographic test strip comprising at least an insoluble carrier carrying a specific binding substance that specifically reacts with a detection substance and a specific binding substance that specifically reacts with the detection substance immobilized on the membrane. ,
A test piece for immunochromatography, wherein the insoluble carrier is blocked with bovine serum albumin and the membrane is blocked with casein.
The immunochromatographic test piece according to claim 1, wherein the amount of casein blocking the membrane is 0.1 to 100 mg per 1 cm 2 of surface area of the membrane.
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Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2017150516A1 (en) * | 2016-02-29 | 2017-09-08 | 富士フイルム株式会社 | Kit for determining quantity of substance to be assayed in biological sample and method for determining quantity of substance to be assayed in biological sample |
| JPWO2020196296A1 (en) * | 2019-03-25 | 2020-10-01 |
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2000258418A (en) * | 1999-03-12 | 2000-09-22 | Arkray Inc | Measuring method by using immuno-chromatography and test body analytical tool used therein |
| JP2002202307A (en) * | 2000-12-27 | 2002-07-19 | Iatron Lab Inc | Immunochromatographic method |
| WO2003044534A1 (en) * | 2001-11-22 | 2003-05-30 | Wakunaga Pharmaceutical Co.,Ltd. | Immunochromatographic test strip for measuring analysis subject in specimen in trace amount |
| JP2004294157A (en) * | 2003-03-26 | 2004-10-21 | Denka Seiken Co Ltd | Method for producing conjugate of colloidal gold and antibody |
-
2007
- 2007-11-30 JP JP2007310519A patent/JP2009133740A/en active Pending
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2000258418A (en) * | 1999-03-12 | 2000-09-22 | Arkray Inc | Measuring method by using immuno-chromatography and test body analytical tool used therein |
| JP2002202307A (en) * | 2000-12-27 | 2002-07-19 | Iatron Lab Inc | Immunochromatographic method |
| WO2003044534A1 (en) * | 2001-11-22 | 2003-05-30 | Wakunaga Pharmaceutical Co.,Ltd. | Immunochromatographic test strip for measuring analysis subject in specimen in trace amount |
| JP2004294157A (en) * | 2003-03-26 | 2004-10-21 | Denka Seiken Co Ltd | Method for producing conjugate of colloidal gold and antibody |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2017150516A1 (en) * | 2016-02-29 | 2017-09-08 | 富士フイルム株式会社 | Kit for determining quantity of substance to be assayed in biological sample and method for determining quantity of substance to be assayed in biological sample |
| JPWO2017150516A1 (en) * | 2016-02-29 | 2018-12-27 | 富士フイルム株式会社 | Kit for quantifying a substance to be measured in a biological sample and method for quantifying a substance to be measured in a biological sample |
| US10816469B2 (en) | 2016-02-29 | 2020-10-27 | Fujifilm Corporation | Kit for quantitatively determining substance to be measured in biological sample and method for quantitatively determining substance to be measured in biological sample |
| JPWO2020196296A1 (en) * | 2019-03-25 | 2020-10-01 |
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