JPH01153087A - マリーゴールドの組織培養法 - Google Patents
マリーゴールドの組織培養法Info
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- JPH01153087A JPH01153087A JP62311522A JP31152287A JPH01153087A JP H01153087 A JPH01153087 A JP H01153087A JP 62311522 A JP62311522 A JP 62311522A JP 31152287 A JP31152287 A JP 31152287A JP H01153087 A JPH01153087 A JP H01153087A
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Landscapes
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- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
この発明はマリーゴールドの組繊培養法に関するもので
あり、本発明方法によってえられた培養物は、線虫類に
対して特に優れた殺虫性を示すものである。
あり、本発明方法によってえられた培養物は、線虫類に
対して特に優れた殺虫性を示すものである。
従来の技術
マリーゴールドはキク科の植物で、殺線虫力を備えた下
式 で示されるα−ターチェニル及びその類縁物質を含有す
ることが知られている。〔例えばレキュレエ デス ト
ラパックス キミーク デス ベイズ−パス(Recu
eille des Traveaux Chimiq
ue des Pays−Bas)第77巻 1004
頁ないし1009頁(1958)及び同第79巻382
頁ないし390頁(1959) )α−ターチェニルを
化学的に合成する方法も研究されているが(例えば特開
昭52−118462号公報)、未だ実用化されるには
至っていない。
式 で示されるα−ターチェニル及びその類縁物質を含有す
ることが知られている。〔例えばレキュレエ デス ト
ラパックス キミーク デス ベイズ−パス(Recu
eille des Traveaux Chimiq
ue des Pays−Bas)第77巻 1004
頁ないし1009頁(1958)及び同第79巻382
頁ないし390頁(1959) )α−ターチェニルを
化学的に合成する方法も研究されているが(例えば特開
昭52−118462号公報)、未だ実用化されるには
至っていない。
発明が解決しようとする問題点
マリーゴールドを直かに田畑に植えて土壌中の線虫密度
を低減させる方法は広く知られており、化学薬品に較べ
t残留毒性の心配がなく且つ効果が長時間持続するなど
のメリットを備えているが、反面マリーゴールドを植え
た田畑では同時に野菜類を栽培し難いので、その間休耕
あるいは減産することを余儀なくされていた。
を低減させる方法は広く知られており、化学薬品に較べ
t残留毒性の心配がなく且つ効果が長時間持続するなど
のメリットを備えているが、反面マリーゴールドを植え
た田畑では同時に野菜類を栽培し難いので、その間休耕
あるいは減産することを余儀なくされていた。
問題点を解決するための手段
本発明者等は、このような事情に鑑みマリーゴールドを
組織培養によって量産する方法について、種々の試験研
究を重ねた結果、組織培養においてオーキシンあるいは
オーキシンとサイトカイニンを含有するカルス化培地で
カルス誘導したのち、オーキシンを0.01mg/ l
ないし1mg/lの低い濃度に規制した増殖培地で増殖
することによって、特に強い殺線虫力を示す培養物が出
来ることを見い出したものである。
組織培養によって量産する方法について、種々の試験研
究を重ねた結果、組織培養においてオーキシンあるいは
オーキシンとサイトカイニンを含有するカルス化培地で
カルス誘導したのち、オーキシンを0.01mg/ l
ないし1mg/lの低い濃度に規制した増殖培地で増殖
することによって、特に強い殺線虫力を示す培養物が出
来ることを見い出したものである。
本発明方法の実施に適する代表的なマリーゴールド(T
agetes属)は、フレンチマリーゴールド(Tag
etes patura) 、アフリカンマリーゴール
ド(Tagetes erecta)等であり、本発明
においては、これらマリーゴールドの葉、茎、根、苫な
どから採取された組織片を常法により殺菌処理したのち
、植物ホルモンとしてオーキシンあるいはオーキシンと
サイトカイニンを含有するカルス化培地においてカルス
誘導を行う。
agetes属)は、フレンチマリーゴールド(Tag
etes patura) 、アフリカンマリーゴール
ド(Tagetes erecta)等であり、本発明
においては、これらマリーゴールドの葉、茎、根、苫な
どから採取された組織片を常法により殺菌処理したのち
、植物ホルモンとしてオーキシンあるいはオーキシンと
サイトカイニンを含有するカルス化培地においてカルス
誘導を行う。
なお、本発明の実施に適する代表的なオーキシンは、イ
ンドール酢酸、ナフタレン酢酸、 2.4−ジクロロ
フェノキシ酢酸等であり、サイトカイニンの代表的なも
のは、カイネチン、ベンジルアデニン、ゼアチン等であ
る。
ンドール酢酸、ナフタレン酢酸、 2.4−ジクロロ
フェノキシ酢酸等であり、サイトカイニンの代表的なも
のは、カイネチン、ベンジルアデニン、ゼアチン等であ
る。
カルス化培地としては、ムラシゲ・スクーグの培地、リ
ンスマイヤー・スクーグの培地、ガンボルグの培地、ニ
ラチエの培地などの基本培地に、前記植物ホルモンの他
にショ糖、ぶどう糖等の炭素源などを適当量添加したも
のが好適であり、例えばムラシゲ・スクーグの基本培地
にショ糖を1〜5重量%、寒天を0.5〜1.0重量%
、オーキシンとしてナフタレン酢酸を0.01〜20m
g/ R、サイトカイニンとしてベンジルアデニンを0
〜20mg/lの範囲で加えた培地にあっては、2〜3
週間の培養によって良好なカルス形成が認められる。カ
ルス化培養の条件としては、通常の植物組織培養と同じ
であり、温度は15〜35°C1好ましくは20〜30
°C,pHは4〜8、好ましくは5〜6の範囲が夫々適
当である。
ンスマイヤー・スクーグの培地、ガンボルグの培地、ニ
ラチエの培地などの基本培地に、前記植物ホルモンの他
にショ糖、ぶどう糖等の炭素源などを適当量添加したも
のが好適であり、例えばムラシゲ・スクーグの基本培地
にショ糖を1〜5重量%、寒天を0.5〜1.0重量%
、オーキシンとしてナフタレン酢酸を0.01〜20m
g/ R、サイトカイニンとしてベンジルアデニンを0
〜20mg/lの範囲で加えた培地にあっては、2〜3
週間の培養によって良好なカルス形成が認められる。カ
ルス化培養の条件としては、通常の植物組織培養と同じ
であり、温度は15〜35°C1好ましくは20〜30
°C,pHは4〜8、好ましくは5〜6の範囲が夫々適
当である。
カルス誘導されたマリーゴールドは、引き続き前記と同
じオーキシンあるいはオーキシンとサイトカイニンを他
の添加物と共に含む増殖培地において増殖されるが、本
発明の実施においては、特 1に強い殺線虫力を有する
培養物を得るために、増殖培地におけるオーキシンの添
加量を0.01mg/ 1ないし1mg/lの低濃度と
し、且つサイトカイニンについても不存在若しくは3m
g71以下の低濃度とすべきである。
じオーキシンあるいはオーキシンとサイトカイニンを他
の添加物と共に含む増殖培地において増殖されるが、本
発明の実施においては、特 1に強い殺線虫力を有する
培養物を得るために、増殖培地におけるオーキシンの添
加量を0.01mg/ 1ないし1mg/lの低濃度と
し、且つサイトカイニンについても不存在若しくは3m
g71以下の低濃度とすべきである。
増殖培地におけるオーキシンの添加量及びサイトカイニ
ンの添加量が所定量より多くなると、培養物を抽出して
得られる殺線虫剤の効力が著しく低下する。
ンの添加量が所定量より多くなると、培養物を抽出して
得られる殺線虫剤の効力が著しく低下する。
また、増殖培養の方法としては、寒天を含んだ固体培地
による静置培養、寒天を除いた液体培地による振盪培養
のいずれでも可能である。
による静置培養、寒天を除いた液体培地による振盪培養
のいずれでも可能である。
なお、本発明方法によって培養されたマリーゴールドか
ら殺線虫剤を製造するには、培養したマリーゴールドを
乾燥したのち、n−ヘキサン、ア七トン、アセトニトリ
ル等の有機溶媒を用いて抽出し、抽出液から有機溶媒を
除去すれば良い。
ら殺線虫剤を製造するには、培養したマリーゴールドを
乾燥したのち、n−ヘキサン、ア七トン、アセトニトリ
ル等の有機溶媒を用いて抽出し、抽出液から有機溶媒を
除去すれば良い。
以下本発明方法を実施例及び比較例によって具体的に説
明する。
明する。
起施例1及び比較例1
フレンチマリーゴールド(品種名:ボレロ)の発芽後2
週間経過した無菌苗の子葉を概略5mm角の大きさに切
り、これをムラシゲ・スクーグの基本培地にショ塘3重
量%、寒天0.8重量%、ナフタレン酢酸0.1mg/
42.ベンジルアデニン0.1mg/lを加え、常法に
より滅菌したカルス化培地に置床した。この状態で25
゛Cの温度に保ち連続照明下でカルス誘導を行い、1ケ
月後に前記培養物をカルス化培地からベンジルアデニン
を除いた組成の増殖培地に継代し、同じ条件で再び1ケ
月培養し、増殖を行った。その後1ケ月間隔で2回継代
して増殖させた。
週間経過した無菌苗の子葉を概略5mm角の大きさに切
り、これをムラシゲ・スクーグの基本培地にショ塘3重
量%、寒天0.8重量%、ナフタレン酢酸0.1mg/
42.ベンジルアデニン0.1mg/lを加え、常法に
より滅菌したカルス化培地に置床した。この状態で25
゛Cの温度に保ち連続照明下でカルス誘導を行い、1ケ
月後に前記培養物をカルス化培地からベンジルアデニン
を除いた組成の増殖培地に継代し、同じ条件で再び1ケ
月培養し、増殖を行った。その後1ケ月間隔で2回継代
して増殖させた。
このようにして得られた培養物は、濃緑色の固いカルス
であり、1回当りの増殖によって、生重量比で約15倍
の増加を示した。
であり、1回当りの増殖によって、生重量比で約15倍
の増加を示した。
本例によって培養したマリーゴールド培養物を常温、無
菌下で乾燥し、軽く砕き、乾燥した培養物1μ当たりn
−ヘキサンを50m lの割合に混合し30分間抽出を
行い、固形物を濾別して抽出液を得た。
菌下で乾燥し、軽く砕き、乾燥した培養物1μ当たりn
−ヘキサンを50m lの割合に混合し30分間抽出を
行い、固形物を濾別して抽出液を得た。
このようにして得られた抽出液を用いて殺線虫試験を実
施した。
施した。
tl線虫試験にはキタネグサレ線虫(Pratylen
chus penetrans)及びセノルハブディテ
ス エレガンス(Caenorhabditis el
egans以下C,elegansと略記する)を用い
た。
chus penetrans)及びセノルハブディテ
ス エレガンス(Caenorhabditis el
egans以下C,elegansと略記する)を用い
た。
キタネグサレ線虫(Pratylenchus pen
etrans)を用いた試験は以下の通りである。すな
わち、抽出液及びその希釈液並びにコントロールとして
純n−ヘキサンを夫々50μlずつ別のスライドグラス
上に落として風乾させ、その上にルーサンカルスにて培
養したキタネグサレ線虫(Pratylenchusρ
enetrans )をベルマン法で脱イオン水中に集
めた液を各々50μl(この中に線虫は20〜40匹い
る。)落とし、そのスライドグラスを、温室にしたシャ
ーレの中に置き、25°Cの照明付インキュベーター中
8時間静置した後、顕微鏡観察を行い、線虫の生死を判
定した。
etrans)を用いた試験は以下の通りである。すな
わち、抽出液及びその希釈液並びにコントロールとして
純n−ヘキサンを夫々50μlずつ別のスライドグラス
上に落として風乾させ、その上にルーサンカルスにて培
養したキタネグサレ線虫(Pratylenchusρ
enetrans )をベルマン法で脱イオン水中に集
めた液を各々50μl(この中に線虫は20〜40匹い
る。)落とし、そのスライドグラスを、温室にしたシャ
ーレの中に置き、25°Cの照明付インキュベーター中
8時間静置した後、顕微鏡観察を行い、線虫の生死を判
定した。
C,elegansを用いた試験も概略同様であり、抽
出物及びその希釈液並びにコントロールとして純n−ヘ
キサンを各々20μβずつ別のスライドグラス上に落と
して風乾し、そめ上に、NG培地にて大腸菌を餌として
培養したC、elegansを20〜100匹移し、こ
の上にNG培地を30μ!加え、そのスライドグラスを
温室にしたシャーレの中に置き、25°Cの照明付イン
キュベーター中で8時間静置したのち、顕微鏡観察を行
い、線虫の生死を判定した。
出物及びその希釈液並びにコントロールとして純n−ヘ
キサンを各々20μβずつ別のスライドグラス上に落と
して風乾し、そめ上に、NG培地にて大腸菌を餌として
培養したC、elegansを20〜100匹移し、こ
の上にNG培地を30μ!加え、そのスライドグラスを
温室にしたシャーレの中に置き、25°Cの照明付イン
キュベーター中で8時間静置したのち、顕微鏡観察を行
い、線虫の生死を判定した。
なお、比較例として、天然栽培法によるフレンチマリー
ゴールド(品種名:ポレロ)の根を乾燥し、前記と同様
の抽出処理を行って得た抽出液及びその希釈液について
、C,elegansを用いた殺線虫試験を行った。
ゴールド(品種名:ポレロ)の根を乾燥し、前記と同様
の抽出処理を行って得た抽出液及びその希釈液について
、C,elegansを用いた殺線虫試験を行った。
これらの試験結果は第1表に示したとおりであり、本発
明方法によって培養されたマリーゴールドの抽出液は、
天然栽培の根から得られたものに匹敵する強い殺線虫力
が認められた。
明方法によって培養されたマリーゴールドの抽出液は、
天然栽培の根から得られたものに匹敵する強い殺線虫力
が認められた。
第 1 表 (生存率二%)
また本実施例及び比較例の抽出液を夫々高速液体クロマ
トグラフ法によりFluka社製のα−ターチェニルを
用いて分析した結果、本実施例の抽出液は0.5μg/
le1.の割合でα−ターチェニルを含有し、比較例の
抽出液には0.4μg7mlのα−ターチェニルが含ま
れていた。
トグラフ法によりFluka社製のα−ターチェニルを
用いて分析した結果、本実施例の抽出液は0.5μg/
le1.の割合でα−ターチェニルを含有し、比較例の
抽出液には0.4μg7mlのα−ターチェニルが含ま
れていた。
比較例2及び3
実施例1においてフレンチマリーゴールドの子葉を、ム
ラシゲ・スクーグの基本培地にショtJAi3重量%、
寒天0.8重量%、ナフタレン酢酸3mg/1、ベンジ
ルアデニン3mg/lを加えたカルス化培地でカルス誘
導を行い、カルス培地と成分及び濃度が同じである増殖
培地を用いて同様の培養処理を行い、その培養物を前記
と同じように抽出処理してキタネグサレ線虫に対する殺
線虫試験を行った。(比較例2) また、カルス化培地及び増殖培地におけるナフタレン酢
酸を3tsg/l、ベンジルアデニンを10mg/lに
して同様の培養を行い、このようにして得た培養物の抽
出液についてC,elegansに対する殺線虫試験を
行った。(比較例3) これらの試験結果は第2表に示したとおりであり、オー
キシン濃度が高い増殖培地で組織培養したマリーゴール
ドから得られる抽出液の殺線虫力第 2 表 (生存
率二%) 実施例2ないし4及び比較例4 フレンチマリーゴールド(品種名:ポレロ)の発芽後2
週間経過した子葉(実施例2)を採取し、常法に従い7
0%エタノール及びアンチホルミン液で殺菌後、よく滅
菌精製水で水洗し、これをムラシゲ・スクーグの基本培
地に、シー!糖3重量%、寒天0.8重量%、ナフタレ
ン酢酸1ag/j!を加え、常法により滅菌したカルス
化培地に置床してカルスを誘導し、また、同じく前記マ
リーゴールドの根(実施例3)及び蕾(実施例4)につ
いても同様の条件によってカルスを誘導した。
ラシゲ・スクーグの基本培地にショtJAi3重量%、
寒天0.8重量%、ナフタレン酢酸3mg/1、ベンジ
ルアデニン3mg/lを加えたカルス化培地でカルス誘
導を行い、カルス培地と成分及び濃度が同じである増殖
培地を用いて同様の培養処理を行い、その培養物を前記
と同じように抽出処理してキタネグサレ線虫に対する殺
線虫試験を行った。(比較例2) また、カルス化培地及び増殖培地におけるナフタレン酢
酸を3tsg/l、ベンジルアデニンを10mg/lに
して同様の培養を行い、このようにして得た培養物の抽
出液についてC,elegansに対する殺線虫試験を
行った。(比較例3) これらの試験結果は第2表に示したとおりであり、オー
キシン濃度が高い増殖培地で組織培養したマリーゴール
ドから得られる抽出液の殺線虫力第 2 表 (生存
率二%) 実施例2ないし4及び比較例4 フレンチマリーゴールド(品種名:ポレロ)の発芽後2
週間経過した子葉(実施例2)を採取し、常法に従い7
0%エタノール及びアンチホルミン液で殺菌後、よく滅
菌精製水で水洗し、これをムラシゲ・スクーグの基本培
地に、シー!糖3重量%、寒天0.8重量%、ナフタレ
ン酢酸1ag/j!を加え、常法により滅菌したカルス
化培地に置床してカルスを誘導し、また、同じく前記マ
リーゴールドの根(実施例3)及び蕾(実施例4)につ
いても同様の条件によってカルスを誘導した。
培養はいずれも25°Cの温度で連続照明下にて行い、
1ケ月後に培養物を前記と同組成の増殖培地に継代し、
さらに同一培養条件下で1ケ月間増殖を行い、さらに1
ケ月間隔で2回継代して増殖させ、このようにして得た
培養物は、いずれも黄緑色から褐色のカルスに多数の短
い根の分化を起こしたものであった。
1ケ月後に培養物を前記と同組成の増殖培地に継代し、
さらに同一培養条件下で1ケ月間増殖を行い、さらに1
ケ月間隔で2回継代して増殖させ、このようにして得た
培養物は、いずれも黄緑色から褐色のカルスに多数の短
い根の分化を起こしたものであった。
このようにして培養されたマリーゴールドを常温、無菌
下で乾燥し、軽く砕き、Ig当たり50m j2のn−
ヘキサンを加えて30分間抽出を行い、固形物を濾別し
て抽出液を形成し、高速液体クロマトグラフ法による分
析の結果、いずれの実施例における抽出液も0.04μ
g7mlのα−ターチェニルを含有していた。
下で乾燥し、軽く砕き、Ig当たり50m j2のn−
ヘキサンを加えて30分間抽出を行い、固形物を濾別し
て抽出液を形成し、高速液体クロマトグラフ法による分
析の結果、いずれの実施例における抽出液も0.04μ
g7mlのα−ターチェニルを含有していた。
また、比較のため合成されたα−ターチェニル(Flu
ka社製)をn−ヘキサン溶液に0.0411g/ r
mlの割合で加えた試料をつくり、前記各抽出液と共に
殺線虫試験を行った。(比較例4) これらの試験結果は第3表に示したとおりであり、マリ
ーゴールドはいずれの組織部位から組織培養したものも
同じように殺線虫性を有しており、且つα−ターチェニ
ルの濃度が同じであっても、マリーゴールド培養物から
の抽出液は合成α−ターチェニルを含むものに較べて明
らかに強い殺線虫性を有していることがわかった。
ka社製)をn−ヘキサン溶液に0.0411g/ r
mlの割合で加えた試料をつくり、前記各抽出液と共に
殺線虫試験を行った。(比較例4) これらの試験結果は第3表に示したとおりであり、マリ
ーゴールドはいずれの組織部位から組織培養したものも
同じように殺線虫性を有しており、且つα−ターチェニ
ルの濃度が同じであっても、マリーゴールド培養物から
の抽出液は合成α−ターチェニルを含むものに較べて明
らかに強い殺線虫性を有していることがわかった。
実施例5及び6
フレンチマリーゴールド[品種名:ボレロ(実施例5)
]及びアフリカンマリーゴールド〔品種名ニオレンジハ
ワイ(実施例6)〕の発芽後2週間経過した子葉を採取
し、エタノール及びアンチホルミン液で殺菌したのち滅
菌精製水で水洗し、これらをムラシゲ・スクーグの基本
培地にシヨ糖3重量%、寒天0.8重量%、ナフタレン
酢酸1mg/l、ベンジルアデニン3mg/lを加え、
常法により滅菌したカルス化培地に置床してカルスを誘
導した。カルス化培養はどちらも25°Cの温度で連続
照明を行い、1ケ月後に得られた培養物を前記と同一組
成の増殖培地に継代し、さらに同一培養条件で1ケ月間
増殖を行った。その後さらにもう一度同一組成の培地及
び同一条件で1ケ月間増殖を行った。
]及びアフリカンマリーゴールド〔品種名ニオレンジハ
ワイ(実施例6)〕の発芽後2週間経過した子葉を採取
し、エタノール及びアンチホルミン液で殺菌したのち滅
菌精製水で水洗し、これらをムラシゲ・スクーグの基本
培地にシヨ糖3重量%、寒天0.8重量%、ナフタレン
酢酸1mg/l、ベンジルアデニン3mg/lを加え、
常法により滅菌したカルス化培地に置床してカルスを誘
導した。カルス化培養はどちらも25°Cの温度で連続
照明を行い、1ケ月後に得られた培養物を前記と同一組
成の増殖培地に継代し、さらに同一培養条件で1ケ月間
増殖を行った。その後さらにもう一度同一組成の培地及
び同一条件で1ケ月間増殖を行った。
このようにして得られた培養物は、いずれも黄緑色のカ
ルスであり、また1回当りの増殖によって、生重量比で
約20倍の増加を示した。
ルスであり、また1回当りの増殖によって、生重量比で
約20倍の増加を示した。
前記培養されたマリーゴールド培養物を常温。
無菌下で乾燥し、軽く砕いたのち、Ig当たり50m1
の割合のn−ヘキサンと混合し、30分間抽出を行い、
固形物を濾別して抽出液を得た。
の割合のn−ヘキサンと混合し、30分間抽出を行い、
固形物を濾別して抽出液を得た。
このようにして得られた抽出液及びその希釈液を用い、
前記実施例1と同様にして殺線虫試験を行った。
前記実施例1と同様にして殺線虫試験を行った。
試験の結果は第4表に示したとおりであり、フレンチマ
リーゴールド及びアフリカンマリ−のいずれもその培養
物から得られた抽出液は優れた殺線虫性を示すものであ
った。
リーゴールド及びアフリカンマリ−のいずれもその培養
物から得られた抽出液は優れた殺線虫性を示すものであ
った。
第 4 表 (生存率二%)
実施例7及び8
フレンチマリーゴールド(品種名:ボレロ)の発芽後2
週間目の子葉を採取し、常法に従って70%エタノール
及びアンチホルミン液で殺菌し、よく滅菌精製水で水洗
し、これをムラシゲ・スクーグの基本培地にシgL3重
量%、寒天0.8重量%、インドール酢酸ltag/l
、ベンジルアデニン1mg/lを加え常法により滅菌し
た培地(実施例7)及びムラシゲ・スクーグの基本培地
にシg糖3重量%、寒天0.8重量%、ナフタレン酢酸
ll1g/i、カイネチンlag/lを加え常法により
滅菌した培地(実施例8)に置床し、カルスを誘導した
。
週間目の子葉を採取し、常法に従って70%エタノール
及びアンチホルミン液で殺菌し、よく滅菌精製水で水洗
し、これをムラシゲ・スクーグの基本培地にシgL3重
量%、寒天0.8重量%、インドール酢酸ltag/l
、ベンジルアデニン1mg/lを加え常法により滅菌し
た培地(実施例7)及びムラシゲ・スクーグの基本培地
にシg糖3重量%、寒天0.8重量%、ナフタレン酢酸
ll1g/i、カイネチンlag/lを加え常法により
滅菌した培地(実施例8)に置床し、カルスを誘導した
。
培養はどちらも25℃の温度で連続照明を行い、1ケ月
後に得られた培養物をそれぞれ前記と同じ組成の培地に
継代し、同一培養条件でさらに1ケ月間増殖を行い、そ
の後1ケ月間隔で2回継代して増殖させて黄緑色のカル
スを得た。
後に得られた培養物をそれぞれ前記と同じ組成の培地に
継代し、同一培養条件でさらに1ケ月間増殖を行い、そ
の後1ケ月間隔で2回継代して増殖させて黄緑色のカル
スを得た。
このようにして培養したマリーゴールド培養物を常温、
無菌下で乾燥し、軽く砕いたのち、1g当たす50+/
!のn−ヘキサンを加えて30分間抽出を行い、固形物
を濾別して抽出液を得た。前記抽出液及びその希釈液を
用いて実施例1に示したと同じ方法で殺線虫試験を行っ
た。
無菌下で乾燥し、軽く砕いたのち、1g当たす50+/
!のn−ヘキサンを加えて30分間抽出を行い、固形物
を濾別して抽出液を得た。前記抽出液及びその希釈液を
用いて実施例1に示したと同じ方法で殺線虫試験を行っ
た。
試験結果は第5表に示したとおりであり、オーキシン及
びサイトカイニンの種類に関係なく、これらの培養物の
抽出液には優れた殺線虫性が認められた。
びサイトカイニンの種類に関係なく、これらの培養物の
抽出液には優れた殺線虫性が認められた。
Claims (3)
- (1)マリーゴールドの組織培養において、オーキシン
あるいはオーキシンとサイトカイニンを含有するカルス
化培地でカルス誘導したのち、オーキシンを0.01m
g/lないし1mg/lの低い濃度に規制した増殖培地
で増殖させることを特徴とするマリーゴールドの組織培
養法。 - (2)マリーゴールドの種類がフレンチマリーゴールド
である特許請求の範囲(1)に記載の方法。 - (3)マリーゴールドの種類がアフリカンマリーゴール
ドである特許請求の範囲(1)に記載の方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP62311522A JP2649164B2 (ja) | 1987-12-08 | 1987-12-08 | マリーゴールドの組織培養法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP62311522A JP2649164B2 (ja) | 1987-12-08 | 1987-12-08 | マリーゴールドの組織培養法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01153087A true JPH01153087A (ja) | 1989-06-15 |
| JP2649164B2 JP2649164B2 (ja) | 1997-09-03 |
Family
ID=18018251
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP62311522A Expired - Lifetime JP2649164B2 (ja) | 1987-12-08 | 1987-12-08 | マリーゴールドの組織培養法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2649164B2 (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN103760259A (zh) * | 2014-01-07 | 2014-04-30 | 南开大学 | 一种利用孔雀草花朵对Cd-PCB污染土壤的指示方法 |
| CN117898209A (zh) * | 2024-03-19 | 2024-04-19 | 云南省农业科学院花卉研究所 | 一种色素万寿菊制种过程中快速收集花粉的方法 |
| CN119234698A (zh) * | 2024-12-04 | 2025-01-03 | 云南省农业科学院花卉研究所 | 一种降低多倍化色素万寿菊嵌合体的方法 |
-
1987
- 1987-12-08 JP JP62311522A patent/JP2649164B2/ja not_active Expired - Lifetime
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN103760259A (zh) * | 2014-01-07 | 2014-04-30 | 南开大学 | 一种利用孔雀草花朵对Cd-PCB污染土壤的指示方法 |
| CN117898209A (zh) * | 2024-03-19 | 2024-04-19 | 云南省农业科学院花卉研究所 | 一种色素万寿菊制种过程中快速收集花粉的方法 |
| CN117898209B (zh) * | 2024-03-19 | 2024-06-11 | 云南省农业科学院花卉研究所 | 一种色素万寿菊制种过程中快速收集花粉的方法 |
| CN119234698A (zh) * | 2024-12-04 | 2025-01-03 | 云南省农业科学院花卉研究所 | 一种降低多倍化色素万寿菊嵌合体的方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2649164B2 (ja) | 1997-09-03 |
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