JP2009136294A - ニュートロカインα - Google Patents
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Abstract
【解決手段】(a)完全なアミノ酸配列を有するニュートロカインαポリペプチドをコードする配列(b)1996年10月22日のATCC寄託に含まれるcDNAクローンによってコードされる完全なアミノ酸配列を有するニュートロカインαをコードする配列(c)ニュートロカインαポリペプチド細胞外ドメインをコードする配列(d)ニュートロカインαポリペプチド膜貫通ドメインをコードする配列(e)ニュートロカインαポリペプチド細胞内ドメインをコードする配列(f)膜貫通ドメインを欠除する溶解性ニュートロカインαポリペプチドをコードする配列、及び(g)(a)、(b)、(c)、(d)、(e)、または(f)の任意の配列に相補的な配列。
【選択図】なし
Description
ヒト腫瘍壊死因子(TNF−α)および(TNF−β、またはリンホトキシン)は、ポリペプチドメディエーターの幅広いクラスの関連メンバーであり、このクラスはインターフェロン、インターロイキン、および増殖因子を含み、総称してサイトカインと呼ばれる(Beutler, B.およびCerami, A. Annu. Ret., Immunol.,7:625−655(1989))。サイトカインレセプターの配列分析は、以下の膜タンパク質のいくつかのサブファミリーを定義する:(1)Igスーパーファミリー、(2)ヘマトポエチン(サイトカインレセプタースーパーファミリー)、および(3)腫瘍壊死因子(TNF)/神経成長因子(NGF)レセプタースーパーファミリー(TNFスーパーファミリーの概説については、GrussおよびDower, Blood 85(12):3378−3404(1995)、ならびにAggarwalおよびNatarajan, Eur. Cytokine Netw., 7(2):93−124(1996)を参照のこと)。TNF/NGFレセプタースーパーファミリーは、少なくとも10の異なったタンパク質を含む。GrussおよびDower、前出。これらのレセプターのリガンドは同定され、そして少なくとも2つのサイトカインスーパーファミリーに属する。GrussおよびDower、前出。
Shock Forum 715−718頁、(1989);Debets, J. M. H.ら、Crit. Care Med. 17:489−497(1989);Calandra, T.ら、J. Infec. Dis. 161:982−987(1990))。
2:162−169(1990)))。これらのmAbのいくつかは、ヒトTNFのエピトープをマッピングし、酵素免疫アッセイを開発する(Fendlyら、前出;Hiralら、前出;Mollerら、前出)ため、および組換えTNFの精製において補助する(Bringmanら、前出)ために使用された。しかし、これらの研究は、免疫原性、特異性の欠除、および/または薬学的適合性に起因して、インビボ診断的使用またはヒトにおける治療的使用のために使用され得る抗体を中和するTNFを産生するための基礎を提供しない。
Shock 60:279−292(1990))。
本発明は、TNFおよび関連サイトカインに構造的に類似し、そして類似の生物学的効果および活性を有すると考えられるサイトカインをコードするポリヌクレオチドを含む単離された核酸分子を提供する。このサイトカインは、ニュートロカインαと命名され、そして本発明は、少なくとも図1におけるアミノ酸配列(配列番号2)または1996年10月22日にATCC寄託として細菌宿主において寄託されたcDNAクローンによりコードされるアミノ酸配列の一部を有するニュートロカインαポリペプチドを含む。寄託されたニュートロカインαクローンの配列決定により決定されたヌクレオチド配列(これは、図1(配列番号1)に示される)は、N末端メチオニン、約46アミノ酸残基の推定細胞内ドメイン、約26アミノ酸の推定膜貫通ドメイン、約213アミノ酸の推定細胞外ドメイン、および約31kDaの完全タンパク質についての推定分子量を含む285アミノ酸残基の完全ポリペプチドをコードするオープンリーディングフレームを含む。他のII型膜貫通タンパク質について、ニュートロカインαの可溶性形態は、膜貫通ドメインから切断された細胞外ドメインのすべてまたは一部、および膜貫通ドメインを欠く完全ニュートロカインαポリペプチドを含むポリペプチド(すなわち、細胞内ドメインに結合した細胞外ドメイン)を含む。
(a)図1における完全なアミノ酸配列(配列番号2)を有するニュートロカインαポリペプチドをコードするヌクレオチド配列;
(b)1996年10月22日のATCC寄託に含まれるcDNAクローンによってコードされる完全なアミノ酸配列を有するニュートロカインαをコードするヌクレオチド配列;
(c)ニュートロカインαポリペプチド細胞外ドメインをコードするヌクレオチド配列;
(d)ニュートロカインαポリペプチド膜貫通ドメインをコードするヌクレオチド配列;
(e)ニュートロカインαポリペプチド細胞内ドメインをコードするヌクレオチド配列;
(f)細胞外ドメインおよび細胞内ドメインを含むが、膜貫通ドメインを欠除する溶解性ニュートロカインαポリペプチドをコードするヌクレオチド;
(g)上記の(a)、(b)、(c)、(d)、(e)、または(f)における任意のヌクレオチド配列に相補的なヌクレオチド配列。
(a)配列番号2の残基n〜285からなるアミノ酸配列を有するポリペプチドをコードするヌクレオチド配列であって、ここで、nは2〜190の範囲の整数である、配列;
(b)配列番号2の残基1〜mからなるアミノ酸配列を有するポリペプチドをコードするヌクレオチド配列であって、ここで、mは274〜284の範囲の整数である、配列;
(c)配列番号2の残基n〜mからなるアミノ酸配列を有するポリペプチドをコードするヌクレオチド配列であって、ここで、nおよびmはそれぞれ上記の(a)および(b)に規定される整数である、配列;
(d)1996年10月22日のATCC寄託に含まれるcDNAクローンによってコードされる完全なニュートロカインαアミノ酸配列の一部分からなるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列であって、ここで、該一部分が、該完全なアミノ酸配列のアミノ末端から1〜190アミノ酸およびC末端から1〜11アミノ酸を含まない、ヌクレオチド配列。
(a)図1(配列番号2)における完全なアミノ酸配列を有する、ニュートロカインαのアミノ酸配列;
(b)1996年10月22日のATCC寄託に含まれるcDNAクローンによってコードされる完全なアミノ酸配列を有する、ニュートロカインαのアミノ酸配列;
(c)ニュートロカインαポリペプチド細胞外ドメインのアミノ酸配列;
(d)ニュートロカインαポリペプチド膜貫通ドメインのアミノ酸配列;
(e)ニュートロカインαポリペプチド細胞内ドメインのアミノ酸配列;
(f)ドメインを含む溶解性ニュートロカインαポリペプチドのアミノ酸配列;および
(g)(a)、(b)、(c)、(d)、(e)、または(f)のポリペプチドのいずれか1つのエピトープ保有部分のアミノ酸配列。
(a)クローンHSOAD55Rのヌクレオチド配列(配列番号7);
(b)クローンHSLAH84Rのヌクレオチド配列(配列番号8);
(c)クローンHLTBM08Rのヌクレオチド配列(配列番号9);
(d)図1に示される配列(配列番号1)の部分のヌクレオチド配列であって、ここで、前記部分は、ヌクレオチド1〜ヌクレオチド809の少なくとの30の連続したヌクレオチドを含む;および
(e)上記の(a)、(b)、(c)、または(d)におけるヌクレオチド配列のいずれかに相補的なヌクレオチド配列。
本発明は、クローン化されたcDNAニュートロカインαを配列決定することによって決定された、図1(配列番号2)に示されるアミノ酸配列を有するニュートロカインαポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む単離された核酸分子を提供する。図1(配列番号1)に示されるヌクレオチド配列は、1996年10月22日にアメリカンタイプカルチャーコレクション、12301 Park Lawn Drive, Rockville, Marylandに寄託された、HNEDU15クローンの配列決定によって得られた。寄託されたクローンは、pBluescript SK(−)プラスミド(Stratagene, La Jolla, CA)に含まれる。
他に示されない限り、本明細書中でDNA分子を配列決定することによって決定されたすべてのヌクレオチド配列は、自動化DNA配列決定機(例えば、Applied Biosystems, Inc.からのModel 373)を用いて決定され、そして本明細書中で決定されるDNA分子によってコードされるポリペプチドのすべてのアミノ酸配列は、上記のように決定されるDNA配列の翻訳によって予想された。従って、この自動化アプローチによって決定された任意のDNA配列について当該分野において公知のように、本明細書中で決定される任意のヌクレオチド配列はいくつかの誤りを含み得る。自動化によって決定されるヌクレオチド配列は、配列決定されるDNA分子の実際のヌクレオチド配列に対して、代表的には少なくとも約90%の同一、より代表的には少なくとも約95%から少なくとも約99.9%の同一である。実際の配列は、当該分野において周知の手動DNA配列決定方法を含む他のアプローチによってより正確に決定され得る。当該分野においてまた公知のように、実際の配列と比較した、決定されるヌクレオチド配列における単一の挿入または欠失は、ヌクレオチド配列の翻訳におけるフレームシフトを引き起こし、その結果、決定されるヌクレオチド配列によってコードされる予想されるアミノ酸配列は、挿入または欠失のような点にて始まる配列決定されるDNA分子によって実際にコードされるアミノ酸配列とは完全に異なる。
本発明は、さらに、ニュートロカインαタンパク質の一部、アナログ、または誘導体をコードする本発明の核酸分子の変異体に関する。変異体は、天然の対立遺伝子改変体のように、天然に生じ得る。「対立遺伝子改変体」によって、生物の染色体上の所定の遺伝子座を占める遺伝子のいくつかの代わりの形態の1つが意図される。Genes II, Lewin, B.編、John Wiley & Sons, New York (1985)。天然に存在しない変異体は、当該分野で公知の変異誘発技術を用いて生成され得る。
本発明はまた、本発明の単離されたDNA分子を含むベクター、組換えベクターで遺伝子操作された宿主細胞、および組換え技術によるニュートロカインαポリペプチドまたはそのフラグメントの産生に関する。ベクターは、例えば、ファージベクター、プラスミド、ウイルスベクター、またはレトロウイルスベクターであり得る。レトロウイルスベクターは、複製可能かまたは複製欠損であり得る。後者の場合、ウイルスの増殖は、一般的に、相補宿主細胞においてのみ生じる。ポリヌクレオチドは、宿主細胞における増殖のための選択マーカーを含むベクターに結合され得る。一般的に、プラスミドベクターは、リン酸カルシウム沈殿物のような沈殿物中か、または荷電された脂質との複合体中で導入される。ベクターがウイルスである場合、ベクターは、適切なパッケージング細胞株を用いてインビトロでパッケージングされ得、次いで宿主細胞に形質導入され得る。
本発明はさらに、寄託されたcDNAによってコードされるアミノ酸配列、もしくは図1(配列番号2)のアミノ酸配列を有する単離されたニュートロカインαポリペプチド、または上記ポリペプチドの一部を含むペプチドもしくはポリペプチドを提供する。
ニュートロカインαポリペプチドの特徴を改善または改変するために、タンパク質操作を用い得る。当業者に公知の組換えDNA技術は、新規な変異体タンパク質または「単一または複数のアミノ酸置換、欠失、付加を含むムテイン、または融合タンパク質」を作製するために用いられ得る。このような改変されたポリペプチドは、例えば、増強された活性または増加した安定性を示し得る。さらに、これらは、高収量で精製され得、そして少なくとも特定の精製条件および保存条件下で対応する天然のポリペプチドよりも良好な溶解度を示し得る。
例えば、分泌タンパク質の細胞外ドメインまたは成熟形態を含む多くのタンパク質について、1個以上のアミノ酸が、生物学的機能の実質的な損失を伴わずにN末端またはC末端から欠失され得ることが当該分野で公知である。例えば、Ronら, J. Biol. Chem., 268:2984−2988(1993)は、3、8、または27個のアミノ末端アミノ酸残基が失われたとしてもヘパリン結合活性を有する改変されたKGFタンパク質を報告した。
上記のタンパク質の末端欠失形態に加えて、ニュートロカインαポリペプチドのいくつかのアミノ酸配列は、タンパク質の構造または機能に有意な効果を有さずに変化し得ることが当業者に認識される。このような配列の相違が意図される場合、活性を決定するタンパク質の重要な領域が存在することを思い出すべきである。
Tolerance to Amino Acid Substitutions」,Science 247:1306−1310 (1990)に提供される。ここで、著者らは、変化に対するアミノ酸配列の寛容性を研究するための2つの主なアプローチが存在することを示す。第1の方法は、進化のプロセスにより、ここで、変異は、自然選択により受け入れられるかまたは拒絶されるかのいずれかである。第2のアプローチは、遺伝子操作を使用してアミノ酸変化を、クローン化された遺伝子の特異の位置に導入し、そして選択またはスクリーニングにより機能性を保持する配列が同定される。
Rev. Therapeutic Drug Carrier Systems 10:307−377 (1993))。
別の局面において、本発明は、本発明のポリペプチドのエピトープ保有部分を含む、ペプチドまたはポリペプチドを提供する。このポリペプチドのエピトープ部分は、本発明のポリペプチドの免疫原性または抗原性エピロープである。「免疫原性エピトープ」は、タンパク質全体が免疫原である場合、抗体応答を誘発するタンパク質の一部として定義される。一方では、抗体が結合し得るタンパク質分子の領域は、「抗原性エピトープ」と定義され得る。タンパク質の免疫原性エピトープの数は、一般には、抗原性エピトープの数よりも少ない。例えば、Geysenら、Proc. Natl. Acad. Sci.
USA 81:3998−4002(1983)を参照のこと。
sites on proteins. Science 219:660−666」を参照のこと。タンパク質−反応性血清を誘発し得るペプチドは、タンパク質の一次配列に頻繁に存在し、そして単純な化学的法則のセットにより特徴付けられ得、そしてインタクトなタンパク質(すなわち、免疫原性エピトープ)の免疫ドミナント領域にも、アミノ末端またはカルボキシル末端にも、制限されない。本発明の抗原性エピトープ保有ペプチドおよびポリペプチドは、それゆえ、本発明のポリペプチドに特異的に結合するモノクローナル抗体を含む抗体を惹起するのに有用である。例えば、Wilsonら、Cell 37:767−778 (1984)の777を参照のこと。
当業者が理解するように、本発明のニュートロカインαポリペプチドならびに上記のそれらのエピトープ保有フラグメントは、免疫グロブリン(IgG)の定常ドメインの一部と結合し得、キメラペプチドを生じる。これらの融合タンパク質は、精製を促進し、そしてインビボで増加した半減期を示す。これは、例えば、ヒトCD4−ポリペプチドの最初の2つのドメインおよび哺乳動物免疫グロブリンの重鎖または軽鎖の定常領域の種々のドメインからなるキメラタンパク質について示されている(EP A 394,827;Trauneckerら、Nature 331:84−86(1988))。IgG部分によるジスルフィド結合ダイマー構造を有する融合タンパク質はまた、他の分子の結合および中和において、モノマーニュートロカインαタンパク質またはタンパク質フラグメント単独よりも有効であり得る(Fountoulakisら、J. Biochem. 270:3958−3964(1995))。
ニュートロカインαが種々の組織および特に好中球において発現されることを本発明者らは発見した。多数の免疫系関連障害について、「標準的」ニューロカインα遺伝子発現レベル(すなわち、免疫系障害を有さない個体由来の免疫系組織または体液におけるニュートロカインα発現レベル)と比較して、実質的に変化(増大または減少)したレベルのニュートロカインα遺伝子発現が、このような障害を有する個体から採取された免疫系組織または他の細胞または体液(例えば、血清、血漿、尿、滑液、または髄液)において検出され得る。従って、本発明は、系障害の診断の間に有用な診断方法を提供し、これは、個体由来の免疫系組織または他の細胞または体液中のニュートロカインαタンパク質をコードする遺伝子の発現レベルを測定すること、および測定された遺伝子発現レベルと標準ニュートロカインα遺伝子発現レベルとを比較することを含み、それによって標準と比較した遺伝子発現レベルにおける増大または減少が免疫系障害の指標となる。
本発明での使用のためのニュートロカインαタンパク質特異的抗体は、完全なニュートロカインαタンパク質またはその抗原性ポリペプチドフラグメントに対して惹起され得る。これは、アルブミンのようなキャリアタンパク質と共に、またはそれが充分に長い(少なくとも約25アミノ酸)場合はキャリアを伴わずに、動物系(例えば、ウサギまたはマウス)に対して提示され得る。
Hybridomas, Elsevier, N.Y., (1981) pp563−681)を用いて調製され得る。一般に、このような手順は、ニュートロカインαタンパク質抗原、またはより好ましくはニュートロカインαタンパク質発現細胞で動物(好ましくは、マウス)を免疫する工程を包含する。適切な細胞は、抗ニュートロカインαタンパク質抗体に結合するそれらの能力によって認識され得る。このような細胞は、任意の適切な組織培養培地中で培養され得る;しかし、10%ウシ胎児血清(約56℃で不活化した)を補充し、約10g/lの非必須アミノ酸、約1,000U/mlのペニシリン、および約100μg/mlのストレプトマイシンを補充したEarle改変イーグル培地中で細胞を培養することが好ましい。このようなマウスの脾細胞が抽出され、そして適切な骨髄腫細胞株と融合される。任意の適切な骨髄腫細胞株が、本発明に従って使用され得る;しかし、アメリカンタイプカルチャーコレクション,Rockville, Marylandから入手可能な親骨髄腫細胞株(SP2O)を使用することが好ましい。融合後、得られたハイブリドーマ細胞はHAT培地中で選択的に維持され、次いでWandsら(Gastroenterology 80:225−232 (1981))に記載されているような限界希釈によってクローニングされる。次いで、このような選択によって得られたハイブリドーマ細胞は、ニュートロカインαタンパク質抗原に結合し得る抗体を分泌するクローンを同定するためにアッセイされる。
Taniguchiら, EP 171496; Morrisonら, EP 173494; Neubergerら, WO 8601533; Robinsonら,
WO 8702671; Boulianneら, Nature 312:643 (1984); Neubergerら, Nature 314:268 (1985)を参照のこと。
上記のように、ニュートロカインαポリヌクレオチドおよびポリペプチドは、ニュートロカインα活性の異常に高いまたは低い発現に関与する状態の診断に有用である。ニュートロカインαが発現される細胞および組織、ならびにニュートロカインαによって調整される活性が与えられると、標準または「正常」レベルと比較して個体における実質的に変化(増大または減少)したレベルのニュートロカインαの発現は、ニュートロカインαが発現され、そして/または活性である身体系に関連する病理状態を生じる。
ニュートロカインαポリペプチド組成物(特に、可溶性形態の細胞外ドメインであるポリペプチドを含む)は、個々の患者の臨床状態(特にニュートロカインαポリペプチド単独での処置の副作用)、ニュートロカインαポリペプチド組成物の送達部位、投与方法、投与スケジュール、および実施者に公知の他の要素を考慮して、良好な医療行為と一致した様式で処方および投薬される。従って、本明細書中の目的のためのニュートロカインαポリペプチドの「有効量」は、このような考慮によって決定される。
Sci. (USA) 77:4030−4034 (1980); EP 52,322; EP 36,676; EP 88,046; EP 143,949; EP
142, 641; 日本国特許出願第83−118008号; 米国特許第4,485,045号および同第4,544,545号; ならびにEP 102,324)。通常、リポソームは、小さな(約200〜800オングストローム)単層型のものであり、ここで脂肪含量は約30mol.%コレステロールより高く、選択される比率は、最適なニュートロカインαポリペプチド治療のために調整される。
本発明はまた、細胞におけるニュートロカインαの作用(例えば、レセプター分子のようなニュートロカインα結合分子との相互作用)を増強またはブロックする化合物を同定するために化合物をスクリーニングする方法を提供する。アゴニストは、ニュートロカインαの天然の生物学的機能を増大するか、またはニュートロカインと類似した様式で機能する化合物であり、一方、アンタゴニストは、そのような機能を減少または除去する。
本発明の核酸分子はまた、染色体の同定に有用である。配列は、個々のヒト染色体上の特定の位置に特異的に標的化され、そしてその位置にハイブリダイズし得る。さらに、現在、染色体上の特定の部位を同定する必要性がある。現在、実際の配列データ(反復多型)に基づいた染色体標識化試薬はほとんどが、染色体位置の標識に利用可能でない。本発明によるDNAの染色体へのマッピングは、これらの配列と疾患に関連する遺伝子との相関付けにおいて重要な第1工程である。
細菌発現ベクターpQE9 (pD10)を、本実施例における細菌発現のために使用する。(QUIAGEN, Inc. 前出)。pQE9は、アンピシリン抗生物質耐性(「Ampr」)をコードし、細菌の複製起点(「ori」)、IPTG誘導プロモーター、リボソーム結合部位(「RBS」)、QUIAGEN, Inc., 前出によって販売されるニッケル−ニトリロ−三酢酸(「Ni−NTA」)アフィニティー樹脂を用いてアフィニティー精製を可能にするヒスチジン残基をコードする6つのコドン、および適切な単一の制限酵素切断部位を含む。これらのエレメントは、ポリペプチドをコードする挿入DNAフラグメントが、そのポリペプチドのアミノ末端に共有結合された6つのHis残基(すなわち、「6×Hisタグ」)を有するポリペプチドを発現するように整列される。
GTGGGATCCAGCCTCCGGGCAGAGCTG 3’(配列番号10)を有し、これは、下線を付したBamH I制限部位、続いて図1におけるニュートロカインα配列の細胞外ドメインのアミノ末端コード配列の18ヌクレオチドを含む。当然のことながら、当業者は、タンパク質コード配列中の5’プライマーが始まる点は、形態の細胞外ドメインより短いかまたは長い完全なニュートロカインαタンパク質の任意の所望の部分をコードするDNAセグメントを増幅するように変更され得ることを理解する。3’プライマーは、配列5’ GTGAAGCTTTTATTACAGCAGTTTCAATGCACC 3’(配列番号11)を有し、これは、下線を付したHind III制限部位、続いて2つの終止コドン、および図1におけるニュートロカインαDNA配列のコード配列の3’末端に相補的な18ヌクレオチドを含む。
N.Y. (1989)に記載されている。複数のコピーのプラスミドpREP4(これは、lacリプレッサーを発現し、そしてまたカナマイシン耐性(「Kanr」)を付与する)を含有するE.coli株M15/rep4を、本明細書に記載の例示的な実施例を行うにあたって使用する。この株(これは、ニュートロカインαタンパク質を発現するために適切である多くの株の内の唯一である)は、QIAGEN, Inc. 前出から市販されている。形質転換体を、アンピシリンおよびカナマイシンの存在下でLBプレート上で増殖するそれらの能力により同定する。プラスミドDNAを耐性コロニーから単離し、そしてクローン化DNAの同定を制限分析、PCR、およびDNA配列決定により確認する。所望の構築物を含むクローンを、アンピシリン(100μg/ml)とカナマイシン(25μg/ml)との両方を補充したLB培地における液体培養で一晩(「O/N」)増殖する。O/N培養物を用いて、約1:25〜1:250の希釈で大規模培養に接種する。細胞を、0.4と0.6との間の600nmでの吸光度(「OD600」)にまで増殖させる。次いで、イソプロピル−B−D−チオガラクトピラノシド(「IPTG」)を加えて1mMの最終濃度にし、lacIリプレッサーを不活性化することにより、lacリプレッサー感受性プロモーターからの転写を誘導する。細胞をさらに3〜4時間引き続きインキュベートする。次いで、標準的方法によって細胞を遠心分離により採集する。
前出)で精製し得る。簡単には、上清を10容量の6Mグアニジン−HCl、pH8で洗浄し、カラムをまず6MグアニジンHCl、pH8中でロードし、次いで10容量の6MグアニジンHCl、pH6で洗浄し、そして最後にニュートロカインαで6MグアニジンHCl、pH5で溶出する。
6)緩衝液プラス200mM NaClに対する最後の透析工程によって除去する。精製されたタンパク質を4℃で保存するか、または−80℃で凍結する。
細菌発現ベクターpQE60を、本実施例において細菌発現について使用する。(QIAGEN, Inc., 9259 Eton Avenue, Chatsworth, CA, 91311)。pQE60は、アンピシリン抗生物質耐性(「Ampr」)をコードし、そして複製の細菌起源(「ori」)、IPTG誘導性プロモーター、リボソーム結合部位(「RBS」)、QIAGEN, Inc.(前出)から市販されるニッケルニトリロトリ酢酸(「Ni−NTA」)アフィニティー樹脂を用いるアフィニティー精製を可能にするヒスチジン残基をコードする6つのコドン、および適切な単一制限酵素切断部位を含む。このようなエレメントは、ポリぺプチドをコードするDNAフラグメントが、そのペプチドのカルボキシ末端に共有結合された6つのHis残基(すなわち、「6 X Hisタグ」)を有するそのポリぺプチドを生成するような様式で挿入され得るように配置される。しかし、この実施例では、6つのHisコドンの翻訳が防止され、それゆえポリぺプチドが6 X Hisタグなしに産生されるように、ポリぺプチドコード配列を挿入する。
Tris/HCl, pH7.4(プロテアーゼインヒビターを含有する)に対して透析することによって首尾良く再折り畳みし得る。再生した後、タンパク質をイオン交換クロマトグラフィー、疎水相互作用クロマトグラフィー、およびサイズ排除クロマトグラフィーによって精製し得る。あるいは、抗体カラムのようなアフィニティークロマトグラフィー工程を、純粋なニュートロカインαタンパク質を得るために使用し得る。精製されたタンパク質を、4℃で保存するか、または−80℃で凍結する。
この例示的な実施例において、プラスミドシャトルベクターpA2 GPを使用して、その天然に付随する細胞内配列および膜貫通配列を欠失するタンパク質の細胞外ドメインをコードするクローン化したDNAを、バキュロウイルスに挿入して、バキュロウイルスリーダーおよびSummersら、A Manual of Methods for Baculovirus Vectors and Insect Cell Culture Procedures, Texas Agricultural Experimental Station Bulletin No. 1555 (1987)に記載される標準的な方法を使用して、ニュートロカインαタンパク質の細胞外ドメインを発現する。この発現ベクターは、Autographa californica核多角体病ウイルス(AcMNPV)の強力なポリヘドリンプロモーター、続いてバキュロウイルスgp67タンパク質の分泌シグナルペプチド(リーダー)、およびBamHI、XbaI、およびAsp718のような都合の良い制限部位を含有する。シミアンウイルス40(「SV40」)のポリアデニル化部位を、効率的なポリアデニル化に使用する。組換えウイルスの簡単な選択のために、プラスミドは、同じ方向にある弱いDrosophilaプロモーターの制御下のE.coli由来のβガラクトシダーゼ遺伝子、続いてポリヘドリン遺伝子のポリアデニル化シグナルを含有する。挿入された遺伝子は、クローン化ポリヌクレオチドを発現する生存可能なウイルスを生成するための、野生型ウイルスDNAでの細胞媒介性相同組換えのための、ウイルス配列が両側に隣接する。
Natl. Acad. Sci. USA, 84:7413−7417 (1987)によって記載されるリポフェクション法を用いて、1.0μgの市販の線状化バキュロウイルスDNA(「BaculoGoldTM baculovirus DNA」,
Pharmingen, San Diego, CA.)とともに同時トランスフェクトする。1μgのBaculoGoldTMウイルスDNAおよび5μgのプラスミドpA2GPニュートロカインαを、50μlの無血清グレース培地(Life Technologies Inc., Gaithersburg, MD)を含むマイクロタイタープレートの無菌ウェル中で混合する。その後、10μlのリポフェクチンおよび90μlのグレース培地を添加し、混合し、そして室温にて15分間インキュベートする。次いで、そのトランスフェクション混合物を、無血清グレース培地1mlを有する35mm組織培養プレート内に播種されたSf9昆虫細胞(ATCC CRL 1711)に滴下する。次いで、プレートを、5時間27℃でインキュベートする。次いで、トランスフェクション溶液をプレートから除去し、そして10%ウシ胎児血清を補充した1mlのグレース昆虫培地を添加する。次いで、27℃で4日間培養を続ける。
代表的な哺乳動物発現ベクターは、プロモーターエレメント(mRNAの転写の開始を媒介する)、タンパク質コード配列、ならびに転写の終結および転写物のポリアデニル化に必要なシグナルを含む。さらなるエレメントとしては、エンハンサー、Kozak配列、およびRNAスプライシングのためのドナーおよびアクセプター部位が隣接する介在配列が挙げられる。非常に有効な転写を、SV40由来の初期および後期プロモーター、レトロウイルス(例えば、RSV、HTLVI、HIVI)由来の長末端反復(LTR)、ならびにサイトメガロウイルス(CMV)の初期プロモーターで達成し得る。しかし、細胞性エレメントもまた使用され得る(例えば、ヒトアクチンプロモーター)。本発明の実施における使用に適切な発現ベクターとしては、例えば、pSVLおよびpMSG(Pharmacia, Uppsala, Sweden)、pRSVcat(ATCC 37152)、pSV2dhfr(ATCC 37146)、ならびにpBC12MI(ATCC 67109)のようなベクターが挙げられる。使用し得る哺乳動物宿主細胞としては、ヒトHela、293、H9およびJurkat細胞、マウスNIH3T3およびC127細胞、Cos1、Cos7およびCV1、ウズラQC1−3細胞、マウスL細胞、ならびにチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞が挙げられる。
発現プラスミドpニュートロカインα HAを、ニュートロカインαタンパク質の細胞外ドメインをコードする寄託されたcDNAの部分を、発現ベクターpcDNAI/AmpまたはpcDNAIII(Invitrogen, Inc.から入手し得る)内へクローニングすることによって作製する。ポリぺプチドの可溶性の、分泌された形態を生成するために、細胞外ドメインをヒトIL−6遺伝子の分泌リーダー配列に融合する。
ベクターpC4を、ニュートロカインαタンパク質の発現のために使用する。プラスミドpC4は、プラスミドpSV2−dhfr(ATCC受託番号37146)の誘導体である。ニュートロカインαポリぺプチドの可溶性の、分泌された形態を生成するために、細胞外ドメインをコードする寄託されたcDNAの部分を、ヒトIL−6遺伝子の分泌リーダー配列に融合する。このベクタープラスミドは、SV40初期プロモーターの制御下で、マウスDHFR遺伝子を含む。これらのプラスミドで形質転換されるチャイニーズハムスター卵巣細胞または他のジヒドロ葉酸活性を欠如する細胞は、化学治療剤メトトレキサートを補充した選択培地(αマイナスMEM、Life Technologies)中で細胞を増殖させることによって選択され得る。メトトレキサート(MTX)に耐性である細胞におけるDHFR遺伝子の増幅は、よく考証されている(例えば、Alt, F.W., Kellems, R.M., Bertino, J.R.およびSchimke, R.T., 1978, J Biol. Chem. 253:1357−1370、Hamlin, J.L.およびMa, C., Biochem. et Biophys. Acta, 1097:107−143(1990)、Page, M.J.およびSydenham, M.A., Biotechnology 9:64−68(1991)を参照のこと)。漸増濃度のMTXにおいて増殖した細胞は、DHFR遺伝子の増幅の結果として、標的酵素DHFRを過剰産生することによって薬物への耐性を生じる。第二の遺伝子がDHFR遺伝子に連結される場合、通常、同時増幅され、そして過剰発現される。このアプローチは、増幅遺伝子(単数または複数)の1,000を越えるコピーを有する細胞株を開発するために使用され得ることは、当該分野で公知である。続いて、メトトレキサートが取り除かれる場合、細胞株は、宿主細胞の染色体(単数または複数)に取り込まれる増幅遺伝子を含む細胞株が得られる。
Blue細胞を形質転換し、そして、例えば、制限酵素分析を用いてプラスミドpC4に挿入されたフラグメントを含む細菌を同定する。
ノーザンブロット分析を行って、とりわけSambrookら(上記に引用される)によって記載される方法を用いて、ヒト組織におけるニュートロカインα遺伝子の発現を試験した。ニュートロカインαタンパク質の完全ヌクレオチド配列を含むcDNAプローブ(配列番号1)を、rediprimeTMDNA標識系(Amersham Life
Science)を用いて、製造業者の説明書に従って、32Pで標識した。標識後、プローブを、CHROMA SPIN−100TMカラム(Clontech Laboratories, Inc.)を用いて、製造業者のプロトコル番号PT1200−1に従って、精製した。次いで、精製した標識化プローブを使用して、ニュートロカインαmRNAについて、種々のヒト組織を試験した。
Claims (1)
- 以下からなる群から選択される配列に少なくとも95%同一であるヌクレオチド配列を有するポリヌクレオチドを含む、単離された核酸分子:
(a)配列番号1に記載の完全なアミノ酸配列を有するニュートロカインαポリペプチドをコードするヌクレオチド配列。
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