JPH0532033B2 - - Google Patents
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Landscapes
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、新リンホカインに特異的を示すモ
ノクローナル抗体とその製法に関する。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to a monoclonal antibody specific for a new lymphokine and a method for producing the same.
モノクローナル抗体については、シーザー ミ
ルスタイン(Cesar Milstein)が「サイエテイフ
イツク アメリカン(Scientfic American)」
Vol.243、No.4、56〜64頁(1980年)で詳細に解
説している。 For monoclonal antibodies, Cesar Milstein, Scientific American
Vol. 243, No. 4, pp. 56-64 (1980) provides a detailed explanation.
リンホカイン、とりわけ悪性腫瘍に対して障害
活性を有するリンホカインについては、ヒトを含
む動物由来のリンホトキシンや、ヒト以外の動物
由来のツモア ネクロシス フアクター(以下、
「TNF」と呼ぶ)などが知られている。 Lymphokines, especially lymphokines that have damaging activity against malignant tumors, include lymphotoxin derived from animals including humans, and tumoa necrosis factor (hereinafter referred to as
known as ``TNF'').
リンホトキシンは、青木隆一ほか共著「リンホ
カイン」新免疫学叢書6、87〜105頁(1979年)
医学書院、ブルーム ビー アール(Bloom B.
R.)とグレイド ピー アール(Glade P.R.)
との共編、「イン ビトロ メソツズ イン セ
ルメデイ エイテツド イムニテイ(In Vitro
Methods in Cell−Mediated Immunity」アカ
デミツク プレス(Academic Press)(1971
年)、およびセルラー イムノロジー(Cellular
Immunology)Vol.38、388〜402頁(1978年)な
どに記載され、TNFは、カーズウエル イー
エイ(Carswell E.A.)など、プロシーデイング
ズ オブ ザ ナシヨナル アカデミー オブ
サイエンス オブ ザ ユー エス エイ
(Proceeding of the National Academy of
Science of the U.S.A.)Vol.72、No.9、3666〜
3670頁(1975年)およびイー ピツク(E.Pick)
編ツモア ネクロシス フアクター イソ リン
ホカインズ(Tumor Necrosis Factor in
Lymphokines)Vol.、235〜272頁、アカデミ
ツク プレス(Academic Press)(1981年)な
どに記載されている。 Lymphotoxins are co-authored by Ryuichi Aoki et al., “Lymphokines,” New Immunology Series 6, pp. 87-105 (1979)
Igaku Shoin, Bloom B.R.
R.) and Glade PR
Co-edited with ``In Vitro Methods in Cell Medication and Immunity''
Methods in Cell-Mediated Immunity” Academic Press (1971)
), and Cellular Immunology (Cellular
Immunology) Vol. 38, pp. 388-402 (1978), and TNF is
Carswell EA, etc., Proceedings of the National Academy of
Proceeding of the National Academy of Science
Science of the USA) Vol.72, No.9, 3666~
3670 pages (1975) and E.Pick
Tumor Necrosis Factor in
Lymphokines) Vol., pp. 235-272, Academic Press (1981), etc.
また、最近、大西治夫らが特開昭58−146293号
公報でリンホカインの一種である抗腫瘍性糖蛋白
質を明らかにしている。 Furthermore, recently, Haruo Onishi et al. have disclosed an antitumor glycoprotein, which is a type of lymphokine, in Japanese Patent Application Laid-Open No. 146293/1983.
本発明者らは、リンホカインについて多年研究
してきた。その結果、従来知られているこれらの
リンホカインは、全く違つた文献末記載の理化学
的性質を有する新リンホカインの存在を認め、
そのモノクローナル抗体とその製法を確立して、
本発明を完成した。 The inventors have been studying lymphokines for many years. As a result, these previously known lymphokines were found to have completely different physicochemical properties described at the end of the literature, and the existence of new lymphokines was discovered.
Establishing the monoclonal antibody and its production method,
The invention has been completed.
すなわち、本発明は、理化学的性質が、
分子量
20000±2000
等電点
pI=6.2±0.3
易動度
Disc−PAGEで、Rf=0.29±0.02
紫外線吸収スペクトル
280nm付近に最大吸収
溶剤に対する溶解性
水、生理食塩水またはリン酸塩緩衝液に可溶
エチルエーテル、酢酸エチルまたはクロロホル
ムに難溶乃至不溶
呈色反応
ローリー法またはミクロビユーレツト法で蛋
白質陽性反応を示し、フエノール硫酸法または
アントロン硫酸法で糖質陽性反応を示す
作用
L929細胞に対して細胞障害活性を示し、KB
細胞に対する細胞増殖抑制活性およびインター
フエロン活性を実質的に示さず
水溶液での活性安定性
PH7.2で30分間保持する条件により60℃まで
安定、4℃で16時間保持する条件によりPH40乃
至11.0の範囲で安定
−10℃での凍結貯蔵で1ケ月以上安定
である新リンホカイン(本明細書を通じて、本
物質を新リンホカインと言う。)に対して免疫
学的中和活性を示すモノクローナル抗体とその製
法に関する。 That is, the present invention has the following physical and chemical properties: Molecular weight 20000±2000 Isoelectric point pI=6.2±0.3 Mobility Rf=0.29±0.02 in Disc-PAGE Ultraviolet absorption spectrum Maximum absorption around 280 nm Solubility in solvent Water; Soluble in physiological saline or phosphate buffer Slightly soluble or insoluble in ethyl ether, ethyl acetate or chloroform Color reaction Shows a positive protein reaction by the Lowry method or microbiuret method, and shows a positive reaction for protein by the phenol sulfuric acid method or anthrone sulfuric acid method. Effect: Shows cytotoxic activity against L 929 cells, KB
Substantially exhibits no cell proliferation inhibitory activity or interferon activity against cells. Activity stability in aqueous solution: Stable up to 60℃ when kept at PH7.2 for 30 minutes; PH40 to 11.0 when kept at 4℃ for 16 hours. A monoclonal antibody that exhibits immunological neutralizing activity against a new lymphokine (hereinafter referred to as "new lymphokine" throughout this specification) that is stable for more than one month when stored frozen at -10°C, and its production method Regarding.
まず、新リンホカインの製造方法について述
べる。 First, the method for producing the new lymphokine will be described.
新リンホカインの製法は、例えば、新リンホ
カイン産生能を有するヒト由来の細胞、例え
ば、白血球、リンパ球、培養株化された細胞など
に誘導剤を作用させて生成せしめればよい。 The new lymphokine may be produced by, for example, treating human-derived cells capable of producing the new lymphokine, such as leukocytes, lymphocytes, cultured cells, etc., with an inducing agent.
ヒト由来の白血球、リンパ球、ヒトから採取し
た血液を分離して調製すればよい。 It may be prepared by separating human-derived white blood cells, lymphocytes, and blood collected from humans.
培養株化されたヒト由来の細胞、常法に従つ
て、生体外(in vitro)で増殖させた細胞が使用
できる。 Cultured human-derived cells and cells grown in vitro according to conventional methods can be used.
しかしながら、本発明の場合には、培養株化さ
れた細胞の増殖に際し、ヒト以外の温血動物体内
に直接移植するか、または拡散チヤンバー内へ接
種して、その温血動物の体液の供給を受けながら
増殖させる方が望ましい。 However, in the case of the present invention, when growing cells in culture, they are directly transplanted into the body of a warm-blooded animal other than humans, or inoculated into a diffusion chamber, and the supply of body fluids of the warm-blooded animal is reduced. It is preferable to multiply while receiving.
即ち、生体外(in vitro)で増殖させる場合と
は違つて、高価な血清などを含む栄養培地が不
要、または大幅に節約できるばかりではなく、細
胞増殖中の維持管理も極めて容易であり、その
上、得られた細胞から誘導生成される新リンホカ
イン活性が高い特徴を有している。 In other words, unlike in vitro cell proliferation, not only is there no need for, or can significantly save, nutrient media containing expensive serum, etc., but maintenance and management during cell proliferation is also extremely easy. Moreover, the new lymphokine activity produced by induction from the obtained cells is high.
ヒト以外の温血動物を利用する方法は、培養株
化されたヒト由来の細胞を、ヒト以外の温血動物
体内に移植し、あるいは、その動物の体液の供給
を受けることのできる拡散チヤンバーを動物体内
に埋設して通常の飼育をすれば、温血動物体から
供給される栄養物を含有する体液を利用してその
細胞が容易に増殖しうるのである。 Methods using warm-blooded animals other than humans include transplanting cultured human-derived cells into the body of a warm-blooded animal other than humans, or creating a diffusion chamber that can receive the animal's body fluids. If the cells are implanted inside an animal and reared normally, the cells can easily proliferate using the nutrient-containing body fluids provided by the warm-blooded animal.
更に、生体外(in vitro)で増殖させる場合と
比較して、この細胞の増殖が安定であること、そ
の増殖速度が大きいこと、得られる細胞量が多い
こと、更には、細胞当りの新リンホカインの収
量が著しく増加することも大きな特徴である。 Furthermore, compared to in vitro proliferation, the proliferation of these cells is stable, the proliferation rate is high, the amount of cells obtained is large, and the new lymphokine per cell is Another major feature is that the yield increases significantly.
本発明で使用する培養株化されたヒト由来の細
胞は、ヒト以外の温血動物体内に移植して容易に
増殖し得て、しかも新リンホカイン産生能を有
する細胞であればよく、例えば、「蛋白質核酸酵
素 Vol.20、No.6」616〜643頁(1975年)に記載
されているヒト由来の各種株化細胞を用いること
ができる。とりわけ、「ジヤーナル オブ クリ
ニカル マイクロバイオロジー(Journal of
Clinical Microbiology)Vol.1」116〜117頁
(1975年)に記載されているNamalwa細胞、ア
イ ミヨシ(I.Miyoshi)著「ネイチヤ
(Nature)Vol.267」843〜844頁(1977年)に記
載されているBALL−1細胞、TALL−1細胞、
NALL−1細胞、「ザ ジヤーナル オブ イロ
ノロジー(The Journal of Immunology)
Vol.113」1334〜1345頁(1974年)記載のM−
7002細胞、B−7101細胞、「組織培養」第6巻、
第13号、527〜546頁(1980年)に記載されている
JBL細胞、EBV−Sa細胞、EBV−Wa細胞、
EBA−HO細胞、MOLT−3細胞や、その他
BALM2細胞、CCRF−SB細胞(ATCC CCL
120)CCRF−CEM細胞、DND−41細胞などの
株化されたリンパ芽球様細胞や、また、正常な単
核細胞、顆粒性白血球細胞などを各種ウイルス、
薬剤、放射線などで処理し培養株化させた細胞な
どが好適である。 The cultured human-derived cells used in the present invention may be cells that can be transplanted into the body of a warm-blooded animal other than humans and easily proliferate, and that have the ability to produce new lymphokines. Various human-derived cell lines described in "Protein Nucleic Acid Enzyme Vol. 20, No. 6", pages 616-643 (1975) can be used. Among others, the Journal of Clinical Microbiology
Namalwa cells described in "Clinical Microbiology" Vol. 1, pp. 116-117 (1975); described in I. Miyoshi's "Nature" Vol. 267, pp. 843-844 (1977) BALL-1 cells, TALL-1 cells,
NALL-1 cells, “The Journal of Immunology”
Vol. 113” pages 1334-1345 (1974) M-
7002 cells, B-7101 cells, "Tissue Culture" Volume 6,
No. 13, pp. 527-546 (1980).
JBL cells, EBV-Sa cells, EBV-Wa cells,
EBA-HO cells, MOLT-3 cells, and others
BALM2 cells, CCRF-SB cells (ATCC CCL
120) Established lymphoblastoid cell lines such as CCRF-CEM cells and DND-41 cells, as well as normal mononuclear cells and granular leukocytes, were infected with various viruses,
Cells that have been treated with drugs, radiation, etc. and cultured are suitable.
また、これらヒト由来の細胞の新リンホカイン
産生能を有する遺伝子を、例えば、ポリエチレ
ングリコールやセンダイウイルスなどを利用する
細胞融合の手段、DNAリガーゼ、制限酵素(ヌ
クレアーゼ)、DNAポリメラーゼなどの酵素を利
用する遺伝子組み換えの手段などによつて処理
し、その増殖速度を高めたり、細胞当りの新リン
ホカイン産生能を高めたりして使用してもよ
く、本明細書に記載する株化細胞のみに限定され
るものではない。これらの細胞は、後に述べる新
リンホカインを誘導生成させるまでの過程で、
単独、または2種以上を混合して自由に利用され
る。必要ならば、これに、例えばヒトから採取し
調製される白血球、リンパ球などを併用すること
もできる。 In addition, the genes that have the ability to produce new lymphokines in these human-derived cells can be used, for example, by means of cell fusion using polyethylene glycol or Sendai virus, or by using enzymes such as DNA ligase, restriction enzymes (nucleases), and DNA polymerases. It may be used by treating it by genetic recombination means to increase its proliferation rate or increase its ability to produce new lymphokines per cell, and is limited to the established cell lines described herein. It's not a thing. In the process of inducing the production of new lymphokines, which will be discussed later, these cells
They can be freely used alone or in combination of two or more. If necessary, leukocytes, lymphocytes, etc. collected and prepared from humans, for example, can be used in combination.
本発明で使用する温血動物は、ヒト由来の細胞
が増殖し得るものであればよく、例えばニワト
リ、ハトなどの鳥類、イヌ、ネコ、サル、ウサ
ギ、ヤギ、ブタ、ウマ、ウシ、モルモツト、ラツ
ト、ヌードラツト、ハムスター、普通マウス、ヌ
ードマウスなどの哺乳類が使用できる。 The warm-blooded animals used in the present invention may be any animal in which human-derived cells can proliferate, such as birds such as chickens and pigeons, dogs, cats, monkeys, rabbits, goats, pigs, horses, cows, guinea pigs, Mammals such as rats, nude rats, hamsters, normal mice, and nude mice can be used.
これらの動物にヒト由来の細胞を移植すると好
ましくない免疫反応を起すおそれがあるので、そ
の反応をできるだけ抑えるため、使用する動物は
できるだけ幼若な状態、即ち卵、胚、胎児、また
は新生期、幼少期のものの方が好ましい。 Transplanting human-derived cells into these animals may cause an unfavorable immune reaction, so in order to suppress such reactions as much as possible, the animals used should be kept as young as possible, i.e. eggs, embryos, fetuses, or newborns. Preferably from childhood.
また、これら動物に例えば200〜600レム程度の
エツクス線若しくはガンマ線を照射するか、また
は抗血清若しくは免疫抑制剤などを注射するなど
の前処理をほどこして、免疫反応を弱めて移植し
てもよい。 In addition, these animals may be subjected to pretreatment such as irradiation with X-rays or gamma rays at a dose of about 200 to 600 rem, or injection of antiserum or immunosuppressants, etc., to weaken the immune response before transplantation. .
使用する動物がヌードマウスあるいはヌードラ
ツトの場合には、成長したものであつても免疫反
応が弱いので、これらの前処理を必要とすること
もなもなく、培養株化されたヒト由来の細胞が移
植でき、急速に増殖できるので特に好都合であ
る。 When the animal used is a nude mouse or nude rat, the immune response is weak even when the animal is grown, so there is no need for these pretreatments, and cultured human-derived cells can be used. It is particularly advantageous because it can be transplanted and rapidly propagated.
また、培養株化されたヒト由来の細胞を例えば
先づハムスターに移植し増殖させた後、この細胞
を更にヌードマウスに移植するなどのように、ヒ
ト以外の温血動物間で移植してヒト由来の細胞の
移植をより安定化したり、更にそれらから誘導生
成される新リンホカイン量を増加させることも
自由である。 In addition, human-derived cells that have been cultured are first transplanted into hamsters and grown, and then these cells are then transplanted into nude mice. It is also possible to further stabilize the transplantation of the derived cells and further increase the amount of new lymphokines induced and produced from them.
この場合、同種間、同属間は勿論のこと、同綱
間、同門間移植であつてもよい。ヒト由来の細胞
を移植する動物体内の部位は、移植した細胞が増
殖しうる部位であればよく、例えば尿液腔、静
脈、腹腔、皮下など自由に選ばれる。 In this case, transplantation can be done not only between the same species and the same genus, but also between the same class and phylum. The site within the animal body to which human-derived cells are transplanted may be any site where the transplanted cells can proliferate, such as the allantoic cavity, vein, abdominal cavity, or subcutaneous site.
また、動物体内にヒト由来の細胞を移植するこ
となく、動物細胞の通過を阻止し得る多孔性の濾
過膜、例えば孔径約10-7〜10-5mを有するメンブ
ランフイルター、限外濾過膜またはフオローフア
イバーなどを設けた公知の各種形状、大きさの拡
散チヤンバーを動物体内、例えば腹腔内に埋設し
て、動物体からの栄養物を含む体液の供給を受け
つつ、そのチヤンバー内で前述の培養株化された
ヒト由来の細胞を何れも増殖させることができ
る。 In addition, porous filtration membranes capable of blocking the passage of animal cells without transplanting human-derived cells into the animal body, such as membrane filters , ultrafiltration membranes, or Diffusion chambers of various shapes and sizes known in the art, each equipped with a fluorophore or the like, are buried in the animal's body, for example, in the abdominal cavity, and the above-mentioned culture is carried out within the chamber while being supplied with body fluids containing nutrients from the animal's body. Any established human-derived cell line can be grown.
また必要に応じて、このチヤンバー内の栄養物
を含む溶液を動物体内の体液と接続し、潅流させ
るようにしたチヤンバーを、例えば動物体表に取
付け、チヤンバー内のヒト由来の細胞の増殖状態
をその表面に設けた窓を通じて透視できるように
することも、また、このチヤンバー部分のみを着
脱交換できるようにして動物を屠殺せずに寿命一
杯細胞を増殖させて、動物固体当りの細胞生産量
を更に高めることもできる。 If necessary, a chamber that connects and perfuses the solution containing nutrients within the chamber with body fluids within the animal's body is attached to the surface of the animal's body, for example, to check the proliferation status of human-derived cells within the chamber. By making it possible to see through the window provided on its surface, and by making only this chamber part removable and replaceable, cells can be multiplied to the full lifespan of the animal without having to be slaughtered, and the amount of cells produced per individual animal can be increased. It can also be increased further.
これらの拡散チヤンバーを利用する方法は、ヒ
ト由来の細胞が動物細胞と直接接触しないので、
ヒト由来の細胞のみが容易に採取できるだけでな
く、好ましくない免疫反応を起す心配も少ないの
で、免疫反応を抑制する前処理の必要もなく、各
種温血動物を自由に利用できる特徴を有してい
る。 These diffusion chamber-based methods do not allow direct contact between human-derived cells and animal cells;
Not only can only human-derived cells be easily collected, but there is also little risk of causing undesirable immune reactions, so there is no need for pretreatment to suppress immune reactions, and various warm-blooded animals can be used freely. There is.
移植した動物の維持管理は、その動物の通常の
飼育管理を続ければよく、移植後といえども特別
の取扱いは何ら必要としないので好都合である。 The transplanted animal can be maintained and managed simply by continuing the normal care and management of the animal, and is convenient because no special handling is required even after transplantation.
ヒト由来の細胞を増殖させるための期間は通常
1〜10週の期間で目的を達成することができる。
このようにして得られるヒト由来の細胞数は動物
固体当り約107〜1012個、またはそれ以上に達す
ることも見出した。 The purpose can usually be achieved in a period of 1 to 10 weeks for growing human-derived cells.
It has also been found that the number of human-derived cells obtained in this manner reaches about 10 7 to 10 12 or more per animal.
換言すれば、動物生体内で増殖させたヒト由来
の細胞数は、動物個体当り移植した細胞数の約
102〜107倍、またはそれ以上にも達し、生体外の
栄養培地に接種して増殖させる場合の約101〜106
倍、またはそれ以上にも達して、新リンホカイン
の製造のために極めて好都合である。 In other words, the number of human-derived cells grown in an animal is approximately the same as the number of cells transplanted per animal.
10 2 to 10 7 times, or even more, compared to about 10 1 to 10 6 when grown in vitro in nutrient media.
twice or even more, making it extremely convenient for the production of new lymphokines.
このようにして増殖させたヒト由来の細胞から
新リンホカインを誘導生成させる方法は自由で
ある。それが、増殖した動物体内のままで新リン
ホカイン誘導剤を作用させることもできる。例
えば、腹腔内の腹水に浮遊状で増殖したヒト由来
の細胞に、また皮下に生じた腫瘍細胞に、新リン
ホカイン誘導剤を直接作用させて新リンホカイ
ンを誘導生成させ、次いで、その血清、腹水ま
たは腫瘍から新リンホカインを精製採取すれば
よい。 Any method can be used to induce and produce new lymphokines from human-derived cells grown in this manner. It is also possible to cause the new lymphokine inducer to act within the animal's body after it has grown. For example, a new lymphokine inducer is directly applied to human cells grown in suspension in ascites in the peritoneal cavity or tumor cells generated subcutaneously to induce the production of new lymphokines, and then the serum, ascites or New lymphokines can be purified and collected from tumors.
また、ヒト由来の増殖細胞をヒト以外の動物体
内から取り出し、生体外で新リンホカイン誘導
剤を作用させて新リンホカインを誘導生成させ
ることもできる。例えば、腹水中で増殖したヒト
由来の細胞を採取し、または皮下に生じたヒト由
来の細胞を含む腫瘍を摘出、分散し、得られる細
胞を約20〜40℃に保つた栄養培地に細胞濃度が約
105〜108/mlになるように浮遊させ、これに新リ
ンホカイン誘導剤を作用させることによつて新
リンホカインを誘導生成させ、これを精製採取
すればよい。 Furthermore, proliferating cells derived from humans can be removed from the body of a non-human animal and a new lymphokine inducing agent can be applied to induce the production of new lymphokines in vitro. For example, human-derived cells grown in ascites are collected, or tumors containing human-derived cells generated subcutaneously are excised and dispersed, and the resulting cells are placed in a nutrient medium kept at approximately 20 to 40 degrees Celsius to achieve a cell concentration. is about
The cells may be suspended at a concentration of 10 5 to 10 8 /ml, treated with a new lymphokine inducer to induce production of new lymphokines, and purified and collected.
更に、ヒト由来の細胞を拡散チヤンバー内で増
殖させた場合は、増殖させた細胞をチヤンバー内
のままで、またはチヤンバーから取り出して、新
リンホカイン誘導剤を作用させ、新リンホカイ
ンを誘導生成させることもできる。 Furthermore, when human-derived cells are grown in a diffusion chamber, the grown cells can be left in the chamber or removed from the chamber and treated with a new lymphokine inducer to induce the production of new lymphokines. can.
また、前述のようにヒト以外の温血動物を利用
して得られるヒト由来の細胞を、必要ならば、更
にインビトロで1〜4日間程度培養し細胞の増殖
世代を同調させるなどした後、新リンホカイン
誘導剤を作用させ新リンホカインを誘導生成さ
せることも自由である。 In addition, as mentioned above, human-derived cells obtained using warm-blooded animals other than humans can be further cultured in vitro for about 1 to 4 days to synchronize the cell proliferation generation, if necessary. It is also possible to induce the production of new lymphokines by applying a lymphokine inducer.
また、例えば、増殖させたヒト由来の細胞に先
づ動物体内のままで新リンホカインを誘導生成
させた後、次いで、同一動物個体の特定の部位ま
たは全体から採取したヒト由来の細胞に動物体外
で新リンホカインを誘導生成させる方法、ま
た、一度新リンホカインの誘導生成に使用した
細胞を、更に2度以上新リンホカインの誘導生
成に使用する方法、または動物体内に埋設、若し
くは接続するチヤンバーを交換して得られる細胞
数を増加させる方法などによつて、使用する動物
個体当りの新リンホカイン生成量を更に高める
ことも自由である。 In addition, for example, new lymphokines can be induced and produced in the animal's body by first proliferating human-derived cells, and then human-derived cells collected from a specific part or the whole of the same animal are injected into the animal's body. A method of inducing the production of new lymphokines, a method of using cells once used for the production of new lymphokines for induction production of new lymphokines more than once, or a method of implanting or replacing the chamber to be connected in the animal body. It is also possible to further increase the amount of new lymphokine produced per individual animal by using methods such as increasing the number of cells obtained.
本発明の新リンホカイン誘導剤としては、α
−インターフエロン誘導剤として知られているウ
イルス、核酸、ヌクレオチドなどやγ−インター
フエロン誘導剤として知られているフイトヘマグ
ルチニン、コンカナバリンA、ポークウイードミ
トーゲン、リポポリサツカリド、エンドトキシ
ン、多糖類、細菌などが適宜用いられる。また、
感作化された細胞にとつては、抗原も新リンホカ
インの誘導剤である。 The new lymphokine inducer of the present invention includes α
- Viruses, nucleic acids, nucleotides, etc. known as interferon inducers, phytohemagglutinin, concanavalin A, porkweed mitogen, lipopolysaccharide, endotoxin, polysaccharides, etc. known as γ-interferon inducers, Bacteria and the like are used as appropriate. Also,
For sensitized cells, antigens are also inducers of neolymphokines.
更に、ヒト由来の細胞から新リンホカインを
誘導生成させるに際し、新リンホカイン誘導剤
として、α−インターフエロン誘導剤とγ−イン
ターフエロン誘導剤とを併用することにより新リ
ンホカインの生産量を高めることも自由であ
る。 Furthermore, when producing new lymphokines from human-derived cells, it is also possible to increase the production amount of new lymphokines by using α-interferon inducers and γ-interferon inducers together as new lymphokine inducers. It is.
また、これら誘導生成によつて新リンホカイン
が産生されるだけでなく、種特異性の高いヒト
インターフエロンも同時に産生されることが判明
した。 Furthermore, it has been found that not only new lymphokines are produced by these induced productions, but also human interferon, which is highly species-specific, is also produced at the same time.
このことは、貴重な2種以上のヒト生理活性物
質の同時生産を可能にし、更に、ヒト由来の細胞
の高度利用を可能にし、新リンホカイン及びヒ
トインターフエロンを大量に安価に供給する点か
らきわめて好都合である。 This makes it possible to simultaneously produce two or more valuable human physiologically active substances, and also to make advanced use of human-derived cells, which is extremely important in terms of supplying new lymphokines and human interferon in large quantities at low cost. It's convenient.
このようにして誘導生成された新リンホカイン
は、公知の精製分離法、例えば、塩析、透析、
濾過、遠心分離、濃縮、凍結乾燥などを行うこと
によつて容易に精製分離し、採取することができ
る。更に高度の精製を必要とする場合には、例え
ば、イオン交換体への吸着−溶出、ゲル濾過およ
び等電点分画、電気泳動、イオン交換クロマトグ
ラフイー、高速液体クロマトグラフイー、カラム
クロマトグラフイー、アフイニテイクロマトグラ
フイーなど公知の方法を組合せれば、比活性約
109単位/mg蛋白質の最高純度の新リンホカイン
を採取することも可能である。 The new lymphokine thus induced can be purified using known purification and separation methods such as salting out, dialysis,
It can be easily purified and separated and collected by filtration, centrifugation, concentration, freeze-drying, etc. If a higher level of purification is required, for example, adsorption to ion exchanger-elution, gel filtration and isoelectric point fractionation, electrophoresis, ion exchange chromatography, high performance liquid chromatography, column chromatography. By combining known methods such as E and Affinity chromatography, the specific activity can be reduced to approx.
It is also possible to obtain the highest purity new lymphokines of 109 units/mg protein.
本発明のモノクローナル抗体の製造方法は、前
述のようにして得られた新リンホカインを抗原
として、ヒト以外の温血動物を免疫し、該動物か
ら抗体産生細胞を採取し、この細胞と骨髄腫細胞
とを融合せしめ、得られる融合細胞から新リンホ
カインに特異性を示す抗体産生能を有する融合
細胞を選択し、この選択細胞を増殖させ、生成し
た新リンホカインに対して免疫学的中和活性を
示すモノクローナル抗体を採取すればよい。 The method for producing a monoclonal antibody of the present invention involves immunizing a non-human warm-blooded animal with the new lymphokine obtained as described above as an antigen, collecting antibody-producing cells from the animal, and combining these cells with myeloma cells. and select fused cells from the resulting fused cells that have the ability to produce antibodies specific to the new lymphokine, proliferate these selected cells, and exhibit immunological neutralizing activity against the generated new lymphokine. All you need to do is collect monoclonal antibodies.
新リンホカインで、ヒト以外の温血動物を免
疫する方法は、例えば、ニワトリ、ハト、イヌ、
ネコ、サル、ヤギ、ブタ、ウシ、ウマ、ウサギ、
モルモツト、ラツト、ハムスター、マウスなどの
ヒト以外の温血動物の例えば、静脈、腹腔、皮下
などに、抗原としても新リンホカインを水溶
液、乳化液、懸濁液などとして注入した後、3日
以上飼育して抗体産生を誘導すればよい。また、
新リンホカインを特公昭58−23847号公報に記
載している方法で、新リンホカインの糖質結合
物に変えた後、抗原として利用することも有利に
実施できる。 Methods for immunizing non-human warm-blooded animals with new lymphokines include, for example, chickens, pigeons, dogs,
Cat, monkey, goat, pig, cow, horse, rabbit,
Injecting a new lymphokine as an antigen into a non-human warm-blooded animal such as a guinea pig, rat, hamster, or mouse, for example, intravenously, peritoneally, or subcutaneously, in the form of an aqueous solution, emulsion, or suspension, and then rearing the animal for 3 days or more. to induce antibody production. Also,
It is also advantageous to convert the new lymphokine into a carbohydrate conjugate of the new lymphokine by the method described in Japanese Patent Publication No. 58-23847, and then use it as an antigen.
抗原の注入は、1回だけでもよいし、必要なら
ば、約3〜30日間隔で2回以上注入してもよい。 The antigen may be injected only once or, if necessary, twice or more at intervals of about 3 to 30 days.
このようにして免疫し、抗体産生を誘導させた
動物のひ臓細胞と同種、または異種動物由来の骨
髄腫(myeloma)細胞とを、例えば、ジー コ
ーラー(G.Kohler)などが「ネイチヤ
(Nature)」Vol.256、495〜497頁(1975年)、お
よび「ヨーロピアン ジヤーナル オブ イムノ
ロジー(European Journal of Immunology)」
Vol.6、511〜519頁(1976年)で報告している方
法により融合せしめ、得られる融合(hybrid)細
胞を選択してクローン化し、次いで、生体外(in
vitro)、または生体内で培養し、この培養物より
免疫学的中和活性の高いモノクローナル抗体を採
取する。なかでも、生体内での培養は、生体外の
場合と比較して、高価な血清を必要としないばか
りでなく、融合細胞の増殖速度が大であり、かつ
多量のモノクローナル抗体を産生し得るので極め
て有利である。 The spleen cells of animals immunized in this way to induce antibody production are combined with myeloma cells derived from the same or xenogeneic animal, as described by G. Kohler and others in ``Nature''. ” Vol. 256, pp. 495-497 (1975), and “European Journal of Immunology”
Vol. 6, pp. 511-519 (1976), the resulting fused (hybrid) cells were selected and cloned, and then in vitro (in vitro).
In vitro) or in vivo, monoclonal antibodies with high immunological neutralizing activity are collected from this culture. Among these, in vivo culture not only does not require expensive serum compared to in vitro culture, but also allows the fused cells to proliferate at a faster rate and can produce large amounts of monoclonal antibodies. Extremely advantageous.
生体内で培養する場合には、免疫して抗体産生
を誘導させた動物と同種または異種の温血動物に
融合細胞を移植し、または拡散チヤンバー内へ接
種してその温血動物の体液の供給を受けながら増
殖させ、得られる腹水、血清などの体液からモノ
クローナル抗体を採取するか、または、生体内で
増殖させた融合細胞を、さらに無血清培地中で約
1〜5日間の短期間培養を行ない、その培養物か
らモノクローナル抗体を採取すればよい。 When culturing in vivo, the fused cells are transplanted into a warm-blooded animal of the same or different species as the animal that was immunized to induce antibody production, or they are inoculated into a diffusion chamber and supplied with body fluids from that warm-blooded animal. Monoclonal antibodies can be collected from body fluids such as ascites and serum, or the fused cells grown in vivo can be cultured for a short period of about 1 to 5 days in a serum-free medium. The monoclonal antibody may be collected from the culture.
本発明で使用する抗体産生細胞としては、抗原
により免疫したヒト以外の温血動物のひ臓細胞を
使用した場合を例示しているが、例えば、「単ク
ローン抗体−ハイブリドーマとELISA」株式会
社講談社(1983年)発行 第11頁第2〜7行に記
載されているように、ひ臓細胞のほかリンパ節細
胞や末梢血中のリンパ細胞なども使用することが
できる。 As the antibody-producing cells used in the present invention, spleen cells of a warm-blooded animal other than humans immunized with an antigen are used. 1983), page 11, lines 2 to 7, in addition to spleen cells, lymph node cells and lymph cells in peripheral blood can also be used.
以上述べたようにして生成したモノクローナル
抗体は、常法に従つて、例えば、塩析、透析、濾
過、遠心分離、濃縮、凍結乾燥などを行うことに
よつて容易に精製分離し、採取することができ
る。更に高度の精製を必要とする場合には、例え
ば、イオン交換体への吸着−溶出、ゲル濾過、等
電点分画、電気泳動、イオン交換クロマトグラフ
イー、高速液体クロマトグラフイー、カラムクロ
マトグラフイー、アフイニテイクロマトグラフイ
ーなど公知の方法を組合せれば、最高純度のモノ
クローナル抗体を採取することも可能である。 The monoclonal antibodies produced as described above can be easily purified and separated and collected by conventional methods such as salting out, dialysis, filtration, centrifugation, concentration, and freeze-drying. I can do it. If a higher level of purification is required, for example, adsorption to ion exchanger-elution, gel filtration, isoelectric point fractionation, electrophoresis, ion exchange chromatography, high performance liquid chromatography, column chromatography. It is also possible to collect monoclonal antibodies of the highest purity by combining known methods such as chromatography and affinity chromatography.
また、高純度の新リンホカインを、例えば、
プロムシアン活性化セフアロースなどの担体に固
定化し、この固定化した新リンホカインゲルを
用いて精製し、モノクローナル抗体を高収率で採
取することも有利に利用できる。 In addition, highly purified new lymphokines, e.g.
It can also be advantageously used to immobilize monoclonal antibodies on a carrier such as Promcyan-activated Sepharose, purify the immobilized new lymphokine gel, and collect monoclonal antibodies in high yield.
このようにして得られるモノクローナル抗体
は、悪性腫瘍に対して障害活性を有する新リンホ
カインに対し免疫学的中和活性を示すことによ
り、ヒトの疾病の診断剤、例えば、患者の新リン
ホカイン血中濃度と正常人のそれと比較検討
し、疾病の診断をする測定用試薬として、また、
新リンホカインを製造するためのアフイニテイ
クロマトグラフイーのリガンド(ligand)などと
して有利に利用できる。 The monoclonal antibodies obtained in this way can be used as diagnostic agents for human diseases by showing immunological neutralizing activity against new lymphokines that have inhibitory activity against malignant tumors. It can also be used as a measuring reagent for diagnosing diseases by comparing it with that of normal people.
It can be advantageously used as a ligand for affinity chromatography to produce new lymphokines.
新リンホカインの活性は、標的細胞として
KB細胞、またはL929細胞を用いて測定した。即
ち、KB細胞を用いる場合には、キヤンサー ケ
モテラピー リポーツ(Cancer Chemotherapy
Reports)パーツ(Parts)3、Vol.3、No.2、
September1972の記載に準じて、KB細胞の増殖
抑制活性を測定し、L929細胞を用いる場合には、
イー ピツク(E.Pick)編、ツモア ネクロシ
ス フアクター イン リンホカインズ
(Tumor Necrosis Factor in Lymphokines)
Vol.、245〜249頁、アカデミツク プレス
(Academic Press)(1981年)の記載に準じて、
アクチノマイシンD存在下でのL929細胞に与える
細胞障害活性を測定した。この際、L929細胞の増
殖を50%抑制するときの活性を50単位とした。本
明細書では、特にことわらない限り、L929細胞を
用いる活性測定方法を採用した。 The activity of new lymphokines as target cells
It was measured using KB cells or L929 cells. That is, when using KB cells, Cancer Chemotherapy Reports
Reports) Parts 3, Vol.3, No.2,
The growth inhibitory activity of KB cells was measured according to the description in September 1972, and when using L 929 cells,
Edited by E.Pick, Tumor Necrosis Factor in Lymphokines
Vol., pp. 245-249, as described by Academic Press (1981).
Cytotoxic activity against L929 cells in the presence of actinomycin D was measured. At this time, the activity when inhibiting the proliferation of L929 cells by 50% was defined as 50 units. In this specification, unless otherwise specified, an activity measurement method using L929 cells was adopted.
以下、本発明の実施例を述べる。 Examples of the present invention will be described below.
実施例 1−(a)
部分精製した新リンホカインの調製
新生児のハムスターに、ウサギから公知の方法
で調製した抗血清を注射して、ハムスターの免疫
反応を弱めた後、その皮下にBALL−1細胞を移
植し、その後通常の方法で3週間飼育した。皮下
に生じた腫瘤を摘出して細切し、生理食塩水中で
分散させほぐした。得られた細胞を血清添加の
RPMI1640培地(PH7.2)で洗浄し、同培地に約
2×106/mlになるよう懸濁した。本細胞懸濁液
に対して、ml当り約400赤血球凝集価のセンダイ
ウイルスを添加し、37℃で24時間保つて新リンホ
カインを誘導生成させた。Example 1-(a) Preparation of partially purified new lymphokine Newborn hamsters were injected with antiserum prepared from rabbits by a known method to weaken the hamster's immune response, and then BALL-1 cells were subcutaneously injected into the hamsters. were transplanted and then reared for 3 weeks in the usual manner. The tumor formed under the skin was removed, cut into small pieces, and dispersed and loosened in physiological saline. The obtained cells were added with serum.
The cells were washed with RPMI1640 medium (PH7.2) and suspended in the same medium at a concentration of approximately 2×10 6 /ml. Sendai virus with a hemagglutination titer of about 400 per ml was added to this cell suspension and kept at 37°C for 24 hours to induce the production of new lymphokines.
これを約4℃、約1000gで遠心分離し、沈澱物
を除去し、得られた上清をPH7.2、0.01Mリン酸
塩緩衝液を含有する生理食塩水で20時間透析し、
更に、精密濾過して得た濾液を、抗インターフエ
ロン抗体を固定化している抗体カラムに流し、そ
の非吸着画分を採取し、更に、これをクロマトグ
ラフイーカツシング法により活性画分を採取し、
濃縮し、凍結乾燥して新リンホカイン活性を含
有する粉末を得た。 This was centrifuged at about 4°C and about 1000g to remove the precipitate, and the resulting supernatant was dialyzed for 20 hours with physiological saline containing PH7.2 and 0.01M phosphate buffer.
Furthermore, the filtrate obtained by microfiltration is passed through an antibody column on which anti-interferon antibodies are immobilized, the non-adsorbed fraction is collected, and the active fraction is collected by chromatography-e-cutting method. death,
Concentration and lyophilization yielded a powder containing new lymphokine activity.
本粉末の比活性は、約106単位/mg蛋白質であ
つた。また、新リンホカインの収量は、ハムス
ター1匹当り約2000万単位であつた。 The specific activity of this powder was approximately 10 6 units/mg protein. Furthermore, the yield of the new lymphokine was approximately 20 million units per hamster.
実施例 1−(b)
抗新リンホカイン抗体の調製
実施例1−(a)の方法で得た新リンホカインを
生理食塩水に蛋白質濃度として約0.05w/v%に
なるように溶解し、これとフロイント完全アジユ
バント乳化液とを等量混合して、この混合液0.2
mlをマウスの皮下に注射し、7日後再び同様に注
射してマウスを免疫した。その抗体産生能を有す
る細胞に抗新リンホカイン抗体を誘導生成せし
め、このマウスからひ臓を摘出し、細切分散して
得られるひ臓細胞とマウス骨髄腫細胞P3−X63−
Ag8「フロー ラボラトリーズ(Llow
Faboratories)」社製とを、血清無含有Eagleの
最少基本培地で調製した50w/v%ポリエチレン
グリコールー1000溶液(PH7.2、温度37℃)に、
それぞれ104/mlになるように浮遊させて5分間
保つた後、前記基本培地で20倍に希釈し、次い
で、ダビソン(Davison)などがソマテイツク
セル ゼネテイツクス(somatic Cell
Genetics)、Vol.2、175〜176頁(1976年)に報告
している方法に準じてヒポキサンチン−アミノプ
リテン−チミジン培養液で増殖しうる融合細胞を
採取し、この融合細胞から抗新リンホカイン抗
体産生能を有する融合細胞を選択した。得られた
融合細胞をマウス腹腔内に1匹当り約106個移植
して2週間飼育した後、これを屠殺して腹水、血
液などの体液を集め、遠心分離し、この上清を硫
安塩析して飽和度30〜50%の沈澱画分を集め、次
いで透析し、更に、この液を、実施例1−(a)の方
法で得た新リンホカインをプロムシアン活性化
セフアロースと室温下で反応させて得られる固定
化新リンホカインゲルを用いてアフイニテイク
ロマトグラフイーを行ない、抗新リンホカイン
抗体画分を得、透析した後、濃縮し、凍結乾燥し
て、新リンホカインのモノクローナル抗体粉末
を採取した。Example 1-(b) Preparation of anti-neo-lymphokine antibody The new lymphokine obtained by the method of Example 1-(a) was dissolved in physiological saline to a protein concentration of approximately 0.05 w/v%, and the protein concentration was approximately 0.05 w/v%. Mix equal amounts of Freund's complete adjuvant emulsion and add 0.2
ml was injected subcutaneously into mice, and 7 days later, the same injection was repeated to immunize the mice. Spleen cells and mouse myeloma cells P 3 -X63- are obtained by inducing anti-neo-lymphokine antibodies to be produced in cells that have the antibody-producing ability, removing the spleen from this mouse, and dispersing it into small pieces.
Ag8 “Flow Laboratories (Llow
manufactured by ``Faboratories'' into a 50w/v% polyethylene glycol-1000 solution (PH7.2, temperature 37℃) prepared in serum-free Eagle's minimal basic medium.
They were suspended at a concentration of 10 4 /ml and kept for 5 minutes, then diluted 20 times with the above-mentioned basic medium.
Cell Genetics (somatic Cell
Genetics), Vol. 2, pp. 175-176 (1976), fused cells that can proliferate in hypoxanthine-aminopritene-thymidine culture solution were collected, and anti-neolymphokine was extracted from these fused cells. Fusion cells capable of producing antibodies were selected. Approximately 10 6 of the obtained fused cells were transplanted into the peritoneal cavity of each mouse and kept for 2 weeks. After that, the mice were sacrificed and body fluids such as ascites and blood were collected, centrifuged, and the supernatant was diluted with ammonium sulfate. The precipitated fraction with a saturation of 30-50% was collected, then dialyzed, and this solution was further reacted with the new lymphokine obtained by the method of Example 1-(a) with Promcyan-activated cephalose at room temperature. Affinity chromatography was performed using the immobilized new lymphokine gel obtained in this manner to obtain an anti-new lymphokine antibody fraction, which was dialyzed, concentrated, and lyophilized to collect a new lymphokine monoclonal antibody powder. .
本品は、新リンホカインの細胞障害活性に対
して免疫学的に得意的な中和活性を示した。 This product showed immunologically strong neutralizing activity against the cytotoxic activity of new lymphokines.
このモノクローナル抗体の水溶液での安定性を
中和活性の測定により調べた結果、PH7.2で30分
間保持する条件では、60℃で80%以上の活性が残
存し、70℃で90%以上の活性が失なわれた。ま
た、4℃で16時間保持する条件で、PH4.0〜11.0
の範囲では安定であり、PH2.0では90%以上の活
性が失なわれた。 The stability of this monoclonal antibody in an aqueous solution was investigated by measuring the neutralizing activity. As a result, when kept at pH 7.2 for 30 minutes, more than 80% of the activity remained at 60°C, and more than 90% of the activity remained at 70°C. activity has been lost. In addition, under the condition of holding at 4℃ for 16 hours, PH4.0 ~ 11.0
It was stable within the pH range, and more than 90% of its activity was lost at pH 2.0.
更に、このモノクローナル抗体の性質を調べた
結果、2−メルカプトエタノールに不安定であ
り、抗マウスイムノグリプリンM抗体と特異的抗
原抗体反応を示すことが判明した。 Further, as a result of investigating the properties of this monoclonal antibody, it was found that it is unstable to 2-mercaptoethanol and exhibits a specific antigen-antibody reaction with anti-mouse immunoglypurin M antibody.
従つて、このモノクローナル抗体は、イムノグ
ロブリンMクラスに分類される抗体である。 Therefore, this monoclonal antibody is an antibody classified into the immunoglobulin M class.
実施例 1−(c)
高純度に精製した新リンホカインの調製とそ
の理化学的性質
実施例1−(a)の方法で調製した新リンホカイン
の部分精製品を、実施例1−(b)の方法で調製し
たモノクローナル抗体を固定化したゲルを用いて
アフイニテイクロマトグラフイーを行ない、新リ
ンホカインの活性画分を採取し、透析し、濃縮
して凍結乾燥した。Example 1-(c) Preparation of highly purified new lymphokine and its physicochemical properties The partially purified product of new lymphokine prepared by the method of Example 1-(a) was purified by the method of Example 1-(b). Affinity chromatography was performed using the gel immobilized with the monoclonal antibody prepared in 1. The active fraction of the new lymphokine was collected, dialyzed, concentrated, and lyophilized.
本品は、高純度に精製された新リンホカイン
であつて、その比活性は、約109単位/mg蛋白質
であつた。 This product is a highly purified new lymphokine, and its specific activity was approximately 10 9 units/mg protein.
本品を用いて、理化学的性質を調査した。 The physical and chemical properties of this product were investigated.
分子量
ケイ ウエーバー アンド エム オズボー
ン(K.Weber and M.Osborn)、ジヤーナル
オブ バイオロジカル ケミストリイ
(Journal of Biological Chemistry)、
Vol.244、4406頁(1969年)の記載に準じて、
SDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動により
調べた。即ち、0.1%SDS存在下、10%アクリ
ルアミドゲルカラムに試料約10μgを負荷し、
カラム当り8mAで4時間泳動後、クーマシ
ー・ブルー(Coomassie blue)を用いて染色
すると分子量20000±2000の単一の鋭い帯が得
られた。この単一の帯は新リンホカイン活性
を有していた。 Molecular Weight K.Weber and M.Osborn, Journal
Journal of Biological Chemistry,
According to the description in Vol. 244, page 4406 (1969),
It was investigated by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. That is, approximately 10 μg of the sample was loaded onto a 10% acrylamide gel column in the presence of 0.1% SDS,
After running for 4 hours at 8 mA per column, staining with Coomassie blue gave a single sharp band with a molecular weight of 20000±2000. This single band had neolymphokine activity.
等電点
スウエーデン、LKB社製、等電点電気泳動
用ゲル、商品名AMPHOLINE PAGPLATE
(PH3.5〜9.5)を用いて、25W、2時間泳動し
た結果、等電点pIは6.5±0.3であつた。 Isoelectric point Gel for isoelectric focusing, manufactured by LKB, Sweden, product name: AMPHOLINE PAGPLATE
As a result of electrophoresis at 25W for 2 hours using (PH3.5-9.5), the isoelectric point pI was 6.5±0.3.
電気易動度
ピー ゼイ デービス(B.J.Davis)、アニユ
マルズ オブ ザ ニユーヨーク アカデミー
サイエンシズ(Annuals of the New York
Academy of Sciences)Vol.121、404頁
(1964年)の記載に準じて、7.5%アクリルアミ
ドゲルカラムに試料約10μg負荷し、PH8.3、カ
ラム当り3mAで2時間泳動後、抽出してその
活性測定から電気易動度を求めたところ、
Rf0.28±0.02であつた。 Electrical Mobility BJDavis, Annuals of the New York Academy of Sciences
Approximately 10 μg of the sample was loaded onto a 7.5% acrylamide gel column according to the description in Academy of Sciences) Vol. 121, p. 404 (1964), and after electrophoresis at pH 8.3 and 3 mA per column for 2 hours, the activity of When the electrical mobility was determined from the measurement,
Rf was 0.28±0.02.
紫外線吸収スペクトル
株式会社島津製作所製の分光光度計、商品名
UV−250を用いて紫外部での吸収スペクトル
を調べた結果、280nm付近に最大吸収を示し
た。 Ultraviolet absorption spectrum Spectrophotometer manufactured by Shimadzu Corporation, product name
As a result of examining the absorption spectrum in the ultraviolet region using UV-250, the maximum absorption was found around 280 nm.
溶剤に対する溶解性
水、生理食塩水またはリン酸塩緩衝液に可
溶。 Solubility in solvents Soluble in water, saline or phosphate buffer.
エチルエーテル、酢酸エチルまたはクロロホ
ルムに難溶乃至不溶であつた。 It was sparingly soluble to insoluble in ethyl ether, ethyl acetate, or chloroform.
呈色反応
ローリー法またはミクロビユーレツト法で蛋
白質陽性反応を示し、フエノール硫酸法または
アントロン硫酸法で糖質陽性反応を示した。 Color reaction A positive protein reaction was shown by the Lowry method or microbiuret method, and a positive carbohydrate reaction was shown by the phenol sulfuric acid method or anthrone sulfuric acid method.
作用
L929細胞に対して細胞障害活性を示した。
KB細胞に対する細胞増殖抑制活性およびイン
ターフエロン活性は実質的に示さなかつた。 Effect: Showed cytotoxic activity against L929 cells.
Substantially no cytostatic activity or interferon activity against KB cells was shown.
水溶液での活性安定性
(i) 熱安定性
約1×105単位/mlの試料を各温度により
PH7.2で30分間保持した後、残存する活性を
測定した結果、60℃まで安定であつた。 Activity stability in aqueous solution (i) Thermal stability Approximately 1 × 10 5 units/ml of sample at each temperature
After holding at pH 7.2 for 30 minutes, the remaining activity was measured and found to be stable up to 60°C.
(ii) PH安定性
約1×106単位/mlの試料0.1mlを各PH緩衝
液(PH2〜7…マツクルベイン緩衝液
(Mcllvaine buffer)、PH7〜8…リン酸塩緩
衝液(Phosphat buffer)、PH8〜11…グリ
シン−水酸化ナトリウム緩衝液(Glycine−
NaOH buffer))1mlに加え、4℃で16時間
保持した後、この0.1mlをPH7.2、0.05Mリン
酸塩緩衝液でPH7.2に調製して残存する活性
を測定した結果、PH4.0乃至11.0の範囲で安
定であつた。 (ii) PH stability 0.1 ml of a sample of approximately 1×10 6 units/ml was added to each PH buffer (PH2-7...Mcllvaine buffer, PH7-8...Phosphat buffer, PH8~11...Glycine-sodium hydroxide buffer (Glycine-
After adding 1 ml of NaOH buffer) and keeping it at 4℃ for 16 hours, 0.1 ml of this was adjusted to PH7.2 with 0.05M phosphate buffer and the remaining activity was measured. It was stable in the range of 0 to 11.0.
(iii) デイスパーゼ(DISPASE)に対する安定
性
約1×105単位/mlの試料にデイスパーゼ
(合同酒精株式会社製造のバシラス属細菌由
来のプロテアーゼ)100単位/mlになるよう
に加え、PH7.2、温度37℃で0乃至2時間反
応させ、経時的にサンプリングし、牛血清ア
ルブミンを1w/v%になるように加えて反
応を止めた。この液の新リンホカインの残
存活性の残存活性を測定した結果、新リンホ
カインはデイスパーゼ処理により不安定
で、その反応につれて新リンホカインの活
性が失なわれた。 (iii) Stability against dispase (DISPASE) Dispase (protease derived from Bacillus bacteria manufactured by Godo Shusei Co., Ltd.) was added to a sample of approximately 1 × 10 5 units/ml at a concentration of 100 units/ml, pH 7.2, The reaction was carried out at a temperature of 37° C. for 0 to 2 hours, samples were taken over time, and the reaction was stopped by adding bovine serum albumin to a concentration of 1 w/v%. As a result of measuring the residual activity of the new lymphokine in this solution, it was found that the new lymphokine was unstable due to dispase treatment, and the activity of the new lymphokine was lost as the reaction progressed.
凍結貯蔵による安定性
PH7.2の水溶液を−10℃で凍結し1ケ月間貯
蔵した後、融解し、活性を測定した結果、活性
の低下は見られなかつた。 Stability due to frozen storage An aqueous solution of pH 7.2 was frozen at -10°C, stored for one month, thawed, and measured for activity. As a result, no decrease in activity was observed.
以上の結果から、新インホカインは、従来知
られているリンホトキシン、TNF、インターフ
エロンなどのリンホカインとは、明らかに違つた
文献末記載の理化学的性質を有する。 From the above results, the new lymphokine has the physicochemical properties described in the literature that are clearly different from the previously known lymphokines such as lymphotoxin, TNF, and interferon.
従つて、新リンホカインの細胞障害活性と免
疫学的に特異的中和活性を示す本発明のモノクロ
ーナル抗体は、新規なモノクローナル抗体であ
る。 Therefore, the monoclonal antibody of the present invention, which exhibits cytotoxic activity and immunologically specific neutralizing activity of new lymphokines, is a novel monoclonal antibody.
実施例 2
実施例1−(c)の方法で得た高純度新リンホカイ
ンを抗原に用いた以外は、実施例1−(b)と同様
にマウスを免疫して得られたひ臓細胞とマウス骨
髄腫細胞P3−NS−1/1−Ag4−1(大日本製
薬株式会社社製)とを、140mM NaCl、54mM
KCl、1mM NaH2PO4、2mM CaCl2を含
有する塩類溶液に、それぞれ104/mlになるよう
に浮遊させ、これに、予じめ紫外線で不活化した
センダイウイルスを含有する前記塩類溶液を氷冷
下で混合し、この混合液を5分後に37℃のRPMI
培地で約20倍に希釈し、次いで、実施例1−(b)と
同様にして抗新リンホカイン産生能を有する融
合細胞を選択した。Example 2 Spleen cells and mouse bone marrow obtained by immunizing a mouse in the same manner as in Example 1-(b) except that the highly purified new lymphokine obtained by the method in Example 1-(c) was used as the antigen. tumor cells P3-NS-1/1-Ag4-1 (manufactured by Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd.) in 140mM NaCl and 54mM
The cells were suspended in a saline solution containing KCl, 1mM NaH 2 PO 4 , and 2mM CaCl 2 at a concentration of 10 4 /ml, and the saline solution containing Sendai virus, which had been previously inactivated by ultraviolet rays, was added to the saline solution. Mix under ice-cooling, and after 5 minutes transfer the mixture to RPMI at 37℃.
The mixture was diluted approximately 20 times with a medium, and then fused cells having the ability to produce anti-neolymphokines were selected in the same manner as in Example 1-(b).
得られた融合細胞を、公知の方法で免疫反応を
弱めた生後7日のハムスターの腹腔内に1匹当り
約107個移植し、実施例1−(b)と同様にしてモノ
クローナル抗体を採取した。 Approximately 10 7 of the obtained fused cells were transplanted into the abdominal cavity of 7-day-old hamsters whose immune response had been weakened using a known method, and monoclonal antibodies were collected in the same manner as in Example 1-(b). did.
本品は、実施例1−(b)で調製したモノクローナ
ル抗体と同様に新リンホカインの細胞障害活性
に対し免疫学的に特異的中和活性を示した。 This product, like the monoclonal antibody prepared in Example 1-(b), showed immunologically specific neutralizing activity against the cytotoxic activity of the new lymphokine.
このモノクローナル抗体の水溶液での安定性
を、その中和活性の測定により調べた結果、PH
7.2で30分間保持する条件では、60℃で80%以上
の活性が残存し、70℃で90%以上の活性が失なわ
れた。また、4℃で16時間保持する条件では、PH
2.0〜11.0の範囲で安定であつた。 The stability of this monoclonal antibody in aqueous solution was investigated by measuring its neutralizing activity, and the PH
Under the conditions of holding at 7.2 for 30 minutes, more than 80% of the activity remained at 60°C, and more than 90% of the activity was lost at 70°C. In addition, under the condition of holding at 4℃ for 16 hours, the pH
It was stable in the range of 2.0 to 11.0.
更に、このモノクローナル抗体の性質を調べた
結果、2−メルカプトエタノールに安定であり、
抗マウスイムノグロブリンG抗体と特異的抗原抗
体反応を示すことが判明した。 Furthermore, as a result of investigating the properties of this monoclonal antibody, it was found to be stable in 2-mercaptoethanol.
It was found that it showed a specific antigen-antibody reaction with anti-mouse immunoglobulin G antibody.
従つて、このモノクローナル抗体は、イムノグ
ロブリンGクラスに分類される抗体である。 Therefore, this monoclonal antibody is an antibody classified into the immunoglobulin G class.
実施例 3
実施例2の方法のうち、マウス骨髄腫細胞P3
−NS−1/1−Ag4−1の代りに、SP2/0−
Ag14(大日本製薬株式会社製)を用いた以外は、
実施例2と同様に行ない、新リンホカインのモ
ノクローナル抗体を製造した。Example 3 Among the methods of Example 2, mouse myeloma cell P3
-NS-1/1-Instead of Ag4-1, SP2/0-
Except for using Ag14 (manufactured by Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd.),
A monoclonal antibody against a new lymphokine was produced in the same manner as in Example 2.
本品は、新リンホカインの細胞障害活性と免
疫学的に特異的中和活性を調べたところ、実施例
2の場合と同様の結果が得られた。 When this product was examined for cytotoxic activity and immunologically specific neutralizing activity of the new lymphokine, the same results as in Example 2 were obtained.
従つて、このモノクローナル抗体は、イムノグ
ロブリンGクラスに分類される抗体である。 Therefore, this monoclonal antibody is an antibody classified into the immunoglobulin G class.
Claims (1)
エチルエーテル、酢酸エチルまたはクロロホル
ムに難溶乃至不溶 呈色反応 ローリー法またはミクロビユーレツト法で蛋
白質陽性反応を示し、フエノール硫酸法または
アントロン硫酸法で糖質陽性反応を示す 作用 L929細胞に対して細胞障害活性を示し、KB
細胞に対する細胞増殖抑制活性およびインター
フエロン活性を実質的に示さず 水溶液での活性安定性 PH7.2で30分間保持する条件により60℃まで
安定、4℃で16時間保持する条件によりPH4.0
乃至11.0の範囲で安定 −10℃での凍結貯蔵で1ケ月以上安定 である新リンホカインに対して免疫学的中和活
性を示すモノクローナル抗体。 2 理化学的性質が、 分子量 20000±2000 等電点 pI=6.2±0.3 易動度 Disc−PAGEで、Rf=0.29±0.02 紫外線吸収スペクトル 280nm付近に最大吸収 溶剤に対する溶解性 水、生理食塩水またはリン酸塩緩衝易に可溶
エチルエーテル、酢酸エチルまたはクロロホル
ムに難溶乃至不溶 呈色反応 ローリー法またはミクロビユーレツト法で蛋
白質陽性反応を示し、フエノール硫酸法または
アントロン硫酸法で糖質陽性反応を示す 作用 L929細胞に対して細胞障害活性を示し、KB
細胞に対する細胞増殖抑制活性およびインター
フエロン活性を実質的に示さず 水溶液での活性安定性 PH7.2で30分間保持する条件により60℃まで
安定、4℃で16時間保持する条件によりPH4.0
乃至11.0の範囲で安定 −10℃での凍結貯蔵で1ケ月以上安定 である新リンホカインを抗原としてヒト以外の
温血動物を免疫し、該動物から抗体産生細胞を採
取し、これと骨髄腫細胞とを融合せしめ、得られ
る融合細胞から抗新リンホカイン抗体産生能を
有する融合細胞を選択し、次いで、この選択細胞
を増殖させ新リンホカインに免疫学的中和活性
を示すモノクローナル抗体を産生せしめることを
特徴としたモノクローナル抗体の製法。[Claims] 1 Physical and chemical properties include: Molecular weight 20000 + 2000 Isoelectric point pI = 6.2 + 0.3 Mobility Rf = 0.29 ± 0.02 in Disc-PAGE Ultraviolet absorption spectrum Maximum absorption around 280 nm Solubility in solvents Water, Soluble in physiological saline or phosphate buffer Slightly soluble or insoluble in ethyl ether, ethyl acetate or chloroform Color reaction Shows a positive protein reaction by the Lowry method or microbiuret method, and shows a positive reaction for protein by the phenol sulfuric acid method or anthrone sulfuric acid method. Effect: Shows cytotoxic activity against L 929 cells, KB
Substantially shows no cell proliferation inhibitory activity or interferon activity against cells Activity stability in aqueous solution Stable up to 60℃ when kept at PH7.2 for 30 minutes, PH4.0 when kept at 4℃ for 16 hours
A monoclonal antibody that exhibits immunological neutralizing activity against a new lymphokine that is stable in the range of 11.0 to 11.0 and is stable for 1 month or more when stored frozen at -10°C. 2 Physical and chemical properties: Molecular weight 20000±2000 Isoelectric point pI=6.2±0.3 Mobility Disc-PAGE, Rf=0.29±0.02 Ultraviolet absorption spectrum Maximum absorption around 280 nm Solubility in solvents Water, physiological saline or phosphorus Easily soluble in acid buffers Slightly soluble or insoluble in ethyl ether, ethyl acetate, or chloroform Color reaction: Shows a positive protein reaction by the Lowry method or microbiuret method, and shows a positive carbohydrate reaction by the phenol sulfuric acid method or anthrone sulfuric acid method. Action: Shows cytotoxic activity against L 929 cells, KB
Substantially shows no cell proliferation inhibitory activity or interferon activity against cells Activity stability in aqueous solution Stable up to 60℃ when kept at PH7.2 for 30 minutes, PH4.0 when kept at 4℃ for 16 hours
Stable in the range of 11.0 to 11.0 A non-human warm-blooded animal is immunized with a new lymphokine that is stable for more than 1 month when stored frozen at -10°C as an antigen, antibody-producing cells are collected from the animal, and these and myeloma cells are and select fused cells capable of producing anti-neo-lymphokine antibodies from the resulting fused cells, and then proliferate these selected cells to produce monoclonal antibodies that exhibit immunological neutralizing activity against neo-lymphokines. Featured monoclonal antibody production method.
Priority Applications (16)
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|---|---|---|---|
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| DE3539775A DE3539775C2 (en) | 1984-11-09 | 1985-11-09 | New lymphokine, antibodies specific to this lymphokine, process for their preparation and their use |
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| US07/223,717 US5003048A (en) | 1984-11-09 | 1988-07-21 | Method for the purification of lymphokine LK 2 |
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1984
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Also Published As
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