JP2010538039A - Pcv2抗原の使用によるブタにおける随伴感染の減少 - Google Patents
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Abstract
Description
本願は、紙形式及びコンピュータ可読形式で配列表を有しており、その教示及び内容は参照することにより本明細書に援用される。配列表は、WO06/072065に包含されているものと同一である。
本発明は獣医学の分野、特には感染症に関する。また、本発明は、PCV−2以外の病原体によって引き起こされるブタの随伴感染を減少させる方法に関する。
i) WO06/07065の配列番号5、配列番号6、配列番号9、配列番号10又は配列番号11の配列を含むポリペプチド;
ii) 前記i)のポリペプチドと少なくとも80%相同(ホモログ)なポリペプチド;
iii) 前記i)及び/又はii)のポリペプチドの免疫原性部位;
iv) WO06/072065の配列番号5、配列番号6、配列番号9、配列番号10又は配列番号11の配列に含まれる少なくとも10個の連続したアミノ酸を有する前記iii)の免疫原性部位;
v)WO06/072065の配列番号3又は配列番号4の配列を有するDNAによってエンコードされるポリペプチド;
vi) 前記v)のポリヌクレオチドと少なくとも80%相同であるポリヌクレオチドによってエンコードされるポリペプチド;
vii) 前記v)及び/又はvi)のポリヌクレオチドによってエンコードされるポリペプチドの免疫原性部位;
viii) 前記免疫原性部位をコードするポリヌクレオチドが、WO06/072065の配列番号3又は配列番号4の配列に含まれる少なくとも30個の連続したアミノ酸を有する、前記vii)の免疫原性部位。
以下の実施例では、本発明に従って好ましい材料と手順を説明する。本明細書に記載した方法及び材料に類似又は相当するどのような方法及び材料も、本発明を実施及びテストするのに用いることが出来るが、好ましい方法、装置及び材料をここに記載する。しかしながら、これらの実施例は実証のためだけに提供されるものであり、実施例中のいかなるものも本発明の範囲を限定するものではない。
<PCV2感染した動物における随伴感染の検出>
[調査対象母集団]
本調査はドイツの南側で行われた。商業的品種交雑の雑種豚(Landrace or Edelschwein (f) x Pietrain (m))を、「豚生産者団体(pig−producer community)」の一部である15の異なる飼育場で観察した。当該飼育場は、サイズ(50〜300雌豚)、管理及び健康状態の点で異なっていた。全飼育場における子豚の日常の予防手段には、鉄注射、切歯及び断尾、並びに、虚勢が含まれていた。約4週齢で離乳した後、異なる飼育場の子豚をオールインオールアウト生産システムを有する生育農場に移した。その子豚を、1囲い当たり60〜120豚入るに設計された囲いを持つ3つの家畜小屋の中に入り混ぜて収容した。生育場での日常の予防手段には、到着後最初の10日間、テトラサイクリン塩酸塩での予防処置が含まれていた。生育期間に食料組成の変更を4回行った。該動物に与える餌は、オオムギ及びミネラルをベースに生育農場が自ら用意した。約12週齢で、豚をオールインオールアウト生産システムを有する肥育農場に移した。その子豚を、1囲い当たり10〜30豚が入るように設計された囲いを持つ2つの家畜小屋の中に入り混ぜて収容した。肥育期間に食料組成の変更を3回行った。与えられる餌は、オオムギ、小麦、コーン及び乳清濃縮物をベースに肥育農場が自ら用意した。13〜18週間、豚を肥育農場に留めた。
PMWSの病型は、2002年11月の調査開始より約3年前に臨床的に明らかとなり、2002年12月に血清学的に確認された。生育の最後/肥育の最初に、動物は消耗、呼吸兆候、及び死亡率の顕著な上昇などのPMWSの典型的な兆候を示し始めた。その病気はPRRSVへの重感染を伴っていた。生育中(4〜12週齢)の死亡率は通常3.5〜4.8%であったが、死亡率最大10%のピーク水準も時々報告された。肥育の中期から後期の間に、呼吸兆候及び成長遅延がPCV2感染動物において優位を占めた。肥育中(12〜26週齢)の死亡率は約1.7〜2.4%であり、除外数は1%であった。一日の平均体重増加はわずかであった(719〜731g/日)。調査開始の3ヶ月前、動物が約9〜13週齢のときに起こる臨床兆候とPCV2ウイルス血症に基づいてPMWSの診断結果が検証された。PRRSV及びマイコプラズマ・ハイオリニスが、PCV2感染動物の肺洗浄サンプルにおいて重感染病原体として同定された。
PCV2に対する有効なワクチン接種として、不活性化サブユニットワクチン(Ingelvac(登録商標) CircoFLEXTM,Boehringer Ingelheim Vetmedica GmbH)を投与した。当該ワクチンは、活性成分としてPCV2のORF2カプシドタンパク質、補助剤としてカルボマーを含んでいた。当該ORF2配列は、PMWSの兆候を有する2頭の豚の扁桃腺及び肝臓のサンプルから単離されたノースアメリカンPCV2分離株(North American PCV2 isolate)に由来した。次に、ヨトウムシ/スポドプテラ・フルギペルダの卵巣由来の昆虫細胞株(SF+細胞)を宿主として用いて、当該ORF2配列をバキュロウイルス発現系に挿入した。
PCV2カプシドタンパク質フリーの細胞培養上清、及び補助剤としてのカルボマーを含むプラセボを対照品とした。
「臨床試験実施に関する基準(GCP)」の原理に従い、無作為選択で、負の対照品を用いて、二重盲式で、並行の試験方法により、実地実験を行った。最初の体重及び同腹の子の割り当てに関し、合計1519頭の健康な子豚を2つの治療グループに等しく分配した。離乳1週間前に、1方のグループの子豚(n=754)にインゲルバックサーコフレックス(Ingelvac(登録商標) CircoFLEXTM)をワクチン接種し、もう一方のグループ(n=765)にはプラセボ接種を行った。子豚が25.4±3.18日(mean±S.D.)齢のときに、右首領域に筋肉注射で投与量1mLで1回被験品を投与した。離乳後、両方の治療グループは、最大限等しく病原体にさらされるために、仕上げ期の最後まで混合グループ中に保たれた。
肺組織サンプル中のPRRSV(Mardassi H,et al.,J Clin Microbiol 1994;32(9):2197−203)、マイコプラズマ・ハイオリニス(Caron J.,et al.,J Clin Microbiol 2000;38(4):1390−6)、マイコプラズマ・ハイオニューモニエ(Calsamiglia M,et al.,J Vet Diagn Invest 1999 May;11(3):246−51)、ストレプトコッカス・スイス(Wisselink HJ,et al.,J Clin Microbiol 2002 Aug;40(8):2922−9)、パスツレラ・ムルトシダ(Townsend KM,et al.,J Clin Microbiol 1998 Apr;36(4):1096−100)、アクチノバチルス・プルロニューモニア(Schaller A,et al.,Apx toxins in Pasteurellaceae species from animals.Vet Microbiol 2000 Jun 12;74(4):365−76)、ボルデテラ・ブロンキセプティカ((Hozbor D,et al.,Res Microbiol 1999 Jun;150(5):333−41))、及びヘモフィルス・パラスイス(Calsamiglia M,et al.,J Vet Diagn Invest 1999 Mar;11(2):140−5)に特異的な核酸を検出するために、ポリメラーゼ連鎖反応アッセイを用いた。
血清中のPCV2ウイルス負荷の定量化のため、Brunborg et al.,2004;J.Virol Methods 122:171−178に記載の方法に従ってPCV2ゲノム相当物を定量化した。PCV2の増幅のため、PCV2−84−1265U21プライマーとPCV2−84−1319L21プライマーを用いた/用いる。陽性サンプルのカットオフレベルは、検証実験に基づき血清1mL当たり104テンプレートコピーに設定した。バイオスクリーン社(ミュンスター、ドイツ)(bioScreen GmbH,Munster,Germany)により、全てのPCV2DNA定量化アッセイは行われた。
[PCV2ウイルス血症]
観察されたPMWS特有の臨床兆候及び病変の発症及び重症度が、事前に選択した「サンプル動物」の血液中のPCV2ウイルス血症の発症と関連するか否かを調査した。図1に示すように、PCV2ウイルス血症の発症は、動物が約9〜10週齢のときに、プラセボ治療のグループ内で始まった。動物が約11〜14週齢のときに、PCV2陽性動物が最大85%のピークレベルに到達した。14週齢から肥育の最後まで、再度ベースラインレベルに到達することなく、PCV2ウイルス血症動物の割合は減少していった。個々のウイルス血症持続期間は、平均して56日間続いた(データ未掲載)。
ワクチン接種したグループ中のPCV2陽性動物の割合は、プラセボ治療グループと比較して有意に減少しており(p<0.0001)、ウイルス血症のピークで陽性動物35%以下であった(図1B)。ワクチン接種した動物におけるウイルス血症の平均持続期間は31日減少した(p<0.0001;データ未掲載)。
要約すると、調査期間中の選択された調査場所におけるPCV2分析結果は、以下のように特徴づけられた:a)PMWSの臨床兆候及び病変の発症と一致する、調査9〜10週でのPCV2ウイルス血症の発症;b)PCV2ウイルス血症の初期でのプラセボ治療動物における高ウイルス負荷;c)プラセボ治療動物と比較した場合の、ワクチン接種した動物におけるウイルス血症の持続期間、並びに臨床的及び亜臨床的関連性のあるウイルス負荷を有する動物の割合の著しい減少。
上記で得られた結果により、分析された調査対象母集団におけるPMWSの診断結果が確認され、PCV2に対するワクチン接種によって動物をPMWSから大幅に保護出来ることが示される。従って、このプラセボ制御の予防接種実験により、PMWSが動物における基礎免疫抑制(underlying immunosuppression)を引き起こすという仮説を検証することが出来た。PCV2関連性免疫不全の場合には、PCV2ウイルス血症の発症後、重感染の頻度がワクチン接種の動物よりもプラセボ治療の動物で高くなると推測された。従って、第1段階で、調査動物の日和見菌への暴露をより詳細に分析した。臨床兆候をモニタリングしたところ、動物は主に呼吸兆候から影響を受けることが示されたため、PCRによる個々の病原体スクリーニング用に死亡した動物の肺サンプルを選択することにした。プラセボ治療の動物は最も近似的に自然界の条件を反映していると考えられるため、プラセボ治療の動物のみの結果を表3に示す。
肺サンプルで検出された呼吸器病原体の頻度を比較したところ、PCV2ウイルス血症の発症前の期間では両治療グループの間で大きな違いは見られなかった(データ未掲載)。PCV2ウイルス血症の発症後(10〜26週齢)、マイコプラズマ・ハイオリニス及びPRRSVに陽性反応を示すワクチン接種した動物の肺サンプルの割合は、それぞれ71%(p=0.0293)及び46%(0.2847)減少した(表1)。
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Claims (32)
- 豚又は豚の群れにおける、PCV2以外の1又は複数の病原体によって引き起こされる随伴感染の割合を減少させる方法であって、前記豚に有効量のPCV2抗原又はPCV2抗原を含む免疫原性組成物を投与する工程を有することを特徴とする方法。
- 前記随伴感染が、ウイルス性、細菌性及び/又は真菌性病原体によって引き起こされることを特徴とする、請求項1に記載の方法。
- 前記随伴感染が、ウイルス性病原体によって引き起こされることを特徴とする、請求項2に記載の方法。
- 前記随伴感染が、PRRSによって引き起こされることを特徴とする、請求項3に記載の方法。
- 前記随伴感染が、細菌性病原体によって引き起こされることを特徴とする、請求項2に記載の方法。
- 前記随伴感染が、腸内病原体によって引き起こされることを特徴とする、請求項2に記載の方法。
- 前記随伴感染が、アクチノバチルス・プルロニューモニア、ヘモフィルス・パラスイス、マイコプラズマ・ハイオリニス、マイコプラズマ・ハイオニューモニエ、パスツレラ・ムルトシダ、サルモネラ属、ストレプトコッカス・スイスによって引き起こされることを特徴とする、請求項2に記載の方法。
- 前記豚又は豚の群れがPCV2に感染していることを特徴とする、請求項1〜7のいずれか1項に記載の方法。
- 非ワクチン接種のコントロール群と比較して、前記随伴感染の割合が、1又は複数の前記感染に関して10%より多く減少することを特徴とする、請求項1〜8のいずれか1項に記載の方法。
- 前記PCV2抗原が、死滅したPCV2、改変した生存PCV2、又はそれらの免疫原性部分であることを特徴とする、請求項1〜9のいずれか1項に記載の方法。
- 前記PCV2抗原が、PCV2のORF−2であるか、PCV2のORF−2を含むことを特徴とする、請求項1〜10のいずれか1項に記載の方法。
- PCV2以外の1又は複数の病原体への随伴感染に対する豚の抵抗性を向上させる方法であって、前記豚に有効量のPCV2抗原又はPCV2抗原を含む免疫原性組成物を投与する工程を有することを特徴とする方法。
- 前記随伴感染が、ウイルス性、細菌性及び/又は真菌性病原体によって引き起こされることを特徴とする、請求項12に記載の方法。
- 前記随伴感染が、ウイルス性病原体によって引き起こされることを特徴とする、請求項13に記載の方法。
- 前記随伴感染が、PRRSによって引き起こされることを特徴とする、請求項14に記載の方法。
- 前記随伴感染が、細菌性病原体によって引き起こされることを特徴とする、請求項13に記載の方法。
- 前記随伴感染が、腸内病原体によって引き起こされることを特徴とする、請求項13に記載の方法。
- 前記随伴感染が、アクチノバチルス・プルロニューモニア、ヘモフィルス・パラスイス、マイコプラズマ・ハイオリニス、マイコプラズマ・ハイオニューモニエ、パスツレラ・ムルトシダ、サルモネラ属、ストレプトコッカス・スイスによって引き起こされることを特徴とする、請求項13に記載の方法。
- 前記豚がPCV2に感染していることを特徴とする、請求項11〜16のいずれか1項に記載の方法。
- 非ワクチン接種のコントロール群と比較して、前記随伴感染の割合が、1又は複数の前記感染に関して10%より多く減少することを特徴とする、請求項11〜17のいずれか1項に記載の方法。
- 前記PCV2抗原が、死滅したPCV2、改良した生存PCV2、又はそれらの免疫原性部分であることを特徴とする、請求項11〜18のいずれか1項に記載の方法。
- 前記PCV2抗原が、PCV2のORF−2であるか、PCV2のORF−2を含むことを特徴とする、請求項11〜19のいずれか1項に記載の方法。
- 豚又は豚の群れにおけるPCV2以外の1又は複数の病原体によって引き起こされる随伴感染を減少させる免疫原性組成物の製造のための、PCV2抗原の使用。
- 前記随伴感染が、ウイルス性、細菌性及び/又は真菌性病原体によって引き起こされることを特徴とする、請求項21に記載の使用。
- 前記随伴感染が、ウイルス性病原体によって引き起こされることを特徴とする、請求項22に記載の使用。
- 前記随伴感染が、PRRSによって引き起こされることを特徴とする、請求項23に記載の使用。
- 前記随伴感染が、細菌性病原体によって引き起こされることを特徴とする、請求項22に記載の使用。
- 前記随伴感染が、アクチノバチルス・プルロニューモニア、ヘモフィルス・パラスイス、マイコプラズマ・ハイオリニス、マイコプラズマ・ハイオニューモニエ、パスツレラ・ムルトシダ、サルモネラ属、ストレプトコッカス・スイスによって引き起こされることを特徴とする、請求項23に記載の使用。
- 前記豚又は豚の群れがPCV2に感染していることを特徴とする、請求項21〜26のいずれか1項に記載の使用。
- 非ワクチン接種のコントロール群と比較して、前記随伴感染の割合が、1又は複数の前記感染に関して10%を超えて減少することを特徴とする、請求項21〜27のいずれか1項に記載の使用。
- 前記PCV2抗原が、死滅したPCV2、改良した生存PCV2、又はそれらの免疫原性部分であることを特徴とする、請求項21〜28のいずれか1項に記載の使用。
- 前記PCV2抗原が、PCV2のORF−2であるか、PCV2のORF−2を含むことを特徴とする、請求項21〜29のいずれか1項に記載の使用。
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