JPH11509407A

JPH11509407A - 細胞内相を有する感染性病原体に対するワクチン、ｈｉｖ感染の治療および予防用組成物、抗体と診断方法

Info

Publication number: JPH11509407A
Application number: JP9504866A
Authority: JP
Inventors: シェルマン，ジャン−クロード; ル、コンテル，キャロル; ガレア、パスカル
Original assignee: Institut National de la Sante et de la Recherche Medicale INSERM
Current assignee: Institut National de la Sante et de la Recherche Medicale INSERM
Priority date: 1995-06-30
Filing date: 1996-06-28
Publication date: 1999-08-24
Anticipated expiration: 2016-06-28
Also published as: DE69615685D1; EP0835309A2; WO1997002344A2; FR2735984A1; CN1117148C; US6113902A; ES2165510T3; DE69615685T2; CN1193349A; CA2223825A1; FR2735984B1; AU6462396A; JP4036895B2; EP0835309B1; ATE206456T1; PT835309E; DK0835309T3; WO1997002344A3

Abstract

(57)【要約】感染性病原体がその増殖周期中に宿主で少くとも１回の細胞内相を有している、感染疾患の治療および／または予防用のワクチンが開示されている。ワクチンは、感染性病原体が細胞を出ていくときにその細胞内感染性病原体により運び去られ、かつ上記感染性病原体によりさらされる細胞要素の少くとも１つの潜在エピトープを含んでなる。ＨＩＶ感染の治療および／または予防用の組成物、対象ペプチドに対する抗体、および診断方法も開示されている。

Description

【発明の詳細な説明】細胞内相を有する感染性病原体に対するワクチン、ＨＩＶ感染の治療および予防用組成物、抗体と診断方法本発明は、新タイプのワクチン、特にＨＩＶ症状の治療、予防および診断用の組成物に関する。更に詳しくは、本発明は哺乳動物、特にヒトでＨＩＶウイルスを直接または間接的に中和しうる免疫反応を生じさせることができるペプチドに関する。ＨＩＶ‐１複製の阻害においてβ₂‐ミクログロブリン（β２ｍ）に対するモノクローナル抗体の重要性は、特に特許ＥＰ‐Ｂ‐０，４７０，９８９と様々な文献で既に記載されている。特に、これらの抗体は２つのメカニズムで、即ち直接ウイルスで、およびβ２ｍを伴う細胞で作用することを証明することが可能であった。本発明はこれらの予備的な要素を発展させたものであり、ＨＩＶウイルスを完全にまたは部分的に中和する抗体を作ることができる、β２ｍから得られるかまたは等価構造を有する、ペプチド配列の同定に基づいている。用いられるメカニズムの複雑さからみて、“ＨＩＶウイルスの中和”とは、ウイルスを破壊するおよび／またはその増殖を妨げるin vivo 効果を有したメカニズムを意味すると理解される。 in vitroにおいて、これらの中和抗体は、血清反応陰性の女性の授精のために、ＨＩＶに血清反応陽性の男性の精液のような、ヒトに再接種または再導入させるべき体液を中和する上で用いることができる。しかしながら、更に一般的には、本発明は高い変異力を有した寄生体またはウイルスタイプの感染性病原体に対して特に使用できる、新規なワクチンアプローチに基づいている。伝統的予防接種の関係においては、感染性病原体の成分に対する中和抗体を作ることが求められているが、例えばＨＩＶのような病原体が高い変異力を示すときには、この戦略では、変異体および耐性単離体へと非常に急速に変遷していく特定の単離体について、せいぜい限られた結果を出せるだけである。新規なワクチンアプローチは異なる考え方に基づいており、周期中に細胞内相を有するいくつかの感染性病原体に適用しうる。宿主の感染細胞から感染性病原体の増殖中に、感染性病原体が宿主細胞の決定基の成分を運び去ることは、ある病原体で知られているか、または特に本発明の一部を構成するＨＩＶの場合にはそれを証明することが可能である。本発明の主題の１つは、感染性病原体自体ではなく、それが運び去る決定基の成分をターゲットとして取り上げることにあり、たとえ病原体自体が変異していたとしても一定のままであるこれらの細胞決定基に対して予防接種を行うことができる。このタイプのアプローチは、抗原が宿主細胞に結合されていること、という直接的制限をもちろん有しており、細胞外感染性病原体により運び去られたときだけさらされる細胞決定基の潜在エピトープ、あるいは細胞によるその自然提示に非免疫原性であって、ビリオンの表面に現れたときに修飾されるエピトープに関し、このような予防接種を行うことだけが可能である。例えば、ＨＩＶの場合には、β₂‐ミクログロブリンがＨＩＶウイルスの増殖中とその細胞外継代中にさらされるいくつかの潜在エピトープを有していることを証明することができた。したがって、予防接種の場合に、一方で自己免疫反応と、他方で試験された異なるＨＩＶ単離体に結合されているエピトープがないため、その予防接種は有効であり、これはウイルス自体の変異と無関係である。このタイプの予防接種は、特に細胞内寄生体と、例えばＣＭＶ、ＨＰＶ、ＨＳＶおよびＨＩＶのようなエンベロープウイルスについて選択することができる。このタイプの予防接種はすべての場合に用いることはできないが、より伝統的なアプローチに抵抗する感染性病原体にとって非常に有用な代替法となりうることは、はっきり理解されるであろう。したがって、本発明は、細胞外継代中に細胞内感染性病原体により運ばれて、感染性病原体によりさらされる細胞要素の少くとも１つの潜在エピトープを含んでなることを特徴とする、感染性病原体に対するワクチンに関する。好ましくは、この感染性病原体は寄生体またはエンベロープウイルスであり、潜在エピトープは細胞の表面近くに位置している。 “潜在エピトープ”とは、隠されているかまたは修飾されていて、そのため免疫系により外来であると認識され、このため対応決定基の破壊で自己免疫反応を生じずに、予防接種に使用できる、宿主の細胞決定基のエピトープを表す意味である。潜在エピトープは、明らかにさらされて、即ち感染性病原体により運ばれたときに免疫系により接近および認識されるべきである（潜在しているままだと、予防接種は不可能であろう）。 β₂‐ミクログロブリンの場合には、このタイプのエピトープの存在を証明することができ、尿路によるβ₂‐ミクログロブリンの排出中に実際に天然形でみられる。したがって、本発明は、配列番号１〜２２または等価配列に相当する少くとも１つのペプチドを活性成分として含んでなることで特徴付けられる、ＨＩＶ感染の治療または予防用の組成物に関する。“等価配列”とは、in vitroでモノクローナル抗体Ｂ１Ｇ６またはＢ２６２．２によるＨＩＶウイルスの中和を行わせる配列を表した意味である。これらのペプチドは、上記のようなβ₂‐ミクログロブリンの潜在エピトープを構成している。本発明によるペプチドは以下である：０１‐Ｐ１ＩＱＲＴＰＫＩＱＶＹＳＲＨＰＡ（Ｉｌｅ‐Ｇｌｎ‐Ａｒｇ‐Ｔｈｒ‐Ｐｒｏ‐Ｌｙｓ‐Ｉｌｅ‐Ｇｌｎ‐ Ｖａｌ‐Ｔｙｒ‐Ｓｅｒ‐Ａｒｇ‐Ｈｉｓ‐Ｐｒｏ‐Ａｌａ）０２‐Ｐ４ＦＨＰＳＤＩＥＶＤＬＬＫＤＧＥ（Ｐｈｅ‐Ｈｉｓ‐Ｐｒｏ‐Ｓｅｒ‐Ａｓｐ‐Ｉｌｅ‐Ｇｌｕ‐Ｖａｌ‐ Ａｓｐ‐Ｌｅｕ‐Ｌｅｕ‐Ｌｙｓ‐Ａｓｐ‐Ｇｌｙ‐Ｇｌｕ）０３‐Ｐ９ＡＣＲＶＮＨＶＴＬＳＱＰＫＩＶ（Ａｌａ‐Ｃｙｓ‐Ａｒｇ‐Ｖａｌ‐Ａｓｎ‐Ｈｉｓ‐Ｖａｌ‐Ｔｈｒ‐ Ｌｅｕ‐Ｓｅｒ‐Ｇｌｎ‐Ｐｒｏ‐Ｌｙｓ‐Ｉｌｅ‐Ｖａｌ）モノクローナル抗体Ｂ１Ｇ６またはＢ２Ｇ２．２によるウイルスの中和を行わせる、これら１５アミノ酸のより小さな部分（７アミノ酸）を用いることも可能である：０４‐Ｒ‐７‐ＶＲＴＰＫＩＱＶ（Ａｒｇ‐Ｔｈｒ‐Ｐｒｏ‐Ｌｙｓ‐Ｉｌｅ‐Ｇｌｎ‐Ｖａｌ）０５‐Ｓ‐７‐ＫＳＱＰＫＩＶＫ（Ｓｅｒ‐Ｇｌｎ‐Ｐｒｏ‐Ｌｙｓ‐Ｉｌｅ‐Ｖａｌ‐Ｌｙｓ）０６‐Ｆ‐７‐ＥＦＨＰＳＤＩＥ（Ｐｈｅ‐Ｈｉｓ‐Ｐｒｏ‐Ｓｅｒ‐Ａｓｐ‐Ｉｌｅ‐Ｇｌｕ）共通構造ＰＫＩ（３アミノ酸）が、関与している単位であるらしい；このため下記アミノ酸修飾がある：０７‐ＴＬＳＲＴＰＫＩＱＶ（Ｔｈｒ‐Ｌｅｕ‐Ｓｅｒ‐Ａｒｇ‐Ｔｈｒ‐ Ｐｒｏ‐Ｌｙｓ‐Ｉｌｅ‐Ｇｌｎ‐Ｖａｌ）Ｎｏ．１８５０８‐ＩＹＬＴＱＰＫＩＫＶ（Ｉｌｅ‐Ｔｙｒ‐Ｌｅｕ‐Ｔｈｒ‐Ｇｌｎ‐ Ｐｒｏ‐Ｌｙｓ‐Ｉｌｅ‐Ｌｙｓ‐Ｖａｌ）Ｎｏ．１８６０９‐ＩＱＲＴＰＫＩＱＶＹ（Ｉｌｅ‐Ｇｌｎ‐Ａｒｇ‐Ｔｈｒ‐Ｐｒｏ‐ Ｌｙｓ‐Ｉｌｅ‐Ｇｌｎ‐Ｖａｌ‐Ｔｙｒ）Ｎｏ．１８７１０‐ＴＬＳＱＰＫＩＶＫＮ（Ｔｈｒ‐Ｌｅｕ‐Ｓｅｒ‐Ｇｌｎ‐Ｐｒｏ‐ Ｌｙｓ‐Ｉｌｅ‐Ｖａｌ‐Ｌｙｓ‐Ａｓｎ）Ｎｏ．１８８１１‐ＩＱＲＴＰＱＩＶＫＷ（Ｉｌｅ‐Ｇｌｎ‐Ａｒｇ‐Ｔｈｒ‐Ｐｒｏ‐ Ｇｌｎ‐Ｉｌｅ‐Ｖａｌ‐Ｌｙｓ‐Ｔｒｐ）Ｎｏ．１８９１２‐ＩＱＲＴＰＮＩＶＫＷ（Ｉｌｅ‐Ｇｌｎ‐Ａｒｇ‐Ｔｈｒ‐Ｐｒｏ‐ Ａｓｎ‐Ｉｌｅ‐Ｖａｌ‐Ｌｙｓ‐Ｔｒｐ）Ｎｏ．１９０システインおよびグリコシル化部位を導入することも可能である：１３‐ＣＹＮＰＳＤＩＥ（Ｃｙｓ‐Ｔｙｒ‐Ａｓｎ‐Ｐｒｏ‐Ｓｅｒ‐Ａｓｐ‐ Ｉｌｅ‐Ｇｌｕ）１４‐ＹＣＮＰＥＳＴ（Ｔｙｒ‐Ｃｙｓ‐Ａｓｎ‐Ｐｒｏ‐Ｇｌｕ‐Ｓｅｒ‐ Ｔｈｒ）１５‐ＮＦＬＮＣＹＶＳ（Ａｓｎ‐Ｐｈｅ‐Ｌｅｕ‐Ａｓｎ‐Ｃｙｓ‐Ｔｙｒ‐ Ｖａｌ‐Ｓｅｒ）１６‐ＬＮＣＹＶＳＰＳＤ（Ｌｅｕ‐Ａｓｎ‐Ｃｙｓ‐Ｔｙｒ‐Ｖａｌ‐Ｓｅｒ ‐Ｐｒｏ‐Ｓｅｒ‐Ａｓｐ）最後に、種（マウス、霊長類、ウサギ、モルモット）により異なるバリエーションを用いたペプチドを用いることが可能である：１７‐ＫＴＰＱＩＱＶ（Ｌｙｓ‐Ｔｈｒ‐Ｐｒｏ‐Ｇｌｎ‐Ｉｌｅ‐Ｇｌｎ‐ Ｖａｌ）１８‐ＦＨＰＰＱＩＥ（Ｐｈｅ‐Ｈｉｓ‐Ｐｒｏ‐Ｐｒｏ‐Ｇｌｎ‐Ｉｌｅ‐ Ｇｌｕ）１９‐ＦＨＰＰＨＩＥ（Ｐｈｅ‐Ｈｉｓ‐Ｐｒｏ‐Ｐｒｏ‐Ｈｉｓ‐Ｉｌｅ‐ Ｇｌｕ）２０‐ＡＥＰＫＴＶＹ（Ａｌａ‐Ｇｌｕ‐Ｐｒｏ‐Ｌｙｓ‐Ｔｈｒ‐Ｖａｌ‐ Ｔｙｒ）２１‐ＳＱＰＫＴＶＹ（Ｓｅｒ‐Ｇｌｎ‐Ｐｒｏ‐Ｌｙｓ‐Ｔｈｒ‐Ｖａｌ‐ Ｔｙｒ）２２‐ＩＬＳＲＴＰＫＩＱＶ（Ｉｌｅ‐Ｌｅｕ‐Ｓｅｒ‐Ａｒｇ‐Ｔｈｒ‐ Ｐｒｏ‐Ｌｙｓ‐Ｉｌｅ‐Ｇｌｎ‐Ｖａｌ）配列番号１〜２２のこれらペプチドは優先的選択のみを含んでいる；上記されたようにして、等価ペプチドをみつけることが可能である。例５は、等価ペプチドを同定することを可能にする方法について記載している。これらのペプチドは、好ましくはキャリア系に結合される；これは特に免疫反応を行わせるために上記ペプチドのＮおよび／またはＣ末端に連結された１以上のタンパク質断片であってもよい；それらは“複合化タンパク質”と称される。使用できるタンパク質の中では、特に免疫原性の知られたアルブミン、ＫＬＨ（ Keyhole Limpet Hemocyanin ）、ＭＡＰ（Multiple Antigenic Peptide）または他のタンパク質が挙げられる。ジスルフィド架橋のような非ペプチド結合でまたはカルシウムイオンによる結合で連結されたタンパク質またはタンパク質断片を考えることも可能である。本発明による様々なペプチドの研究中に、これは本発明をいずれかに制限するはずがない理論にすぎないが、ＰＫＩ構造が必須の役割を果たしていることがわかった。プロリンは立体配座を決めて、四級ペプチド立体配置の可能性を制限するアミノ酸である。これらの条件下において、ＫＩ（Ｌｙｓ、Ｉｌｅ）は抗体と反応するとさらされる位置に付いている。これらの条件下において、キャリアタンパク質の構築に際して、接近しうるＰＫＩ構造を残しておける構造を好ましくは用意しておくことが勧められる。Ｐ１、Ｐ９およびＰ１０で選択された領域の構造の分析は、可能なアミノ酸を決めるために、特にＲＴＰＫＩＱＶ領域で、アラニンを用いて各アミノ酸を別々に置換する選択のような方法により行える。各ペプチドのビオチニル化と、その後で結合の喪失を調べるために抗体でのＥＩＡによる選択を用いた技術を用いることも可能である。このため、高い予防接種活性を有するリポタンパク質を作るために、問題のエピトープと非タンパク質成分、例えば多糖および／または脂質との複合化を考えることが可能である；ここでも、共有結合またはその他を考えることが可能である。これら様々なタイプの化合物は、化学合成によるか、または組換えタンパク質の生産分野で知られる技術を用いた組換えルートにより得られる。組換え技術の柔軟性は、複数の同一または異なるエピトープを有して、最終産物の活性を高めうるタンパク質を生産することを可能にする。本発明による組成物中に入った様々な成分の同時発現を考えることも可能である。本発明の面の１つによれば、ペプチドがＨＩＶの公知構造タンパク質中に導入されることが可能であろう；特に、対象のペプチドがｇｐ１２０のＶ３ループの超可変領域中に挿入されたコンストラクト（construct ）が使用できる。ｇｐ１２０のＶ３領域は、主要ＨＩＶ‐１中和ドメインであって、ウイルストロピズムの主決定基の１つである。結果的に、このタイプの変異体はＲ７Ｖに連結されたＨＩＶ‐１の中和とその宿主スペクトルの変更を研究する上で有用である。ＨＩＶ‐１の単離体の中におけるｇｐ１２０のＶ３領域の高い変異性が、この領域の優先性のもう１つの理由である。Ｖ３領域における７アミノ酸の配列の置換は、ＨＩＶ‐１ゲノムの別なより保存性の領域における変異よりも、存在しうる組換体を生じる大きなチャンスを有していると思われた。組換体タンパク質ｇｐ１２０／Ｒ７Ｖは、多量の免疫原Ｒ７Ｖを得るために、タンパク質の発現に適した系で並行して発現させることができる。キャリアタンパク質の使用は必須でない；場合により他のキャリア系を用意することが可能である“キャリア系”とは、問題のペプチドに対する免疫反応を生じる単位に導くことができるか、または排除、特に速やかなタンパク質分解からペプチドを保護することができる成分を表した意味である。本発明による組成物は、ペプチドおよび／またはタンパク質の免疫原性を増加させる成分、特に特異的なまたはそうでない免疫アジュバント、例えばフロイントアジュバント、多糖または相当化合物も含んでいてよい。これらは予防接種分野で公知の方法である。本発明による組成物は、選択される投与経路、特に注射経路に適合した形で用いることができる。しかしながら、本発明による組成物では、粘膜の保護を誘導するために、他の経路、特に経口またはエアゾール経路により用いられることが可能であろう。本発明は、上記されたペプチドおよび／またはタンパク質をその場で発現させるように投与される組成物にも関する。特に、本発明は、上記のような少くとも１つの潜在エピトープ、特に配列番号１〜２２を有するペプチドおよび／またはこれらのペプチドを有するタンパク質、あるいは上記のような問題のペプチドとカップリングできるかまたは等価配列を有するタンパク質を発現することができるＤＮＡ発現カセットに関する。 “等価配列”とは、上記されたような等価ペプチドをコードする配列を表した意味である。これらのＤＮＡ発現カセットは、もちろん、その場での発現向けに直接用いても、あるいは上記されたように使用できるペプチドまたはタンパク質を生産させるために用いてもよい。ＤＮＡ配列を用いる予防接種系は公知であって、文献で既に広く記載されている。それらは本質的にヒトで抗原性タンパク質の発現または細胞で抗原性タンパク質の発現を行わせる系であって、それが予防接種に用いられる；形質転換細胞が外部で治療される宿主細胞であるとき、治療はex vivo であると言われる。発現系は高度に多様的である；それらは特に VICAL社の特許および特許出願、ＷＯ９０／１１０９２に記載されているような、特に“むきだしのＤＮＡ”タイプ系であってもよい。この場合に、ペプチドまたはそのペプチドを含むタンパク質をコードするＤＮＡはそのまま注入される；この注入はコードされたタンパク質の発現をいくつかの場合において導く。これらの文献に含まれた情報は、参考のため本記載に明らかに含まれる。特に発現を高めるために、“むきだしのＤＮＡ”系を、それら自体の発現系を含めて用いることも可能であろう。特にプラスミドまたはウイルスタイプの系の組込みまたは自律複製により発現を促進させる系を用いることも可能であろう。挙げられたペプチド配列の発現用の系の中では、ポックスウイルス、アデノウイルス、レトロウイルスおよびヘルペスタイプウイルス、または他の更に最近の系、例えばポリオウイルスを用いる系が挙げられるべきだ。ベクターの中では、体液性応答を生じる、粘膜のためのベクターが好ましくは用いられる。特に下記の他のウイルスも、ワクチンを得るために使用できる： -N.R.Rabinovich et al.,Science,1994,265,1401-1404および引用文献に記載されているようなアデノウイルス -Sue E.Crowford,Journal of Virology,Sept.1994,p.5945-5952に記載されているようなロタウイルス ‐ポックスウイルス、特にワクシニアウイルス、更にPaoletti and Moss による論文に記載されているようなカナリアポックスのような動物ポックスウイルス -N.R.Rabinovich et al.(1994)に記載されているようなインフルエンザウイルス様々な抗原用の予防接種ベクターとしてポリオウイルスを用いることを可能にした技術は、特にRaul Andino et al.,Science,265,1448-51に記載されている。本発明の関係で使用できるこのタイプのコンストラクトは、経口で使用できるワクチンを得ることを可能にする；これをするために、ペプチド、場合によりキャリアタンパク質をコードする配列は、ポリオウイルス、例えば弱毒化 Sabinウイルス中にクローニングされる；様々なエピトープをコードするウイルスのカクテルを用いることも可能である。宿主、特にヒト宿主の細胞でタンパク質の発現用にプラスミドまたはウイルスの使用は公知であり、詳細には説明しない。具体的な構築物は、選択される宿主、エピトープおよびベクターに明らかに依存している。例えば遺伝子療法の関係で提案されているような細胞ワクチンを用いること、患者から細胞を集めること、上記のようなベクターでそれらを形質転換すること、更にはタンパク質をその場で発現させるためにそれらを再移植することも可能である。しかしながら、予防接種の場合には、この方法は非常に便利というわけではない。例えば表面で問題のタンパク質を発現させて、一部の場合にタンパク質の免疫原性を増加させる、多数で得られる細胞、例えば細菌または酵母細胞を用いることが好ましいであろう。例えば、印刷中の T.R.Fouts et al.,Vaccine（1995）13、Tacket C.O.et al. ,Infect．Immun.(1992)60,536‐541および Hone et al.，J.Chim.Invest.(1992) 90,412-420に（ワクチンサポートとしてヒトでその評価について）記載されているようなSalmonellaを発現系として含んでなるワクチンを用いることが可能である。このタイプのワクチンは、本発明によるペプチドを生産する細胞、特に細菌細胞、またはChad P Muller,Immunology Today,vol.15,No.20,1994,p.458-459に記載されているある株の他の予防接種ベクターの使用を要する。本発明によるペプチドまたはタンパク質を生産する細胞は、特にタンパク質が細胞の表面で発現されるとき、および細胞が無毒性かつ非病原性（弱毒化されたまたは死んだ株）であるが、精製後に用いられるペプチドおよび／またはタンパク質を生産するためにも使用できるときには、そのまま用いることができる。このため、細菌細胞と、更に酵母またはそれより高等の細胞、特に動物、植物または昆虫細胞も得ておくことが有利かもしれない。本発明の場合には、特にC.J.Arntzel et al.,Vaccine 94 に記載された技術を用いて植物源のワクチンの使用を行うことが可能である。細胞系によりペプチドまたはタンパク質の発現を行わせる技術と、精製技術は公知である。既に記載されているように、ＤＮＡ配列の活性を高めるアジュバント、特にＤＮＡと複合体を作る成分、例えばカチオン性脂質またはリポソームもしくは微粒子タイプの構造と共に、本発明による組成物を用いることが可能である。本発明は、本発明によるペプチドに対する抗体を含有した組成物、または本発明によるペプチドに対する抗体をコードする配列を含有した組成物にも関する。もちろん、抗体をベースにした組成物の使用は、前者がヒトへの投与に適合していることを要する；それらは特に公知技術によりヒト化された抗体であるか、またはＤＮＡ配列からその場で直接発現される。本発明は、本発明のペプチドに対する、ＨＩＶウイルスを中和できる抗体の使用にも関し、特に本発明は、このタイプの抗体を含む抗血清、または例えば免疫精製により上記血清から得られる抗体に関する。本発明は、本発明によるエピトープの１つに対する抗体の存在が患者の血清で検出されることを特徴とする、診断方法にも関する。この方法は、抗体を同定するいずれか公知の方法、特にＥＬＩＳＡおよびＲＩＡ法と、それから派生するすべての方法により行える。これらすべての方法は、好ましくは、上記された抗原性ペプチドへの問題の抗体の結合と、その後でこの結合の視覚化に基づいている。この診断にはかなり関心がある；実際に、例では、血清反応陽性の個体が、本発明による抗体を有するＨＩＶの場合に、非常に多くの場合で進行せず、即ち彼らはエイズを発症させないことを示している。この場合に、その診断は非常に好ましく、高価な治療を避けることが可能である。これは妊娠の場合に特に当てはまり、母親でこれら抗体の存在（ＨＩＶ＋）は新生児の非感染に至るらしい。本発明による組成物の生産は、公知の技術、化学的ルートによるタンパク質の合成、化学的ルートによるＤＮＡの合成またはＰＣＲタイプ増幅による増殖によって行える。タンパク質の場合、これらは適切な合成を用いた組換えルートにより得ることもできる。下記例は、本発明の他の特徴および利点を証明することを可能にするであろう。添付図面において、 ‐図１Ａおよび１Ｂは、様々な抗原についてＲ７Ｖ‐ＫＬＨで免疫されたウサギの血清の反応性を示したＥＬＩＳＡについて表し、 ‐図２は、特にβ２ｍで免疫されたウサギの抗血清の反応性を示したＥＬＩＳＡについて表し、 ‐図３Ａ〜３Ｄは、異なる抗血清と選択されたペプチドとのＥＬＩＳＡについて表し、 ‐図４は、異なる抗β２ｍ抗体でのＲ７Ｖに関するＥＬＩＳＡについて表し、 ‐図５は、抗β２ｍ抗体およびウサギ血清でのＲ７Ｖ‐ＢＳＡおよびβ２ｍに関するＥＬＩＳＡについて表し、 ‐図６〜１３は、ＭＴ４およびＰＢＬにおいてＨＩＶウイルスの異なる単離体の中和に対する異なる患者の血清の効果を示した図について表す。例１この例では、キャリアタンパク質にカップリングされた選択ペプチドに対するウサギの免疫反応を証明することを可能にしている。ペプチド抗原７ＡＡをＫＬＨ（Keyhole Limpet Hemocyanin ）にカップリングさせ、完全フロイントアジュバントの存在下でウサギに注入する。動物をＤ０、Ｄ１４、Ｄ２８、Ｄ４２に完全フロイントアジュバントの存在下で免疫し、試験採血を免疫の３５、４９、５６および７９日前に行う。用いられたペプチドはＲＶ７‐ＫＬＨ、Ｓ７Ｋ‐ＫＬＨおよびＦ７Ｅ‐ＫＬＨである。ペプチドＲ７Ｖ（ＲＴＰＫＩＱＶ）は、カップリングを行うために、２アミノ酸で伸長させた。免疫原として用いられた構造はＲＴＰＫＩＱＶＧＹである。免疫されたウサギ６１８の抗体をＥＬＩＳＡで測定し、様々なキャリアタンパク質にカップリングされた（ＫＬＨ、ＢＳＡ（牛血清アルブミン）またはＭＡＰ（Multiple Antigenic Peptide）にカップリングされた）ペプチドをウェルの底で用いた。図は、血清の２つの希釈液ｄ１００およびｄ１０００、即ち１／１００および１／１０００希釈液で、または異なる時間で得られた結果を表している。ＥＬＩＳＡ法は下記のように適用する：ＥＬＩＳＡ法１）９６ウェルプレート（Immulon IV-Dynatech ）への抗原の付着・炭酸緩衝液ｐＨ９．６で抗原を希釈する →（Ａｇ）最終＝１μg/ml ・１００μｌ／ウェル、即ち１００ｎｇ／ウェルで分配する・３７℃で２時間または４℃で一夜インキュベートする（湿気雰囲気）２）洗浄・０．０５％ＰＢＳ／ Tween２０の溶液で５回洗浄３）ウェルの飽和・１０％ＰＢＳ／ウマ（またはウシ）血清の溶液３００μｌ／ウェルで分配する・３７℃で１時間インキュベートする（湿気雰囲気）４）洗浄（２）と同一）５）特異的抗血清とのインキュベート・１０％ＰＢＳ／ウマ血清で血清を（１／５０、１／１００、１／１０００）希釈する・１００μｌ／ウェルで分配し、３７℃で１時間インキュベートする（湿気雰囲気）６）洗浄（２）と同一）７）第二抗体（ペルオキシダーゼにカップリングされたヒツジＩｇ〜ヒトＩｇ）とのインキュベート・１０％ＰＢＳ／ウマ血清で第二抗体を２／１０００希釈する・１００μｌ／ウェルで分配し、３７℃で１時間インキュベートする（湿気雰囲気）８）洗浄（２）と同一）９）ＯＰＤによる視覚化・ホスホクエン酸緩衝液（０．１Ｍ、ｐＨ５．５）２５ｍｌにＯＰＤ１０ｍｇを溶解させる・最後にＨ₂Ｏ₂１０μｌを加える・１００μｌ／ウェルで分配し、暗所下室温で３０分間インキュベートする（４０５ｎｍで読取る）・１２．５％Ｈ₂ＳＯ₄５０μｌで反応を停止させる１０）４９２ｎｍで読取る図１Ａおよび１Ｂは、Ｒ７Ｖ‐ＫＬＨで免疫されたウサギ６１８で得られた結果を示す。抗Ｒ７Ｖ反応性は、Ｒ７Ｖ‐ＢＳＡおよびＢＳＡ間の差異を、抗Ｒ７Ｖ反応性が血清の抗ＫＬＨ応答により遮蔽されているＲ７Ｖ‐ＫＬＨおよびＫＬＨと比較してみると、明らかに現れている。抗Ｒ７Ｖ反応性はＤ１３２よりもＤ６８の方が強いことに、留意されるべきだ。反応の特異性は、ＢＳＡタンパク質が用いられると大きい。図２も、オリジナルタンパク質β２ｍの良好な認識を示している。免疫されたウサギの抗血清は、Ｒ７Ｖ‐ＢＳＡと、たとえＰ１との反応性が弱いとしても、Ｒ７Ｖを選択するために用いられたＰ１、Ｐ４およびＰ９と称されるオリジナルペプチドとで、高い反応性を証明している（図３Ａ〜３Ｄ）。図４は、Ｂ１Ｇ６およびＢ２Ｇ２．２によるＲ７Ｖの認識が用量に依存して、Ｃ２１．４８の認識が良くないことを証明している；したがって、ｍＡｂＢ１Ｇ６およびＢ２Ｇ２．２が相当ペプチドを選択するために用いられることが好ましい。これらの結果は、ＢＳＡにカップリングされたＲ７Ｖエピトープが良好な免疫反応を生じうることを証明している。例２ＨＩＶ‐１ＬＡＶｇｐ１２０のＶ３ループ中へのＲ７Ｖの導入組換えプロウイルスの構築この例の目的は、ＨＩＶ‐１ＬＡＶｇｐ１２０の第三可変領域Ｖ３中にＲ７Ｖ配列を導入することである。方法キメラ組換えウイルスをＰＣＲ特異性変異誘発により構築した。Ｒ７Ｖ配列と、ｇｐ１２０のＶ３領域の７アミノ酸がＲ７Ｖ配列で置換されたＨＩＶ‐１ＬＡＶとをベースにした２つのコンストラクトを得た。変異配列の位置は下記表に示されている：ＨＩＶ‐１ＬＡＶ（Ｖ３） NNNTRKSIRIQRGPGRAFVT Ｒ７Ｖ RTPKIQV （１）ＲＰＬＲ７Ｖ RTPKIQV （２）ＰＬＧベクターBluescript中にクローニングされたＨＩＶ‐１ＬＡＶのＥｃｏＲＩ₅₂₇₈ ‐ＸｈｏＩ₈₄₀₁断片を、後のコンストラクトのための鋳型として用いた。第一段階では、一端でＢｇｌII制限部位を含むプライマーと、他端でＲ７Ｖをコードするヌクレオチド配列とに隣接するＤＮＡ断片を、ＰＣＲ増幅によりＲＰＬおよびＰＬＧコンストラクトについて合成した。用いられる変異誘発オリゴヌクレオチドは、ＲＰＬコンストラクトの場合に（＋）プライマーＡＣＡＣＣＡＡＡＧＡＴＡＣＡＡＧＴＴＧＴＴＡＣＡＡＡＴＡＧＧＡＡＡＡおよび（−）プライマーＴＴＧＴＡＴＣＴＴＴＧＧＴＧＴＴＣＴＣＴＧＧＡＴＣＣＧＧＡＴＡＣＴＴＴ、ＰＬＧコンストラクトの場合に（＋）プライマーＣＧＴＡＣＡＣＣＡＡＡＡＡＴＣＣＡＧＧＴＣＣＡＧＡＧＡＧＧＡＣＣＡおよび（−）プライマーＧＡＴＴＴＴＴＧＧＴＧＴＡＣＧＣＧＴＡＴＴＧＴＴＧＴＴＧＧＧＴＣＴからなっていた。第二段階では、各コンストラクトについて２つのＰＣＲ産物を混合し、ＢｇｌII制限部位を含むプライマーを用いて増幅させた。ＲＰＬおよびＰＬＧ断片を酵素ＢｇｌIIで開裂させ、ＢｇｌIIで開裂されたＨＩＶ‐１ＬＡＶのＥｃｏＲＩ₅₂₇₈ ‐ＸｈｏＩ₈₄₀₁断片を含むベクターBluescript中に挿入した。Ｒ７Ｖ配列に加えて、増幅プライマーはヌクレオチド配列に修飾を含んでおり、それはアミノ酸配列の追加修飾なしにＲＰＬおよびＰＬＧコンストラクトに各々新たなＢａｍＨＩおよびＭｌｕＩ制限部位を出現させる。新たな制限部位を用いて、変異配列をスクリーニングした。最後に、ＲＰＬおよびＰＬＧコンストラクトを含んだＨＩＶ ‐１ＬＡＶのＥｃｏＲＩ₅₂₇₈‐ＸｈｏＩ₈₄₀₁断片を、ＥｃｏＲＩおよびＸｈｏＩ制限部位を用いた相同的組換えによりプラスミドｐＮＬ４‐３中に挿入した。コンストラクトを制限酵素分析によりチェックした。真核細胞のトランスフェクション E.coli ＴＧ１２００ｍｌのプラスミドＤＮＡをQiagenミディプレパレーシ養物をカルシウム共沈降技術によりプラスミド７μｇでトランスフェクトした。翌日、細胞の単層をグリセロールで処理し、ＣＥＭ細胞系または健常者ドナーから得られるＰＨＡにより活性化された一次血液リンパ球（ＰＢＬ、１０⁶細胞／ｍｌ）との共培養物中にいれた。ＣＥＭまたはＰＢＬ細胞を２日後に単層のＣＯＳ細胞から分離して、別に培養した。ウイルスの生産ＣＯＳまたはＰＢＬ細胞から得られた遊離細胞上澄１ｍｌを超遠心し、沈降したウイルスを標準逆転写酵素反応によりチェックした。一部の実験では、細胞上澄１００μｌをｐ２４ｇａｇタンパク質の生産について試験した。ＣＯＳ細胞のトランスフェクションおよびＣＥＭ細胞との共培養４×１０⁶のＣＯＳ細胞をカルシウム共沈降技術によりプラスミド７μｇでトランスフェクトした。次いで、ＣＥＭ細胞を最終用量５ｍｌで４×１０⁵細胞／ｍｌの量で加えた。共培養の２日後に、懸濁状態のＣＥＭ細胞を単層のＣＯＳ細胞から分離した。ＣＥＭ培養上澄の逆転写酵素活性はcpm/mlで示されている。ＰＢＬの感染２．５×１０⁶のＰＢＬを、５０００cpm/１０⁶ＰＢＬの量でトランスフェクション後に得られた１９９４年１２月１９日の無細胞上澄で感染させた（表１）。トランスフェクション後１７日目に、２×１０⁶の新たに単離されたＰＢＬを２ ×１０⁶の感染ＰＢＬに加えた（ＲＰＬ１＋ＰＢＬ、ＰＬＧ２＋ＰＢＬ）。培養上澄の逆転写酵素活性はcpm/mlで示されている。ＣＯＳ細胞のトランスフェクションおよびＰＢＬとの共培養４×１０⁶のＣＯＳ細胞をカルシウム共沈降技術によりプラスミド７μｇでトランスフェクトした。次いで、ＰＨＡで刺激されたＰＢＬ細胞を最終用量５ｍｌで１０⁶細胞／ｍｌの量で加えた。共培養の２日後に、懸濁状態のＰＢＬを単層のＣＯＳ細胞から分離した。ＰＢＬ培養上澄の逆転写酵素活性はcpm/mlで示されている。例３この例の目的は、ＨＩＶのインヒビターでありうる抗体（抗β₂ミクログロブリン抗体）を患者の血清で検出するために、特に進行していない患者の血清で保護抗体の存在を証明するために、選択されたペプチドを用いることである。“進行していない患者”または“ＮＰ”とは、１０年間以上も血清反応陽性であって、エイズを発症していない、特にＴ４細胞レベルが正常である患者を表す。物質および方法１／用いられるペプチドを合成して、Neosystem（フランス）によりＢＳＡにカップリングさせた。２／患者の血清はＥＬＩＳＡで使用前に−２０℃または−８０℃で貯蔵する。３／ヒトまたはウサギＩｇに対する第二抗体はAmersham（フランス）から得た。ＯＰＤはSigma（フランス）から得る。血清反応陽性患者の血清でのＥＬＩＳＡ１／患者の血清中における抗Ｒ７Ｖ抗体の存在（力価１／１００および１／１０００）２／進行していない（培養でウイルス複製のない）人々の試験血清４６例のうち、血清１６例はＲ７Ｖに陽性であり（３７％）、２７例は１／１００に陰性のままであり（６３％）、血清３例は調べることが不可能である（表１）。３／進行していない患者４６例のうち、３４例を抗ペプチド抗体：Ｒ７Ｖ、Ｐ１、Ｐ４、Ｐ９の検出について試験した。血清１４例は少くとも１つのペプチドに陽性であり（５１．８％）、１３例は１／１００に陰性のままである。血清４例は陽性または陰性に分類することができなかった（表２）。例４下記試験では、抗Ｒ７Ｖ抗体を有するものの進行していない患者で、様々なＨＩＶ単離体、特にＢＲＵおよびＮＤＫを中和する抗体を検出することを可能にした。これは、本発明による治療で生じる抗体のＨＩＶに対する保護特徴と中和との間で良好な相関を示すことができる。物質および方法ＭＴ４細胞の培養ＭＴ４細胞は不死細胞（ＣＤ４＋）であって、成人のＴ白血病に本来由来するＨＩＶ‐１の細胞病原性効果に対して非常に感受的である。その細胞を１０％牛胎児血清、１％グルタミンおよび１％抗生物質で補充されたＲＰＭＩ培地の存在下で培養する。ＰＢＬの培養リンパ球を、１０％牛胎児血清、１％グルタミン、１％抗生物質、２μg/mlポリブレン、２０IU/ml インターロイキン２（ＩＬ‐２）を含む完全ＲＰＭＩ培地中において、フィトヘマグルチニンＰ（ＰＨＡＰ）で３日間刺激する。次いで細胞を洗浄し、完全ＲＰＭＩ培地中１０⁶細胞／ｍｌの量で培養する。中和試験血清を試験で用いる前に、補体除去およびロ過する。ＭＴ４の中和血清を０．８ｍｌの全容量で２４ウェルプレート（Costar）で希釈する。ＨＩＶ‐１ＢＲＵウイルス（ストック溶液の１０^-1希釈液１００μｌ）またはＨＩＶ‐１ＮＤＫウイルス（ストック溶液の１０^-3希釈液１００μｌ）を加え、混合液を３７℃および５％ＣＯ₂で１時間３０分にわたりインキュベートする。次いで細胞を２００μｌ／ウェルおよび１．５×１０⁶細胞／ｍｌの量で分配する。感染の３日後に、培養物を１０％ＲＰＭＩ培地で（１／３）希釈する。ＨＩＶ ‐１ウイルスによる細胞の感染は、シンシチウム（多核巨細胞）の形成を観察することにより、顕微鏡下で毎日モニターする。異なる血清によるウイルスの中和は、（＋）原型ＨＩＶにより誘導されるシンシチウムの形成と比較して、シンシチウムの不在（−）またはほんのわずかなシンシチウム（＋／−）により決める。ＰＢＬの中和血清（５０μｌ）を９６ウェルプレートでＨＩＶ‐１ＢＲＵウイルス（ストック溶液の２×１０^-1希釈液５０μｌ）と混合し、３７℃で５％ＣＯ₂に１時間３０分おく。次いで混合液を２４ウェルプレート（Costar）中の１０⁶ＰＢＬに加え、培養物を３７℃および５％ＣＯ₂で３日間維持する。次いで細胞を洗浄し、２５ｃｍ²培養フラスコ中１０⁶細胞／ｍｌの量で培養する。ウイルスの生産は、“逆転写酵素”活性をアッセイすることにより、３または４日毎にモニターする。“逆転写酵素”（ＲＴ）活性のアッセイ遠心培養上澄（１５００ｒｐｍ、ＲＴ、１０分間）１ｍｌをＴＬ１００ローター（Beckman ）で超遠心（９５０００ｒｐｍ、４℃、５分間）により１００倍濃縮する。得られたペレットをＮＴＥ緩衝液‐０．１％ Triton Ｘ１００１０μ ｌに溶解する。酵素反応は下記反応混合液：５０ｍＭ Tris ｐＨ７．８、２０ｍＭＭｇＣｌ₂、２０ｍＭＫＣｌ、２ｍＭジチオトレイトール、オリゴｄＴ１２‐１８０．２５ OD/ml、ポリｒＡ０．２５ OD/mlおよび³ＨｄＴＴＰ２．５μCi ５０μｌ中で行う。３７℃で１時間インキュベート後、反応産物を２０％トリクロロ酢酸で沈降させ、Millipore 膜でロ過し、β放射能を測定する。結果はCMP/mlで表示している。中和実験のレポートペプチドＲ７Ｖに対する抗体は、出願人により開発された特異的ＥＬＩＳＡにより、ＨＩＶ＋患者の血清で検出した。サーチは、２つの原型ウイルス株ＨＩＶ ‐１ＢＲＵおよびＮＤＫに対する中和活性の存在について、これらの血清で行った。２種の中和試験を、一方ではＭＴ４細胞系（シンシチウムの形成で追跡する）、他方では健常末梢血リンパ球、ＰＢＬ（“逆転写酵素”活性で追跡する）で行った。ＭＴ４で得られた結果試験された患者１３例において、中和血清活性は彼らのうち６例で検出された（表３〜５）： ‐血清２例はＨＩＶ‐１ＮＤＫを中和する：ＺＵＭＡＭ（ＥＬＩＳＡ陽性）ＣＯＣＰＨ（ＥＬＩＳＡ陰性） ‐血清２例はＨＩＶ‐１ＢＲＵを中和する：ＭＥＣＥＶ（ＥＬＩＳＡ陽性）ＯＵＡＶＥ（ＥＬＩＳＡ陰性） ‐血清２例はＨＩＶ‐１ＢＲＵおよびＨＩＶ‐１ＮＤＫを中和する：ＳＡＵＣＨ（ＥＬＩＳＡ陽性）ＢＵＢＪＥ（ＥＬＩＳＡ陽性）ＰＢＬで得られた結果実験は、ＭＥＣＥＶ、ＳＡＵＣＨおよびＢＵＢＪＥの血清（１／５０）と、血清反応陰性個体の血清とで行った。中和活性はＳＡＵＣＨ血清と血清反応陰性の血清で検出されなかった。他方、２つの原型ウイルス株ＨＩＶ‐１ＢＲＵおよびＮＤＫに対する中和活性は、血清ＭＥＣＥＶおよびＢＵＢＪＥで検出された（図６〜１３）。例５相当ペプチドを検出することができる方法抗Ｂ１Ｇ６ β２モノクローナル抗体によるＨＩＶ‐１ＮＤＫの中和に関する選択ペプチドの効果プロトコール濃度１００μg/mlまたは５０μg/ml（ストック溶液４０μｌまたは２０μｌ、５mg/ml ）のペプチドを、静かに撹拌しながら、３７℃で水浴上のチューブ中で２時間にわたり、１１０μｌの全容量でＢ１Ｇ６５μg/ml（１mg/ml のストック溶液１０μｌ）と共にプレインキュベートする。次いで、ＨＩＶ‐１ＮＤＫ（ストック溶液の２×１０^-4希釈液１００μｌ）を加え、チューブを水浴上３７ ℃で１時間インキュベートする。次いで、チューブを２つに分け、各１００μｌを２４ウェルプレートで１０⁶ＰＢＬに加える。細胞を５％ＣＯ₂の雰囲気下３７ ℃で３日間培養する。３日目に細胞を洗浄し、培地に入れて、２５ｃｍ³丸底フラスコで少くとも２０〜２５日間増殖させる。ウイルスの生産は逆転写酵素（ＲＴ）のアッセイで３または４日毎にモニターする。結果ペプチドＲ７ＶおよびＦ７Ｅは、ＰＢＬによるＨＩＶ‐１ＮＤＫの生産について、モノクローナル抗体Ｂ１Ｇ６の中和効果を打消すことができる。Ｒ７Ｖペプチドの配列を修飾したところ、６つの新たなペプチド（１８５、１８６、１８７、１８８、１８９、１９０）のうち３つのペプチド１８５、１８９および１９０はＲ７Ｖの打消し効果を失った。例６抗Ｒ７Ｖ抗体の存在と疾患の進行との相関ＨＩＶに感染した患者９０例の血清サンプルを用いる。彼らは下記のように分けられる：３年間以上無症状の患者２８例、長期生存者２４例およびエイズにかかった患者３８例。血清反応陰性ボランティアドナー６９例からなるコントロール群も血液バンクから得た。リンパ球を間接免疫蛍光法によりカウントし、Epic Profile(Coultronics,Mar gency,France)により分析した。β２ｍ血清レベルを免疫拡散法（El Nanorid Ki t）により測定した。ｐ２４抗原レベルをCoulter ｐ２４検出キット（Coultroni cs,Margency,France ）により試験した。抗Ｒ７Ｖ抗体の血清濃度をＥＬＩＳＡにより検出する。結果はＢ１Ｇ６モノクローナル抗体相当物の濃度としてμg/mlで表示されている。中和試験ヒト血清を補体除去して、Ｂ１Ｇ６相当物２００μg/mlまたは１００μg/mlまで希釈する。ＨＩＶ含有１００ＴＣＩＤ₅₀５０μｌを３７℃および５％ＣＯで９０分間にわたり９６ウェルプレートで希釈血清５０μｌ（全容量１００μｌ）と共にプレインキュベートする。ウイルスおよび血清を含有した反応混合液を、８ ×１０⁴ＭＴ４細胞の追加後に２回（血清の最終希釈倍率１／１２０から１／２０まで）、感染の３日後に更に３回希釈する。ＭＴ４系におけるＨＩＶの融合誘導効果、即ちウイルスによる感染の指標としてシンシチウムの形成は、培養ウェルで７日間モニターする。逆転写酵素活性は感染の７日後に無細胞上澄４００μ ｌで測定する。抗Ｒ７Ｖ抗体レベルの平均値を各患者および各グループについて計算する。ＨＩＶに感染した人々の血清は抗Ｒ７Ｖ抗体を含有しており、ＨＩＶ血清反応陽性の血清はＨＩＶ血清反応陰性の血清よりも有意に高い抗Ｒ７Ｖ抗体濃度を示す。抗Ｒ７Ｖ抗体レベルは、Ｂ１Ｇ６相当物として表示すると、ＨＩＶに感染したグループとＨＩＶに感染していないグループとで、各々３５〜２５５８μg/ml（ｎ＝９０）および２７〜１７９０μg/ml（ｎ＝６９）である。次いで、ＨＩＶ患者のグループを彼らの臨床状態により３つのカテゴリーに分ける：長期間にわたりＨＩＶについて血清反応陽性であって、エイズ症状なしに３年間以上研究所でモニターされてきた患者からなる、進行していないもののグループ（ＮＰ）；長期間エイズにかかっている人々からなる、長期生存者のグループ（ＬＴＳ）；最後に、予後の悪いエイズにかかった人々からなる、進行しているグループ。抗Ｒ７Ｖ抗体は進行しているグループ（３５〜６３０μg/ml）と比較して無症状グループ（９１〜２５５８μg/ml）で有意に増加しているが（ｐ＝０．００１）、有意差はＬＴＳグループ（５９〜１８６４μg/ml）と比較して観察されない。同様に、ＬＴＳグループは進行しているグループよりも高い抗Ｒ７Ｖレベルを有している（ｐ＝０．００４）。健常者と比較して、進行しているグループでは抗Ｒ７Ｖ抗体レベルに差異がない。進行しているグループにおいて、研究所へ最後に来てから間もなく亡くなった患者（３５〜５０８μg/ml、ｎ＝２３）と、病気だがなお生きている患者（７７〜５８６μg/ml、ｎ＝１４）との間で、抗Ｒ７Ｖ抗体レベルについて明らかに区別できる（ｐ＜０．０３）。長期追跡研究では、抗Ｒ７Ｖ抗体レベルと、循環中における全リンパ球数、ＣＤ４およびＣＤ８細胞、ｐ２４およびβ２ｍのような他の生物学的パラメーターとの相関を確立することができなかった。Ｒ７ＶレベルはＮＰ患者でずっと安定であるが、ＬＴＳ患者では変動しているようだ。ＥＬＩＳＡ試験を患者血清の生物活性と関連付けるために、中和試験は、指標ＭＴ４細胞において、２種の非関連ウイルス、ＨＩＶ‐１ＬＡＶ株と、高度に細胞病原性のＨＩＶ‐１ＮＤＫ株で行った。血清希釈倍率は、中和混合物でＢ１Ｇ６相当物５μｇを得られるように調整した。この濃度は、Ｂ１Ｇ６抗体による感染を中和する上で最適と決められた。表５でみられるように、選択された血清１８例のうち１７例は、ＮＤＫおよびＬＡＶ双方によるＭＴ４細胞の感染を防いでいる。培養物中でＢ１Ｇ６相当物５μｇを得るために、試験された血清１８例のうち１３例は、１／５０以下の希釈倍率を要した。存在しうる血清成分による非特異的活性を排除するために、低Ｂ１Ｇ６相当物レベルのこれら血清を１／１００希釈して、中和試験に用いた。培養物中のＢ１Ｇ６相当物の量は５μｇ以下であった（２．５〜０．３μg/ml）。血清１４例のうち９例（６４％）は、１／１００希釈で双方のＨＩＶ株、ＬＡＶおよびＮＤＫをなお中和した。コントロールとして用いられた健常者ドナーからの血清３例は中和活性を示さない。図面の説明図１Ａの説明図１Ｂの説明図２の説明Ｒ７Ｖまたはβ２ｍに対するウサギ抗血清のＥＬＩＳＡウサギ６１８（Ｒ７Ｖ‐ＫＬＨで免疫）血清希釈倍率１／１００図３Ａの説明ペプチドでコートされたウェルにおけるウサギ抗血清のＥＬＩＳＡ図３Ｂの説明免疫されたウサギの血清についてのＥＬＩＳＡ図３Ｃの説明免疫されたウサギの血清についてのＥＬＩＳＡ図３Ｄの説明免疫されたウサギの血清についてのＥＬＩＳＡ図４の説明Ｒ７Ｖに対するＢ１Ｇ６、Ｃ２１．４３、Ｂ２Ｇ２．２ｍＡｂのＥＬＩＳＡ図５の説明Ｒ７Ｖ‐ＢＳＡまたはβ２のＥＬＩＳＡ図６の説明ＰＢＬで血清ＭＥＣＥＶ（１／５０）によるＨＩＶ‐１ＢＲＵ‐１の中和図７の説明ＰＢＬでＢＵＢＪＥの血清（１／５０）によるＨＩＶ‐１ＢＲＵ‐１の中和図８の説明ＰＢＬでＨＩＶ‐１ＢＲＵ‐１の生産に関する血清ＳＡＵＣＨ（１／５０）の効果図９の説明ＰＢＬでＨＩＶ‐１の生産に関するＨＩＶ患者の血清の効果図１０の説明ＰＢＬで血清ＭＥＣＥＶ（１／５０）によるＨＩＶ‐１ＮＤＫの中和図１１の説明ＰＢＬで血清ＢＵＢＪＥ（１／５０）によるＨＩＶ‐１ＮＤＫの中和図１２の説明ＰＢＬでＨＩＶ‐１ＮＤＫの生産に関する血清ＳＡＵＣＨ（１／５０）の効果図１３の説明ＰＢＬでＨＩＶ‐１ＮＤＫの生産に関するＨＩＶ患者の血清の効果

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号ＦＩＡ６１Ｋ 39/395 Ａ６１Ｋ 39/395 Ｎ 48/00 48/00 Ｃ０７Ｋ 7/06 Ｃ０７Ｋ 7/06 7/08 7/08 14/155 14/155 16/10 16/10 Ｃ１２Ｎ 5/10 Ｇ０１Ｎ 33/569 ＬＧ０１Ｎ 33/569 Ｃ１２Ｎ 5/00 Ｂ //(Ｃ１２Ｎ 15/09 ＺＮＡＣ１２Ｒ 1:92） (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ)，ＵＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＵ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＣＡ，ＣＮ，ＣＺ，ＥＥ，ＧＥ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＰ，ＫＲ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ (72)発明者ガレア、パスカルフランス国マルセーユ、ブールバール、デュ、ルドン、83、バーティマン、デ１、ラ、ルビエール

Claims

【特許請求の範囲】１．感染性病原体がその増殖周期中に宿主において少くとも１回の細胞内相を有している、感染源の疾患の治療および／または予防用のワクチンであって、細胞外でその継代中に細胞内感染性病原体により運ばれ、かつ感染性病原体によりさらされる細胞要素の少くとも１つの潜在エピトープを含んでなることを特徴とするワクチン。２．感染性病原体が細胞内寄生体またはエンベロープウイルスからなる、請求項１に記載のワクチン。３．ウイルスがＨＩＶ、ＣＭＶおよびＨＰＶから選択される、請求項２に記載のワクチン。４．配列番号１〜２２または等価配列に相当する少くとも１つのペプチドを活性成分として含んでなることを特徴とする、ＨＩＶ感染の治療または予防用の組成物。５．ペプチドがキャリア系に結合されている、請求項４に記載の組成物。６．キャリア系がペプチド結合によりペプチドのＮまたはＣ末端に連結された１以上のタンパク質断片からなる、請求項５に記載の組成物。７．キャリア系が非ペプチド結合によりペプチドに連結されている、請求項４に記載の組成物。８．ペプチドがＲ７Ｖ配列を有している、請求項４〜７のいずれか一項に記載の組成物。９．いくつかのペプチドを含んでなる、請求項４〜８のいずれか一項に記載の組成物。１０．キャリア系がアルブミン、ＫＬＨおよびＭＡＰから選択される、請求項４〜９のいずれか一項に記載の組成物。１１．非特異的免疫アジュバントを更に含んでなる、請求項４〜１０のいずれか一項に記載の組成物。１２．配列番号１〜２２または等価配列の１つによるペプチドをコードしているＤＮＡ配列を含んでなることを特徴とする、ＨＩＶ感染の治療および予防用の組成物。１３．ＤＮＡ配列が、ペプチド配列、配列番号１〜２２または等価配列を有するペプチドをコードしている、請求項１２に記載の組成物。１４．ＤＮＡ配列が宿主細胞でその発現を確実にさせる配列により先行されている、請求項１３に記載の組成物。１５．ＤＮＡ配列が発現ベクターにより保持されている、請求項１２〜１４のいずれか一項に記載の組成物。１６．発現ベクターが自律複製状態におかれている、請求項１５に記載の組成物。１７．発現ベクターが染色体組込み用のベクターである、請求項１５に記載の組成物。１８．発現ベクターが細菌プラスミドである、請求項１５〜１７のいずれか一項に記載の組成物。１９．発現ベクターが欠陥および／または非病原性ウイルスから全部または一部なる、請求項１５〜１８のいずれか一項に記載の組成物。２０．ペプチドが宿主細胞で発現される、請求項１〜１９のいずれか一項に記載の組成物。２１．細胞が真核または植物細胞である、請求項２０に記載の組成物。２２．請求項１〜２１のいずれか一項に記載された組成物の１つに用いられているペプチドに対する抗体。２３．請求項２２に記載された少くとも１種の抗体を含んでなる組成物。２４．請求項１９に記載された抗体の存在が免疫試験により検出されることを特徴とする、進行していない患者の診断方法。２５．免疫試験がＥＬＩＳＡまたはＲＩＡ試験である、請求項２４に記載の方法。