JP2013256504A

JP2013256504A - αＶβ６に対する抗体およびその使用

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Publication number: JP2013256504A
Application number: JP2013148794A
Authority: JP
Inventors: Ian Foltz; イアン・フォルツ; Julie Rinkenberger; ジュリー・リンケンバーガー; Avril Alfred; アブリル・アルフレッド; Simon Thomas Barry; サイモン・トーマス・バリー; Vahe Bedian; バヘ・ベディアン
Original assignee: AstraZeneca AB
Current assignee: AstraZeneca AB
Priority date: 2006-08-03
Filing date: 2013-07-17
Publication date: 2013-12-26
Also published as: BRPI0715141A2; RU2009107277A; IL196848A0; NO20090877L; CN101553505A; US8894998B2; JP5362563B2; WO2008112004A2; CN103524619B; AR062213A1; US20100330103A1; AU2007348941B2; JP2009545327A; CN101553505B; CN103524619A; MX2009001293A; WO2008112004A3; ZA200900395B; US8398975B2; US20150166663A1

Abstract

【課題】抗腫瘍剤、特に腫瘍細胞接着も阻害し、さらに、腫瘍の成長を低下させるのに有用な標的結合剤の提供。
【解決手段】抗原アルファＶベータ６インテグリン(αＶβ６)に対する抗体を代表例とするαＶβ６に特異的に結合し、αＶβ６へのリガンドの結合を阻止する標的結合剤および上記結合剤の使用。
【選択図】図１

Description

本願は、２００６年８月３日出願、米国仮出願第６０／８３５,５５９号に対し優先権を主張するものであり、これは、引用により、その全体として、かつすべての目的に関して、本明細書に包含される。

分野
本発明は、アルファＶベータ６インテグリン(αＶβ６)に対するモノクローナル抗体および上記抗体の使用に関するものである。ある態様において、本発明は、αＶβ６に対する完全ヒトモノクローナル抗体に関するものである。上記抗体は、診断法として、およびαＶβ６の活性および／または過剰産生に伴う疾患の処置に有用である。

背景
インテグリンスーパーファミリーは、１８個のアルファ鎖および８個のベータ鎖を利用するヘテロ二量体から成る少なくとも２４個のファミリーメンバーを含む(Hynes, (2002) Cell 110: 673-87)。この受容体のファミリーは、細胞表面で発現され、細胞の生存、増殖、移動および分化並びに腫瘍浸潤および転移を調節する細胞−細胞および細胞−細胞外マトリックスの相互作用を伝達する(ffrench-Constantおよび Colognato, (2004) Trends Cell Biol. 14: 678-86)。インテグリンは、他の細胞受容体、成長因子および細胞外マトリックスタンパク質と結合し、その多くのファミリーメンバーは、特定タンパク質について重複する結合特異性を共有している。この重複性により、特定のインテグリンが存在しなくても重要な機能の継続は確保され得る(Koivisto et al., (2000) Exp. Cell Res. 255: 10-17)。しかしながら、特異性は類似していても個々のインテグリンの発現には時間的および空間的な制限があることも報告されており、それによりリガンド結合に対する細胞性応答も改変され得る(Yokosaki et al., (1996) J. Biol. Chem. 271: 24144-50; Kemperman et al., (1997) Exp. Cell Res. 234: 156-64; Thomas et al., (2006) J. Oral Pathol. Med. 35: 1-10)。

インテグリンファミリーは、ヘテロ二量体のリガンド特異性に基づいて幾つかのサブファミリーに分類され得る。一サブファミリーは、ＲＧＤトリペプチドを認識して結合するインテグリン全部により構成される。これらの受容体は、αIIｂ／β３およびαＶヘテロ二量体の全部を含む(Thomas et al., (2006) J. Oral Pathol. Med. 35: 1-10)。αＶ鎖は５つの既知ベータ鎖と対合し得、これらのベータ鎖のいくつかはαＶと対合し得るのみである。β６鎖は、αＶに対するヘテロ二量体化について選択的であり、この対は細胞外マトリックスおよびサイトカインタンパク質と高または低親和力で結合する。αＶβ６は、ＴＧＦβ１ＬＡＰおよびＴＧＦβ３ＬＡＰの両潜在型複合体におけるＲＧＤモチーフと結合し、それらを活性化する(Munger et al., (1999) Cell 96: 319-328; Annes et al., (2002) FEBS Letters 511: 65-68)。しかしながら、それは、トリペプチドをもたないＴＧＦβ２ＬＡＰとは結合せず、活性化もしない(Ludbrook et al., (2003) Biochem. J. 369: 311-18)。αＶβ６を介したＴＧＦβの活性化は、細胞外マトリックスに潜在型ＴＧＦβ複合体を拘束させる潜在型ＴＧＦβ結合タンパク質１(ＬＴＢＰ１)を必要とする。ＴＧＦβＬＡＰが細胞およびマトリックス間でそれぞれαＶβ６およびＬＴＢＰ１により拘束されるときに誘導される立体配座の変化により活性化が誘発されると提案されている(Keski-Oja et al., (2004) Trends Cell Biol. 14: 657-659; Annes et al., (2004) J. Cell Biol. 165: 723-34)。ＴＧＦβＬＡＰ複合体についてのαＶβ６のピコモル結合親和力は、その既知リガンドのいずれについても最高である。αＶβ６に関する他のリガンドには、フィブロネクチン、テナシン、ビトロネクチンおよびオステオポンチンがある(Busk et al., (1992) J. Biol. Chem. 267: 5790-6; Prieto et al., (1993) PNAS 90: 10154-8; Huang et al., (1998) J. Cell. Sci. 111(Pt 15): 2189-95; Yokosaki et al., (2005) Matrix Biol. 24: 418-27)。これらの細胞外マトリックスタンパク質についてのαＶβ６の結合親和力は、低親和力であり、ナノモル範囲である。

αＶβ６インテグリンの発現は、成人における活性組織モデリング領域、具体的には回復中の傷の上皮および浸潤している腫瘍の外縁部に制限される(Breuss et al., (1995) J. Cell Sci. 108: 2241-51)。傷外縁部でのケラチノサイトは、創傷へのそれらの移動中にαＶβ６の発現をアップレギュレーションするが、傷上皮の縁が合わさった後も発現は高レベルのままである(Breuss et al., (1995) J. Cell Sci. 108: 2241-51; Haapasalmi et al., (1996) J. Invest. Dermatol. 106: 42-48)。創傷の細胞外マトリックスには、フィブロネクチン、テナシンおよびビトロネクチンがあり、これらは全てαＶβ６についてのリガンドである(Busk et al., (1992) J. Biol. Chem. 267: 5790-6; Koivisto et al., (1999) Cell Adhes. Commun. 7: 245-57; Hakkinen et al., (2000) J. Histochem. Cytochem. 48: 985-98)。さらに、αＶβ６は、ＩＶ型コラーゲンを分解し、細胞運動を促進し得るマトリックスメタロプロテイナーゼ、ＭＭＰ−９の発現をアップレギュレーションする(Niu et al., (1998) Biochem. Biophys. Res. Com. 249: 287-91; Agrez et al., (1999) Int. J. Can. 81: 90-97; Thomas et al., (2001) Int. J. Cancer 92: 641-50; Gu et al., (2002) Br. J. Can. 87: 348-51)。創傷およびインビトロ試験におけるその発現パターンに基づくと、αＶβ６は、傷口が閉じる間にケラチノサイトの移動を促し、その後ＴＧＦβの活性化を通して傷を消散させる二重の役割を有し得る。αＶβ６によりＴＧＦβが活性化されると、再上皮形成の調節、炎症の抑制および結合組織再生および瘢痕形成の促進を通して傷の消散が促される(Thomas et al., (2006) J. Oral Pathol. Med. 35: 1-10)。ベータ６ヌルマウスを用いるインビボ創傷試験は、創傷が治癒しても、著しく増加した免疫応答が皮膚に存在することを示していた。創傷閉鎖およびケラチノサイト活性は、他のインテグリンファミリーメンバーの発現故に、αＶβ６が失われても影響は無いと思われた(Huang et al., (1996) J. Cell Biol. 133: 921-8)。ベータ６ヌルマウス創傷における炎症性浸潤物は、ＴＧＦβ１ヌルマウスからのものと類似していることから、αＶβ６の非存在下で免疫応答を抑制するのにこのサイトカインの活性では不十分であることが示唆された(Shull et al., (1992) Nature 359: 693-9; Thomas et al., (2006) J. Oral Pathol. Med. 35: 1-10)。

また、肺損傷および腎臓疾患モデルにおけるベータ６ヌルマウスの分析により、線維症におけるαＶβ６についての役割が確認された。ベータ６ヌルマウスにおける肺線維症は、ブレオマイシン損傷モデルでは阻害された(Munger et al., (1999) Cell 96: 319-328)。これらの動物はまた、ＭＭＰ１２依存的気腫(emphasema)様表現型から防御された(Morris et al., (2003) Nature 422: 169-73)。両疾患表現型は、ＴＧＦβの活性化に依存的である(Munger et al., (1999) Cell 96: 319-328)。また、αＶβ６インテグリン伝達によるＴＧＦβの活性化の阻害は、急性肺損傷に対する初期応答において肺浮腫を促進するものと仮定された(Pittet et al., (2001) J. Clin. Invest. 107: 1537-44)。ベータ６ヌルマウスはまた、ＴＧＦβ活性化が尿細管間質性線維化病変の発現に不可欠である腎臓疾患モデルにおいて線維症から防御された(Ma et al., (2003) Am. J. Pathol. 63: 1261-73)。

創傷治癒におけるその発現に加えて、αＶβ６インテグリンは、多くのヒト腫瘍の周囲でアップレギュレーションされる。αＶβ６発現は、口腔(Breuss et al., (1995) J. Cell Sci. 108: 2241-51; Jones et al., (1997) J. Oral Pathol. Med. 26: 63-8; Hamidi et al., (2000) Br. J Cancer 82: 1433-40; Regezi et al., (2002) Oral Oncology 38: 332-6; Impola et al., (2004) J. Pathol. 202: 14-22)および皮膚扁平上皮癌、および肺(Smythe et al., (1995) Can. Met. Rev. 14: 229-39)胸部(Arhiro et al., (2000) Breast Can. 7: 19-26)、膵臓(Sipos, et al., (2004) Histopathology 45: 226-36)、胃(Kawashima et al., (2003) Pathol. Res. Pract. 199: 57-64)、結腸(Bates et al., (2005) J. Clin. Invest. 115: 339-47)、卵巣(Ahmed et al., (2002) Carcinogenesis 23: 237-44; Ahmed et al., (2002) J. Histochem. Cytochem. 50: 1371-79)および唾液腺(Westernoff et al., (2005) Oral Oncology 41: 170-74)の癌腫で報告されている。これらの報告の多くにおいて、αＶβ６の発現は、腫瘍悪性度分類の高い等級(Ahmed et al., (2002) J. Histochem. Cytochem. 50: 1371-79; Arihiro et al., (2000) Breast Can. 7: 19-26)、起こり得るリンパ節への転移(Kawashima et al., (2003) Pathol. Res. Pract. 199: 57-64; Bates et al., (2005) J. Clin. Invest. 115: 339-47)または予後の悪さ(Bates et al., (2005) J. Clin. Invest. 115: 339-47)と相関関係をなす。最も研究し尽くされた腫瘍型は口腔扁平上皮癌であり、研究者らは前癌病変でのαＶβ６についても調べ、その発現と悪性への進行の相関関係を明らかにした(Hamidi et al., (2000) Br. J Cancer 82: 1433-40)。αＶβ６発現と腫瘍進行間の関連について結腸癌でも研究されており、インビトロモデルにおいてインテグリンの存在と結腸細胞の上皮間葉転換(ＥＭＴ)の相関関係が明らかにされた(Brunton et al., (2001) Neoplasia 3: 215-26; Bates et al., (2005) J. Clin. Invest. 115: 339-47)。ＥＭＴは、上皮細胞をその本来の組織から離れて新たな領域へと移動させ得る通常の発生過程である(Thiery および Sleeman, (2006) Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 7: 131-42)。それは、例えばマトリックスプロテアーゼ類、ＴＧＦβなどのサイトカインおよびインテグリンを含む様々な細胞接着分子などの細胞の移動および浸潤を促進するタンパク質の発現の増加を特徴とする(Zavadil および Bottinger, (2005) Oncogene 24: 5764-5774)。またＥＭＴマーカーの発現は、腫瘍、特に進行性浸潤性および転移性癌でも確認されている。αＶβ６が、間質性フィブロネクチンへの接着を促し得ることにより、ＭＭＰ−９および他のマトリックスプロテアーゼの発現がアップレギュレーションされ、ＴＧＦβを活性化し得ることから、それが悪性細胞のＥＭＴおよび腫瘍の進行を促し得ることがわかる(Batesおよび Mercurio, (2005) Cancer Bio. & Ther. 4: 365-70)。

ヒト癌の動物およびインビトロモデルからは、細胞増殖の促進およびアポトーシスの阻害においてαＶβ６がシグナル変換を伝達することが推測された。インビトロでコラーゲンゲルマトリックスにおけるαＶβ６トランスフェクションＳＷ４８０結腸腫瘍細胞の増殖を促進するベータ６鎖のＣ−末端内における残基が同定された。完全長β６トランスフェクションＳＷ４８０細胞と比べると、β６欠失突然変異体は、ヌードマウスにおける皮下増殖能が著しく低下していた(Agrez et al., (1994) J. Cell. Biol. 127: 547-56)。αＶβ６を安定して発現する口腔癌細胞株では、フィブロネクチンへの結合の結果、ベータ６サブユニットによりＦｙｎキナーゼが漸増し、活性化された。下流シグナル変換の結果、ＭＭＰ−３が産生され、インビトロでの細胞増殖、同所性モデルにおける腫瘍浸潤および尾部静注モデルにおける転移が促進された(Li et al., (2003) J. Biol. Chem. 278: 41646-53)。

細胞増殖などのアポトーシスの抑制は、αＶβ６が腫瘍増大を促し得る別の形である。正常な重層扁平上皮はαＶβ５インテグリンを発現するが、それをダウンレギュレーションし、癌への悪性転換後にはαＶβ６発現をアップレギュレーションする。αＶβ５を過剰発現する癌細胞株を用いることにより、αＶβ６発現は、インビトロでの懸濁誘導細胞死(アノイキス)を阻止することが示された(Janes および Watt, (2004) J. Cell Biol. 166: 419-31)。アポトーシス阻害はまた、シスプラチンで処置した卵巣癌細胞株においてインビトロで観察されており、これはインビボでのこれらの腫瘍の薬剤耐性機構を示すものであり得る(Wu et al., (2004) Zhonghua Fu Chan Ke Za Zhi 39: 112-14)。

多くの研究者らが、線維症および癌においてαＶβ６活性をターゲッティングする治療法を開発している。αＶβ６、αＶβ３およびαＶβ５インテグリンについての特異性をもつマウス抗体は、インビトロでビトロネクチンおよびフィブロネクチンへのＨＴ２９結腸癌細胞の接着を阻止することが示された(Lehmann et al., (1994) Can. Res. 54: 2102-07)。ヒトαＶβ６タンパク質に特異的な別のマウス抗体療法は、マウスの経口異種移植腫瘍モデルにおいてＨＳＣ−３口腔癌細胞の侵襲的増殖を阻止することが立証された(Xue et al., (2001) Biochem. Biophys. Res. Com. 288: 610-18)。ベータ６ヌルマウスモデルを宿主として用いることにより、一連のヒトαＶβ６特異抗体を産生させた。これらの抗体は、インビトロでインテグリンへのＴＧＦβＬＡＰおよびフィブロネクチン結合の両方を遮断することができた(Weinreb et al., (2004) J. Biol. Chem. 279: 17875-87)。それらはまた、ヒト咽頭癌異種移植モデルにおいて顕著な腫瘍増殖阻害を立証した(Leone et al., (2003) Proc. of the Am. Assoc. Can. Res. 44, Abstract #4069)。

抗体を遮断する機能に加えて、ヒトαＶβ６インテグリンのペプチド模倣阻害剤の作製が報告されている。この化合物は、２００ｎＭ範囲のＩＣ_５０でフィブロネクチンへのＵＣＬＡＰ−３細胞結合を阻害し、それぞれ３〜２０μＭ範囲でビトロネクチンへのαＶβ５およびαＶβ３インテグリン介在細胞結合を遮断する追加活性を有することが示された(Goodman et al., (2002) J. Med. Chem. 45: 1045-51)。

αＶβ６について最近報告されたもう一つの役割は、ウイルス病原体についての細胞受容体としての役割である。それは、口蹄疫ウイルスおよびコクサッキーウイルス９に関するウイルスキャプシドの結合を伝達することにより、インビトロでウイルス侵入させ得る(Miller et al., (2001) J. Virol. 75: 4158-64; Williams et al., (2004) J. Virol. 78: 6967-73)。口蹄疫ウイルスおよびコクサッキーウイルス９キャプシドタンパク質は、両方とも多数のインテグリンファミリーメンバーにより認識されるＲＧＤ配列を含む。両病原体のウイルス侵入は、αＶβ６インテグリンに対する抗体により遮断される(Williams et al., (2004) J. Virol. 78: 6967-73)。

概要
本発明は、概してαＶβ６に結合する標的結合剤(targeted binding agent)に関するものである。本発明の態様は、αＶβ６に特異的に結合することにより、αＶβ６へのリガンドの結合を阻害する完全ヒト標的結合剤に関するものである。また、標的結合剤は、腫瘍細胞接着も阻害する。さらに、標的結合剤は、腫瘍の成長を低下させるのに有用である。これが達成され得る機構は、限定されるわけではないが、リガンドのその受容体αＶβ６への結合阻害、ＴＧＦβ−ＬＡＰなどのリガンドとの相互作用の排除による、αＶβ６の有効濃度の低減化を含み得る。

本発明の一態様では、標的結合剤は、αＶβ６に結合し、αＶβ６のリガンドへのαＶβ６結合を阻止する完全ヒト抗体である。αＶβ６のリガンドの例には、ＴＧＦβＬＡＰ、フィブロネクチン、テナシン、ビトロネクチンおよびオステオポンチンがある。抗体は、３５ｎＭ、２５ｎＭ、１０ｎＭまたは６０ｐＭ未満のＫ_ｄでαＶβ６と結合し得る。

さらに別の態様は、αＶβ６に結合し、１μｇ／ｍｌまたはそれ未満の低抗体濃度でＨＴ２９細胞のＴＧＦβ−ＬＡＰ介在的接着の８０％を超える割合、８５％、９０％または９９％を阻害する完全ヒト抗体である。

さらに別の態様は、αＶβ６に結合し、０.０７０μｇ／ｍｌ未満のＩＣ_５０でＨＴ２９細胞のＴＧＦβ−ＬＡＰ介在的接着を阻害する完全ヒト抗体である。

標的結合剤(すなわち抗体)は、表８または表２９に示された配列の一つを伴う相補性決定領域(ＣＤＲ)を有する重鎖アミノ酸配列を含み得る。一態様では、標的結合剤は、表８または表２９に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２またはＣＤＲ３配列のいずれか１つを含む配列を含み得る。別の態様では、標的結合剤は、表８または表２９に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２またはＣＤＲ３配列のいずれか２つ(すなわち、ＣＤＲ１およびＣＤＲ２、ＣＤＲ１およびＣＤＲ３またはＣＤＲ２およびＣＤＲ３)を含む配列を含み得る。別の態様では、標的結合剤は、表８または表２９に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３配列を含む配列を含み得る。当業者であれば、容易にＣＤＲ決定を為し得るものとする。例えば、Kabat et al., Sequences of Proteins of Immunological Interest、第５版、NIH Publication 91-3242, べセスダ、メリーランド (1991)、第１−３巻参照。

別の態様において、標的結合剤(すなわち、抗体)は、相補性決定領域(ＣＤＲ)、表９または表３０に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２またはＣＤＲ３配列を有する軽鎖アミノ酸配列を含み得る。別の態様では、標的結合剤は、表９または表３０に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２またはＣＤＲ３配列のいずれか２つ(すなわち、ＣＤＲ１およびＣＤＲ２、ＣＤＲ１およびＣＤＲ３、またはＣＤＲ２およびＣＤＲ３)を含む配列を含み得る。別の態様では、標的結合剤は、表９または表３０に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３配列を含む配列を含み得る。

本発明の標的結合剤は、下記で詳細に検討しているように、通常１つまたはそれ以上のＣＤＲ、例えば非抗体タンパク質スキャフォールドにおけるＣＤＲのセットにより与えられる、非抗体分子内における抗原結合部位を含み得る。

別の態様において、標的結合剤は、完全ヒトモノクローナル抗体ｓｃ２６４ＲＡＤ、ｓｃ２６４ＲＡＤ／ＡＤＹ、ｓｃ１８８ＳＤＭ、ｓｃ１３３、ｓｃ１３３ＴＭＴ、ｓｃ１３３ＷＤＳ、ｓｃ１３３ＴＭＴ／ＷＤＳ、ｓｃ１８８、ｓｃ２５４、ｓｃ２６４またはｓｃ２９８のＣＤＲ１、ＣＤＲ２またはＣＤＲ３配列のいずれか１つを含む配列を含む。

別の態様において、標的結合剤は、完全ヒトモノクローナル抗体ｓｃ２６４ＲＡＤ、ｓｃ２６４ＲＡＤ／ＡＤＹ、ｓｃ１８８ＳＤＭ、ｓｃ１３３、ｓｃ１３３ＴＭＴ、ｓｃ１３３ＷＤＳ、ｓｃ１３３ＴＭＴ／ＷＤＳ、ｓｃ１８８、ｓｃ２５４、ｓｃ２６４またはｓｃ２９８のＣＤＲ１、ＣＤＲ２またはＣＤＲ３配列のいずれか２つ(すなわち、ＣＤＲ１およびＣＤＲ２、ＣＤＲ１およびＣＤＲ３、またはＣＤＲ２およびＣＤＲ３)を含む。

別の態様において、標的結合剤は、完全ヒトモノクローナル抗体ｓｃ２６４ＲＡＤ、ｓｃ２６４ＲＡＤ／ＡＤＹ、ｓｃ１８８ＳＤＭ、ｓｃ１３３、ｓｃ１３３ＴＭＴ、ｓｃ１３３ＷＤＳ、ｓｃ１３３ＴＭＴ／ＷＤＳ、ｓｃ１８８、ｓｃ２５４、ｓｃ２６４またはｓｃ２９８のＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３配列を含む

本発明の一態様において、標的結合剤は抗体である。本発明の一態様において、標的結合剤は、モノクローナル抗体である。本発明の一態様において、標的結合剤は、完全ヒトモノクローナル抗体である。

本発明の別の態様は、αＶβ６に結合し、表９または表３０に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２またはＣＤＲ３配列のいずれか１つを含む軽鎖アミノ酸配列を含む抗体を含む。本発明の別の態様は、αＶβ６に結合し、表９または表３０に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２またはＣＤＲ３配列のいずれか２つ(すなわち、ＣＤＲ１およびＣＤＲ２、ＣＤＲ１およびＣＤＲ３、またはＣＤＲ２およびＣＤＲ３)を含む軽鎖アミノ酸配列を含む抗体を含む。本発明の別の態様は、αＶβ６に結合し、表９または表３０に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３配列を含む軽鎖アミノ酸配列を含む抗体を含む。ある態様では、抗体は完全ヒトモノクローナル抗体である。

本発明のさらに別の態様は、αＶβ６に結合し、表８または表２９に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２またはＣＤＲ３配列のいずれか１つを含む重鎖アミノ酸配列を含む抗体を含む。本発明の別の態様は、αＶβ６に結合し、表８または表２９に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２またはＣＤＲ３配列のいずれか２つ(すなわち、ＣＤＲ１およびＣＤＲ２、ＣＤＲ１およびＣＤＲ３、またはＣＤＲ２およびＣＤＲ３)を含む重鎖アミノ酸配列を含む抗体を含む。本発明の別の態様は、αＶβ６に結合し、表８または表２９に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３配列を含む重鎖アミノ酸配列を含む抗体を含む。ある態様では、抗体は完全ヒトモノクローナル抗体である。

本発明の一態様は、下記で詳細に検討しているように、αＶβ６に特異的に結合する完全ヒトモノクローナル抗体ｓｃ２６４ＲＡＤ、ｓｃ２６４ＲＡＤ／ＡＤＹ、ｓｃ１８８ＳＤＭ、ｓｃ１３３、ｓｃ１３３ＴＭＴ、ｓｃ１３３ＷＤＳ、ｓｃ１３３ＴＭＴ／ＷＤＳ、ｓｃ１８８、ｓｃ２５４、ｓｃ２６４またはｓｃ２９８の１つまたはそれ以上を含む。

さらに別の態様は、αＶβ６に結合し、表９または表３０に示された配列の１つを含むＣＤＲを有する軽鎖アミノ酸配列を含む抗体である。別の態様は、αＶβ６に結合し、表８または表２９に示された配列の１つを含むＣＤＲを有する重鎖アミノ酸配列を含む抗体である。ある態様では、抗体は完全ヒトモノクローナル抗体である。

さらなる態様は、αＶβ６に結合し、表８または表２９に示されたＣＤＲ配列の１つを有する重鎖アミノ酸配列および表９または表３０に示されたＣＤＲ配列の１つを有する軽鎖アミノ酸配列を含む抗体である。ある態様では、抗体は完全ヒトモノクローナル抗体である。

本発明のさらなる態様は、本発明の抗体とαＶβ６への結合について競合する標的結合剤(すなわち抗体)である。一態様では、上記の標的結合剤は、表８または表２９に示されたＣＤＲ配列の少なくとも１つを有する重鎖アミノ酸配列および表９または表３０に示されたＣＤＲ配列の少なくとも１つを有する軽鎖アミノ酸配列を含む。

本発明のさらなる態様は、本発明抗体と同じαＶβ６上のエピトープに結合する標的結合剤である。一態様では、上記の標的結合剤は、表８または表２９に示されたＣＤＲ配列の少なくとも１つを有する重鎖アミノ酸配列および表９または表３０に示されたＣＤＲ配列の少なくとも１つを有する軽鎖アミノ酸配列を含んでいた。

別の態様において、標的結合剤は、表８または表２９に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２またはＣＤＲ３配列のいずれか１つおよび表９または表３０に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２またはＣＤＲ３配列のいずれか１つを含む配列を含む。別の態様では、標的結合剤は、表８または表２９に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２またはＣＤＲ３配列のいずれか２つおよび表９または表３０に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２またはＣＤＲ３配列のいずれか２つ(すなわち、ＣＤＲ１およびＣＤＲ２、ＣＤＲ１およびＣＤＲ３、またはＣＤＲ２およびＣＤＲ３)を含む。別の態様では、標的結合剤は、表８または表２９に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３配列および表９または表３０に示されたＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３配列を含む。

若干の態様では、本発明の結合剤は、下記で詳細に検討しているように、通常１つまたはそれ以上のＣＤＲ、例えば非抗体タンパク質スキャフォールドにおけるＣＤＲのセットにより与えられる、非抗体分子内における抗原結合部位を含み得る。

さらに別の態様は、αＶβ６に結合し、１つまたはそれ以上の修正的突然変異を有するアミノ酸配列を含む抗体であり、抗体配列が突然変異によりそのそれぞれの生殖系列配列に戻されている。例えば、抗体は、表１０〜１３のいずれかに示された配列を有し得る。

さらに本発明は、患者または患者試料におけるαＶβ６のレベルの検定方法であって、抗αＶβ６抗体を患者からの生物学的試料と接触させ、試料中における上記抗体とαＶβ６間の結合レベルを検出することを含む方法を提供する。さらに具体的な態様では、生物学的試料は血液または血漿である。

他の態様において、本発明は、抗体またはその機能的フラグメントを含む、標的結合剤および医薬上許容される担体を含む組成物を提供する。

本発明のさらなる態様は、αＶβ６関連疾患または障害に罹患している動物を有効に処置する方法であって、新生物または非新生物疾患について処置を必要とする動物を選択し、αＶβ６に特異的に結合する完全ヒトモノクローナル抗体の治療有効量を動物に投与することを含む方法を含む。

本発明の抗体は、αＶβ６関連疾患または障害の治療に使用され得る。αＶβ６関連疾患または障害は、αＶβ６の異常な活性化または発現により生じる状態を包含し得る。上記疾患の例は、αＶβ６がそのリガンドと異常な形で相互作用することにより、細胞接着または細胞シグナリング特性が改変される場合を含む。細胞接着または細胞シグナリング特性におけるこの改変が、新生物疾患を誘発し得る。他のαＶβ６関連疾患または障害には、炎症性疾患、肺疾患、線維症に随伴する疾患およびＴＧＦβ調節障害に随伴する疾患がある。

一例では、αＶβ６関連疾患は、新生物疾患、例えばメラノーマ、小細胞肺癌、非小細胞肺癌、神経膠腫、肝細胞(肝臓)癌、甲状腺腫瘍、胃(腹部)癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、膀胱癌、肺癌、神経膠芽腫、子宮体癌、腎臓癌、結腸癌、膵臓癌、食道癌、頭部および頸部癌、中皮腫、肉腫、胆管(胆管癌)、小腸腺癌、小児悪性疾患および類表皮癌である。

別の例では、αＶβ６関連疾患は、炎症性疾患、例えば炎症性腸疾患、全身性エリテマトーデス、慢性関節リウマチ、若年性慢性関節炎、脊椎関節症、全身性硬化症、例えば硬皮症、特発性炎症性ミオパシー、例えば、皮膚筋炎、多発性筋炎、シェーグレン症候群、全身性血管炎(vaculitis)、サルコイドーシス、甲状腺炎、例えばグレーブス病、橋本甲状腺炎、若年性リンパ球性甲状腺炎、萎縮性甲状腺炎、免疫介在性腎疾患、例えば、糸球体腎炎、尿細管間質性腎炎、中枢および末梢神経系の脱髄疾患、例えば多発性硬化症、特発性多発ニューロパシー、肝胆管疾患、例えば感染性肝炎、例えばＡ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｅ型および他の非肝指向性ウイルス性肝炎、自己免疫慢性活動性肝炎、原発性胆汁性肝硬変、肉芽腫性肝炎、および硬化性胆管炎、炎症性および線維症性肺疾患(例えば、嚢胞性線維症)、グルテン感受性腸症、自己免疫または免疫介在性皮膚疾患、例えば水疱性皮膚疾患、多形性紅斑および接触皮膚炎、乾癬、肺のアレルギー性疾患、例えば好酸性肺炎、特発性肺線維症、アレルギー性結膜炎および過敏性肺炎、移植片拒絶および移植片対宿主病を含む移植関連疾患である。

さらに別の例では、αＶβ６関連疾患は腎臓または肺線維症などの線維症である。

さらに別の例では、αＶβ６関連疾患は、ＴＧＦ−β調節障害に伴うもので、癌および結合組織(線維症性)疾患がある。

本発明のさらなる態様は、動物でのαＶβ６誘導による細胞接着の阻害方法を含む。これらは、αＶβ６誘導による細胞接着について処置を必要とする動物を選択し、完全ヒトモノクローナル抗体の治療有効量を上記動物に投与することを含む方法であり、上記抗体はαＶβ６に特異的に結合する。

本発明のさらなる態様は、動物におけるαＶβ６関連疾患または障害の治療を目的とする医薬の製造における抗体の使用を含むものであり、上記モノクローナル抗体はαＶβ６に特異的に結合する。

さらなる態様において、ここに記載の標的結合剤は、動物でのαＶβ６誘導による細胞接着の有効な治療を目的とする医薬の製造に使用され得るものであり、上記モノクローナル抗体はαＶβ６に特異的に結合する。

ここに記載の本発明の態様は、αＶβ６と結合し、αＶβ６機能に影響を及ぼすモノクローナル抗体に関するものである。他の態様は、αＶβ６についての高い結合親和力、インビトロおよびインビボでのαＶβ６中和能、およびαＶβ６誘導細胞接着および腫瘍増殖の阻害能を含む、治療的観点から望ましい特性をもつ完全ヒト抗αＶβ６抗体および抗αＶβ６抗体調製物に関するものである。

一態様において、本発明は、非常に高い親和力(Ｋ_Ｄ)でαＶβ６に結合する抗体を含む。例えば、ヒト、ウサギ、マウス、キメラまたはヒト化抗体は、限定されるわけではないが、約１０^−５、１０^−６、１０^−７、１０^−８、１０^−９、１０^−１０または約１０^−１１Ｍ未満、またはその範囲または値のＫ_ｄでαＶβ６と結合し得る。親和力および／または結合活性測定値は、ここに記載のKinExA(登録商標)および／またはBIACORE(登録商標)により測定され得る。

本発明の一態様は、αＶβ６に結合する単離抗体または上記抗体のフラグメントを含む。当業界で公知のとおり、抗体は、例えば、ポリクローナル、オリゴクローナル、モノクローナル、キメラ、ヒト化および／または完全ヒト抗体であり得る。ここに記載の本発明の態様はまた、これらの抗体を産生する細胞を提供する。

本発明の態様は、特定形態の抗体または作製または製造方法に限定されないものとする。例えば、抗αＶβ６抗体は、完全長抗体(例えば、無傷のヒトＦｃ領域を有する)または抗体フラグメント(例えば、Ｆａｂ、Ｆａｂ'またはＦ(ａｂ')_２、ＦＶまたはＤａｂ(Ｄａｂはヒト抗体の最小機能結合単位である))であり得る。さらに、抗体は、抗体を分泌するハイブリドーマから、または抗体をコード化する一遺伝子または複数遺伝子により形質転換またはトランスフェクションされた遺伝子組換え技法による細胞から製造され得る。

本発明の他の態様は、ここに記載の抗体のいずれかをコード化する単離核酸分子、抗αＶβ６抗体をコード化する単離核酸分子を有するベクターまたは上記核酸分子のいずれかで形質転換された宿主細胞を含む。さらに、本発明の一態様は、核酸分子を発現させることにより抗体を製造する条件下で宿主細胞を培養し、次いで抗体を回収することによる抗αＶβ６抗体の製造方法である。本発明の態様はまた、抗体生産のため宿主細胞へトランスフェクションされたときに抗体またはそのフラグメントの収率を高めるように最適化された核酸配列を含む本発明の抗体または抗体のフラグメントをコード化する核酸分子を包含するものとする。

さらなる態様は、哺乳類をヒトαＶβ６またはそのフラグメント、および１つまたはそれ以上のオーソロガス配列またはそのフラグメントで免疫化することによる、αＶβ６に対する高親和力抗体の製造方法を含む。

他の態様は、αＶβ６に特異的に結合する単離抗体の作製および同定に基づく。αＶβ６の生物活性を阻害することにより、αＶβ６誘導による細胞接着および他の所望の効果は阻止され得る。

本発明の別の態様は、ここに記載の要領で製造された抗体を利用して、患者試料におけるαＶβ６のレベルを検出する疾患または状態の診断方法を含む。一態様では、患者試料は血液または血漿である。さらなる態様では、危険因子の同定、病気の診断および病期分類方法が提示され、それらは必然的に抗αＶβ６抗体の使用によるαＶβ６の過剰発現の同定を含む。

本発明の別の態様は、細胞でのαＶβ６の発現に随伴する状態の診断方法であって、血清または細胞を抗αＶβ６抗体と接触させ、次いでαＶβ６の存在を検出することによる方法を含む。好ましい状態には、限定されるわけではないが、新生物疾患、例えばメラノーマ、小細胞肺癌、非小細胞肺癌、神経膠腫、肝細胞(肝臓)癌、神経膠芽腫、および甲状腺、胃、前立腺、乳房、卵巣、膀胱、肺、子宮、腎臓、結腸および膵臓、唾液線および結腸直腸の癌腫を含むαＶβ６関連疾患または障害がある。

別の態様において、本発明は、哺乳類組織、細胞または体液でのαＶβ６を検出することにより、αＶβ６関連疾患についてスクリーニングするための検定キットを含む。このキットは、αＶβ６に結合する抗体およびαＶβ６が存在する場合の抗体との反応を示す手段を含む。一態様では、抗体はモノクローナル抗体である。別の態様では、αＶβ６と結合する抗体を標識する。さらに別の態様では、抗体は非標識一次抗体であり、キットはさらに一次抗体検出手段を含む。一態様では、検出手段は、抗免疫グロブリンである標識二次抗体を含む。抗体は、蛍光色素、酵素、放射性核種および放射線不透過性物質から成る群から選択されるマーカーで標識され得る。

本発明の他の態様は、医薬上許容される担体または希釈剤と混合した形で抗αＶβ６抗体の有効量を有する医薬組成物を含む。さらに他の態様では、抗αＶβ６抗体またはそのフラグメントは、治療剤とコンジュゲートされる。治療剤は、例えば毒素または放射性同位元素であり得る。

さらに別の態様は、患者におけるαＶβ６の発現に随伴する疾患または状態の処置方法であって、抗αＶβ６抗体の有効量を患者に投与することによる方法を含む。抗αＶβ６抗体は、単独で投与され得るか、または追加的抗体または化学療法剤または放射線療法と組み合わせて投与され得る。例えば、細胞接着を遮断するαＶβ６抗体のモノクローナル、オリゴクローナルまたはポリクローナル混合物は、腫瘍細胞増殖を直接阻害することが示された薬剤と組合わせて投与され得る。本方法はインビボで遂行され得、患者は好ましくはヒト患者である。好ましい態様において、本方法は、限定されるわけではないが、新生物疾患、例えばメラノーマ、小細胞肺癌、非小細胞肺癌、神経膠腫、肝細胞(肝臓)癌、神経膠芽腫、および甲状腺、胃、前立腺、乳房、卵巣、膀胱、肺、子宮、腎臓、結腸および膵臓、唾液線および結腸直腸の癌腫を含むαＶβ６関連疾患または障害の処置に関するものである。

別の態様において、本発明は容器を含む製品を提供する。容器は、抗αＶβ６抗体を含む組成物、および組成物が、αＶβ６の過剰発現を特徴とするαＶβ６関連疾患または障害の処置に使用され得ることを示すパッケージ挿入物またはラベルを含む。

態様によっては、抗αＶβ６抗体を患者に投与した後、循環している過剰の抗体を血中から除去するための浄化剤(clearing agent)を投与することもある。

さらに別の態様は、αＶβ６関連疾患または障害、例えば新生物疾患、炎症性疾患、線維症、肺疾患またはＴＧＦ−β調節障害に伴う疾患の治療を目的とする医薬の製造における抗αＶβ６抗体の使用である。一態様では、新生物疾患には、癌、例えば乳房、卵巣、胃、子宮内膜、唾液線、肺、腎臓、結腸、結腸直腸、食道、甲状腺、膵臓、前立腺および膀胱癌がある。別の態様において、αＶβ６関連疾患または障害には、限定されるわけではないが、新生物疾患、例えばメラノーマ、小細胞肺癌、非小細胞肺癌、神経膠腫、肝細胞(肝臓)癌、肉腫、頭部および頸部癌、中皮腫、胆管(胆管癌)、小腸腺癌、小児悪性疾患および神経芽膠腫がある。

本発明のさらに別の態様は、限定されるわけではないが、関節炎、アテローム性動脈硬化症、アレルギー性結膜炎を含む炎症性または過増殖性疾患の処置を目的とする医薬の製造における抗αＶβ６抗体の使用である。

図１は、精製モノクローナル抗体がαＶβ６に結合し、ＧＳＴ−ＬＡＰペプチドへのその結合を遮断する能力を示す線グラフである。図２Ａおよび２Ｂは、ヒトαＶβ６抗原を安定して発現するＫ５６２細胞に対する抗体の一つの結合親和力を評価するのに使用された、分子ｍＡｂ濃度の関数として平均をとった幾何平均蛍光(ＧＭＦ)のプロットを示す線グラフである。図２Ａに示されているのは、ｍＡｂ１８８に関する親和力データである。図２Ｂは、ｍＡｂ２６４ＲＡＤについての親和力データを示す。図３Ａ〜３Ｅは、αＶβ６インテグリンを安定して発現している２９３細胞における精製モノクローナル抗体が補体依存的細胞傷害性を伝達する能力を示す棒グラフである。図３Ａ〜３Ｅは、αＶβ６インテグリンを安定して発現している２９３細胞における精製モノクローナル抗体が補体依存的細胞傷害性を伝達する能力を示す棒グラフである。図３Ａ〜３Ｅは、αＶβ６インテグリンを安定して発現している２９３細胞における精製モノクローナル抗体が補体依存的細胞傷害性を伝達する能力を示す棒グラフである。図４は、Detroit-562鼻咽頭細胞株を用いることによる抗体２６４ＲＡＤ、１３３および１８８ＳＤＭが腫瘍増殖を阻害する能力を示す棒グラフである。図５は、２６４ＲＡＤ／ＡＤＹと２６４ＲＡＤの活性の比較を示す棒チャートである。

詳細な記載
本発明の態様は、αＶβ６インテグリン(αＶβ６)と結合する標的結合剤に関するものである。態様によっては、結合剤がαＶβ６に結合し、αＶβ６へのリガンドの結合を阻害する場合もある。一態様では、標的結合剤はモノクローナル抗体またはその結合性フラグメントである。別の態様では、抗体はβ６鎖にのみ結合するが、αＶβ６へのリガンドの結合を阻害することはできる。

本発明の他の態様は、治療上有用な完全ヒト抗αＶβ６抗体、および抗体調製物を含む。一態様では、抗αＶβ６抗体調製物は、αＶβ６についての強い結合親和力、およびインビトロでのＴＧＦβＬＡＰ介在的細胞接着の阻害能を含む望ましい治療特性を有する。

本発明の態様はまた、抗αＶβ６抗体の完全ヒト単離結合性フラグメントを含む。一態様において、結合性フラグメントは、完全ヒト抗αＶβ６抗体から誘導される。フラグメントの例としては、下記で詳述しているとおり、Ｆｖ、Ｆａｂ'または他の公知抗体フラグメントがある。本発明の態様はまた、αＶβ６に対する完全ヒト抗体を発現する細胞を含む。細胞の例には、ハイブリドーマ、遺伝子組換えによる細胞、例えばチャイニーズハムスター卵巣(ＣＨＯ)細胞、ＣＨＯ細胞の変異型(例えばＤＧ４４)およびαＶβ６に対して抗体を産生するＮＳ０細胞がある。ＣＨＯ細胞の変異型に関するさらなる情報は、Andersenおよび Reilly (2004) Current Opinion in Biotechnology 15, 456-462頁から得られ、これについては、その全体を出典明示で援用する。

さらに、本発明の態様は、αＶβ６関連疾患または障害の治療を目的とするこれらの抗体の使用方法を含む。αＶβ６関連疾患または障害は、αＶβ６の異常な活性化または発現により誘発される状態を包含し得る。上記疾患の例には、αＶβ６がそのリガンドと異常な形で相互作用することにより、細胞接着または細胞シグナリング特性を改変させる場合が含まれる。細胞接着または細胞シグナリング特性におけるこの改変が、新生物疾患を誘発し得る。他のαＶβ６関連疾患または障害には、炎症性疾患、肺疾患、線維症に随伴する疾患およびＴＧＦβ調節障害に随伴する疾患がある。

本発明の他の態様には、生物学的試料中のαＶβ６の量を特定的に測定する診断的検定法がある。検定キットは、抗αＶβ６抗体を、それらの検出に必要な標識と一緒に含み得る。これらの診断的検定法は、限定されるわけではないが、新生物疾患、例えばメラノーマ、小細胞肺癌、非小細胞肺癌、神経膠腫、肝細胞(肝臓)癌、神経膠芽腫、および甲状腺、胃、前立腺、乳房、卵巣、膀胱、肺、子宮、腎臓、結腸および膵臓、唾液線および結腸直腸の癌腫を含むαＶ関連疾患またはβ６障害についてスクリーニングするのに有用である。

本発明の別の態様はαＶβ６の生物活性のアンタゴニストであり、アンタゴニストはαＶβ６に結合する。一態様では、アンタゴニストは標的結合剤、例えば抗体である。アンタゴニストは、
ｉ)β６単独；
ii)αＶβ６；または
iii)αＶβ６／リガンド複合体
またはこれらの組合わせと結合し得る。一態様において、抗体は、インビトロおよびインビボでαＶβ６の生物活性と拮抗することができる。抗体は、完全ヒトモノクローナル抗体、例えばｓｃ２６４ＲＡＤ、ｓｃ２６４ＲＡＤ／ＡＤＹ、ｓｃ１８８ＳＤＭ、ｓｃ１３３、ｓｃ１３３ＴＭＴ、ｓｃ１３３ＷＤＳ、ｓｃ１３３ＴＭＴ／ＷＤＳ、ｓｃ１８８、ｓｃ２５４、ｓｃ２６４またはｓｃ２９８またはその変異型から選択され得る。

一態様において、αＶβ６の生物活性のアンタゴニストは、αＶβ６に結合することにより、ＴＧＦβＬＡＰ介在的細胞接着を阻止し得る。

一態様は、完全ヒトモノクローナル抗体ｓｃ２６４ＲＡＤ、ｓｃ２６４ＲＡＤ／ＡＤＹ、ｓｃ１８８ＳＤＭ、ｓｃ１３３、ｓｃ１３３ＴＭＴ、ｓｃ１３３ＷＤＳ、ｓｃ１３３ＴＭＴ／ＷＤＳ、ｓｃ１８８、ｓｃ２５４、ｓｃ２６４またはｓｃ２９８と同一のエピトープまたは複数エピトープに結合する抗体である。

一態様において、標的結合剤は、１００ナノモル(ｎＭ)未満のＫ_ｄでαＶβ６に結合する。標的結合剤は、約３５ナノモル(ｎＭ)未満のＫ_ｄで結合し得る。標的結合剤は、約２５ナノモル(ｎＭ)未満のＫ_ｄで結合し得る。標的結合剤は、約１０ナノモル(ｎＭ)未満のＫ_ｄで結合し得る。別の態様において、標的結合剤は、約６０ピコモル(ｐＭ)未満のＫ_ｄで結合する。

一態様は、上記の抗体の軽鎖および／または重鎖を生産する抗体分泌性形質細胞である。一態様において、形質細胞は、完全ヒトモノクローナル抗体の軽鎖および／または重鎖を生産する。別の態様では、形質細胞は、完全ヒトモノクローナル抗体ｓｃ２６４ＲＡＤ、ｓｃ２６４ＲＡＤ／ＡＤＹ、ｓｃ１８８ＳＤＭ、ｓｃ１３３、ｓｃ１３３ＴＭＴ、ｓｃ１３３ＷＤＳ、ｓｃ１３３ＴＭＴ／ＷＤＳ、ｓｃ１８８、ｓｃ２５４、ｓｃ２６４またはｓｃ２９８の軽鎖および／または重鎖を生産する。あるいは、形質細胞は、完全ヒトモノクローナル抗体ｓｃ２６４ＲＡＤ、ｓｃ２６４ＲＡＤ／ＡＤＹ、ｓｃ１８８ＳＤＭ、ｓｃ１３３、ｓｃ１３３ＴＭＴ、ｓｃ１３３ＷＤＳ、ｓｃ１３３ＴＭＴ／ＷＤＳ、ｓｃ１８８、ｓｃ２５４、ｓｃ２６４またはｓｃ２９８と同一のエピトープまたは複数エピトープに結合する抗体を生産し得る。

別の態様は、上記の抗体の軽鎖または重鎖をコード化する核酸分子である。一態様において、核酸分子は、完全ヒトモノクローナル抗体の軽鎖または重鎖をコード化する。さらに別の態様は、抗体ｓｃ２６４ＲＡＤ、ｓｃ２６４ＲＡＤ／ＡＤＹ、ｓｃ１８８ＳＤＭ、ｓｃ１３３、ｓｃ１３３ＴＭＴ、ｓｃ１３３ＷＤＳ、ｓｃ１３３ＴＭＴ／ＷＤＳ、ｓｃ１８８、ｓｃ２５４、ｓｃ２６４またはｓｃ２９８から選択される完全ヒトモノクローナル抗体の軽鎖または重鎖をコード化する核酸分子である。

本発明の別の態様は、上記の一核酸分子または複数核酸分子を含むベクターであり、上記ベクターは上記の抗体の軽鎖および／または重鎖をコード化する。

本発明のさらに別の態様は、上記のベクターを含む宿主細胞である。別法として、宿主細胞は複数のベクターを含み得る。

さらに、本発明の一態様は、核酸分子を発現させることにより抗体を生産する条件下で宿主細胞を培養し、次いで抗体を回収することによる抗体の生産方法である。

一態様では、本発明は、上記の抗体をコード化する少なくとも１つの核酸分子で少なくとも１つの宿主細胞をトランスフェクションし、核酸分子を宿主細胞で発現させ、抗体を単離することによる抗体の製造方法を含む。

別の態様によると、本発明は、本明細書に記載されたアンタゴニストの投与を含むαＶβ６の生物活性に拮抗する方法を含む。本方法は、αＶβ６関連疾患または障害について処置を必要とする動物を選択し、動物にαＶβ６の生物活性のアンタゴニストの治療有効量を投与することを含み得る。

本発明の別の態様は、上記の抗体投与を含むαＶβ６の生物活性に拮抗する方法を含む。本方法は、αＶβ６関連疾患または障害について処置を必要とする動物を選択し、αＶβ６の生物活性に拮抗する抗体の治療有効量を上記動物に投与することを含み得る。

別の態様によると、哺乳類におけるαＶβ６関連疾患または障害の処置方法であって、αＶβ６の生物活性のアンタゴニストの治療有効量の投与を含む方法が提供される。本方法は、αＶβ６関連疾患または障害について処置を必要とする動物を選択し、αＶβ６の生物活性のアンタゴニストの治療有効量を上記動物に投与することを含み得る。

別の態様によると、αＶβ６の生物活性に拮抗する抗体の治療有効量の投与を含む、哺乳類におけるαＶβ６(関連)疾患または障害の処置方法が提供される。本方法は、αＶβ６関連疾患または障害について処置を必要とする動物を選択し、αＶβ６の生物活性に拮抗する抗体の治療有効量を上記動物に投与することを含み得る。上記抗体は、単独で投与され得るか、または追加抗体または化学療法剤または放射線療法と組合わせて投与され得る。

別の態様によると、哺乳類における癌の処置方法であって、αＶβ６の生物活性のアンタゴニストの治療有効量の投与を含む方法が提供される。本方法は、癌について処置を必要とする動物を選択し、αＶβ６の生物活性に拮抗するアンタゴニストの治療有効量を上記動物に投与することを含み得る。上記アンタゴニストは、単独で投与され得るか、または追加抗体または化学療法剤または放射線療法と組合わせて投与され得る。

別の態様によると、哺乳類における癌の処置方法であって、αＶβ６の生物活性に拮抗する抗体の治療有効量の投与を含む方法が提供される。本方法は、癌について処置を必要とする動物を選択し、αＶβ６の生物活性に拮抗する抗体の治療有効量を上記動物に投与することを含み得る。上記抗体は、単独で投与され得るか、または追加抗体または化学療法剤または放射線療法と組合わせて投与され得る。

本発明の別の態様は、αＶβ６関連疾患または障害を処置する医薬の製造を目的とするαＶβ６の生物活性のアンタゴニストの使用に関するものである。

本発明の別の態様は、αＶβ６関連疾患または障害を処置する医薬の製造を目的とするαＶβ６の生物活性に拮抗する抗体の使用に関するものである。

好ましい態様では、本発明は、αＶβ６インテグリンにのみ、または一部依存的な腫瘍をもつ患者において、αＶβ６に拮抗するための使用に特に適している。

本発明の別の態様は、哺乳類組織、細胞または体液からαＶβ６を検出することにより、αＶβ６関連疾患または障害についてスクリーニングするための検定キットを含む。キットは、αＶβ６と結合する抗体およびαＶβ６が存在する場合にはそれと抗体の反応を示す手段を含む。抗体はモノクローナル抗体であり得る。一態様において、αＶβ６と結合する抗体は標識される。別の態様では、抗体は非標識一次抗体であり、キットはさらに一次抗体の検出手段を含む。一態様において、この手段は、抗免疫グロブリンである標識二次抗体を含む。好ましくは、抗体は、蛍光色素、酵素、放射性核種および放射線不透過性物質から成る群から選択されるマーカーにより標識されている。

抗αＶβ６抗体に関するさらなる態様、特徴などについては、下記でさらに詳細に説明する。

配列リスト
本発明の態様は、下記表１に列挙した特異的抗αＶβ６抗体を含む。この表は、各抗αＶβ６抗体の識別番号を、対応する重鎖および軽鎖遺伝子の可変ドメインの配列番号と一緒に記録している。各抗体には、「ｓｃ」という文字に次いで番号を含む識別番号が与えられている。

定義
特に断らなければ、本明細書で使用している科学および技術用語は、一般的に当業者により理解されている意味を有するものとする。さらに、文脈上特に要求されなければ、単数形の用語は複数の場合も包含し、複数形の用語は、単数の場合も含むものとする。一般的に、本明細書に記載されている細胞および組織培養、分子生物学、およびタンパク質およびオリゴまたはポリヌクレオチド化学およびハイブリダイゼーションに関して利用される命名法およびそれらの技術は、公知であり、当業界で常用されているものである。

組換えＤＮＡ、オリゴヌクレオチド合成、および組織培養および形質転換(例えば、電気穿孔、リポフェクション)については標準技術を使用する。酵素反応および精製技術は、製造業者の仕様書に従って、または当業界で通常実施されている要領で、または本明細書の記載に従って実施される。前述の技術および手順は、当業界で公知の慣用的方法に従って、本明細書全体を通して引用および検討されている様々な一般的およびさらに詳細な参考文献に記載の要領で実施される。例えば、Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual (第３版、Cold Spring Harbor Laboratory Press, コールドスプリングハーバー、ニューヨーク (2001))参照、これについては出典明示で援用する。ここに記載の分析化学、合成有機化学、および医薬および製薬化学に関して利用されている命名法、およびそれらの実験手順および技術は、当業界では公知であり、常用されているものである。化学合成、化学分析、医薬調製物、製剤および送達、および患者の処置については、標準技術を使用する。

本開示に従って利用されている以下の用語は、特に断らなければ、次の意味を有するものとする。

本明細書で使用している「および／または」の語は、２つの特定の特徴または成分のそれぞれが他方と共に、または片方のみが具体的に示されているものとして解釈される。例えば、「Ａおよび／またはＢ」は、(ｉ)Ａ、(ii)Ｂおよび(iii)ＡおよびＢのそれぞれの場合を、それぞれが本明細書で個々に示されているかのごとく具体的に示されているものとして解釈するべきである。

アンタゴニストは、ポリペプチド、核酸、炭水化物、脂質、小分子量化合物、オリゴヌクレオチド、オリゴペプチド、ＲＮＡ干渉(ＲＮＡｉ)、アンチセンス、組換えタンパク質、抗体、またはそのコンジュゲートまたは融合タンパク質であり得る。ＲＮＡｉの概説については、Milhavet O, Gary DS, Mattson MP. (Pharmacol Rev. ２００３年１２月;55(4):629-48. Review.)参照、アンチセンスについては、Opalinska JB, Gewirtz AM. (Sci STKE. ２００３年１０月２８日;2003 (206):pe47.)参照。

「αＶβ６」の疾患関連異常活性化または発現は、異常な、望ましくないまたは病理学的細胞接着、例えば腫瘍関連細胞接着であり得る。細胞接着関連疾患には、限定されるわけではないが、非固体腫瘍、例えば白血病、多発性骨髄腫またはリンパ腫、および固体腫瘍、例えばメラノーマ、小細胞肺癌、非小細胞肺癌、神経膠腫、肝細胞(肝臓)癌、神経膠芽腫、甲状腺、胆管、骨、胃、脳／ＣＮＳ、頭部および頸部、肝臓系、腹部、前立腺、乳房、腎臓、精巣、卵巣、皮膚、頸部、肺、筋肉、ニューロン、食道、膀胱、肺、子宮、外陰部、子宮内膜、腎臓、結腸直腸、膵臓、胸膜／腹膜、唾液線および表皮の癌腫がある。

化合物とは、分子量が約２０００ダルトン未満である小分子量化合物を包含する。

「αＶβ６」の語は、αＶ鎖およびβ６鎖から成るヘテロ二量体インテグリン分子をいう。

「中和性の」の語は、標的結合剤、例えば抗体について用いられる場合、上記の標的結合剤が標的抗原の活性を排除、または著しく低減化する能力に関するものである。したがって、「中和性」抗αＶβ６抗体は、αＶβ６の活性を排除または著しく縮小させ得る。中和性αＶβ６抗体は、例えば、インテグリンαＶβ６へのＴＧＦβＬＡＰの結合を遮断することにより作用し得る。この結合を遮断することにより、αＶβ６依存的細胞接着は、著しく、または完全に排除される。理想的には、αＶβ６に対する中和性抗体は、細胞接着を阻害する。

本明細書で使用している「単離ポリヌクレオチド」の語は、それが天然で存在する環境から単離されているポリヌクレオチドをいう。上記ポリヌクレオチドは、ゲノム、ｃＤＮＡまたは合成起源によるものであり得る。単離ポリヌクレオチドは、好ましくはそれらが自然の状態で付随しているポリヌクレオチドの全部または一部分に付随してはいない。単離ポリヌクレオチドは、自然の状態では結合されていない別のポリヌクレオチドと機能し得るように結合され得る。さらに、単離ポリヌクレオチドは、好ましくは長い配列の一部として天然に存在するものではない。

本明細書でいう「単離タンパク質」の語は、それが自然界に存在する環境から単離されたタンパク質を意味する。上記タンパク質は、ゲノムＤＮＡ、ｃＤＮＡ、組換えＤＮＡ、組換えＲＮＡまたは合成起源またはそれらの組合わせから誘導され得、その起源または誘導供給源により、「単離タンパク質」は、(１)天然で見出されるタンパク質に付随していないか、(２)同一供給源からの他のタンパク質を含まない、例えばマウスタンパク質を含まないか、(３)異なる種からの細胞により発現されるか、または(４)天然では存在しない。

一般用語として本明細書で使用している「ポリペプチド」の語は、天然タンパク質、ポリペプチド配列のフラグメントまたは類似体をいう。このため、天然タンパク質、フラグメント、および類似体は、ポリペプチド類の化学種である。本発明による好ましいポリペプチドは、ヒト重鎖免疫グロブリン分子およびヒトカッパ軽鎖免疫グロブリン分子、および重鎖免疫グロブリン分子を軽鎖免疫グロブリン分子、例えばカッパまたはラムダ軽鎖免疫グロブリン分子と共に含む組合わせ(逆もまた同様)により形成される抗体分子、およびそのフラグメントおよび類似体を含む。本発明による好ましいポリペプチドはまた、ヒト重鎖免疫グロブリン分子またはそのフラグメントのみを含み得る。

本明細書においてある対象に適用される「天然に存在する」の語は、その対象が天然で見出され得るという事実を示す。例えば、天然での供給源から単離され得、実験その他で人為的修飾が加えられていない生物体(ウイルスを含む)に存在するポリペプチドまたはポリヌクレオチド配列は、天然に存在するものである。

本明細書で使用している「機能し得るように結合された」の語は、記載された成分が意図された形でそれらを機能させ得る位置関係に置かれていることをいう。例えば、コーディング配列に「機能し得るように結合された」制御配列は、コーディング配列の発現が制御配列と適合し得る条件下で達成されるように連結されている。

本明細書で使用している「ポリヌクレオチド」の語は、少なくとも１０塩基長のヌクレオチドのポリマー形態で、リボヌクレオチドまたはデオキシヌクレオチドまたはいずれかのタイプのヌクレオチドの修飾形態、またはＲＮＡ−ＤＮＡヘテロ−デュプレックスをいう。この語は、ＤＮＡの１本および２本鎖形態を包含する。

本明細書でいう「オリゴヌクレオチド」の語は、天然に存在するヌクレオチド、および天然および非天然的結合により連結された修飾ヌクレオチドを包含する。オリゴヌクレオチドは、一般に２００またはそれ未満の塩基長を含むポリヌクレオチドサブセットである。好ましくは、オリゴヌクレオチドは、１０〜６０塩基長、最も好ましくは１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９または２０〜４０塩基長である。オリゴヌクレオチドは、例えばプローブ用としては通常１本鎖であるが、オリゴヌクレオチドは、例えば遺伝子突然変異体の構築用には２本鎖であり得る。オリゴヌクレオチドは、センスまたはアンチセンスオリゴヌクレオチドであり得る。

本明細書でいう「天然(に存在する)ヌクレオチド」の語は、デオキシリボヌクレオチドおよびリボヌクレオチドを包含する。本明細書でいう「修飾ヌクレオチド」の語は、修飾または置換された糖基などをもつヌクレオチドを包含する。本明細書でいう「オリゴヌクレオチド結合」の語は、例えばホスホロチオエート、ホスホロジチオエート、ホスホロセレノエート、ホスホロジセレノエート、ホスホロアニロチオエート、ホスホラニラデート、ホスホロアミデートなどのオリゴヌクレオチド結合を含む。例えば、LaPlanche et al., Nucl. Acids Res. 14:9081 (１９８６); Stec et al., J. Am. Chem. Soc. 106:6077 (１９８４); Stein et al., Nucl. Acids Res. 16:3209 (1988); Zon et al., Anti-Cancer Drug Design 6:539 (1991); Zon et al., Oligonucleotides and Analogues: A Practical Approach, ８７−１０８頁 (F. Eckstein 編、Oxford University Press, オックスフォード、英国 (1991)); Stec et al., 米国特許第５１５１５１０号; Uhlmann および Peyman Chemical Reviews 90:543 (1990)参照、これらの開示については出典明示で援用する。オリゴヌクレオチドは、所望ならば検出用の標識を含み得る。

本明細書でいう「選択的にハイブリダイゼーションする」の語は、検出可能かつ特異的に結合することを意味する。ポリヌクレオチド、オリゴヌクレオチドおよびそれらのフラグメントは、非特異的核酸に対する相当の検出可能結合量を最小限にするハイブリダイゼーションおよび洗浄条件下で核酸鎖と選択的にハイブリダイゼーションする。高度に厳密な条件を用いることにより、当業界で周知であり、本明細書で検討している選択的ハイブリダイゼーション条件が達成され得る。一般的に、ポリヌクレオチド、オリゴヌクレオチドまたは抗体フラグメントおよび興味の対象である核酸配列間の核酸配列相同性は、少なくとも８０％、さらに典型的には少なくとも８５％、９０％、９５％、９９％および１００％のさらに高い相同性が好ましい。

「ＣＤＲ領域」または「ＣＤＲ」の語は、Kabat et al., 1991 (Kabat, E.A. et al., (1991) Sequences of Proteins of Immunological Interest, 第５版、米国保健福祉省、公益事業、NIH、ワシントン)および後続版により定義されたところによると、免疫グロブリンの重鎖および軽鎖の高可変領域を示すものとする。抗体は、典型的には３つの重鎖ＣＤＲおよび３つの軽鎖ＣＤＲを含む。本明細書で使用しているＣＤＲまたは複数形のＣＤＲの語は、場合によっては、抗体が認識する抗原またはエピトープについての抗体の親和力による結合に関与するアミノ酸残基の大多数を含むこれらの領域の１つまたはこれらの領域の幾つか、または全体を示すものとする。

６つの短いＣＤＲ配列の中で、重鎖の第３ＣＤＲ(ＨＣＤＲ３)は、大きなサイズ変動性(本質的にそれを生じさせる遺伝子配置機構に起因する大きな多様性)を有する。既知の最長サイズは２６であるが、それは２アミノ酸程度の短いものであり得る。ＣＤＲ長はまた、特定の根本的フレームワークにより調整され得る長さによって変化し得る。機能的には、ＨＣＤＲ３は、抗体の特異性の決定において部分的にある一定の役割を演じる(Segal et al., PNAS, 71:4298-4302, 1974, Amit et al., Science, 233:747-753, 1986, Chothia et al., J. Mol. Biol., 196:901-917, 1987, Chothia et al., Nature, 342:877- 883, 1989, Caton et al., J. Immunol., 144:1965-1968, 1990, Sharon et al., PNAS, 87:4814-4817, 1990, Sharon et al., J. Immunol., 144:4863-4869, 1990, Kabat et al., J. Immunol., 147:1709-1719, 1991)。

本明細書でいう「ＣＤＲのセット」の語は、ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３を含む。すなわち、ＨＣＤＲのセットとは、ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２およびＨＣＤＲ３(ＨＣＤＲは可変重鎖ＣＤＲをいう)をいい、ＬＣＤＲのセットとは、ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２およびＬＣＤＲ３(ＬＣＤＲは可変軽鎖ＣＤＲをいう)をいう。特に断らなければ、「ＣＤＲのセット」は、ＨＣＤＲおよびＬＣＤＲを含むものとする。

２つのアミノ酸配列間に部分的または完全な同一性がある場合、それらの配列は「相同性」である。例えば、８５％相同性とは、２つの配列をマッチが最大となるように整列させたときにアミノ酸の８５％が同一であることを意味する。ギャップ(マッチしている２配列のいずれかにおける)はマッチを最大にする場合に認められる。５またはそれ未満のギャップ長が好ましく、２またはそれ未満がさらに好ましい。他方、そして好ましくは、２つのタンパク質配列(または少なくとも約３０アミノ酸長を有するそこから誘導されたポリペプチド配列)が、突然変異データマトリックスおよび６またはそれより大きいギャップペナルティによるプログラムＡＬＩＧＮを使用したときに５を超えるアラインメントスコア(標準偏差単位で)を有する場合、本明細書におけるこの語の上記使用と同様、それらの配列は相同性である。Dayhoff, M.O., Atlas of Protein Sequence and Structure,１０１−１１０頁 (第５巻、National Biomedical Research Foundation (1972))およびこの巻に対する補遺２、１−１０頁参照。さらに好ましくは、２つの配列またはその一部について、ＡＬＩＧＮプログラムを用いて最適な形で整列させたときに、それらのアミノ酸が５０％またはそれより大きい割合で同一である場合、それらは相同性である。２つのオーソログ配列内に相同性の異なる領域が存在し得ることもあるものとする。例えば、マウスおよびヒトオーソログの機能性部位は、非機能性領域より高度の相同性を有し得る。

本明細書で使用している「に対応する」の語は、ポリヌクレオチド配列が、リファレンスポリヌクレオチド配列の全部または一部分と相同性である(すなわち、厳密に進化的に関連しているのではなく、同一である)こと、またはポリペプチド配列がリファレンスポリペプチド配列と同一であることを意味する。

対比的に、本明細書で使用している「と相補的な」の語は、相補的配列がリファレンスポリヌクレオチド配列の全部または一部分と相同性であることを意味する。実例を挙げると、ヌクレオチド配列「ＴＡＴＡＣ」は、リファレンス配列「ＴＡＴＡＣ」に対応し、リファレンス配列「ＧＴＡＴＡ」と相補的である。

「配列同一性」の語は、２つのポリヌクレオチドまたはアミノ酸配列が、比較ウインドウ全体にわたって同一である(すなわち、ヌクレオチドごとまたは残基ごとに基づいて)ことを意味する。「配列同一性のパーセンテージ」の語は、比較ウインドウ全体にわたって最適となるように整列させた２つの配列を比較し、同一核酸塩基(例、Ａ、Ｔ、Ｃ、Ｇ、ＵまたはＩ)またはアミノ酸残基が両配列で現れる位置の数を測定して、マッチした位置の数を得、マッチした位置の数を比較ウインドウにおける総数(すなわち、ウインドウサイズ)で割り、結果を１００倍して、配列同一性のパーセンテージを得ることにより計算される。本明細書で使用している「実質的同一性」の語は、ポリヌクレオチドまたはアミノ酸配列の特徴を示すもので、ポリヌクレオチドまたはアミノ酸は、少なくとも１８ヌクレオチド(６アミノ酸)位置の比較ウインドウ全体にわたって、多くの場合少なくとも２４〜４８ヌクレオチド(８〜１６アミノ酸)位置のウインドウ全体にわたってリファレンス配列と比べたときに少なくとも８５パーセント配列同一性、好ましくは少なくとも９０〜９５パーセント配列同一性、さらに好ましくは少なくとも９９パーセント配列同一性を有する配列を含む場合をいい、配列同一性のパーセンテージは、比較ウインドウ全体にわたって総計してリファレンス配列の２０パーセントまたはそれ未満となる欠失または付加を含み得る配列とリファレンス配列を比較することにより計算される。リファレンス配列は、長い配列のサブセットであり得る。

本明細書で使用している２０の慣用アミノ酸およびそれらの省略形は、慣用的用法に従う。Immunology - A Synthesis (第２版、E.S. Golub および D.R. Gren 編、Sinauer Associates, サンダーランド、マサチューセッツ(1991))参照、これについては出典明示で援用する。また、２０の慣用アミノ酸の立体異性体(例、Ｄ−アミノ酸)、非天然アミノ酸、例えばα−、α−ジ置換アミノ酸、Ｎ−アルキルアミノ酸、酪酸および他の非慣用的アミノ酸は、本発明ポリペプチドにとって適切な構成成分であり得る。非慣用的アミノ酸の例には、４−ヒドロキシプロリン、γ−カルボキシグルタメート、ε−Ｎ,Ｎ,Ｎ−トリメチルリシン、ε−Ｎ−アセチルリシン、Ｏ−ホスホセリン、Ｎ−アセチルセリン、Ｎ−ホルミルメチオニン、３−メチルヒスチジン、５−ヒドロキシリシン、σ−Ｎ−メチルアルギニンおよび他の類似アミノ酸およびイミノ酸(例、４−ヒドロキシプロリン)がある。本明細書で使用しているポリペプチド表記法では、標準の用法および慣用法に従って、左手方向がアミノ末端方向であり、右手方向がカルボキシ末端方向である。

同様に、特に断らなければ、１本鎖ポリヌクレオチド配列の左側末端は５'末端であり、２本鎖ポリヌクレオチド配列の左手方向は５'方向を指す。新生ＲＮＡ転写物の５'から３'への付加の方向を転写方向という。ＲＮＡと同じ配列を有するＤＮＡ鎖上にあって、ＲＮＡ転写物の５'末端に対し５'である配列領域を、「上流配列」といい、ＲＮＡと同じ配列を有するＤＮＡ鎖上にあって、ＲＮＡ転写物の３'末端に対し３'である配列領域を「下流配列」という。

ポリペプチドに適用している「実質的同一性」の語は、２つのペプチド配列を、例えばデフォルトギャップ加重を用いるプログラムＧＡＰまたはＢＥＳＴＦＩＴにより最適となるように整列させたとき、それらが少なくとも８０パーセント配列同一性、好ましくは少なくとも９０パーセント配列同一性、さらに好ましくは少なくとも９５パーセント配列同一性、最も好ましくは少なくとも９９パーセント配列同一性を共有することを意味する。好ましくは、同一ではない残基位置は、同類アミノ酸置換により異なる。同類アミノ酸置換は、類似側鎖を有する残基の互換性をいう。例えば、脂肪族側鎖を有する一群のアミノ酸は、グリシン、アラニン、バリン、ロイシンおよびイソロイシンである。脂肪族ヒドロキシル側鎖を有する一群のアミノ酸は、セリンおよびトレオニンである。アミド含有側鎖を有するアミノ酸の一群は、アスパラギンおよびグルタミンである。芳香族側鎖を有するアミノ酸の一群は、フェニルアラニン、チロシンおよびトリプトファンである。塩基性側鎖を有するアミノ酸の一群は、リシン、アルギニンおよびヒスチジンである。硫黄含有側鎖を有するアミノ酸の一群は、システインおよびメチオニンである。好ましい同類アミノ酸置換基は、バリン−ロイシン−イソロイシン、フェニルアラニン−チロシン、リシン−アルギニン、アラニン−バリン、グルタミン酸−アスパラギン酸、およびアスパラギン−グルタミンである。

ここに記載している抗体または免疫グロブリン分子のアミノ酸配列における僅かな変形も、アミノ酸配列における変化が、ここに記載の抗体または免疫グロブリン分子に対し少なくとも約７５％、さらに好ましくは少なくとも８０％、９０％、９５％および最も好ましくは約９９％の配列同一性を維持するものであれば、本発明に含まれるものとする。特にこの場合、保存アミノ酸置換が考えられる。同類置換は、関連した側鎖を有するアミノ酸の一ファミリー内で行われるものである。遺伝子コード化されたアミノ酸は、一般的に次のファミリー：(１)酸性＝アスパラギン酸、グルタミン酸；(２)塩基性＝リシン、アルギニン、ヒスチジン；(３)非極性＝アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、フェニルアラニン、メチオニン、トリプトファン；および(４)非荷電極性＝グリシン、アスパラギン、グルタミン、システイン、セリン、トレオニン、チロシンに分類される。さらに好ましいファミリーは次のとおりである：セリンおよびトレオニンは脂肪族ヒドロキシファミリーである；アスパラギンおよびグルタミンはアミド含有ファミリーである；アラニン、バリン、ロイシンおよびイソロイシンは脂肪族ファミリーである；フェニルアラニン、トリプトファンおよびチロシンは芳香族ファミリーである。例えば、特に置換がフレームワーク内のアミノ酸を巻き込まなければ、イソロイシンまたはバリンによるロイシンの、グルタメートによるアスパルテートの、セリンによるトレオニンの単独置換、または一アミノ酸の構造上関連したアミノ酸による類似置換が、生成した分子の結合機能または特性に大した影響を及ぼさないと予測するのは妥当である。

アミノ酸変化が機能性ペプチドをもたらすか否かは、ポリペプチド誘導体の比活性を検定することにより容易に決定され得る。検定法は本明細書で詳述されている。抗体または免疫グロブリン分子のフラグメントまたは類似体は、当業者により容易に調製され得る。フラグメントまたは類似体の好ましいアミノおよびカルボキシ末端は、機能性ドメインの境界付近に現れる。構造的および機能的ドメインは、公開または著作権のある配列データベースとヌクレオチドおよび／またはアミノ酸配列データを比較することにより同定され得る。好ましくは、コンピューターによる比較方法を用いることにより、既知構造および／または機能を有する他のタンパク質で現れる配列モチーフまたは推定タンパク質立体配座ドメインを同定する。既知三次元構造に折りたたまれるタンパク質配列の同定方法は公知である。Bowie et al., (1991) Science 253:164。すなわち、前述の例は、当業者であれば、ここに記載の抗体に従って構造的および機能的ドメインを特定するのに使用され得る配列モチーフおよび構造的立体配座を認識できることを立証している。

本発明のさらなる態様は、表１、添付の配列リストに示された抗体、ここに記載の抗体のいずれかのＶＨドメイン、または表８または表２９に示されたＨＣＤＲ(例、ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２またはＨＣＤＲ３)と少なくとも約６０、７０、８０、８５、９０、９５、９８または約９９％アミノ酸配列同一性を有するＶＨドメインを含むターゲッティング結合剤または抗体分子である。またターゲッティング結合剤または抗体分子は、所望により表１、添付の配列リストに示された抗体、ここに記載の抗体のいずれかのＶＬドメイン、または表９または表３０に示されたＬＣＤＲ(例、ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２またはＬＣＤＲ３)と少なくとも約６０、７０、８０、８５、９０、９５、９８または約９９％アミノ酸配列同一性を有するＶＬドメインを含み得る。２つのアミノ酸配列の同一性％を計算するのに使用され得るアルゴリズムには、例えばＢＬＡＳＴ(Altschul et al., (1990) J. Mol. Biol. 215: 405-410)、ＦＡＳＴＡ(Pearson および Lipman (1988) PNAS USA 85: 2444-2448)またはSmith-Watermanアルゴリズム(Smith および Waterman (１９８１) J. Mol Biol. 147: 195-197)があり、例えばデフォルトパラメーターを使用する。若干の態様において、上記のアミノ酸配列同一性を共有するターゲッティング結合剤または抗体は、リファレンス抗体と実質的に同じ活性を呈する。例えば、実質的に同じ活性は、約５０％以下、４０％、３０％、２０％、１０％、５％、２％、１％またはそれ未満の割合でリファレンス抗体の活性とは異なる少なくとも一つの活性を含む。

抗原結合部位は、一般的に可変重鎖(ＶＨ)および可変軽鎖(ＶＬ)免疫グロブリンドメインにより形成され、相補性(complimentarity)決定領域(ＣＤＲ)と呼ばれる６つの表面ポリペプチドループにより形成される抗原結合インターフェースを伴う。フレームワーク領域(ＦＲ)と一緒に、各ＶＨ(ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３)および各ＶＬ(ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２、ＬＣＤＲ３)には３つのＣＤＲが存在する。

ＶＨまたはＶＬドメインは、単独でも抗原との結合に使用され得るが、典型的には、ＶＨドメインは、ＶＬドメインと対合することにより抗体抗原結合部位を提供する。ＶＨドメイン(例、表１から)がＶＬドメイン(例、表１から)と対合し得ることにより、ＶＨおよびＶＬの両ドメインを含む抗体抗原結合部位が形成される。本明細書で開示している他のＶＨおよびＶＬドメインについても同様の態様が提供される。他の態様では、表８または表２９におけるＶＨ鎖が異種ＶＬドメインと対合される。軽鎖乱交雑性は当業界では十分に確立されている。また、本発明は、本明細書で開示している他のＶＨおよびＶＬドメインについても同様の態様を提供する。すなわち、親抗体または表９または表３０における抗体鎖のいずれかのＶＨは、親抗体または表１における抗体のいずれかまたは他の抗体のＶＬと対合され得る。

抗原結合部位は、親抗体または表１における抗体のいずれかのＨおよび／またはＬＣＤＲのセットを含み、開示されたＨおよび／またはＬＣＤＲのセット内に２０、１６、１０、９程度またはそれ以下、例えば１、２、３、４または５つのアミノ酸付加、置換、欠失および／または挿入を伴い得る。これに代わるものとして、抗原結合部位は、親抗体または表１における抗体のいずれかのＨおよび／またはＬＣＤＲのセットを含み、開示されたＨおよび／またはＬＣＤＲのセット内に２０、１６、１０、９程度またはそれ以下、例えば１、２、３、４または５つのアミノ酸置換を伴い得る。上記修飾は、潜在的にはＣＤＲのセット内のいずれの残基においても加えられ得る。

好ましいアミノ酸置換とは、(１)タンパク質分解に対する感受性を低下させる、(２)酸化に対する感受性を低下させる、(３)タンパク質複合体の形成に関する結合親和性を改変する、(４)結合親和性を改変する、(４)上記類似体の他の物理化学的または機能的特性を付与または修飾するものである。類似体は、天然に存在するペプチド配列以外の配列の様々な突然変異タンパク質を含み得る。例えば、単一または多数のアミノ酸置換(好ましくは同類アミノ酸置換)は、天然配列(好ましくは分子間接触を形成するドメイン(複数も可)の外側にあるポリペプチド部分)において導入され得る。同類アミノ酸置換は、親配列の構造特性を実質的に変えるべきではない(例、置換アミノ酸は、親配列に存在するらせんを破壊したり、親配列を特徴づける他のタイプの二次構造を崩壊する傾向を示すべきではない)。当業界で認められているポリペプチド二次および三次構造の例は、Proteins, Structures and Molecular Principles (Creighton 編、W. H. Freeman and Company, ニューヨーク(1984)); Introduction to Protein Structure (C. Branden および J. Tooze 編、Garland Publishing, ニューヨーク、ニューヨーク (1991)); および Thornton et at. Nature 354:105 (1991)に記載されており、それぞれ出典明示で援用する。

本発明のさらなる態様は、表１、添付の配列リストに列挙または本明細書に記載した抗体のいずれかのＶＨドメイン、または表８または表２９に示されたＨＣＤＲ(例、ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２またはＨＣＤＲ３)と少なくとも約６０、７０、８０、８５、９０、９５、９８または約９９％アミノ酸配列同一性を有するＶＨドメインを含む抗体分子である。また抗体分子は、所望により表１、添付の配列リストに示されたかまたは本明細書に記載の抗体のいずれかのＶＬドメイン、または表９または表３０に示されたＬＣＤＲ(例、ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２またはＬＣＤＲ３)と少なくとも６０、７０、８０、８５、９０、９５、９８または約９９％アミノ酸配列同一性を有するＶＬドメインを含み得る。２つのアミノ酸配列の同一性％を計算するのに使用され得るアルゴリズムには、例えばＢＬＡＳＴ(Altschul et al., (1990) J. Mol. Biol. 215: 405-410)、ＦＡＳＴＡ(Pearson and Lipman (1988) PNAS USA 85: 2444-2448)またはSmith-Watermanアルゴリズム(Smith and Waterman (1981) J. Mol Biol. 147: 195-197)があり、例えばデフォルトパラメーターを使用する。

本発明のＶＨおよびＶＬドメインおよびＣＤＲの変異型は、アミノ酸配列が本明細書で示されており、αＶβ６について薬剤および抗体をターゲッティングするのに使用され得るものを含め、配列改変または突然変異導入および所望の特徴を伴う抗原ターゲッティングに関するスクリーニングの方法により得られる。所望の特徴の例には、限定されるわけではないが、抗原に特異的である既知抗体と比べて抗原についての高い結合親和力、抗原活性が判明している場合に抗原に特異的である既知抗体よりも高い抗原活性中和力、特定モル比での抗原に対する既知抗体またはリガンドとの特異的競争力、複合体を免疫沈降させる能力、特定エピトープ、線形エピトープ、例えばここに記載のペプチド結合スキャンを用いて、例えば線形および／または束縛された立体構造でスクリーニングされたペプチドを用いて同定されるペプチド配列、非連続残基により形成された立体構造エピトープへの結合能、αＶβ６または下流分子の新たな生物活性の調節能力がある。本発明は上記方法も提供する。

本明細書で開示した抗体分子の変異型は、本発明で製造および使用され得る。構造／特性−活性関係への多変量データ解析技術の適用におけるコンピューター化学技法の前例に従って(Wold, et al., Multivariate data analysis in chemistry. Chemometrics -Mathematics and Statistics in Chemistry (B. Kowalski 編), D. Reidel Publishing Company, ドルドレヒト、オランダ国、１９８４)、抗体の量的活性−特性関係が、公知の数学的技術、例えば統計回帰分析、パターン認識および分類法を用いて誘導され得る(Norman et al., Applied Regression Analysis. Wiley-Interscience; 第３版(１９９８年４月); Kandel, Abraham & Backer, Eric. Computer-Assisted Reasoning in Cluster Analysis. Prentice Hall PTR, (１９９５年５月１１日); Krzanowski, Wojtek. Principles of Multivariate Analysis: A User’s Perspective (Oxford Statistical Science Series, No 22 (研究論文)). Oxford University Press; (２０００年１２月); Witten, Ian H. & Frank, Eibe. Data Mining: Practical Machine Learning Tools and Techniques with Java Implementations. Morgan Kaufmann; (１９９９年１０月１１日);Denison David G. T. (編), Christopher C. Holmes, Bani K. Mallick, Adrian F. M. Smith. Bayesian Methods for Nonlinear Classification and Regression (Wiley Series in Probability and Statistics). John Wiley & Sons; (２００２年７月); Ghose, Arup K. & Viswanadhan, Vellarkad N. Combinatorial Library Design and Evaluation Principles, Software, Tools, and Applications in Drug Discovery)。抗体の特性は、抗体配列、機能的および三次元構造の経験的および理論的モデル(例えば、可能性のある接触残基の分析または計算された物理化学特性)から演繹され得、これらの特性は単独および組合わせて考慮され得る。

ＶＨドメインおよびＶＬドメインにより構成される抗体抗原結合部位は、典型的にはポリペプチドの６ループ：軽鎖可変ドメイン(ＶＬ)からの３ループおよび重鎖可変ドメイン(ＶＨ)からの３ループにより形成される。既知原子構造の抗体の分析により、抗体結合部位の配列と三次元構造間の関係が解明され得る。これらの関係は、ＶＨドメインにおける第３領域(ループ)を除き、結合部位ループが少数の主鎖立体配座：正規構造の一つを有することを暗示している。特定ループで形成される正規構造は、そのサイズおよびループおよびフレームワークの両領域にある重要部位におけるある種の残基の存在により決定されることが示された。

この配列−構造関係の試験は、配列は既知であるが、三次元構造は未知である抗体において、そのＣＤＲループの三次元構造を維持するのに重要であることから、結合特異性を維持している残基を予測するのに使用され得る。これらの予測は、前例の最適化実験からのアウトプットと予測結果の比較により裏付けされ得る。構造的研究方法では、自由に入手可能または市販のパッケージ、例えばＷＡＭを用いることにより抗体分子のモデルが作製され得る。次いで、タンパク質視覚化および分析ソフトウェアパッケージ、例えばInsight II(Accelrys, Inc.)またはDeep Viewを用いることにより、ＣＤＲにおける各位置での可能な置換が評価され得る。次いで、この情報を用いることにより、活性に対して最小限または有益な影響を及ぼすと思われる置換が導入され得る。

一般にＣＤＲ、抗体ＶＨまたはＶＬドメインおよび／または結合剤のアミノ酸配列内に置換を導入するのに要求される技術は、当技術分野で利用し得るものである。活性に対して最小限または有益な影響を及ぼすと予測され得るかまたはされ得ない置換を加えることにより、様々な配列が作製され、結合能および／または中和能について、および／または他の所望の特性について試験され得る。

本明細書で配列が具体的に開示されているＶＨおよびＶＬドメインのいずれかの可変ドメインアミノ酸配列変異型は、検討されている要領で本発明にしたがって使用され得る。

本明細書で使用している「ポリペプチドフラグメント」の語は、アミノ末端および／またはカルボキシ末端欠失を有するが、残りのアミノ酸配列が、例えば完全長ｃＤＮＡ配列から推定される天然配列における対応位置と同一であるポリペプチドをいう。フラグメントは、典型的には少なくとも約５、６、８または１０アミノ酸長、好ましくは少なくとも約１４アミノ酸長、さらに好ましくは少なくとも約２０アミノ酸長、通常少なくとも約５０アミノ酸長、さらに好ましくは少なくとも約７０アミノ酸長である。本明細書で使用している「類似体」の語は、推定されるアミノ酸配列の一部分との実質的同一性を有し、次の特性：(１)適切な結合条件下におけるαＶβ６への特異的結合性、(２)適切なリガンド／αＶβ６結合を遮断する能力、または(３)αＶβ６活性の阻害能の少なくとも１つを有する少なくとも約２５アミノ酸のセグメントにより構成されるポリペプチドをいう。典型的には、ポリペプチド類似体は、天然配列に関して同類アミノ酸置換(または付加または欠失)を含む。類似体は、典型的には少なくとも２０アミノ酸長、好ましくは少なくとも５０アミノ酸長またはそれより長いものであり、多くの場合完全長天然ポリペプチドと同程度の長さであり得る。

ペプチド類似体は、鋳型ペプチドと特性が類似している非ペプチド薬剤として製薬業界で常用される。これらのタイプの非ペプチド化合物は、「ペプチド模倣物質」または「ペプチドミメティクス」と呼ばれる。Fauchere, J. Adv. Drug Res. 15:29 (１９８６); Veber および Freidinger TINS p.392 (１９８５);および Evans et al., J. Med. Chem. 30:1229 (１９８７)、これらについては出典明示で援用する。上記化合物は、コンピューターによる分子モデリングの助けを借りて開発されることが多い。治療上有用なペプチドと構造が類似しているペプチド模倣物質は、均等内容の治療的または予防的効果を生じさせるのに使用され得る。一般的に、ペプチド模倣物質は、パラダイムポリペプチド(すなわち、生化学的特性または薬理学的活性を有するポリペプチド)、例えばヒト抗体と構造的に類似しているが、所望により、当業界で公知の方法により、--ＣＨ_２ＮＨ--、--ＣＨ_２Ｓ--、--ＣＨ_２−ＣＨ_２--、--ＣＨ＝ＣＨ--(シスおよびトランス)、--ＣＯＣＨ_２--、--ＣＨ(ＯＨ)ＣＨ_２--および−ＣＨ_２ＳＯ--から成る群から選択される結合により置換されていてもよい１つまたはそれ以上のペプチド結合を有する。共通配列の１個またはそれ以上のアミノ酸を同一タイプのＤ−アミノ酸と系統的に置換(Ｌ−リシンをＤ−リシンにより置換)することにより、さらに安定したペプチドが生成され得る。さらに、共通配列または実質的に同一の共通配列変異を含む拘束型ペプチドは、当業界で公知の方法(Rizo および Gierasch Ann. Rev. Biochem. 61:387 (1992)、出典明示で援用する)、例えばペプチドを閉環する分子内ジスルフィド結合を形成し得る内部システイン残基を付加することにより生成され得る。

本明細書で使用している「抗体」の語は、抗原の抗原決定基の特徴と相補的な内部表面形状および電荷分布をもつ三次元結合空間を有するポリペプチド鎖の折りたたみから形成される少なくとも１つの結合ドメインにより構成されるポリペプチドまたはポリペプチドの一群をいう。抗体は、典型的にはポリペプチド鎖の２つの同一対を含む四量体形態を有しており、各対は１つの「軽」鎖および１つの「重」鎖を有する。各軽／重鎖対の可変領域が抗体結合部位を形成する。

本明細書で使用している「標的結合剤」は、優先的に標的部位へ結合する作用物質、例えば抗体またはその結合性フラグメントである。一例において、標的結合剤は、唯一の標的部位に特異的である。他の例では、標的結合剤は、複数の標的部位に特異的である。一例では、標的結合剤はモノクローナル抗体であり得、標的部位はエピトープであり得る。下記によると、標的結合剤は、抗体の少なくとも１つの抗原結合ドメインを含み得、上記ドメインは縮合しているかまたは異種タンパク質内に含まれる。

抗体の「結合性フラグメント」は、組換えＤＮＡ技術により、または無傷の抗体の酵素的または化学的開裂により製造される。結合性フラグメントには、Ｆａｂ、Ｆａｂ'、Ｆ(ａｂ')_２、Ｆｖおよび１本鎖抗体がある。「二重特異性」または「二価」抗体以外の抗体は、その結合部位のそれぞれが同一であるものとする。過剰の抗体がカウンター受容体に結合した受容体の量を少なくとも約２０％、４０％、６０％または８０％の率、通常は約８５％より大きい率で減少させる場合(インビトロ競合結合検定法で測定)、抗体は実質的にカウンター受容体への受容体の接着を阻害している。

抗体は、オリゴクローナル、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、キメラ抗体、ＣＤＲ移植抗体、多重特異性抗体、二重特異性抗体、触媒性抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、完全ヒト抗体、抗イディオタイプ抗体および可溶性または結合形態で標識され得る抗体およびそのフラグメント、変異型または誘導体であり、単独または公知技術により提供される他のアミノ酸配列と組み合わされたものであり得る。抗体は、いかなる種に由来するものでもよい。抗体の語はまた、本発明抗体の結合性フラグメントを包含する。フラグメントの典型例には、Ｆｖ、Ｆａｂ、Ｆａｂ'、１本鎖抗体(ｓｖＦＣ)、二量体可変領域(二重特異性抗体)およびジスルフィド安定化可変領域(ｄｓＦｖ)がある。

全抗体のフラグメントでも抗原結合機能を遂行し得ることが示された。結合性フラグメントの例は、(Ward, E.S. et al., (1989) Nature 341, 544-546)ＶＬ、ＶＨ、ＣＬおよびＣＨ１ドメインから成るＦａｂフラグメント；(McCafferty et al., (1990) Nature, 348, 552-554)ＶＨおよびＣＨ１ドメインから成るＦｄフラグメント；(Holt et al., (2003) Trends in Biotechnology 21, 484-490)単抗体のＶＬおよびＶＨドメインから成るＦｖフラグメント；(iv)ＶＨまたはＶＬドメインから成るｄＡｂフラグメント(Ward, E.S. et al., Nature 341, 544-546 (1989), McCafferty et al., (1990) Nature, 348, 552-554, Holt et al., (2003) Trends in Biotechnology 21, 484-490)；(ｖ)単離ＣＤＲ領域；(vi)Ｆ(ａｂ')_２フラグメント、２つの結合されたＦａｂフラグメントを含む二価フラグメント；(vii)１本鎖Ｆｖ分子(ｓｃＦｖ)、この場合ＶＨドメインおよびＶＬドメインをペプチドリンカーで連結させることにより、２つのドメインが会合して抗原結合部位を形成し得る(Bird et al., (1988) Science, 242, 423-426, , Huston et al., (1988) PNAS USA, 85, 5879-5883)；(viii)二重特異性１本鎖Ｆｖ二量体(ＰＴＣ／ＵＳ９２／０９９６５)および(ix)遺伝子融合により構築される「二重特異性抗体」、多価または多重特異性フラグメント(ＷＯ９４／１３８０４; Holliger, P. (1993) et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90 6444-6448)である。Ｆｖ、ｓｃＦＶまたは二重特異性分子は、ＶＨドメインとＶＬドメインを結合するジスルフィド架橋を組み込むことにより安定化され得る(Reiter, Y. et al., Nature Biotech, 14, 1239-1245, １９９６)。ＣＨ３ドメインに連結したｓｃＦＶを含むミニボディー(低分子量抗体)も作製され得る(Hu, S. et al., (1996) Cancer Res., 56, 3055-3061)。結合性フラグメントの他の例は、抗体ヒンジ領域からの１個またはそれ以上のシステインを含む、重鎖ＣＨ１ドメインのカルボキシ末端における少数残基の付加によりＦａｂフラグメントとは相違を示すＦａｂ'、および定常ドメインのシステイン残基(複数も可)が遊離チオール基をもつＦａｂ'フラグメントであるＦａｂ'−ＳＨである。

「エピトープ」の語は、免疫グロブリンまたはＴ細胞受容体へ特異的に結合し得るタンパク質決定基を包含する。エピトープ性決定基は、通常化学活性表面分子群、例えばアミノ酸または糖側鎖により構成され、必ずというわけではないが、特異的三次元構造特性および特異的電荷特性を有し得る。解離定数が１μＭまたはそれ以下、好ましくは１００ｎＭまたはそれ以下、最も好ましくは１０ｎＭまたはそれ以下であるとき、抗体は抗原と特異的に結合すると言われる。

本明細書で使用している「作用物質」の語は、化学的化合物、化学的化合物の混合物、生物学的巨大分子、または生物材料から得られる抽出物を示す。

αＶβ６ヘテロ二量体ポリペプチドに関する「活性の」または「活性」とは、天然αＶβ６ポリペプチドの生物学的または免疫学的活性を有するαＶβ６ヘテロ二量体ポリペプチドの一部分をいう。本明細書で使用している「生物学的」とは、天然αＶβ６ポリペプチドの活性から生じる生物学的機能をいう。好ましいαＶβ６生物活性には、例えばαＶβ６誘導細胞接着がある。

本明細書で使用している「哺乳類」とは、哺乳類とみなされている動物を全て包含する。好ましくは、哺乳類はヒトである。

酵素、パパインでの抗体の消化により、抗原結合活性はもたないが、結晶化能力を有する、「Ｆａｂ」フラグメントおよび「Ｆｃ」フラグメントとしても知られている、２つの同一抗原結合性フラグメントが生じる。酵素ペプシンでの抗体の消化により、抗体分子の２本のアームが連結されたままであり、２抗原結合部位を含むＦ(ａｂ')_２フラグメントが生じる。Ｆ(ａｂ')_２フラグメントは、抗原との架橋形成能を有する。

本明細書で使用している「Ｆｖ」は、抗原認識および抗原結合部位の両方を保持する抗体の最小フラグメントをいう。

本明細書で使用している「Ｆａｂ」は、軽鎖の定常ドメインおよび重鎖のＣＨ１ドメインを含む抗体のフラグメントをいう。

「ｍＡｂ」の語は、モノクローナル抗体を指す。

本明細書で使用している「リポソーム」とは、哺乳類への本発明αＶβ６ポリペプチドまたはそのαＶβ６ポリペプチドに対する抗体を含み得る薬剤の送達に有用であり得る小胞をいう。

本明細書で使用している「標識」または「標識された」とは、ポリペプチドへの検出可能な部分、例えば放射性標識、蛍光標識、酵素標識、化学発光標識またはビオチニル基の付加をいう。放射性同位元素または放射性核種は、^３Ｈ、^１４Ｃ、^１５Ｎ、^３５Ｓ、^９０Ｙ、^９９Ｔｃ、^１１１Ｉｎ、^１２５Ｉ、^１３１Ｉを含み得、蛍光標識は、ローダミン、ランタノイドリン光体またはＦＩＴＣを含み得、酵素標識は、ホースラディッシュペルオキシダーゼ、β−ガラクトシダーゼ、ルシフェラーゼ、アルカリ性ホスファターゼを含み得る。

追加される標識には、説明のためであって、限定するわけではないが、以下のものがある：酵素、例えばグルコース−６−リン酸デヒドロゲナーゼ(「Ｇ６ＰＤＨ」)、アルファ−Ｄ−ガラクトシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、グルコースアミラーゼ、カルボニックアンヒドラーゼ、アセチルコリンエステラーゼ、リゾチーム、マレイン酸デヒドロゲナーゼおよびペルオキシダーゼ；染料；追加的蛍光標識または蛍光剤には、例えばフルオレセインおよびその誘導体、フルオロクロム、ＧＦＰ(「緑色蛍光タンパク質」であるＧＦＰ)、ダンシル、ウンベリフェロン、フィコエリトリン、フィコシアニン、アロフィコシアニン、ｏ−フタルアルデヒドおよびフルオレスカミンがある；発蛍光団、例えばランタノイドのクリプテートおよびキレート、例えばユーロピウムなど(Perkin ElmerおよびCis Biointernational)；化学発光標識または化学発光剤、例えばイソルミノール、ルミノールおよびジオキセタン類；感光剤；補酵素；酵素基質；粒子、例えばラテックスまたは炭素粒子；金属ゾル；クリスタリット；リポソーム；染料、触媒または他の検出可能な基によりさらに標識され得る細胞など；分子、例えばビオチン、ジゴキシゲニンまたは５−ブロモデオキシウリジン；毒素部分、例えばシュードモナス外毒素(ＰＥまたはその細胞傷害性フラグメントまたは突然変異体)、ジフテリア毒素またはその細胞傷害性フラグメントまたは突然変異体、ボツリヌス毒素Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、ＥまたはＦ、リシンまたはその細胞傷害性フラグメント、例えばリシンＡ、アブリンまたはその細胞傷害性フラグメント、サポリンまたはその細胞傷害性フラグメント、アメリカヤマゴボウ抗ウイルス毒素またはその細胞傷害性フラグメントおよびブリョジン１またはその細胞傷害性フラグメントの一群から選択される毒素部分。

本明細書で使用している「薬剤または薬物」の語は、患者へ適正に投与されたときに所望の治療効果を誘導し得る化学的化合物または組成物をいう。本明細書における他の化学用語は、The McGraw-Hill Dictionary of Chemical Terms (Parker, S.編、McGraw-Hill, サンフランシスコ (１９８５))(出典明示で援用する)により例示されている、当業界における慣用的用法に従って使用されている。

本明細書で使用している「実質的に純粋な」とは、対象化学種が主に存在する化学種である(すなわち、モルに基づいて、組成物中における他の個々の化学種よりも多く存在する)ことを意味し、好ましくは、実質的精製フラクションは、対象化学種が存在する全高分子化学種の少なくとも約５０パーセント(モルに基づく)を構成する組成物である。一般的に、実質的に純粋な組成物は、組成物中に存在する全高分子化学種の約８０パーセントを超える割合、さらに好ましくは約８５％、９０％、９５％および９９％を超える割合を占める。最も好ましくは、対象化学種は本質的に等質に精製され(汚染化学種は、慣用的検出方法により組成物からは検出され得ない)、その場合組成物は本質的に単一高分子種により構成される。

「患者」の語は、ヒトおよび獣医学的対象を包含する。

ヒト抗体および抗体のヒト化
ヒト抗体を用いると、マウスまたはラット可変および／または定常領域を有する抗体に伴う問題が一部回避される。かかるマウスまたはラット誘導タンパク質の存在は、抗体の急速なクリアランスを招き得るか、または患者による抗体に対する免疫応答の発生を誘導し得る。マウスまたはラット由来の抗体の利用を回避するために、げっ歯動物、他の哺乳類または動物へ機能性ヒト抗体遺伝子座を導入して、げっ歯動物、他の哺乳類または動物に完全ヒト抗体を生産させることにより、完全ヒト抗体を生成させ得る。

完全ヒト抗体の一生成方法は、ヒト重鎖座およびカッパ軽鎖遺伝子座の１０００ｋｂ以下、それ未満のサイズの生殖系列形成フラグメントを含むように遺伝子操作を加えたマウスのXenoMouse(登録商標)系統の使用によるものである。Mendez et al., Nature Genetics 15:146-156 (1997)およびGreen and Jakobovits J. Exp. Med. 188:483-495 (1998)参照。XenoMouse(登録商標)株は、Amgen, Inc.(フレモント、カリフォルニア)から入手可能である。

マウスのXenoMouse(登録商標)株の製造については、１９９０年１月１２日出願、米国特許出願第０７／４６６００８号、１９９０年１１月８日出願、同第０７／６１０５１５号、１９９２年７月２４日出願、同第０７／９１９２９７号、１９９２年７月３０日出願、同第０７／９２２６４９号、１９９３年３月１５日出願、同第０８／０３１８０１号、１９９３年８月２７日出願、同第０８／１１２８４８号、１９９４年４月２８日出願、同第０８／２３４１４５号、１９９５年１月２０日出願、同第０８／３７６２７９号、１９９５年４月２７日出願、同第０８／４３０９３８号、１９９５年６月５日出願、同第０８／４６４５８４号、１９９５年６月５日出願、同第０８／４６４５８２号、１９９５年６月５日出願、同第０８／４６３１９１号、１９９５年６月５日出願、同第０８／４６２８３７号、１９９５年６月５日出願、同第０８／４８６８５３号、１９９５年６月５日出願、同第０８／４８６８５７号、１９９５年６月５日出願、同第０８／４８６８５９号、１９９５年６月５日出願、同第０８／４６２５１３号、１９９６年１０月２日出願、同第０８／７２４７５２号、１９９６年１２月３日出願、同第０８／７５９６２０号、２００１年１１月３０日付、米国特許公開第２００３／００９３８２０号、および米国特許第６１６２９６３、６１５０５８４、６１１４５９８、６０７５１８１および５９３９５９８号および日本国特許第３０６８１８０Ｂ２、３０６８５０６Ｂ２および３０６８５０７Ｂ２号でさらに検討され、詳細に叙述されている。また、１９９６年６月１２日付認可、欧州特許第ＥＰ０４６３１５１Ｂ１号、１９９４年２月３日公開、国際特許出願第ＷＯ９４／０２６０２号、１９９６年１０月３１日公開、第ＷＯ９６／３４０９６号、１９９８年６月１１日公開、同第ＷＯ９８／２４８９３号、２０００年１２月２１日公開、同第ＷＯ００／７６３１０号も参照。上記で挙げた特許、出願および参考文献のそれぞれの開示については、その全体を出典明示で援用する。

別法として、その他、GenPharm International, Inc.などは「ミニ遺伝子座(minilocus)」方法を利用している。ミニ遺伝子座方法では、Ｉｇ遺伝子座からの複数の断片(個々の遺伝子)を含ませることにより、外来性Ｉｇ遺伝子座を模倣する。すなわち、１つまたは複数のＶ_Ｈ遺伝子、１つまたは複数のＤ_Ｈ遺伝子、１つまたは複数のＪ_Ｈ遺伝子、μ定常領域、および通常第２の定常領域(好ましくは、ガンマ定常領域)が、動物へ挿入するための構築物中に形成される。この方法は、Surani et al.、米国特許第５,５４５,８０７号、および、いずれもLonberg and Kayによる、米国特許第５,５４５,８０６、５,６２５,８２５、５,６２５,１２６、５,６３３,４２５、５,６６１,０１６、５,７７０,４２９、５,７８９,６５０、５,８１４,３１８、５,８７７,３９７、５,８７４,２９９および６,２５５,４５８号、Krimpenfort and Berns、米国特許第５,５９１,６６９および６,０２３,０１０号、Berns et al.、米国特許第５,６１２,２０５、５,７２１,３６７、および５,７８９,２１５号、およびChoi and Dunn、米国特許第５,６４３,７６３号、およびGenPharmによる国際米国特許出願である１９９０年８月２９日出願の第０７／５７４,７４８号、１９９０年８月３１日出願の第０７／５７５,９６２号、１９９１年１２月１７日出願の第０７／８１０,２７９号、１９９２年３月１８日出願の第０７／８５３,４０８号、１９９２年６月２３日出願の第０７／９０４,０６８号、１９９２年１２月１６日出願の第０７／９９０,８６０号、１９９３年４月２６日出願の第０８／０５３,１３１号、１９９３年７月２２日出願の第０８／０９６,７６２号、１９９３年１１月１８日出願の第０８／１５５,３０１号、１９９３年１２月３日出願の第０８／１６１,７３９号、１９９３年１２月１０日出願の第０８／１６５,６９９号、１９９４年３月９日出願の第０８／２０９,７４１号に記載されており、それらについては出典明示で援用する。また、欧州特許第０５４６０７３Ｂ１号、国際特許出願第ＷＯ９２／０３９１８号、第ＷＯ９２／２２６４５号、第ＷＯ９２／２２６４７号、第ＷＯ９２／２２６７０号、第ＷＯ９３／１２２２７号、第ＷＯ９４／００５６９号、第ＷＯ９４／２５５８５号、第ＷＯ９６／１４４３６号、第ＷＯ９７／１３８５２号およびＷＯ９８／２４８８４号、および米国特許第５,９８１,１７５号も参照、これらについては出典明示で援用する。さらに、Taylor et al., 1992、Chen et al., １９９３, Tuaillon et al., 1993、Choi et al., 1993、Lonberg et al., (1994), Taylor et al., (1994)およびTuaillon et al., (1995), Fishwild et al., (1996)も参照、これらについてはその全体を出典明示で援用する。

また、Kirinは、微小核融合を通して染色体の大きな断片または全染色体を導入する、マウスからのヒト抗体の作製を実証した。欧州特許出願第７７３２８８および８４３９６１号参照、これらについては出典明示で援用する。さらに、KirinのＴｃマウスとMedarexのミニ遺伝子座(Humab)マウスの雑種形成の結果である、KM(登録商標)マウスが作製された。これらのマウスは、Kirin マウスのヒトＩｇＨ導入染色体(transchromosome)および Genpharm マウスのカッパ鎖導入遺伝子を有する(Ishida et al., Cloning Stem Cells, (2002) 4:91-102)。

ヒト抗体はまた、インビトロ方法により誘導され得る。適切な例には、限定されるわけではないが、ファージディスプレー(CAT, Morphosys, Dyax, Biosite/Medarex, Xoma, Symphogen, Alexion (以前はProliferon), Affimed)リボソームディスプレー(CAT)、酵母ディスプレーなどがある。

抗体の調製
ここに記載の抗体は、下記のXenoMouse(登録商標)技術の使用により調製された。したがって、上記マウスは、ヒト免疫グロブリン分子および抗体を生産し得、マウス免疫グロブリンおよび抗体の生産性を欠いている。これを達成するのに利用される技術は、本明細書の発明の背景の項に開示された特許、出願および参考文献で開示されている。しかしながら、特に、トランスジェニックマウスの生産およびそこからの抗体産生の好ましい態様は、１９９６年１２月３日出願の米国特許出願第０８／７５９６２０号および１９９８年６月１１日公開の国際特許出願第ＷＯ９８／２４８９３号および２０００年１２月２１日公開の同第００／７６３１０号に開示されており、これらの開示については出典明示で援用する。また、Mendez et al., Nature Genetics 15:146-156 (1997)参照、これらの開示については出典明示で援用する。

上記技術の使用を通じて、様々な抗原に対する完全ヒトモノクローナル抗体が生産されている。本質的には、マウスのXenoMouse(登録商標)系統を、興味の対象である抗原(例、αＶβ６)により免疫化し、リンパ系細胞(例えばＢ細胞)を、超免疫マウスから回収し、回収されたリンパ球を骨髄型細胞株と融合することにより、不死化ハイブリドーマ細胞株を製造する。これらのハイブリドーマ細胞株をスクリーニングにかけ、選択することにより、興味の対象である抗原に特異的な抗体を産生したハイブリドーマ細胞株を同定する。本発明は、αＶβ６に特異的な抗体を産生する多くのハイブリドーマ細胞株の製造方法を提供する。さらに、本発明では、上記抗体の重および軽鎖のヌクレオチドおよびアミノ酸配列解析を含む、上記細胞株により生産される抗体の特性確認を行う。

これに代わる方法として、ミエローマ細胞と融合させてハイブリドーマを生成するのではなく、Ｂ細胞が直接検定され得る。例えば、ＣＤ１９＋Ｂ細胞を超免疫XenoMouse(登録商標)マウスから単離し、増殖させ、抗体分泌性形質細胞に分化させ得る。次いで、細胞上清からの抗体を、αＶβ６免疫原に対する反応性についてＥＬＩＳＡによりスクリーニングにかける。また、αＶβ６のフラグメントに対する免疫反応性について上清をスクリーニングにかけることにより、αＶβ６に関して機能的な興味の対象であるドメインへの結合について種々の抗体のさらなるマッピングを行い得る。また、他の関連ヒトインテグリンに対して、および種交差反応性が最も決定されそうもない、αＶβ６のラット、マウス、非ヒト霊長類、例えばカニクイザルのオーソログに対して抗体をスクリーニングにかけ得る。興味の対象である抗体を含むウェルからのＢ細胞は、個々の、またはプールしたウェルからハイブリドーマを作製するための融合を含む様々な方法により、またはＥＢＶで感染させるかまたは既知不死化遺伝子でトランスフェクションし、次いで適切な培地で培養することにより不死化され得る。別法として、αＶβ６特異的溶血プラーク検定法を用いて、所望の特異性をもつ抗体を分泌する単形質細胞を単離する(例えば、Babcook et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93:7843-48(1996)参照)。好ましくは、溶解に関してターゲッティングされる細胞は、αＶβ６抗原でコーティングしたヒツジ赤血球(ＳＲＢＣ)である。

興味の対象である免疫グロブリンおよび補体を分泌する形質細胞を含むＢ細胞培養物の存在下において、プラークの形成は、興味の対象である形質細胞を取り囲むヒツジ赤血球の特異的αＶβ６介在的溶解を示す。プラークの中心にある単抗原特異的形質細胞は単離され得、抗体の特異性をコード化する遺伝情報を単形質細胞から単離する。逆転写、次いでＰＣＲ(ＲＴ−ＰＣＲ)を用いることにより、抗体の重および軽鎖可変領域をコード化するＤＮＡがクローン化され得る。次いで、上記のクローン化ＤＮＡを、適切な発現ベクター、好ましくはｐｃＤＮＡなどのベクターカセット、さらに好ましくは免疫グロブリン重および軽鎖の定常領域を含むｐｃＤＮＡベクターへ挿入する。次いで、生成されたベクターを宿主細胞、例えばＨＥＫ２９３細胞、ＣＨＯ細胞へトランスフェクションし、転写誘導、形質転換体の選択、または所望の配列をコード化する遺伝子の増幅に適するように改変された慣用的栄養培地で培養する。

一般に、融合ハイブリドーマにより産生される抗体は、完全ヒトカッパまたはラムダ軽鎖を伴うヒトＩｇＧ重鎖であった。ここに記載の抗体は、ヒトＩｇＧ４重鎖およびＩｇＧ２重鎖を有する。抗体はまた、ＩｇＧ１を含む他のヒトイソ型のものであり得る。抗体は高い親和力を有し、固相および液相技術で測定したとき、典型的には約１０^−６〜約１０Ｍ^−１２またはそれ未満のＫ_ｄを有する。少なくとも１０^−１１ＭのＫ_ｄを有する抗体が、αＶβ６の活性の阻害には好ましい。

抗体は、ハイブリドーマ細胞株以外の細胞株で発現され得るものとする。特定抗体をコード化する配列を用いることにより、適切な哺乳類宿主細胞が形質転換され得る。形質転換は、宿主細胞へポリヌクレオチドを導入する公知方法、例えば、ポリヌクレオチドをウイルス(またはウイルス性ベクター)にパッケージし、ウイルス(またはベクター)により宿主細胞に対し形質導入を行うか、または当業界で公知のトランスフェクション法により行われ得、これらについては米国特許第４３９９２１６、４９１２０４０、４７４０４６１および４９５９４５５号で具体的に示されている(これらの特許については出典明示で援用する)。使用する形質転換手順は、形質転換される宿主により異なる。哺乳類細胞への異種ポリヌクレオチドの導入方法は、当業界では公知であり、例えばデキストラン依存的トランスフェクション、リン酸カルシウム沈降、ポリブレン依存的トランスフェクション、プロトプラスト融合、電気穿孔、リポソームでのポリヌクレオチド(複数も可)封入および核へのＤＮＡの直接顕微注入がある。

発現用宿主として利用可能な哺乳類細胞株は、当業界では熟知されており、限定されるわけではないが、チャイニーズハムスター卵巣(ＣＨＯ)細胞、ヒーラ(HeLa)細胞、仔ハムスター腎臓(ＢＨＫ)細胞、サル腎臓細胞(ＣＯＳ)、ヒト肝細胞癌細胞(例、ＨｅｐＧ２)、ヒト上皮腎臓２９３細胞、および若干の他の細胞株を含む、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(ＡＴＣＣ)から入手可能な多くの不死化細胞株を含む。特に好ましい細胞株は、どの細胞株が高い発現レベルを有し、構成的αＶβ６結合特性をもつ抗体を産生するかを測定することにより選択される。

αＶβ６活性を著しく中和するｍＡｂの能力(下記実施例で立証されている)に基づくと、これらの抗体は、αＶβ６発現に起因する症状および状態の処置において治療効果を有する。態様によると、本明細書における抗体および方法は、αＶβ６誘導細胞接着またはαＶβ６とそのリガンドとの相互作用の結果として誘導されるシグナリングに起因する症状の処置に関連している。

本発明の別の態様では、αＶβ６の生物活性のアンタゴニストおよび医薬上許容される担体を含む医薬組成物が提供される。一例において、アンタゴニストは抗体を含む。本発明のさらに別の態様では、αＶβ６の生物活性のアンタゴニストおよび医薬上許容される担体を含む医薬組成物が提供される。一例において、アンタゴニストは抗体を含む。

抗αＶβ６抗体は、患者試料におけるαＶβ６の検出に有用であるため、ここに記載の病状に関する診断法としても有用である。さらに、αＶβ６活性に対するその著しい阻害能に基づくと(下記実施例で立証されている)、抗αＶβ６抗体は、αＶβ６発現に起因する症状および状態の処置において治療効果を有する。態様によると、本明細書における抗体および方法は、αＶβ６誘導細胞接着に起因する症状の処置に関連している。さらなる態様では、ここに記載の抗体および方法を用いることにより、新生物疾患、例えばメラノーマ、小細胞肺癌、非小細胞肺癌、神経膠腫、肝細胞(肝臓)癌、甲状腺腫瘍、胃(腹部)癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、膀胱癌、肺癌、神経膠芽腫、子宮体癌、腎臓癌、結腸癌および膵臓癌を含む、αＶβ６関連疾患または障害を治療する。

治療的投与および製剤
本発明の態様は、病気の治療薬として有用な抗αＶβ６抗体の滅菌医薬製剤を含む。上記製剤は、αＶβ６インテグリンへのリガンドの結合を阻害することにより、例えば組織αＶβ６が異常に高い病理学的状態を効果的に処置する。抗αＶβ６抗体は、好ましくはαＶβ６活性を強力に阻害するのに十分な親和力を有し、好ましくはヒトに頻繁に投薬する必要のない程度に十分な作用持続時間を有する。作用持続時間の延長により、代替的非経口経路、例えば皮下または筋肉内注射による投薬スケジュールは少ない頻度でより便利なものになり得る。

滅菌製剤は、例えば、抗体の凍結乾燥および再構成の前または後に滅菌濾過膜を通して濾過することにより製造され得る。通常抗体は凍結乾燥形態または溶液中で貯蔵される。一般的に治療用抗体組成物は、滅菌引出口を有する容器、例えば製剤を引き出し得るアダプター、例えば皮下注射針により貫通可能なストッパーを有する静注用袋またはバイアル中に入れられる。

抗体の投与経路は既知方法によるものであり、例えば静脈内、腹腔内、大脳内、筋肉内、眼内、動脈内、鞘内、吸入または病変部内経路による注射または注入、腫瘍部位への直接注射、または下記で示す持続放出系によるものがある。抗体は、好ましくは注入またはボーラス注射により連続投与される。

治療に使用される抗体の有効量は、例えば治療対象、投与経路、および患者の状態により異なる。したがって、治療医は、最適な治療効果を得るための必要性に応じて投薬量を力価測定分析し、投与経路を改変するのが好ましい。典型的には、所望の効果を達成する用量に到達するまで、臨床医は抗体を投与する。この治療の経過は、慣用的検定法またはここに記載の検定法により容易にモニターされる。

ここに記載の抗体は、医薬上許容される担体との混合物中で調製され得る。この治療組成物は、静脈内経路または鼻または肺を通して、好ましくは液体または粉末エーロゾル(凍結乾燥)として投与され得る。また本組成物は、所望に応じて非経口または皮下投与され得る。全身投与するとき、治療組成物は、当然無菌状態、発熱物質不含有であり、適正なｐＨ、等張性および安定性を有する非経口投与上許容される溶液中に含まれるべきである。これらの条件は当業者には周知である。簡単に述べると、ここに記載の化合物の投薬用製剤は、所望の純度を有する化合物を医薬上許容される担体、賦形剤または安定剤と混合することにより貯蔵または投与用に調製される。上記物質は、使用される投薬量および濃度では受容者にとって非毒性であり、緩衝液、例えばトリスＨＣｌ、リン酸、クエン酸、酢酸および他の有機酸塩、酸化防止剤、例えばアスコルビン酸、低分子量(約１０残基未満)ペプチド、例えばポリアルギニン、タンパク質、例えば血清アルブミン、ゼラチン、または免疫グロブリン、親水性ポリマー、例えばポリビニルピロリジノン、アミノ酸、例えばグリシン、グルタミン酸、アスパラギン酸またはアルギニン、単糖類、二糖類および他の炭水化物、例えばセルロースまたはその誘導体、グルコース、マンノース、またはデキストリン、キレート剤、例えばＥＤＴＡ、糖アルコール、例えばマンニトールまたはソルビトール、対イオン、例えばナトリウムおよび／または非イオン性界面活性剤、例えばトゥイーン、プルロニックまたはポリエチレングリコールを含む。

注射用滅菌組成物は、Remington: The Science and Practice of Pharmacy (第２０版、Lippincott Williams & Wilkens Publishers (2003))に記載された慣用的製薬実践法に従って製剤化され得る。例えば、医薬上許容される担体、例えば水または天然植物油、例えばゴマ、落花生または綿実油または合成脂肪族賦形剤、例えばエチルオレエートなどに活性化合物を溶解または懸濁するのが所望され得る。緩衝液、保存剤、酸化防止剤などは、許容された製薬実践法に従って組み込まれ得る。

徐放性製剤の適切な例は、ポリペプチドを含む固体疎水性ポリマーの半透過性マトリックスを含み、この場合マトリックスは、成型品、フィルムまたはマイクロカプセル形態である。徐放性マトリックスの例には、ポリエステル、ヒドロゲル(例、Langer et al., J. Biomed Mater. Res., (１９８１)１５:１６７−２７７および Langer, Chem. Tech., (１９８２) １２:９８−１０５に記載されたポリ(２−ヒドロキシエチル−メタクリレート)、またはポリ(ビニルアルコール))、ポリ乳酸(米国特許第３７７３９１９号、欧州特許第５８４８１号)、Ｌ−グルタミン酸とガンマエチル−Ｌ−グルタメートのコポリマー(Sidman et al., Biopolymers, (１９８３) 22:547-556)、非分解性エチレン−酢酸ビニル(Langer et al.、前出)、分解性乳酸−グリコール酸コポリマー、例えばLUPRON(登録商標)(乳酸−グリコール酸コポリマーおよび酢酸ロイプロリドにより構成される注射可能ミクロスフェア)、およびポリ−Ｄ−(−)−３−ヒドロキシ酪酸(欧州特許第１３３９８８号)がある。

エチレン−酢酸ビニルおよび乳酸−グリコール酸などのポリマーは１００日間にわたって分子を放出し得るが、ある種のヒドロゲルはタンパク質を短期間放出する。封入されたタンパク質が長期間体内に残存すると、それらは３７℃での水分曝露の結果、変性または凝集することにより、生物活性を喪失し、免疫原性の変化を起こし得る。合理的な戦略が、関与する機構に応じたタンパク質安定化について考案され得る。例えば、凝集機構がジスルフィド交換を通じた分子間Ｓ−Ｓ結合形成であると見出された場合、安定化は、スルフヒドリル残基を修飾し、酸性溶液から凍結乾燥し、水分含有率を制御し、適切な添加剤を使用し、特異的ポリマーマトリックス組成物を開発することにより達成され得る。

また、本発明の抗体は、非修飾抗体の場合よりも長い哺乳類、好ましくはヒトにおける半減期(例、血清半減期)を有する抗体を包含する。一態様では、上記抗体の抗体半減期は、１５日を超える、２０日を超える、２５日を超える、３０日を超える、３５日を超える、４０日を超える、４５日を超える、２か月を超える、３か月を超える、４か月を超える、または５か月を超える。哺乳類、好ましくはヒトにおける本発明抗体またはそのフラグメントの半減期の増加により、哺乳類における上記抗体またはそのフラグメントの血清力価は高くなるため、上記抗体または抗体フラグメントの投与頻度は少なくなり、そして／または投与される抗体または抗体フラグメントの濃度も低くなる。インビボで高い半減期を有する抗体またはそのフラグメントは、当業者に公知の技術により生成され得る。例えば、高いインビボ半減期を有する抗体またはそのフラグメントは、ＦｃドメインとＦｃＲｎ受容体間の相互作用に関与するものとして同定されたアミノ酸残基を修飾(例、置換、欠失または付加)することにより生成され得る(例、国際公開第ＷＯ９７／３４６３１およびＷＯ０２／０６０９１９号参照、これらについては出典明示で援用する)。高いインビボ半減期を有する抗体またはそのフラグメントは、ポリマー分子、例えば高分子ポリエチレングリコール(ＰＥＧ)を抗体または抗体フラグメントに結合させることにより生成され得る。ＰＥＧは、上記抗体または抗体フラグメントのＮ−またはＣ−末端へのＰＥＧの位置特異的コンジュゲーションを通じて、またはリシン残基に存在するイプシロン−アミノ基を介して多機能リンカーの存在または存在下で抗体または抗体フラグメントに結合され得る。生物活性の喪失が最小限ですむ線状または分枝状ポリマー誘導体化を使用する。コンジュゲーションの程度をＳＤＳ−ＰＡＧＥおよび質量分析法により緊密にモニターすることにより、抗体へのＰＥＧ分子の適正なコンジュゲーションを確認する。未反応ＰＥＧは、例えばサイズ排除またはイオン交換クロマトグラフィーにより抗体−ＰＥＧコンジュゲートから分離され得る。

徐放性組成物はまた、結晶を懸濁状態で維持し得る適切な製剤に懸濁した抗体の結晶の調製物を含む。これらの調製物は、皮下または腹腔内注射されると、徐放性効果を生じ得る。また、他の組成物には、リポソーム包括抗体がある。上記抗体を含むリポソームは、自体公知の方法により製造される：米国特許第ＤＥ３２１８１２１号；Epstein et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, (1985) 82:3688-3692; Hwang et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, (1980) 77:4030-4034；欧州特許第５２３２２号、欧州特許第３６６７６号、欧州特許第８８０４６号、欧州特許第１４３９４９号、１４２６４１号；日本国特許出願８３−１１８００８号；米国特許第４４８５０４５および４５４４５４５号および欧州特許第１０２３２４号。

所定の患者に対する抗体製剤の用量は、病気の重症度およびタイプ、体重、性別、食事療法、投与時間および経路、他の薬物療法および他の関連性のある臨床因子を含む薬剤作用を改変することが知られている様々な因子を考慮に入れながら担当医により決定される。治療有効用量は、インビトロまたはインビボ方法により決定され得る。

治療に使用されるここに記載の抗体の有効量は、例えば治療対象、投与経路および患者の状態により異なる。したがって、治療専門家は、最適な治療効果を得るための必要性に応じて投薬量を力価測定分析し、投与経路を改変するのが好ましい。典型的な１日用量は、上述の因子に左右されるが、約０.００１ｍｇ／ｋｇから１００ｍｇ／ｋｇ以下またはそれ以上の範囲である。典型的には、所望の効果を達成する用量に到達するまで、臨床医は治療用抗体を投与する。この治療の経過は、慣用的検定法またはここに記載の検定法により容易にモニターされる。

本発明組成物および方法により治療剤を投与するとき、それらは適切な担体、賦形剤、および製剤に組み込まれると移入、送達、耐容性などを改善させる他の薬剤と共に投与されるものとする。これらの製剤は、例えば粉末、ペースト、軟膏、ゼリー、ろう、油類、脂質、脂質(カチオン性またはアニオン性)含有小胞(例えばLipofectin(登録商標))、ＤＮＡコンジュゲート、無水吸収ペースト、水中油および油中水エマルジョン、エマルジョンカーボワックス(様々な分子量のポリエチレングリコール)、半固体ゲルおよびカーボワックスを含有する半固体混合物を含む。製剤中の有効成分が製剤により不活化されておらず、製剤が投与経路と生理学的に適合し、耐容し得るものであれば、前述の混合物はいずれも、本発明による処置および治療に適切であり得る。また、Baldrick P. “Pharmaceutical excipient development: the need for preclinical guidance.” Regul. Toxicol. Pharmacol. 32(2):210-8 (2000)、Wang W. “Lyophilization and development of solid protein pharmaceuticals.” Int. J. Pharm. 203(1-2):1-60 (2000)、Charman WN “Lipids, lipophilic drugs, and oral drug delivery-some emerging concepts.” J Pharm Sci 89(8):967-78 (2000), Powell et al., “Compendium of excipients for parenteral formulations” PDA J Pharm Sci Technol. 52:238-311 (1998)および薬剤師に熟知されている製剤、賦形剤および担体に関連した追加的情報についてそこに引用されているものも参照。

他の治療薬の設計および生成
本発明にしたがって、またαＶβ６に関して本発明で産生および特性確認された抗体の活性に基づくと、抗体部分の範囲を超えた他の治療モダリティーの設計が容易になる。上記モダリティーには、制限するわけではないが、進歩した抗体治療薬、例えば二重特異性抗体、免疫毒素、および放射性標識治療薬、単ドメイン抗体、ペプチド治療薬の生成、新規スキャフォールドにおけるαＶβ６結合性ドメイン、遺伝子療法、特に細胞内発現抗体、アンチセンス治療薬および小分子がある。

進歩した抗体治療薬の生成に関して、補体固定が望ましい特質である場合、例えば二重特異性抗体、免疫毒素または放射性標識を使用することにより細胞を殺す際の補体依存性を回避することが可能であり得る。

(ｉ)一方はαＶβ６に対する特異性をもち、他方は第２分子に対する特異性をもつ一緒にコンジュゲートを形成する２つの抗体、(ii)αＶβ６に特異的な１鎖および第２分子に特異的な第２鎖を有する単抗体、または(iii)αＶβ６および他分子に対する特異性を有する１本鎖抗体を含む二重特異性抗体が生成され得る。上記の二重特異性抗体は、公知技術を用いて生成され得る。例えば、(ｉ)および(ii)に関しては、Fanger et al., Immunol Methods 4:72-81 (1994)および Wright および Harris、前出参照、また(iii)に関しては、例えばTraunecker et al., Int. J. Cancer (補遺) 7:51-52 (1992)参照。いずれの場合も、第２の特異性は、限定するわけではないが、ＣＤ１６またはＣＤ６４(例えば、Deo et al., Immunol. Today 18:127 (1997)参照)またはＣＤ８９(例えば、Valerius et al., Blood 90:4485-4492 (1997)参照)を含む重鎖活性化受容体に対して導入され得る。

免疫毒素に関して、抗体は、当業界で公知の技術を用いることにより免疫毒素として作用するように修飾され得る。例えば、Vitetta Immunol Today 14:252 (1993)参照。また、米国特許第５１９４５９４号も参照。放射性標識抗体の製造に関して、上記修飾抗体はまた、当業界で公知の技術を用いることにより容易に製造され得る。例えば、Junghans et al.、Cancer Chemotherapy and Biotherapy 655-686 (第２版、Chafner and Longo 編、Lippincott Raven (1996))参照。また、米国特許第４,６８１,５８１、４,７３５,２１０、５,１０１,８２７、５,１０２,９９０ (ＲＥ３５,５００)、５,６４８,４７１および５,６９７,９０２号も参照。

抗原結合部位は、非抗体タンパク質スキャフォールド、例えばフィブロネクチンまたはシトクロムＢなどにおけるＣＤＲの配置により(Haan & Maggos (2004) BioCentury, 12(5): A1-A6; Koide et al., (1998) Journal of Molecular Biology, 284: 1141-1151; Nygren et al., (1997) Current Opinion in Structural Biology, 7: 463-469)、または所望の標的についての結合特異性を付与するようにタンパク質スキャフォールド内におけるループのアミノ酸残基をランダム化または突然変異させることにより提供され得る。タンパク質における新規結合部位を遺伝子操作するためのスキャフォールドについては、Nygren et al.,(Nygren et al., (1997) Current Opinion in Structural Biology, 7:４６３−４６９)により詳細に検討されている。抗体模倣物質についてのタンパク質スキャフォールドは、国際公開第ＷＯ／００３４７８４号に開示されており、出典明示で援用するが、それによると発明者らは、少なくとも１つのランダム化ループを有するフィブロネクチンIII型ドメインを含むタンパク質(抗体模倣物質)について報告している。１つまたはそれ以上のＣＤＲ、例えばＨＣＤＲのセットが移植される適切なスキャフォールドは、免疫グロブリン遺伝子スーパーファミリーのいずれかのドメインメンバーにより提供され得る。スキャフォールドは、ヒトまたは非ヒトタンパク質であり得る。非抗体タンパク質スキャフォールドの利点は、それが、少なくとも若干の抗体分子よりも小さく、そして／または製造し易いスキャフォールド分子において抗原結合部位を提供し得ることである。結合剤のサイズが小さいことにより、例えば細胞に入りこむか、組織へ深く浸透するか、または他の構造内の標的に到達する能力、または標的抗原のタンパク質腔内での結合能などの有用な生理学的特性が付与され得る。非抗体タンパク質スキャフォールドにおける抗原結合部位の使用については、Wess、２００４(Wess, L.、BioCentury, The Bernstein Report on BioBusiness, 12(42), A1-A7, ２００４)で検討されている。典型的なのは安定したバックボーンおよび１つまたは複数の可変ループを有するタンパク質であり、１ループまたは複数ループのアミノ酸配列に特異的または無作為に突然変異を導入することにより、標的抗原と結合する抗原結合部位を形成させる。上記タンパク質には、スタフィロコッカス・アウレウス(S.aureus)からのプロテインＡのＩｇＧ-結合性ドメイン、トランスフェリン、アルブミン、テトラネクチン、フィブロネクチン(例、第１０フィブロネクチンIII型ドメイン)、リポカリンおよびガンマ−結晶および他のAffilin(登録商標)スキャフォールド(Scil Proteins)がある。他の方法の例には、分子内ジスルフィド結合を有する小タンパク質であるサイクロチド(cyclotide)に基づく合成「ミクロボディー」、微小タンパク質(Versabodies(登録商標)、Amunix)およびアンキリン反復タンパク質(DARPins, Molecular Partners)がある。

抗体配列および／または抗原結合部位に加えて、本発明による結合剤は、例えばペプチドまたはポリペプチド、例えば折りたたまれたドメインを形成するか、または抗原結合能に加えて別の機能的特徴を分子に付与するために他のアミノ酸を含み得る。本発明結合剤は、検出可能な標識を伴い得るか、または毒素またはターゲッティング部分または酵素に(例、ペプチジル結合またはリンカーを介して)コンジュゲーションされ得る。例えば、結合剤は、触媒性部位(例、酵素ドメインにおける)および抗原結合部位を含み得、その抗原結合部位は抗原に結合することにより、抗原へ触媒性部位をターゲッティングする。触媒性部位は、例えば開裂により抗原の生物学的機能を阻害し得る。

組み合わせ
本明細書で説明されている抗腫瘍処置は、単独治療として適用され得るか、または本発明化合物に加えて、慣用的手術または放射線治療または化学療法を含み得る。上記化学療法は、抗腫瘍剤の以下のカテゴリーの１つまたはそれ以上を含み得る：

(ｉ)内科腫瘍学で使用される、他の抗増殖性／抗新生物薬剤およびその組合わせ、例えばアルキル化剤(例えば、シスプラチン、オキサリプラチン、カルボプラチン、シクロホスファミド、窒素マスタード、メルファラン、クロラムブシル、ブスルファン、テモゾラミドおよびニトロソウレア)；代謝拮抗物質(例えば、ゲムシタビンおよび葉酸代謝拮抗薬、例えばフルオロピリミジン類、例えば５−フルオロウラシルおよびテガフール、ラルチトレキセド、メトトレキセート、シトシンアラビノシド、およびヒドロキシ尿素)；抗腫瘍抗生物質(例えば、アントラサイクリン系、例えばアドリアマイシン、ブレオマイシン、ドキソルビシン、ダウノマイシン、エピルビシン、イダルビシン、マイトマイシン−Ｃ、ダクチノマイシンおよびミトラマイシン)；抗有糸分裂薬(例えばビンカアルカロイド系、例えばビンクリスチン、ビンブラスチン、ビンデシンおよびビノレルビンおよびタキソイド類、例えばタキソールおよびタキソテールおよびポロキナーゼ阻害剤)；トポイソメラーゼ阻害剤(例えばエピポドフィロトキシン類、例えばエトポシドおよびテニポシド、アムサクリン、トポテカンおよびカンプトテシン)；

(ii)細胞増殖抑制剤、例えば抗エストロゲン(例えばタモキシフェン、フルベストラント、トレミフェン、ラロキシフェン、ドロロキシフェンおよびヨードキシフェン)、抗アンドロゲン(例えばビカルタミド、フルタミド、ニルタミドおよび酢酸シプロテロン)、ＬＨＲＨアンタゴニストまたはＬＨＲＨアゴニスト(例えばゴセレリン、ロイプロレリンおよびブセレリン)、プロゲストーゲン(例えば酢酸メゲストロール)、アロマターゼ阻害剤(例えばアナストロゾール、レトロゾール、ボラゾールおよびエキセメスタン)および５α−レダクターゼの阻害剤、例えばフィナステリド；

(iii)抗浸潤剤(例えば、ｃ−Ｓｒｃキナーゼファミリー阻害剤、例えば４−(６−クロロ−２,３−メチレンジオキシアニリノ)−７−［２−(４−メチルピペラジン−１−イル)エトキシ］−５−テトラヒドロピラン−４−イルオキシキナゾリン(ＡＺＤ０５３０；国際特許出願第ＷＯ０１／０４３４１号)およびＮ−(２−クロロ−６−メチルフェニル)−２−｛６−［４−(２−ヒドロキシエチル)ピペラジン−１−イル］−２−メチルピリミジン−４−イルアミノ｝チアゾール−５−カルボキサミド(ダサチニブ、ＢＭＳ−３５４８２５；J. Med. Chem., 2004, 47, 6658-6661)、およびメタロプロテイナーゼ阻害剤、例えばマリマスタット、ウロキナーゼプラスミノーゲン活性化因子受容体機能の阻害剤またはヘパラナーゼに対する抗体)；

(iv)成長因子機能の阻害剤：例えば上記阻害剤は、成長因子抗体および成長因子受容体抗体を含む(例えば抗ｅｒｂＢ２抗体トラスツズマブ［Herceptin(登録商標)］、抗ＥＧＦＲ抗体パニツムマブ、抗ＥＧＦＲ阻害剤ベバシズマブ(Avastin(登録商標))、抗ｅｒｂＢ１抗体セツキシマブ［アービタックス(Erbitux)、Ｃ２２５］および Stern et al., Critical reviews in oncology/haematology, ２００５、第５４巻、１１−２９頁に開示された成長因子または成長因子受容体抗体)；上記阻害剤はまた、チロシンキナーゼ阻害剤、例えば表皮増殖因子ファミリーの阻害剤(例えばＥＧＦＲファミリーのチロシンキナーゼ阻害剤、例えばＮ−(３−クロロ−４−フルオロフェニル)−７−メトキシ−６−(３−モルホリノプロポキシ)キナゾリン−４−アミン(ゲフィチニブ、ＺＤ１８３９)、Ｎ−(３−エチニルフェニル)−６,７−ビス(２−メトキシエトキシ)キナゾリン−４−アミン(エルロチニブ、ＯＳＩ-７７４)および６−アクリルアミド−Ｎ−(３−クロロ−４−フルオロフェニル)−７−(３−モルホリノプロポキシ)−キナゾリン−４−アミン(ＣＩ１０３３)、ｅｒｂＢ２チロシンキナーゼ阻害剤、例えばラパチニブ、肝細胞増殖因子ファミリーの阻害剤、血小板由来増殖因子ファミリーの阻害剤、例えばイマチニブ、セリン／トレオニンキナーゼの阻害剤(例えばＲａｓ／Ｒａｆシグナリング阻害剤、例えばファルネシルトランスフェラーゼ阻害剤、例えばソラフェニブ(ＢＡＹ４３−９００６))、ＭＥＫおよび／またはＡＫＴキナーゼを介した細胞シグナリングの阻害剤、肝細胞増殖因子ファミリーの阻害剤、ｃ−ｋｉｔ阻害剤、ａｂ１キナーゼ阻害剤、ＩＧＦ受容体(インスリン様増殖因子)キナーゼ阻害剤；オーロラキナーゼ阻害剤(例えばＡＺＤ１１５２、ＰＨ７３９３５８、ＶＸ−６８０、ＭＬＮ８０５４、Ｒ７６３、ＭＰ２３５、ＭＰ５２９、ＶＸ−５２８およびＡＸ３９４５９)およびサイクリン依存的キナーゼ阻害剤、例えばＣＤＫ２および／またはＣＤＫ４阻害剤を含む；

(ｖ)血管新生阻害薬、例えば血管内皮増殖因子の作用を阻害するもの、［例えば抗血管内皮細胞増殖因子抗体ベバシズマブ(Avastin(アバスチン、登録商標))およびＶＥＧＦ受容体チロシンキナーゼ阻害剤、例えば４−(４−ブロモ−２−フルオロアニリノ)−６−メトキシ−７−(１−メチルピペリジン−４−イルメトキシ)キナゾリン(ＺＤ６４７４；国際公開第ＷＯ０１／３２６５１号内の実施例２)、４−(４−フルオロ−２−メチルインドール−５−イルオキシ)−６−メトキシ−７−(３−ピロリジン−１−イルプロポキシ)キナゾリン(ＡＺＤ２１７１；国際公開第ＷＯ００／４７２１２号内の実施例２４０)、バタラニブ(ＰＴＫ７８７；国際公開第ＷＯ９８／３５９８５号)およびＳＵ１１２４８(スニチニブ；国際公開第ＷＯ０１／６０８１４号)、例えば国際特許出願第ＷＯ９７／２２５９６、ＷＯ９７／３００３５、ＷＯ９７／３２８５６およびＷＯ９８／１３３５４号で開示されている化合物および他の機構により作用する化合物(例えばリノミド、インテグリンαＶβ３機能の阻害剤およびアンギオスタチン)；

(vi)血流阻害剤、例えばコンブレタスタチンＡ４および国際特許出願第ＷＯ９９／０２１６６、ＷＯ００／４０５２９、ＷＯ００／４１６６９、ＷＯ０１／９２２２４、ＷＯ０２／０４４３４およびＷＯ０２／０８２１３号で開示された化合物；

(vii)アンチセンス治療薬、例えば上記で列挙した標的に指向されたもの、例えばＩＳＩＳ２５０３、抗ｒａｓアンチセンス；

(viii)遺伝子治療法、例えば異常遺伝子、例えば異常ｐ５３または異常ＢＲＣＡ１またはＢＲＣＡ２を置き換える方法、ＧＤＥＰＴ(遺伝子指向性酵素プロドラッグ治療)方法、例えばシトシンデアミナーゼ、チミジンキナーゼまたは細菌性ニトロレダクターゼ酵素を用いる方法および化学療法または放射線療法に対する患者の耐容性を高める方法、例えば多剤耐性遺伝子療法；および

(ix)免疫療法、例えば患者腫瘍細胞の免疫原性を高めるエクスビボおよびインビボ方法、例えばサイトカイン、例えばインターロイキン２、インターロイキン４または顆粒球−マクロファージコロニー刺激因子によるトランスフェクション、Ｔ細胞アネルギーを減少させる方法、トランスフェクションされた免疫細胞、例えばサイトカイン−トランスフェクション樹状細胞を用いる方法、サイトカイン−トランスフェクション腫瘍細胞株を用いる方法および抗イディオタイプ抗体を用いる方法。

上記のコンジョイント治療は、治療の個々の成分を同時、連続または個別投薬することにより達成され得る。上記の併用製品は、前記用量範囲内における本発明化合物またはその医薬上許容される塩類および他の医薬活性剤をその許容された用量範囲内で使用する。

実施された実験および得られた結果を含む以下の実施例については、説明を目的としているのに過ぎず、本発明を制限するものとしてみなすべきではない。

実施例１
免疫化および力価測定
免疫化
可溶性αＶβ６および細胞結合αＶβ６(細胞表面でヒトαＶβ６を発現するＣＨＯトランスフェクタント)をそれぞれ用いて免疫化を実施した。ＣＨＯトランスフェクタントを作製するため、ヒト完全長αＶβ６ｃＤＮＡを、ｐｃＤＮＡ３発現ベクターに挿入した。ＣＨＯ細胞を、電気穿孔により一時的にトランスフェクションした。免疫原目的に適切なレベルでの細胞表面におけるヒトαＶβ６の発現を、蛍光活性化細胞分取(ＦＡＣＳ)分析により確認した。キャンペーン１についての１０μｇ／マウスの可溶性タンパク質、およびキャンペーン２についての３×１０^６細胞／マウスのトランスフェクションＣＨＯ細胞を、１９９６年１２月３日出願の米国特許出願第０８／７５９６２０号および１９９８年６月１１日公開の国際特許出願第ＷＯ９８／２４８９３号、および２０００年１２月２１日公開の同第ＷＯ０１／７６３１０号(これらについては、出典明示で援用する)に開示された方法に従ってXenoMouse(登録商標)での初回免疫化に使用した。初回免疫後、５μｇ／マウスの１３追加促進薬量による免疫強化を群１および２(可溶性抗原)に施し、１.５×１０^６細胞／マウスの９追加促進薬量による免疫強化を群３および４(細胞結合抗原)に施した。免疫化プログラムを表２に要約する。

力価による採取用動物の選択
ヒトαＶβ６に対する抗体の力価を、可溶性抗原で免疫化したマウスについてＥＬＩＳＡ検定法により試験した。天然(細胞結合)抗原で免疫化したマウスについての抗体の力価をＦＡＣＳにより試験した。ＥＬＩＳＡおよびＦＡＣＳ分析は、αＶβ６に特異的であると思われるマウスもいることを示した。したがって、免疫化プログラムの最後に、実施例２の記載に従って、２０匹のマウスを採取用に選択し、リンパ球を免疫化マウスの脾臓およびリンパ節から単離した。

実施例２
リンパ球の回収およびＢ細胞単離
免疫化マウスを頸部脱臼により殺し、排出するリンパ節を採取し、各コーホートからプールした。リンパ系細胞をＤＭＥＭ中で粉砕することにより解離し、組織から細胞を放出させ、細胞をＤＭＥＭに懸濁した。Ｂ細胞をＩｇＭでの負の選択およびＩｇＧでの正の選択により濃厚化した。細胞を培養することにより、Ｂ細胞を拡大させ、抗体分泌性形質細胞に分化させ得た。

抗体分泌性形質細胞を、選択培地において常用手順で増殖させた。抗ヒトαＶβ６抗体を産生する可能性がある細胞から集めた余すところのない上清を、下記実施例で詳述している後続のスクリーニング検定法にかけた。

実施例３
細胞結合αＶβ６への結合
αＶβ６への分泌された抗体の結合を評価した。下記要領で、ＦＭＡＴマクロ共焦点スキャナーを用いて、細胞結合αＶβ６への結合を評価し、可溶性αＶβ６への結合をＥＬＩＳＡにより分析した。

採取した細胞から集めた上清を試験することにより、αＶβ６を安定して過剰発現するＨＥＫ２９３細胞への分泌抗体の結合を評価した。親２９３Ｆ細胞株を陰性対照として使用した。フリースタイル(Freestyle)培地(Invitrogen)中の細胞を、安定したトランスフェクタントについては２５００細胞／ウェルの密度、および親細胞については２２５００細胞／ウェルの密度で、５０μＬ／ウェルの容量での３８４ウェルＦＭＡＴプレートへ播種し、細胞を一晩３７℃でインキュベーションした。次いで、１０μＬ／ウェルの上清を加え、プレートを約１時間４℃でインキュベーションした後、１０μＬ／ウェルの抗ヒトＩｇＧ−Ｃｙ５二次抗体を２.８μｇ／ｍｌの濃度(４００ｎｇ／ｍｌ最終濃度)で加えた。次いで、プレートを１時間４℃でインキュベーションし、ＦＭＡＴマクロ共焦点スキャナー(Applied Biosystems)を用いて蛍光を読み取った。１１抗体に関するＦＭＡＴの結果を表３に要約する。

さらに、可溶性αＶβ６への抗体結合を、ＥＬＩＳＡにより分析した。Costar ミディアム結合性９６ウェルプレート(カタログ＃３３６８)を、５０μＬ／ウェルの総容量についてＴＢＳ／１ｍＭＭｇＣｌ_２緩衝液中５μｇ／ｍｌの濃度でαＶβ６と一晩４℃でインキュベーションすることによりコーティングした。次いで、プレートをＴＢＳ／１ｍＭＭｇＣｌ_２緩衝液で洗浄し、室温で３０分間２５０μＬの１ＸＰＢＳ／１％ミルクにより遮断した。次いで、１０μＬの上清を、４０μＬのＴＢＳ／１ｍＭのＭｇＣｌ_２／１％ミルクに加え、室温で１時間インキュベーションした。プレートを洗浄し、次いでＴＢＳ／１ｍＭのＭｇＣｌ_２／１％ミルク中０.４００ｎｇ／ｍｌでのヤギ抗ヒトＩｇＧＦｃ−ペルオキシダーゼと室温で１時間インキュベーションした。プレートを洗浄し、次いで１−ステップＴＭＢ基質により検出した。抗体の一つに関するＥＬＩＳＡ結果を表３に示す。

実施例４
細胞接着の阻害
種々の抗体含有上清の相対効力を測定するため、αＶβ６陽性ＨＴ２９細胞のＴＧＦβＬＡＰ介在的接着に対する阻害能について抗体を評価した。プレートを１０μｇ／ｍｌのＴＧＦβＬＡＰにより一晩コーティングし、検定前の１時間３％ＢＳＡ／ＰＢＳにより予め遮断した。次いで、細胞を沈降させ、ＨＢＢＳで２回洗浄した後、細胞を適切な濃度でＨＢＳＳに再懸濁した。細胞を、４℃で３０分間Ｖ底プレートにおいて適切な抗体の存在下でインキュベーションした。抗原コーティング溶液を除去し、プレートを室温で１時間１００μＬの３％ＢＳＡにより遮断した。プレートをＰＢＳまたはＨＢＳＳで２回洗浄し、細胞−抗体混合物をコーティングしたプレートに移し、プレートを３７℃で３０分間インキュベーションした。次いで、コーティングしたプレートにおける細胞を温ＨＢＳＳ中で４回洗浄し、その後細胞を−８０℃で１時間冷凍した。細胞を室温で１時間解凍し、次いで、１００μＬのCyQuant染料／溶解緩衝液(Molecular Probes)を、製造業者の使用説明書に従って各ウェルに加えた。蛍光を４８５ｎｍの励起波長および５３０ｎｍの放射波長で読み取った。１２抗体に関する結果を表４に要約する。示されているそれらの抗体は、検定法で得られる最大および最小接着値を表すのに使用されるプレート上のコーティングおよび非コーティング対照ウェルに対して阻害率が６２％から１００％を超える効力範囲であった。

実施例５
マカークαＶβ６およびヒトαＶへの交差反応性
マカークαＶβ６への抗体含有上清の交差反応性を、カニクイザルαＶおよびカニクイザルβ６で一時的にトランスフェクションしたＨＥＫ−２９３細胞におけるＦＡＣＳ分析を用いて上清で試験した。

ヒトαＶへの交差反応性についても試験した。この検定法の場合、αＶβ６ではなくαＶβ３およびαＶβ５を発現する親Ａ３７５Ｍ細胞についてのＦＡＣＳ分析を用いて、交差反応性を上清で試験した。このスクリーンは、抗体がβ６鎖またはαＶと組み合わせたβ６鎖を特異的に認識していることを示すように設計された。ヒトαＶ検定法を、マカークαＶβ６交差反応性スクリーンと同時に実施した。

次の要領で検定法を実施した。約７５％密集度であるＡ３７５Ｍ細胞に対し、ファルコンチューブ中で細胞を解離、次いで沈降させ(１ウェル当たり２５００００〜３０００００細胞に相当)、次いでＦＡＣＳ緩衝液中０.１２５μＭのＣＦＳＥに再懸濁して２５００００細胞ごとに１００μＬの最終容量とし、次いで３７℃で５分間インキュベーションすることにより、ＣＦＳＥ細胞内染料で標識した。次いで、細胞を沈降させ、上清を廃棄し、ＦＡＣＳ緩衝液に再懸濁し、３７℃で３０分間インキュベーションした。次いで、細胞をＦＡＣＳ緩衝液で２回洗浄し、１ウェル当たり最終容量１００μＬのＦＡＣＳ緩衝液に再懸濁した。

ＨＥＫ−２９３細胞を、カニクイザルαＶおよびカニクイザルβ６で一時的にトランスフェクションした。４８時間後、細胞を集め、ＦＡＣＳ緩衝液に再懸濁し、１００μＬ中約５００００細胞の最終濃度とした。

ＣＦＳＥ標識Ａ３７５Ｍ細胞およびトランスフェクション２９３細胞の５０：５０混合物を含む、合計約１０００００の細胞を、次の要領で各反応において使用した。１００μＬのＣＦＳＥ標識Ａ３７５Ｍ細胞および１００μＬの２９３細胞を、Ｖ底プレートへ分配した。プレート中の細胞を、３分間１５００ｒｐｍで沈降させ、次いで１００μＬのＦＡＣＳ緩衝液に再懸濁した。沈降段階を反復し、ＦＡＣＳ緩衝液上清を除去した。採取した抗体含有上清、または対照一次抗体を５０μＬの容量中に加え、細胞を再懸濁した。一次抗体対照は、マウスαＶβ６(カタログ＃ＭＡＢ２０７７ｚ、Chemicon)および抗αＶ組換え体であった。プレートを氷上で４５分間インキュベーションした後、１００μＬのＦＡＣＳ緩衝液を加えることにより一次抗体を希釈した。次いで、細胞を３分間１５００ｒｐｍでの遠心分離により沈降させ、ペレットを１００μＬのＦＡＣＳ緩衝液に再懸濁した。沈降段階を反復し、ＦＡＣＳ緩衝液上清を除去した。次いで、細胞を、７ＡＡＤ染料(１０μｇ／ｍｌ)と共に適切な二次抗体(５μｇ／ｍｌ)に再懸濁し、氷上で７分間染色した。次いで、１５０μＬのＦＡＣＳ緩衝液を加え、細胞を３分間１５００ｒｐｍで沈降させた後、細胞を１００μＬのＦＡＣＳ緩衝液中で洗浄し、沈降させ、次いで２５０μＬの緩衝液に再懸濁し、ＦＡＣＳ管に加えた。試料をハイスループットＦＡＣＳ機で分析し、Cell Quest Pro ソフトウェアを用いて解析した。

１２抗体についての結果は、表５に要約されており、示された抗体がマカークαＶβ６に特異結合し得たが、親Ａ３７５Ｍ細胞におけるヒトαＶとは非特異結合し得なかったことを立証している。

実施例６
αＶβ６特異的溶血プラーク検定法
抗体分泌性形質細胞を、組換え抗体生産用に各採取物から選択した。次いで、蛍光プラーク検定法を用いて、αＶβ６に対する抗体を発現する単形質細胞を同定した。次いで、単細胞を逆転写およびポリメラーゼ連鎖反応にかけることにより、実施例７に記載した最初の抗体特異性をコード化する可変重鎖および可変軽鎖をレスキューおよび増幅した。αＶβ６特異的溶血プラーク検定法の実施に必要とされる多くの特殊試薬および材料の調製を以下に記載する。

ヒツジ赤血球(ＳＲＢＣ)のビオチニル化。ＳＲＢＣを２５％ストックとしてＲＰＭＩ培地中で貯蔵した。ストック１.０ｍＬを１５ｍＬのファルコンチューブへ取り分け、細胞を遠心力で沈降させ、上清を除去することにより、２５０μｌのＳＲＢＣ充填細胞ペレットを得た。次いで、細胞ペレットを、５０ｍＬ管中で４.７５ｍＬのＰＢＳ、ｐＨ８.６に再懸濁した。別々の５０ｍＬ管中で、Sulfo−ＮＨＳビオチン２.５ｍｇを、４５ｍＬのＰＢＳ、ｐＨ８.６に加えた。ビオチンが完全に溶解した後、５ｍＬのＳＲＢＣを加え、管を室温で１時間回転させた。ＳＲＢＣを３０００ｇで５分間の遠心分離にかけた。上清を排出させ、２５ｍＬのＰＢＳ、ｐＨ７.４を洗浄液として加えた。洗浄サイクルを３回反復し、次いで４.７５ｍＬの免疫細胞培地(ＲＰＭＩ１６４０＋１０％ＦＣＳ)を、２５０μｌのビオチニル化−ＳＲＢＣ(Ｂ−ＳＲＢＣ)ペレットに加えることにより、Ｂ−ＳＲＢＣを徐々に再懸濁した(５％Ｂ−ＳＲＢＣストック)。ストックを必要とされるまで４℃で貯蔵した。

Ｂ−ＳＲＢＣのストレプトアビジン(ＳＡ)コーティング。５％Ｂ−ＳＲＢＣストック１ｍＬを、きれいなエッペンドルフ管に移し入れた。Ｂ−ＳＲＢＣ細胞を、微量遠心管で８０００ｒｐｍ(６８００ｒｃｆ)でのパルススピンにより沈降させた。次いで、上清を排出させ、ペレットを１.０ｍＬのＰＢＳ、ｐＨ７.４に再懸濁し、遠心分離を反復した。洗浄サイクルを２回反復し、次いでＢ−ＳＲＢＣペレットを１.０ｍＬのＰＢＳ、ｐＨ７.４に再懸濁することにより、５％(ｖ／ｖ)の最終濃度とした。１０ｍｇ／ｍＬストレプトアビジン(CalBiochem、サンディエゴ、カリフォルニア)ストック液１０μｌを加えた。管を混合し、ＲＴで２０分間回転させた。洗浄工程を反復し、ＳＡ−ＳＲＢＣを１ｍＬのＰＢＳ、ｐＨ７.４に再懸濁した(５％(ｖ／ｖ))。

ＳＡ−ＳＲＢＣのヒトαＶβ６コーティング。可溶性抗原(貫膜ドメインを欠く)をＳＲＢＣのコーティングに使用した。αＶβ６は二量体として細胞表面にのみ存在するので、両鎖とも使用した。ＳＡ−ＳＲＢＣを、５０μｇ／ｍＬのビオチニル化−αＶβ６でコーティングし、混合し、室温で２０分間回転させた。上記と同様１.０ｍＬのＰＢＳ、ｐＨ７.４でＳＲＢＣを２回洗浄した。Ａｇ−コーティングＳＲＢＣを、ＲＰＭＩ(＋１０％ＦＣＳ)に再懸濁して、５％(ｖ／ｖ)の最終濃度とした。

免疫蛍光(ＩＦ)によるαＶβ６−ＳＲＢＣの質の測定。１０μｌの５％ＳＡ−ＳＲＢＣおよび１０μｌの５％Ａｇ−コーティングＳＲＢＣを、４０μｌのＰＢＳを含む別々のきれいな１.５ｍＬエッペンドルフ管にそれぞれ加えた。ヒト抗αＶβ６抗体を、５０μｇ／ｍＬでＳＲＢＣの各試料に加えた。管を室温で２５分間回転させ、次いで細胞を１００μｌのＰＢＳで３回洗浄した。細胞を５０μｌのＰＢＳに再懸濁し、光安定性蛍光染料Alexa４８８(Molecular Probes、ユージーン、オレゴン)にコンジュゲーションしたＧｔ−抗ヒトＩｇＧＦｃ抗体２μｇ／ｍＬとインキュベーションした。管を室温で２５分間回転させた後、１００μｌのＰＢＳで洗浄し、１０μｌのＰＢＳに再懸濁した。染色された細胞１０μｌを、きれいなガラス製顕微鏡スライド上にスポットし、カバーグラスで覆い、蛍光下で観察し、０〜４の任意スケールで評点することにより、単離細胞の質を評価した。

形質細胞の調製。αＶβ６活性を中和するものとして以前に確認された(したがって、興味の対象である免疫グロブリンを分泌するＢ細胞クローンを含む)単Ｂ細胞培養ウェルの内容物を採取した。ウェルに存在するＢ細胞培養物を、３７℃でＲＰＭＩ＋１０％ＦＣＳの添加により回収した。細胞をピペットで取り、次いできれいな１.５ｍＬエッペンドルフ管に移し入れることにより再懸濁した(最終容量約５００〜７００μｌ)。細胞を、室温で２分間、微量遠心管中１５００ｒｐｍ(２４０ｒｃｆ)で遠心分離にかけ、次いで管を１８０度回転させ、再度１５００ｒｐｍで２分間遠心分離にかけた。冷凍培地を排出させ、免疫細胞を１００μｌのＲＰＭＩ(１０％ＦＣＳ)に再懸濁し、次いで遠心分離にかけた。このＲＰＭＩ(１０％ＦＣＳ)による洗浄を反復し、細胞を６０μｌのＲＰＭＩ(ＦＣＳ)に再懸濁し、使用時まで氷上で貯蔵した。

溶血プラーク検定法の実施。免疫細胞の６０μｌ試料に、αＶβ６コーティングＳＲＢＣ(５％ｖ／ｖストック)、ＲＰＭＩ(ＦＣＳ)中で調製した４ｘモルモット補体(Sigma、オークビル、オンタリオ)ストック、および４ｘ高血清ストック(ＲＰＭＩ(ＦＣＳ)中１：９００)をそれぞれ６０μｌ加えた。混合物(３〜５μｌ)を、１００ｍｍファルコン組織培養プレートからプラスチックのふたへスポットし、スポットを非希釈パラフィン油で覆った。スライドを３７℃で最低４５分間インキュベーションした。

プラーク検定結果の分析。ヒトαＶβ６の触媒性ドメインでのヒツジ赤血球のコーティングは有効であった。次いで、これらのＡｇ−コーティング赤血球を用いて、下記表６に示したウェルから抗原特異的形質細胞を同定した。次いで、これらの細胞をマイクロマニピュレーションにより単離した。マイクロマニピュレーションで抗原特異的形質細胞をレスキューした後、実施例７でのさらなる記載に従って可変領域遺伝子をコード化する遺伝子を、単形質細胞でのＲＴ−ＰＣＲによりレスキューした。

実施例７
組換えタンパク質単離
実施例４からの目的単形質細胞の単離後、ｍＲＮＡを抽出し、逆転写酵素ＰＣＲを実施することにより、各細胞により分泌される抗体の可変重および軽鎖をコード化するｃＤＮＡを生成した。ヒト可変重鎖ｃＤＮＡを、ＰＣＲ中に添加した制限酵素により消化し、この反応産物を、クローニングに適合し得る突出部をもつＩｇＧ２発現ベクターへクローン化した。このベクターは、ｐｃＤＮＡ３.１＋／Hygro(Invitrogen、バーリントン、オンタリオ、カナダ)の多重クローニング部位へヒトＩｇＧ２の定常ドメインをクローン化することにより作製された。ヒト可変軽鎖ｃＤＮＡを、ＰＣＲ反応中に添加した制限酵素で消化し、この反応産物を、クローニングに適合し得る突出部をもつＩｇＫａｐｐａまたはＩｇＬａｍｄａ発現ベクターへクローン化した。このベクターは、ヒトＩｇＫまたはＩｇＬの定常ドメインをｐｃＤＮＡ３.１＋／Ｎｅｏ(Invitrogen)の多重クローニング部位へクローン化することにより作製された。

次いで、重鎖および軽鎖発現ベクターを、リポフェクタミンを用いて７０％密集度ヒト胎芽腎臓(ＨＥＫ)２９３細胞の６０ｍｍ皿へ同時トランスフェクションした。トランスフェクションされた細胞は、２４〜７２時間もとの形質細胞と同一の特異性をもつ組換え抗体を分泌した。上清(３ｍＬ)をＨＥＫ２９３細胞から採取したところ、無傷抗体の分泌がサンドイッチＥＬＩＳＡにより立証され、ヒトＩｇＧが特異的に検出された。特異性は、ＥＬＩＳＡを用いることにより、αＶβ６への組換え抗体の結合を通して確認された。標的抗原に結合し得る抗体を分泌するレスキューされたクローンを表７に要約する。

実施例８
組換え抗体の精製
抗αＶβ６抗体を大規模製造するため、重および軽鎖発現ベクター(各鎖２.５μｇ／皿)を、ＨＥＫ２９３細胞による７０％密集度である１０枚の１００ｍｍ皿へリポフェクションした。トランスフェクションした細胞を、３７℃で４日間インキュベーションし、上清(６ｍＬ)を採取し、６ｍＬの新しい培地と交換した。７日目、上清を除去し、初回採取物と共にプールした(１０プレートから合計１２０ｍＬ)。プロテインＡセファロース(Amersham Biosciences、ピスキャタウェイ、ニュージャージー)アフィニティークロマトグラフィー(１ｍＬ)を用いて、抗体を上清から精製した。抗体を、５００μＬの０.１Ｍグリシン、ｐＨ２.５によりプロテインＡカラムから溶離した。溶出液をＰＢＳ、ｐＨ７.４中で透析し、滅菌濾過した。抗体を非還元的ＳＤＳ−ＰＡＧＥで分析することにより、純度および収率を評価した。２８０ｎｍでの光学密度を測定することにより、タンパク質濃度を測定した。

実施例９
αＶβ６抗体の構造分析
抗体の可変重鎖および可変軽鎖をシークエンサーにかけることにより、それらのＤＮＡ配列を決定した。抗αＶβ６抗体に関する完全な配列情報は、各ガンマおよびカッパ／ラムダ鎖の組合わせに関するヌクレオチドおよびアミノ酸配列を含む配列リストで提供されている。可変重鎖配列を解析することにより、Ｖ_Ｈファミリー、Ｄ領域配列およびＪ領域配列を決定した。次いで、配列を翻訳することにより、一次アミノ酸配列を決定し、生殖系列Ｖ_Ｈ、ＤおよびＪ領域配列と比較し、体細胞高頻度突然変異を評価した。

表８は、抗体重鎖領域をそれらの同起源の生殖系列重鎖領域と比較している表である。表９は、抗体カッパまたはラムダ軽鎖領域をそれらの同起源の軽鎖領域と比較している表である。免疫グロブリン鎖の可変(Ｖ)領域は、多数の生殖系列ＤＮＡ断片によりコード化され、それらはＢ細胞個体発生中に一緒になって機能的可変領域(Ｖ_ＨＤＪ_ＨまたはＶ_ＫＪ_Ｋ)を構成する。αＶβ６に対する抗体応答の分子および遺伝的多様性を詳細に試験した。これらの検定法により、抗αＶβ６抗体に特異的な幾つかの点が明らかにされた。

配列決定データによると、ｓｃ２９８およびｓｃ３７４の重鎖の一次構造は類似しているが、同一ではない。ｓｃ２５４は、他の二つとは構造が異なる。また、特定の抗体がアミノ酸レベルでその個々の生殖系列配列とは異なる場合、抗体配列において生殖系列配列に戻る突然変異が誘発され得るものとする。上記の矯正的突然変異は、標準分子生物学技術を用いて、１か所、２か所、３か所またはそれ以上の位置、または突然変異位置のいずれかの組合わせとして導入され得る。非限定的な実施例として、表９は、ｓｃ２９８の軽鎖配列(配列番号４０)が、対応する生殖系列配列(配列番号６８)とは、ＦＲ１領域におけるＡｌａに対するＶａｌの突然変異(突然変異１)、ＣＤＲ１領域におけるＡｌａに対するＬｅｕの突然変異(突然変異２)およびＦＲ３領域におけるＳｅｒに対するＡｓｎの突然変異が存在する点で異なることを示している。すなわち、ｓｃ２９８の軽鎖をコード化するアミノ酸またはヌクレオチド配列に対し、突然変異１を変える修飾を加えることにより、突然変異１の部位に生殖系列配列をもたらし得る。さらに、ｍＡｂｓｃ２９８の軽鎖をコード化するアミノ酸またはヌクレオチド配列に対し、突然変異２を変える修飾を加えることにより、突然変異２の部位に生殖系列配列をもたらし得る。またさらに、ｍＡｂｓｃ２９８の軽鎖をコード化するアミノ酸またはヌクレオチド配列に対し、突然変異３を変える修飾を加えることにより、突然変異３の部位に生殖系列配列をもたらし得る。さらにまた、ｓｃ２９８の軽鎖をコード化するアミノ酸またはヌクレオチド配列に対し、突然変異１、突然変異２および突然変異３を変える修飾を加えることにより、突然変異１、２および３の部位に生殖系列配列をもたらし得る。さらにまた、ｓｃ２９８の軽鎖をコード化するアミノ酸またはヌクレオチド配列に対し、突然変異１、突然変異２および突然変異３の組合わせを変える修飾を加え得る。別の例において、ｓｃ２６４の重鎖(配列番号３０)は、６１位がその生殖系列(配列番号５５)とは異なる。すなわち、ｓｃ２６４の重鎖をコード化するアミノ酸またはヌクレオチド配列に対し、ＮからＹへの修飾を加えることにより生殖系列配列をもたらし得る。下記表１０〜１３は、ｓｃ１３３、ｓｃ１８８およびｓｃ２６４に関する生殖系列からの上記変異の位置を説明する。各列は、太字で示した位置における生殖系列および非生殖系列残基の特有の組合わせを表す。生殖系列配列へ戻る突然変異が誘発され得る抗体配列の特定の例には、重鎖のアミノ酸７０にあるＬを、Ｍの生殖系列アミノ酸に戻す突然変異が誘発されているｓｃ１３３(本明細書ではｓｃ１３３ＴＭＴと称す)；軽鎖のアミノ酸９３にあるＮを、Ｄの生殖系列アミノ酸に戻す突然変異が誘発されているｓｃ１３３(本明細書ではｓｃ１３３ＷＤＳと称す)；および軽鎖のアミノ酸８４にあるＡを、Ｄの生殖系列アミノ酸に戻す突然変異が誘発されているｓｃ２６４(本明細書ではｓｃ２６４ＡＤＹと称す)がある。

一態様において、本発明は、ＣＤＲ領域、すなわちＣＤＲ１、ＣＤＲ２および／またはＣＤＲ３におけるアミノ酸の１つまたはそれ以上の修飾を特徴とする。一例では、ここに記載の抗体の重鎖のＣＤＲ３が修飾されている。典型的には、アミノ酸は、類似側鎖を有するアミノ酸と置換(同類アミノ酸置換)されるか、または適切なアミノ酸、例えばアラニンまたはロイシンと置換され得る。一態様において、ｓｃ２６４ＣＤＲ３、配列番号３０のＶＡＴＧＲＧＤＹＨＦＹＡＭＤＶＡＡ残基１００〜１１４では、１個またはそれ以上のアミノ酸が修飾され得る。出願人らは、活性に有害な影響を及ぼすことなくＣＤＲ３領域が修飾され得ることを既に立証している。すなわち、ＣＤＲ３領域における第２のＧがＡと置換されているｓｃ２６４ＲＡＤ参照。ＣＤＲ３領域内における他の修飾もまた予測される。別の態様において、ｓｃ１３３ＣＤＲ３領域、ＲＬＤＶは、１個またはそれ以上のアミノ酸が修飾され得、例えばＬに対しＡおよび／またはＶに対しＡの置換が含まれる。アミノ酸を置換する方法は当業界では公知であり、部位特異的突然変異導入法がある。

別の態様において、本発明では、本発明抗体の結合の不均一性および特異性に影響を及ぼし得る配列における構造上不利な部分を置き換える。一例では、抗体ｓｃ２６４は、交差反応性結合を誘発し得るＣＤＲ３領域にＲＧＤ配列を有する。したがって、ＲＧＤにおけるグリシン残基は、アラニンにより置換され得る(ｓｃ２６４ＲＡＤ)。

実施例１０
αＶβ６抗体の効力測定
ＴＧＦβＬＡＰへのＨＴ２９細胞の接着を阻止する能力に基づいて抗体を区別するため、以下の接着検定法を実施した。

Nunc MaxiSorp(Nunc)プレートを、一晩５０μＬの１０μｇ／ｍｌのＴＧＦベータ１ＬＡＰ(ＴＧＦβＬＡＰ)でコーティングし、検定前に１時間３％ＢＳＡ／ＰＢＳで予め遮断した。次いで、最適密度まで増殖させたＨＴ２９細胞を、沈降させ、ＨＢＢＳ(１％ＢＳＡ含有およびＭｎ^２＋不含有)中で２回洗浄した後、細胞を１ウェル当たり３００００細胞でＨＢＳＳに再懸濁した。コーティング液をプレートから除去し、次いで室温で１時間、１００μＬの３％ＢＳＡで遮断した後、ＰＢＳで２回洗浄した。

抗体力価測定液を、３０μＬの最終容量中１：３系列希釈液および２度にわたって最終濃度で調製した。対照ウェルにおけるＰＢＳ濃度が最希釈抗体ウェルにおけるＰＢＳ濃度と確実にマッチするように注意した。３０μＬの細胞を各ウェルに加え、細胞を、４℃で４０分間、Ｖ底プレートにおいて抗体の存在下でインキュベーションした。細胞抗体混合物を、コーティングプレートに移し入れ、プレートを３７℃で４０分間インキュベーションした。次いで、コーティングプレート上の細胞を、温ＨＢＳＳ中で４回洗浄した後、細胞を−８０℃で１５分間冷凍した。細胞を室温で解凍し、次いで１００μＬのCyQuant染料／溶解緩衝液(Molecular Probes)を製造業者の使用説明書に従って各ウェルに加えた。蛍光を４８５ｎｍの励起波長および５３０ｎｍの放射波長で読み取った。各ｍＡｂについての推定ＩＣ_５０値を、陽性および陰性対照ウェルにより測定された、本検定法で可能な細胞接着の最大および最小量に基づいて計算した。１２抗体についての結果を表１４に要約する。

実施例１１
競合検定法
抗体が可溶性ＴＧＦβＬＡＰへのαＶβ６インテグリン結合を特異的に遮断し得ることを立証するため、競争検定法を精製抗体で実施することにより、それらがαＶβ６へ結合する能力およびＧＳＴ−ＬＡＰペプチドへのその結合を遮断する能力を測定した。

中程度の結合性９６ウェルプレート(Costar、カタログ＃３３６８)を、ＰＢＳおよび０.０５％アジ化ナトリウム中１０μｇ／ｍｌのＧＳＴ−ＬＡＰ５０μＬ／ウェルによりコーティングし、４℃で一晩インキュベーションした。次いで、３００μＬ／ウェルの検定希釈剤(ＴＢＳ(５０ｍＭのトリス、５０ｍＭのＮａＣｌ、１ｍＭのＭｇＣｌ_２および１ｍＭのＣａＣｌ_２、ｐＨ６.９)中１％ミルク)を用いてプレートを３回洗浄した後、３００μＬ／ウェルのＴＢＳ中５％ミルクを用いてプレートを遮断し、室温で３０分間インキュベーションした。ｍＡｂ(１０μｇ／ｍｌ〜０.０１μｇ／ｍｌの範囲の１：３系列希釈液中)を、αＶβ６(０.０５％アジ化ナトリウムを含む検定希釈剤中２５０ｎｇ／ｍｌ)と一晩インキュベーションした。翌日、５０μＬ／ウェルのプレインキュベーションした一次抗体を、ＧＳＴ−ＬＡＰペプチドコーティングプレートに移し入れ、室温で１時間インキュベーションした。次いで、３００μＬ／ウェルの検定希釈剤を用いてウェルを３回洗浄した。次いで、プレートに結合したαＶβ６の量を検出するため、ｍＡｂ２０７５(Chemicon)を検定希釈剤(５０μＬ／ウェル)中１μｇ／ｍｌの濃度で加え、室温で１時間インキュベーションした。次いで、３００μＬ／ウェルの検定希釈剤を用いてウェルを３回洗浄し、検定希釈剤(５０μＬ／ウェル)中４００ｎｇ／ｍｌのヤギ抗マウスＩｇＧＦｃ−ペルオキシダーゼと室温で１時間インキュベーションした。次いで、３００μＬ／ウェルの検定希釈剤を用いてウェルを３回洗浄し、５０μＬ／ウェルの総容量で１段階ＴＭＢ(Neogen)を用いて発色させた。１５分後、発色反応を５０μＬ／ウェルの１Ｎ塩酸でクエンチングした。プレートを４５０ｎｍで読み取り、抗体の５つについての結果を図１に要約する。図１は、抗体がＧＳＴ−ＬＡＰへのαＶβ６結合を阻害し得たことを示している。

実施例１２
αＶβ３またはαＶβ５インテグリンとの交差反応性
抗体が、αＶβ３またはαＶβ５インテグリンではなく、αＶβ６インテグリンに対してのみ機能的であることを立証するため、以下の検定を実施することにより、オステオポンチンペプチドへのＡ３７５細胞の接着に対する抗体の阻害能を試験した。

検定プレートをオステオポンチンペプチドでコーティングした。オステオポンチンの２種のフラグメント：ＯＰＮ１７−１６８およびＯＰＮ１７−３１４を使用した。検定プレートを、検定前に１時間３％ＢＳＡ／ＰＢＳで予め遮断した。Ａ３７５細胞を培養フラスコから除去し、沈降させ、１％ＢＳＡおよび１ｍＭのＣａ^２＋および１ｍＭのＭｇ２＋を含むＨＢＳＳで２回洗浄した。次いで、細胞を、１ウェル当たり３００００細胞の濃度でＨＢＳＳに再懸濁した。オステオポンチンフラグメントを含むコーティング液を除去し、プレートを室温で１時間３％ＢＳＡ１００μＬにより遮断した。コーティングしたプレートを１％ＢＳＡ含有ＨＢＳＳにより２回洗浄した。抗体力価測定液を、３０μＬの最終容量での１：４系列希釈液および２回にわたって最終濃度で調製した。再懸濁した細胞を、Ｖ底プレートにおける力価測定抗体を含むウェルに添加し、細胞および抗体を４℃で４０分間共インキュベーションした。次いで、細胞抗体混合物を、コーティングプレートに移し入れ、その後プレートを３７℃で４０分間インキュベーションした。次に、コーティングプレート上の細胞を、温ＨＢＳＳ中で４回洗浄し、次いで、プレート中の細胞を−８０℃で１５分間冷凍した。細胞を室温で解凍し、次いで１００μＬのCyQuant 染料／溶解緩衝液(Molecular Probes)を製造業者の使用説明書に従って各ウェルに加えた。蛍光を４８５ｎｍの励起波長および５３０ｎｍの放射波長で読み取った。

５抗体に関する結果を表１５に要約する。市販のαＶインテグリン特異抗体を、本検定法での陽性対照として使用したところ、約９０％の接着阻害を呈した。市販のαＶβ６抗体を、αＶβ３またはαＶβ５インテグリンへの接着に関する本検定法での陰性対照として使用した。全抗体を５μｇ／ｍｌの濃度で試験したところ、試験抗体の中でαＶβ３またはαＶβ５インテグリンへの接着を遮断し得たものは無かった。

実施例１３
α４β１インテグリンへの交差反応性
抗体が、α４β１インテグリンではなく、αＶβ６インテグリンに対してのみ機能的であることを立証するため、検定を実施することにより、フィブロネクチンのＣＳ−１ペプチドへのＪ６.７７細胞の接着に対する抗体の阻害能を試験した。上記実施例１２記載の要領で本検定法を実施したが、ただし、Ｊ６.７７細胞を結合に使用し、フィブロネクチンのＣＳ−１ペプチドを検定プレートのコーティングに使用した。

１１抗体に関する結果を表１６に要約する。市販されているβ１インテグリン特異抗体を、本検定法での陽性対照として用いたところ、９７％の接着阻害を呈した。市販されているαＶβ６特異抗体を、α４β１への接着に関する本検定法での陰性対照として使用した。全抗体を５μｇ／ｍｌで使用したところ、試験抗体の中でα４β１インテグリンへの接着を遮断し得たものは無かった。

実施例１４
α５β１インテグリンへの交差反応性
抗体が、α５β１インテグリンではなく、αＶβ６インテグリンに対してのみ機能的であることを立証するため、接着検定法を実施することにより、フィブロネクチンへのＫ５６２細胞の接着に対する抗体の阻害能を試験した。

検定プレートを、１２.５μｇ／ｍＬの濃度のフィブロネクチンのＦＮ９−１０ペプチドでコーティングした。検定プレートを、検定前に１時間３％ＢＳＡ／ＰＢＳで予め遮断した。Ｋ５６２細胞を培養フラスコから取り出し、沈降させ、１％ＢＳＡおよび１ｍＭのＭｎ^２＋を含むＨＢＳＳで２回洗浄した。次いで、細胞を１ウェル当たり３００００細胞の濃度でＨＢＳＳに再懸濁した。オステオポンチンフラグメントを含むコーティング液を除去し、プレートを室温で１時間３％ＢＳＡ１００μＬにより遮断した。コーティングしたプレートを１％ＢＳＡ含有ＨＢＳＳにより２回洗浄した。抗体力価測定液を、３０μＬの最終容量での１：４系列希釈液および２回にわたって最終濃度で調製した。再懸濁した細胞を、Ｖ底プレートにおける力価測定抗体を含むウェルに添加し、細胞および抗体を４℃で６０分間共インキュベーションした。次いで、細胞抗体混合物を、コーティングプレートに移し入れ、その後３７℃で４０分間インキュベーションした。次に、コーティングプレート上の細胞を、温ＨＢＳＳ中で４回洗浄し、次いで、プレート中の細胞を−８０℃で１５分間冷凍した。細胞を室温で解凍し、次いで１００μＬのCyQuant 染料／溶解緩衝液(Molecular Probes)を製造業者の使用説明書に従って各ウェルに加えた。蛍光を４８５ｎｍの励起波長および５３０ｎｍの放射波長で読み取った。

５抗体に関する結果を表１７に要約する。試験抗体を、陽性対照としての市販のα５β１抗体および陰性対照としてのαＶβ６特異抗体と比較した。本検定法において５μｇ／ｍｌの濃度で用いたところ、試験抗体の中で本検定法における接着を遮断し得たものは無かった。

実施例１５
マウスおよびカニクイザルαＶβ６インテグリンへの交差反応性
抗体がマウスαＶβ６またはカニクイザルαＶβ６に対し交差反応性を呈するか否かを測定するため、以下の検定法を実施した。

マカークおよびマウスαＶβ６へのｍＡｂの交差反応性を、カニクイザルまたはマウスαＶ、β６またはαＶβ６で一時的にトランスフェクションしたＨＥＫ−２９３細胞でのＦＡＣＳ分析を用いて精製ｍＡｂにおいて試験した。トランスフェクションの約４８時間後、細胞を集め、ＦＡＣＳ緩衝液に再懸濁して、１００μＬ中約５００００細胞の最終濃度に到達させた。

合計約１０００００細胞を、次の要領で各反応において使用した。２９３細胞２００μＬを、Ｖ底プレートに分注した。プレート中の細胞を３分間１５００ｒｐｍで沈降させ、次いで１００μＬのＦＡＣＳ緩衝液に再懸濁した。沈降工程を反復し、ＦＡＣＳ緩衝液上清を除去した。精製ｍＡｂまたは対照一次抗体を５０μＬの容量で加え、細胞を再懸濁した。一次抗体対照はマウスαＶβ６(カタログ＃ＭＡＢ２０７７ｚ、Chemicon)および抗αＶおよび抗β６組換え体であった。プレートを氷上で４５分間インキュベーションした後、１００μＬのＦＡＣＳ緩衝液を加えて一次抗体を希釈した。次いで、細胞を３分間１５００ｒｐｍでの遠心分離により沈降させ、ペレットを１００μＬのＦＡＣＳ緩衝液に再懸濁した。沈降工程を反復し、ＦＡＣＳ緩衝液上清を除去した。次いで、細胞を、７ＡＡＤ染料(１０μｇ／ｍｌ)と共に適切な二次抗体(５μｇ／ｍｌ)に再懸濁し、氷上で７分間染色した。次いで、ＦＡＣＳ緩衝液１５０μＬを加え、細胞を３分間１５００ｒｐｍで沈降させた後、細胞を１００μＬのＦＡＣＳ緩衝液で洗浄し、沈降させ、次いで２５０μＬの緩衝液に再懸濁し、ＦＡＣＳ管に加えた。試料をハイスループットＦＡＣＳ機で分析し、Cell Quest Pro ソフトウェアを用いて解析した。

結果を表１８に要約し、ｍＡｂｓｃ１３３およびｍＡｂｓｃ１８８が、マウスおよびカニクイザルαＶβ６およびβ６と明らかに交差反応性を示したことを証明する。ｍＡｂｓｃ２５４は、β６、αＶおよびαＶβ６と交差反応すると思われた。ｍＡｂｓｃ２６４および２９８は、親細胞に対し高レベルの結合性を有しているため、種交差反応性の識別が困難になっていた。

データは、シフトした細胞のパーセントを表す。

実施例１６
内在化検定法
安定してヒトαＶβ６を発現するＫ５６２細胞株を用いて、抗体の内在化を試験した。精製抗体の内在化を、この検定法では内在化されていない市販のαＶβ６抗体と比較した。

結果を表１９に要約する。

実施例１７
高分解能ビアコア(BIACORE)解析
可溶性αＶβ６タンパク質を用いてＣＭ５チップに固定した抗体と結合させる高分解能ビアコア(Biacore)解析を、５種のαＶβ６抗体について実施することにより可溶性抗原に対するそれらの親和力を評価した。

ビアコア解析を次の要領で実施した。２つのＣＭ５ビアコアチップ全面にわたる高密度ヤギαヒトＩｇＧ抗体表面を、常用のアミンカップリング法を用いて調製した。１００μｇ／ｍｌのＢＳＡ、１ｍＭのＭｇＣｌ_２および１ｍＭのＣａＣｌ_２を含む脱気したＨＢＳ−Ｐ泳動用緩衝液で各ｍＡｂを約１μｇ／ｍＬの濃度に希釈した。より正確には、ｍＡｂｓｃ１３３を０.９８μｇ／ｍＬに希釈し、ｍＡｂｓｃ１８８を０.９６μｇ／ｍＬに希釈し、ｍＡｂｓｃ２６４を０.９４μｇ／ｍＬに希釈し、ｍＡｂｓｃ２５４.２を０.８７μｇ／ｍＬに希釈し、ｍＡｂｓｃ２９８を１.６μｇ／ｍＬに希釈した。次いで、上記で列挙した濃度、流速１０μＬ／分で別々のフローセルで各ｍＡｂを捕捉することにより、捕捉レベルプロトコルを各ｍＡｂについて展開した。ｍＡｂｓｃ１３３、ｓｃ２９８およびｓｃ２５４.２を３０秒間捕捉し、ｍＡｂｓｃ１８８およびｓｃ２６４を１分間捕捉した。５０μＬ／分での４分洗浄工程の後、ｍＡｂベースラインを安定させた。

可溶性αＶβ６を、ｍＡｂｓｃ１３３、ｓｃ１８８、ｓｃ２６４およびｓｃ２９８については１１６〜３.６ｎＭ、およびｍＡｂｓｃ２５４.２については２３３〜３.６ｎＭの濃度範囲で、各濃度範囲について２倍系列希釈により４分間注入した。１０分間解離させた後、各抗原を注入した。上記のＨＢＳ−Ｐ泳動用緩衝液中で抗原試料を調製した。二重のリファレンス(基準)に対応させるため散在させて数回のｍＡｂ捕捉／緩衝液注入サイクルにより全試料をトリプリケイトで無作為に注入した。高密度ヤギαマウス抗体表面を、流速１００μＬ／分での各サイクル後、１４６ｍＭのリン酸(ｐＨ１.５)の１回１８秒パルスにより再生した。全抗原注入サイクルについて５０μＬ／分の流速を使用した。

次いで、ＣＬＡＭＰを用いて質量輸送に関する限界点を含ませた１：１相互作用モデルに、データを当てはめた。得られた結合定数を表２０に列挙する。親和力の高いものから低いものへとｍＡｂを列挙する。

実施例１８
ＦＡＣＳを用いた結合親和力分析
また、ビアコア(Biacore)に代わる方法として、ＦＡＣＳ解析法を用いることにより、ヒトαＶβ６抗原を安定して発現するＫ５６２細胞に対する抗体の一つの結合親和力を評価した。抗原の量を力価測定することにより、結合曲線を作成し、抗原への結合親和力を評価した。

αＶβ６を発現するＫ５６２細胞を、約６００万細胞／ｍＬの濃度で１ｍＭのＭｇＣｌ_２および１ｍＭのＣａＣｌ_２を含む濾過済のＨＢＳ緩衝液に再懸濁した。細胞を氷上で保存した。精製ｍＡｂｓｃ１８８を、９６ウェルプレートにおける横１１ウェルでＨＢＳ中１：２の倍率により系列希釈した。各列における１２番目のウェルは緩衝液のみを含んでいた。力価測定をトリプリケイトで実施した。追加のＨＢＳおよび細胞を、最終容量が３００μＬ／ウェルとなり、各ウェルが約１２００００細胞を含むように各ウェルに加えた。ｍＡｂｓｃ１８８に関する最終分子濃度範囲は、４.９〜０.０１９ｎＭであった。プレートを、４℃で５時間プレート振とう器中に置いた後、プレートを回転させ、ＨＢＳで３回洗浄し、２００μＬの１３１ｎＭのＣｙ５ヤギα−ヒトポリクローナル抗体(Jackson Laboratories、＃１０９−１７５−００８)を各ウェルに加えた。次いで、プレートを４℃で４０分間振とうさせた後、回転させ、再度３回ＨＢＳで洗浄した。ＦＡＣＳCalibur装置を用いて各ｍＡｂ濃度についての２００００「事象」の幾何平均蛍光(ＧＭＦ)を記録し、対応するトリプリケイト力価測定点を平均化することにより、各ｍＡｂ濃度に関して１つのＧＭＦ点を得た。Scientist ソフトウェアにより分子ｍＡｂ濃度の関数として平均化したＧＭＦのプロットを、下記等式を用いて非線形的に当てはめた：

上記等式において、Ｆ＝幾何平均蛍光、Ｌ_Ｔ＝総分子ｍＡｂ濃度、Ｐ'＝結合ｍＡｂに対する任意蛍光単位に関する比例定数、Ｍ＝モル濃度での細胞濃度、ｎ＝１細胞あたりの受容体数、Ｂ＝バックグラウンドシグナル、およびＫ_Ｄ＝平衡解離定数。ｍＡｂｓｃ１８８については、Ｋ_Ｄに関する推定値をＰ'として得、ｎ、ＢおよびＫ_Ｄを、非線形分析で自由に変動させる。

得られたプロットをその非線形適合点(赤線)と共に図２に示す。表２１は、ｍＡｂｓｃ１８８について得られたＫ_Ｄを、適合点の９５％信頼区間と一緒に示す。ｍＡｂｓｃ１８８に関するこれらの結果は、１タイプの受容体への結合を示している。

ＦＡＣＳにより測定されたｓｃ１８８についての結合親和力は、ビアコア(実施例１７)による測定結果よりも著しく堅固であった。ｓｃ１８８に関するＫ_Ｄ値の差異については、少なくとも２つの可能な説明がある。第一の理由は、２種の検定法が測定用に異なる形態の抗原を使用したこと−ビアコアは可溶性抗原を使用し、ＦＡＣＳ分析は細胞結合形態の抗原を使用したことである。第二の理由は、試験された抗体が、抗原の細胞結合形態に対して産生されたものであり、それらが細胞結合抗原に結合するときほど、可溶性抗原には高い親和力では結合し得ないことである。

実施例１９
ＣＤＣ検定法
上記実施例記載の精製抗体は、ＩｇＧ１イソ型に属し、エフェクター機能を有し得る。これらの抗体が補体依存的細胞傷害性(ＣＤＣ)を伝達する能力を測定するため、αＶβ６を安定して発現する２９３細胞(２９３−１０Ａ１１)および親細胞(２９３Ｆ)を用いて以下の検定法を実施した。

細胞をカルセイン染色するため、ＨＴ２９、２９３−１０Ａ１１および２９３Ｆ細胞のそれぞれ約２５Ｘ１０ｅ６のアリコートを、血清不含有ＲＰＭＩ培地３ｍｌに個々に再懸濁した。次いで、１ｍＭのカルセイン４５μＬを、細胞の各３ｍｌ試料に加え、試料を３７℃で４５分間インキュベーションした。細胞を１２００ｘＲＰＭで３分間遠心分離にかけ、上清を廃棄し、細胞を各細胞株の培養培地に再懸濁した。遠心分離工程を反復し、細胞を再懸濁して、５０μＬ培地中約１０００００細胞の最終濃度とした。

各抗体の系列１：２希釈物を、ｖ底９６ウェルプレートにおいて、容量５０μＬ中２０μｇ／ｍｌ〜０.６２５μｇ／ｍｌの濃度範囲で調製した。次いで、上記要領で調製した細胞１０００００個を、５０μＬの容量で抗体含有プレートに加え、生じた混合物を氷上で２時間インキュベーションした。インキュベーション後、細胞を沈降させ、上清を廃棄した。細胞を、１０％ヒト血清(ＡＢＩドナー＃２７)を含むそれらの各培地１００μＬに再懸濁し、３７℃で３０分間インキュベーションした。次いで、細胞を遠心分離にかけ、上清８０μＬをＦＭＡＴ管に移し入れた。プレートをTecanリーダーで４８５ｎｍの励起波長および５３０ｎｍの放射波長を用いて読み取った。

結果を図３Ａ〜３Ｅに要約しており、試験された各精製抗体が、αＶβ６インテグリンを安定して発現する２９３細胞においてＣＤＣを伝達し得ることが証明される。

実施例２０
位置指定突然変異導入
免疫化(実施例１)から調製された抗体の一つ(ｓｃ２６４)は、ＴＧＦβＬＡＰ結合阻害検定法(実施例４参照)においてインビトロで強い機能的遮断活性を示したが、非αＶβ６発現細胞株との交差反応性結合を呈した(実施例１５参照)。この抗体、ｓｃ２６４は、ＣＤＲ３領域にＲＧＤ配列を有しており、これが交差反応性結合に関与すると推測される。したがって、位置指定突然変異導入を用いて、ＲＧＤにおけるグリシン残基をアラニンにより置換した(ｓｃ２６４ＲＡＤ)。

第二抗体(ｓｃ１８８)は、ＦＲ３領域内にグリコシル化部位を有する。この部位は、ＮＬＴからＫＬＴへの置換による位置指定突然変異導入を通して排除された(ｓｃ１８８ＳＤＭ)。次いで、これら２種の抗体の突然変異体を、実施例７および８記載の要領で発現させ、精製し、精製抗体を以下の実施例に記載した要領で分析した。

実施例２１
突然変異体抗体の交差反応性結合を試験する結合検定法
実施例１５で観察された交差反応性結合がｓｃ２６４の位置指定突然変異導入により低減化されるか否かを試験するため、結合検定法を実施した。抗体の結合を２９３Ｔおよび２９３Ｆ細胞株で分析することにより、ＲＧＤ部位をｓｃ２６４から除去することによりもとの抗体と比べて結合性が減少するか否かを試験した。

２９３Ｔおよび２９３Ｆ細胞を収集後回転により沈降させ、１％ＢＳＡおよび１ｍＭのＣａＣｌ_２および１ｍＭのＭｇＣｌ_２を含むＨＢＳＳ(洗浄緩衝液)に再懸濁することにより、少なくとも１５００００の細胞を各反応で使用した。細胞をＶ底９６ウェルプレート(Sarstedt)における反応間に分け、プレート中の細胞を３分間１５００ｒｐｍで沈降させた後、ＨＢＳＳ上清を除去した。一次抗体を５０μＬの容量において表１９に示した濃度で加え、細胞を再懸濁した後、氷上で６０分間インキュベーションした。インキュベーション後、細胞を３分間１５００ｒｐｍでの遠心分離により沈降させ、１００μＬの洗浄緩衝液に再懸濁し、次いで再び沈降させた。次いで、細胞を、１０μｇ／ｍｌの７ＡＡＤと共に２μｇ／ｍｌで適切な二次抗体に再懸濁し、氷上で７分間染色した後、１５０μＬの洗浄緩衝液を加え、細胞を３分間１５００ｒｐｍで沈降させ、次いで１００μＬの１％ＢＳＡ含有ＨＢＳＳに再懸濁した。ＨＴＳ連結装置を取り付けたＦＡＣＳ機で試料を読み取り、Cell Quest Pro ソフトウェアを用いてデータを解析した。結果を表２２に要約しており、データは任意単位での幾何平均シフト値として表わされている。これらのデータは、試験した全濃度で、ｓｃ２６４ＲＡＤが、もとのｍＡｂｓｃ２６４よりも親２９３Ｔ細胞への結合性が著しく低かったことを立証している。

実施例２２
突然変異抗体の効力分析
ＨＴ−２９細胞のＴＧＦβＬＡＰ介在的接着を阻害するのに必要とされる突然変異体αＶβ６抗体の濃度(ＩＣ_５０)を測定するため、次の検定法を実施した。

Nunc MaxiSorp(Nunc)プレートを、一晩５０μＬの１０μｇ／ｍｌのＴＧＦベータ１ＬＡＰ(ＴＧＦβＬＡＰ)でコーティングし、検定前に１時間３％ＢＳＡ／ＰＢＳで予め遮断した。次いで、最適密度まで増殖させたＨＴ２９細胞を、沈降させ、ＨＢＢＳ(１％ＢＳＡ含有および１ｍＭのＣａ^２＋および１ｍＭのＭｎ^２＋含有)中で２回洗浄した後、細胞を１ウェル当たり３００００細胞でＨＢＳＳに再懸濁した。コーティング液をプレートから除去し、次いで室温で１時間、１００μＬの３％ＢＳＡで遮断した後、ＰＢＳで２回洗浄した。

抗体力価測定液を、３０μＬの最終容量中１：４系列希釈液および２度にわたって最終濃度で調製した。対照ウェルにおけるＰＢＳ濃度が最希釈抗体ウェルにおけるＰＢＳ濃度と確実にマッチするように注意した。３０μＬの細胞を各ウェルに加え、細胞を、４℃で４０分間、Ｖ底プレートにおいて抗体の存在下でインキュベーションした。細胞抗体混合物を、コーティングプレートに移し入れ、プレートを３７℃で４０分間インキュベーションした。次いで、コーティングプレート上の細胞を、温ＨＢＳＳ中で４回洗浄した後、細胞を−８０℃で１５分間冷凍した。細胞を室温で解凍し、次いで１００μＬのCyQuant 染料／溶解緩衝液(Molecular Probes)を製造業者の使用説明書に従って各ウェルに加えた。蛍光を４８５ｎｍの励起波長および５３０ｎｍの放射波長で読み取った。１２抗体についての結果を表２３に要約しており、突然変異抗体のＩＣ_５０が、それぞれのもとの抗体の場合より一貫して低いことを立証している。

実施例２３
α４β１インテグリンとの突然変異抗体の交差反応性
突然変異抗体が、α４β１インテグリンではなく、αＶβ６インテグリンに対してのみ機能的であることを立証するため、検定を実施することにより、フィブロネクチンのＣＳ−１ペプチドへのＪ６.７７細胞の接着に対する抗体の阻害能を試験した。下記記載の要領で検定法を実施した。

検定プレートを、フィブロネクチンのＣＳ−１ペプチドでコーティングした。検定プレートを、検定前に１時間３％ＢＳＡ／ＰＢＳで予め遮断した。Ｊ６.７７細胞を密集成長させ、次いで培養フラスコから取り出し、沈降させ、ＨＢＳＳで３回洗浄した。次いで、細胞を１ウェル当たり３００００細胞の濃度でＨＢＳＳに再懸濁した。フィブロネクチンフラグメントを含むコーティング液を除去し、プレートを室温で１時間３％ＢＳＡ１００μＬにより遮断した。コーティングしたプレートをＨＢＳＳにより３回洗浄した。抗体力価測定液を、３０μＬの最終容量での１：４系列希釈液および２回にわたって最終濃度で調製した。再懸濁した細胞を、Ｖ底プレートにおける力価測定抗体を含むウェルに添加し、細胞および抗体を４℃で４０分間共インキュベーションした。次いで、細胞抗体混合物を、コーティングプレートに移し入れ、その後３７℃で４０分間インキュベーションした。次に、コーティングプレート上の細胞を、温ＨＢＳＳ中で４回洗浄し、次いで、プレート中の細胞を−８０℃で１５分間冷凍した。細胞を室温で解凍し、次いで１００μＬのCyQuant 染料／溶解緩衝液(Molecular Probes)を製造業者の使用説明書に従って各ウェルに加えた。蛍光を４８５ｎｍの励起波長および５３０ｎｍの放射波長で読み取った。

２突然変異抗体およびそれらの非突然変異対応抗体に関する結果を表２４に要約する。市販されているβ１インテグリン特異抗体を、本検定法での陽性対照として用いたところ、９５％の接着阻害を呈した。市販されているαＶβ６特異抗体を、α４β１への接着に関する本検定法での陰性対照として使用した。全抗体を５μｇ／ｍｌで使用したところ、試験抗体の中でα４β１への接着を遮断し得たものは無かった。

実施例２４
α５β１インテグリンとの突然変異抗体の交差反応性
突然変異抗体が、α５β１インテグリンではなく、αＶβ６インテグリンに対してのみ機能的であることを立証するため、検定を実施することにより、フィブロネクチンへのＫ５６２細胞の接着に対する抗体の阻害能を試験した。上記実施例１４記載の要領で本検定法を実施した。結果を表２５に要約しており、試験抗体の中でα５β１への接着を遮断し得るものは無かったことを立証している。

実施例２５
マウスおよびカニクイザルαＶβ６インテグリンとの突然変異抗体の交差反応性
突然変異体αＶβ６特異抗体がマウスαＶβ６またはカニクイザルαＶβ６との交差反応性を呈するか否かを測定するため、次の検定法を実施した。

Ｋ５６２親細胞、またはカニクイザルまたはマウスαＶβ６を発現するＫ５６２細胞を収集後回転により沈降させ、１％ＢＳＡおよび１ｍＭのＣａＣｌ_２および１ｍＭのＭｇＣｌ_２を含むＨＢＳＳ(洗浄緩衝液)に再懸濁することにより、少なくとも１５００００の細胞を各反応で使用した。細胞をＶ底９６ウェルプレート(Sarstedt)における反応間に分け、プレート中の細胞を３分間１５００ｒｐｍで沈降させた後、ＨＢＳＳ上清を除去した。一次抗体を５０μＬの容量で加え、細胞を再懸濁した後、氷上で６０分間インキュベーションした。インキュベーション後、細胞を３分間１５００ｒｐｍでの遠心分離により沈降させ、１００μＬの洗浄緩衝液に再懸濁し、次いで再び沈降させた。次いで、細胞を、１０μｇ／ｍｌの７ＡＡＤと共に２μｇ／ｍｌで適切な二次抗体に再懸濁し、氷上で７分間染色した後、１５０μＬの洗浄緩衝液を加え、細胞を３分間１５００ｒｐｍで沈降させ、次いで１００μＬの１％ＢＳＡ含有ＨＢＳＳに再懸濁した。ＨＴＳ連結装置を取り付けたＦＡＣＳ機で試料を読み取り、Cell Quest Pro ソフトウェアを用いてデータを解析した。結果を表２６に要約しており、データは任意単位での幾何平均シフト値として表わされている。これらのデータは、試験した濃度で、ｓｃ２６４ＲＡＤおよびｓｃ１８８ＳＤＭが、マウスおよびカニクイザルαＶβ６との交差反応性を呈することを立証している。

実施例２６
内在化検定法
ヒトαＶβ６を安定して発現するＫ５６２細胞株を用いて、突然変異抗体の内在化を試験した。実施例１５記載の要領で本検定法を実施した。精製抗体の内在化を、この検定法では内在化されていない市販のαＶβ６抗体と比較した。

結果を表２７に要約しており、ｓｃ２６４ＲＡＤ突然変異抗体の内在化が、非突然変異ｓｃ２６４の場合より著しく低いことを立証している。

実施例２７
ＦＡＣＳを用いたｓｃ２６４ＲＡＤの結合親和力分析
ｓｃ２６４ＲＡＤ抗体のαＶβ６への結合親和力を、実施例１８記載の要領で実施した。この検定法の結果を表２８に要約しており、ｓｃ２６４ＲＡＤ抗体が５０ｐＭより低い親和力を有することを立証している。

実施例２８
ｓｃ２６４ＲＡＤとｓｃ２６４ＲＡＤ／ＡＤＹの活性の比較

ｓｃ２６４ＲＡＤ抗体および２６４ＲＡＤの生殖系列(ＧＬ)バージョン(軽鎖に突然変異Ａ８４Ｄを含む)、２６４ＲＡＤ／ＡＤＹの活性を、デトロイト(Detroit)−５６２接着検定法で比較した。
プレートを一晩４℃で０.５μｇ／ｍｌのＧＳＴ−ＴＧＦ−ｂＬＡＰ融合タンパク質によりコーティングし、翌朝、洗浄し、次いで３％ＢＳＡ／ＰＢＳにより１時間遮断した。次いで、Detroit-562細胞(１ウェル当たり２５０００細胞)を、２ｍＭのＭｇＣｌ_２を含むＨＢＳＳ中３７℃で４５分間プレートに接着させた。４５分後、プレートをＰＢＳ中で３回洗浄し、次いでエタノールに固定した。Hoeschtで染色することにより、細胞を視覚化し、Cellomics Arrayscan IIにおいて１ウェル当たりに結合した細胞数を数えることにより定量した。図５に示したデータは、ｓｃ２６４ＲＡＤおよびｓｃ２６４ＲＡＤ／ＡＤＹが両方とも類似した活性を有すること、およびαＶβ６機能の遮断能は修飾抗体でも維持されていることを示している。

実施例２９
成長試験
抗体２６４ＲＡＤ、１３３および１８８ＳＤＭがインビボでａｖｂ６機能を遮断することを立証するため、αＶβ６陽性腫瘍異種移植片の成長に対する阻害能についてそれぞれ試験した。かかる一モデルは、Detroit−562鼻咽頭(nasophayngeal)細胞株であり、これはαＶβ６を発現し、また皮下腫瘍異種移植片として成長する。

Detroit 562細胞を、EarleのＢＳＳおよび２ｍＭのＬ−Ｇｌｕ＋１.０ｍＭのピルビン酸ナトリウム、０.１ｍＭのＮＥＡＡ＋１.５ｇ／Ｌ重炭酸ナトリウム＋１０％ＦＢＳを含むＥＭＥＭ中で培養した。細胞を採取し、５０％ＰＢＳ＋５０％マトリゲルに再懸濁した。次いで、懸濁液を、右脇腹内に０.１ｍｌの容量でマウス１匹あたり５ｘ１０^−６の濃度で内植した。動物は６〜８週齢のＮＣＲ雌ヌードマウスであった。腫瘍が０.１ｃｍ^３に達したとき、投薬を開始し、試験の持続期間中週１回２０ｍｇ／ｋｇの用量で投与した。３抗体は全て、腫瘍の成長を阻害した(図４参照)。２６４ＲＡＤが最も有効であり、次いで１３３および１８８であった。このデータは、抗体２６４ＲＡＤ、１３３および１８８がインビボで活性を示し、成長に関するαＶβ６シグナリングに依存的な腫瘍の成長を抑制し得ることを立証している。

参考文献の引用
特許、特許出願、研究論文、教科書などを含む本明細書で引用している全参考文献、およびそこに引用されている参考文献については、それらが既存していない範囲まで、全ての目的に関してそのまま出典明示で援用する。

均等内容事項
上記の明細書は、当業者が本発明を実践するのに十分な内容であると考えられる。上述の記載内容および実施例は、本発明の好ましい態様を詳述しており、本発明者らが最善であるとみなす方法を記載している。しかしながら、いかに本明細書で詳述されておろうと、本発明は多くの方法で実践され得るものとし、本発明は添付の請求の範囲およびその均等内容事項に従って解釈されるべきである。

Claims

αＶβ６に特異的に結合し、αＶβ６へのリガンドの結合を阻止する標的結合剤(targeted binding agent)。
標的結合剤が、ＨＴ２９細胞のＴＧＦβ−ＬＡＰ介在的接着を９９％より高い率で阻害する、請求項１記載の標的結合剤。
標的結合剤が、０.０７０μｇ／ｍｌ未満のＩＣ_５０でＨＴ２９細胞のＴＧＦβ−ＬＡＰ介在的接着を阻害する、請求項１記載の標的結合剤。
標的結合剤が、３５ナノモル(ｎＭ)未満のＫ_ｄでαＶβ６と結合する、請求項１記載の標的結合剤。
標的結合剤が、２５ナノモル(ｎＭ)未満のＫ_ｄでαＶβ６と結合する、請求項１記載の標的結合剤。
標的結合剤が、１０ナノモル(ｎＭ)未満のＫ_ｄでαＶβ６と結合する、請求項１記載の標的結合剤。
標的結合剤が、６０ピコモル(ｐＭ)未満のＫ_ｄでαＶβ６と結合する、請求項１記載の標的結合剤。
標的結合剤が、モノクローナル抗体である、請求項１記載の標的結合剤。
標的結合剤が、完全ヒトモノクローナル抗体である、請求項８記載の標的結合剤。
標的結合剤が、ｓｃ２６４ＲＡＤ、ｓｃ２６４ＲＡＤ／ＡＤＹ、ｓｃ１８８ＳＤＭ、ｓｃ１３３、ｓｃ１３３ＴＭＴ、ｓｃ１３３ＷＤＳ、ｓｃ１３３ＴＭＴ／ＷＤＳ、ｓｃ１８８、ｓｃ２５４、ｓｃ２６４またはｓｃ２９８である、請求項９記載の標的結合剤。
結合剤が、少なくとも配列番号１４のアミノ酸９８〜１０２を有するＶＨＣＤＲ３を含む、請求項１１記載の標的結合剤。
結合剤が、少なくとも配列番号２２のアミノ酸９９〜１１３を有するＶＨＣＤＲ３を含む、請求項１記載の標的結合剤。
結合剤が、少なくとも配列番号２６のアミノ酸９９〜１１７を有するＶＨＣＤＲ３を含む、請求項１記載の標的結合剤。
結合剤が、少なくとも配列番号３０のアミノ酸９９〜１１４を有するＶＨＣＤＲ３を含む、請求項１記載の標的結合剤。
結合剤が、少なくとも配列番号３８のアミノ酸９７〜１１３を有するＶＨＣＤＲ３を含む、請求項１記載の標的結合剤。
結合剤が、配列番号１４の配列を有する重鎖ポリペプチドを含む、請求項１記載の標的結合剤。
結合剤が、配列番号２２の配列を有する重鎖ポリペプチドを含む、請求項１記載の標的結合剤。
結合剤が、配列番号２６の配列を有する重鎖ポリペプチドを含む、請求項１記載の標的結合剤。
結合剤が、配列番号３０の配列を有する重鎖ポリペプチドを含む、請求項１記載の標的結合剤。
結合剤が、配列番号３８の配列を有する重鎖ポリペプチドを含む、請求項１記載の標的結合剤。
結合剤が、配列番号７１の配列を有する重鎖ポリペプチドを含む、請求項１記載の標的結合剤。
結合剤が、配列番号７５の配列を有する重鎖ポリペプチドを含む、請求項１記載の標的結合剤。
αＶβ６と結合する単離ヒトモノクローナル抗体であって、
ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３配列を含む重鎖可変領域および
ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３配列を含む軽鎖可変領域
を含み、
重鎖可変領域ＣＤＲ３配列が、配列番号１４、配列番号２２、配列番号２６、配列番号３０または配列番号３８、配列番号７１、配列番号７６、配列番号７９およびその同類配列修飾形から成る群から選択されるアミノ酸配列を含み、
軽鎖可変領域ＣＤＲ３配列が、配列番号：配列番号１６、配列番号２４、配列番号２８、配列番号３２または配列番号４０、配列番号８５、配列番号９３およびその同類配列修飾形から成る群から選択されるアミノ酸配列を含む
抗体。
医薬上許容される担体と配合された、請求項１記載の標的結合剤。
標的結合剤が、抗αＶβ６抗体の完全ヒト単離結合性フラグメントである、請求項１記載の標的結合剤。
請求項１記載の標的結合剤をコード化する核酸分子。
請求項２６記載の核酸分子を含むベクター。
請求項２７記載のベクターを含む宿主細胞。
動物における悪性腫瘍の処置方法であって、処置を必要とする動物に、請求項１記載の標的結合剤の治療有効量を投与することを含む方法。
動物がヒトである、請求項２９記載の方法。
標的結合剤が、モノクローナル抗体ｓｃ２６４ＲＡＤ、ｓｃ２６４ＲＡＤ／ＡＤＹ、ｓｃ１８８ＳＤＭ、ｓｃ１３３、ｓｃ１３３ＴＭＴ、ｓｃ１３３ＷＤＳ、ｓｃ１３３ＴＭＴ／ＷＤＳ、ｓｃ１８８、ｓｃ２５４、ｓｃ２６４またはｓｃ２９８である、請求項２９記載の方法。
悪性腫瘍が、メラノーマ、小細胞肺癌、非小細胞肺癌、神経膠腫、肝細胞(肝臓)癌、甲状腺腫瘍、胃(腹部)癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、膀胱癌、肺癌、神経膠芽腫、子宮体癌、腎臓癌、結腸癌、膵臓癌、食道癌、頭部および頸部癌、中皮腫、肉腫、胆管(胆管癌)、小腸腺癌、小児悪性疾患および類表皮癌から成る群から選択される、請求項２９記載の方法。
処置を必要とする動物に、請求項１記載の標的結合剤の治療有効量を投与することを含む、炎症の処置方法。
動物がヒトである、請求項３３記載の方法。
標的結合剤が、完全ヒトモノクローナル抗体である、請求項３３記載の方法。
標的結合剤が、αＶβ６に結合する、請求項３３記載の方法。
αＶβ６を請求項１記載の標的結合剤と接触させる、αＶβ６とそのリガンド間の相互作用の阻害方法。