[go: up one dir, main page]

KR101053640B1 - Nandrolone Production Method - Google Patents

Nandrolone Production Method Download PDF

Info

Publication number
KR101053640B1
KR101053640B1 KR1020070119975A KR20070119975A KR101053640B1 KR 101053640 B1 KR101053640 B1 KR 101053640B1 KR 1020070119975 A KR1020070119975 A KR 1020070119975A KR 20070119975 A KR20070119975 A KR 20070119975A KR 101053640 B1 KR101053640 B1 KR 101053640B1
Authority
KR
South Korea
Prior art keywords
nandrolone
testis
cells
production
production method
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
KR1020070119975A
Other languages
Korean (ko)
Other versions
KR20090053238A (en
Inventor
최인호
최진호
이동목
정정수
장종수
이기호
이은주
Original Assignee
영남대학교 산학협력단
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 영남대학교 산학협력단 filed Critical 영남대학교 산학협력단
Priority to KR1020070119975A priority Critical patent/KR101053640B1/en
Publication of KR20090053238A publication Critical patent/KR20090053238A/en
Application granted granted Critical
Publication of KR101053640B1 publication Critical patent/KR101053640B1/en
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P33/00Preparation of steroids
    • C12P33/02Dehydrogenating; Dehydroxylating
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/0018Culture media for cell or tissue culture
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0608Germ cells
    • C12N5/061Sperm cells, spermatogonia
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P33/00Preparation of steroids
    • C12P33/12Acting on D ring
    • C12P33/16Acting at 17 position
    • C12P33/18Hydroxylating at 17 position

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Reproductive Health (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

본 발명은 난드롤론(Nandrolone)의 생산방법에 관한 것으로, 구체적으로는 수퇘지(boar)의 정소(testis) 또는 수퇘지 정소의 간질세포(Leydig cell)를 이용하여 난드롤론을 제조하는 방법 및 수퇘지 정소의 간질세포 분리방법에 관한 것이다. 난드롤론은 주로 화학적 방법에 의해 제조되었으나, 기존의 화학적 생산방법에 의할 경우 제조비용이 현저히 높고, 이에 의해 제조된 난드롤론의 경우 사용시 남성 생식기능의 저하나 심혈관질환 등 여러 부작용을 수반하는데 비하여, 본 발명은 수퇘지의 정소 또는 상기 정소의 간질 세포를 이용하여 간단하고 쉬운 방법으로 난드롤론을 수득할 수 있을 뿐만 아니라 천연물질 유래의 물질이므로, 화학적 생산방법에 의해 만들어진 것에 비하여 부작용의 위험이 낮아 그 산업적 효과가 매우 크다 할 것이다.The present invention relates to a method for producing nandrolone, and specifically, a method for producing nandrolone using testis of boar or lydig cells of boar testis and bovine testis It relates to a method for separating interstitial cells. Nandrolone is mainly manufactured by chemical methods, but the production cost is remarkably high by the conventional chemical production method, and the produced nandrolone involves various side effects such as decreased male reproductive function and cardiovascular disease when used. In addition, the present invention not only obtains nandrolone in a simple and easy manner by using bovine testes or epilepsy cells of the testis, but also is derived from natural substances, and thus, the risk of side effects is lower than that produced by chemical production methods. The industrial effect will be very large.

난드롤론, 돼지, 정소, 간질세포 Nandrolone, pig, testis, stromal cells

Description

난드롤론 생산방법{PREPARATION METHOD OF NANDROLONE} Nandrolone production method {PREPARATION METHOD OF NANDROLONE}

본 발명은 난드롤론을 제조하는 방법에 관한 것이다.The present invention relates to a method of preparing nandrolone.

아나볼릭스테로이드는 일반적으로 화학적으로 합성된 남성호르몬 또는 남성호르몬과 화학구조가 유사하여 근육의 성장을 촉진하는 역할을 할 수 있는 호르몬을 의미한다. 이러한 아나볼릭스테로이드는 동물의 정소에서 처음 발견된 남성호르몬이 순수 정제되고, 화학구조가 밝혀진 후, 많은 제약회사들이 자연계에 존재하는 남성 호르몬 보다 더 강력한 효과가 있는 호르몬을 제조하기 시작하였으며, 이러한 남성호르몬을 변화시켜 합성한 남성호르몬 유도체를 지칭하는 것으로부터 유래되었다. Anabolic steroids generally refer to chemically synthesized male hormones or hormones similar in chemical structure to male hormones, which can play a role in promoting muscle growth. These anabolic steroids have been purified by male hormones first found in animal testicles and their chemical structure has been revealed, and many pharmaceutical companies have begun to produce hormones that are more potent than male hormones in nature. It is derived from referring to the male hormone derivative synthesized by changing the hormone.

성호르몬(스테로이드 호르몬)의 경우, 골격 및 근육 성장과 생식기의 발달을 유도하여, 다음 세대를 생산해낼 수 있도록 몸을 준비하는 과정에서 중요한 역할을 담당한다. 특히, 남성호르몬은 근육의 성장과 남성 생식기의 발달을 촉진시키는 기능을 한다.Sex hormones (steroid hormones) play an important role in preparing the body to induce skeletal and muscle growth and genital development, producing the next generation. In particular, male hormones function to promote muscle growth and male genital development.

이러한 측면에서, 아나볼릭스테로이드은 근육생성 등과 관련하여 자연계에 존재하는 남성호르몬보다 더 강력한 효과가 있는 호르몬으로 알려져 있다. 그러 나, 이를 과도하게 사용할 경우 남성의 생식기능이 저하되고, 심혈관질환의 원인이 되는 등의 부작용이 있는 것으로 보고 되어 있다. 이러한 이유로 올림픽위원회는 1964년에 운동선수들의 아나볼릭스테로이드 복용을 금지하였다. 상기 아나볼릭스테로이드 중에서 난드롤론은 인간을 포함한 대부분의 동물에서 거의 만들어지지 않거나 극소량으로만 만들어지는 반면, 인체에서 만들어지는 일반적인 남성호르몬보다 근육성장 촉진효과가 훨씬 강력하여 일부 운동선수들에게 약물로 복용되는 대표적인 금지 약물이다. In this respect, anabolic steroids are known to have a more potent effect than male hormones that exist in nature with respect to muscle production. However, excessive use of it has been reported to have side effects such as decreased male reproductive function and cause cardiovascular disease. For this reason, the Olympic Committee banned athletes from taking anabolic steroids in 1964. Among the anabolic steroids, nandrolone is rarely made or produced in very small amounts in most animals, including humans, while the muscle growth promoting effect is much stronger than general male hormones produced in the human body. Being a representative prohibited drug.

한편, 아나볼릭스테로이드, 보다 구체적으로 난드롤론은 상기와 같은 부작용과 같은 부정적인 측면에 반하여, 화상 · 수술 · 방사선치료 및 에이즈로 인한 환자들의 약화된 근육을 회복시키고 소비성 근육질환(muscle wasting disease)을 치료하기 위하여 사용되고 있다. 뿐만 아니라, 빈혈치료제또는 골다공증치료제로 사용되기도 한다. 그리고, 난드롤론의 경우, 피임약의 성분으로도 사용되고 있다. 성기능 장애 남성들의 치료제로 사용되고 있는 아나볼릭스테로이드, 예를 들어 테스토스테론(testosterone)이나 안드로스테네디온(androstenedione)의 경우 5α-reductase라는 효소에 의해 dihydrotestosterone으로 전환되어 전립선암을 유발시킬 수 있는 것으로 보고 되어 있다. 반면에, 난드롤론의 경우, 5α-reductase라는 효소에 의해 dihydrotestosterone으로 전환되는 정도가 매우 낮기 때문에, 이러한 문제점을 줄일 수 있다. On the other hand, anabolic steroids, and more specifically, nandrolone, restore the weakened muscles of patients suffering from burns, surgery, radiation therapy and AIDS, and prevent muscle wasting disease from negative side effects such as those mentioned above. It is used to treat. In addition, it is used as anemia treatment or osteoporosis treatment. And, in the case of nandrolone, it is also used as a component of contraceptives. Anabolic steroids, such as testosterone or androstenedione, which are used as treatments for men with sexual dysfunction, have been reported to be converted to dihydrotestosterone by the enzyme 5α-reductase to cause prostate cancer. have. On the other hand, in the case of nandrolone, the degree of conversion to dihydrotestosterone by an enzyme called 5α-reductase is very low, thereby reducing this problem.

상기 난드롤론의 경우, 현재 주로 화학적 방법에 의해 제조되고 있다. 그러나, 난드롤론의 화학적 생산방법은 제조비용이 현저히 높고, 제조공정이 복잡하며, 화학적 생산방법으로 제조된 난드롤론의 경우, 천연물 유래 즉, 동물로부터 얻은 난드롤론에 비하여, 남성 생식기능의 저하나 심혈관질환 등 여러 부작용을 수반하는 것으로 알려져 있다. 따라서, 천연 물질로부터 분리된 난드롤론은 상기한 인공적으로 제조된 스테로이드제의 부작용을 줄일 수 있고, 인체 질병의 치료뿐만 아니라 남성의 생식기능저하 등에도 그 치료 또는 개선 효능이 우수하여, 천연보조식품으로서의 가치가 매우 높을 것으로 예상된다. In the case of the nandrolone, it is currently produced mainly by chemical methods. However, the chemical production method of nandrolone is significantly higher in manufacturing cost, the manufacturing process is complicated, and the production of nandrolone produced by the chemical production method, compared with the natural origin, that is, the reduction of male reproductive function, It is known to be accompanied by various side effects such as cardiovascular disease. Therefore, the nandrolone isolated from the natural substance can reduce the side effects of the artificially produced steroids, and is excellent in the treatment or improvement effect not only in the treatment of human diseases, but also in the reproductive function of men, and natural supplement foods. It is expected to be very high.

한편, 현재 우리나라의 돼지 사육 농가는 대부분 수컷 돼지고기에서 발생하는 웅취를 제거하여 고급 돈육을 생산하기 위해, 수퇘지의 정소를 출생 직후 거세하고 사육하는 방법을 사용하고 있다. 하지만, 이러한 거세는 수퇘지의 웅취의 생성 원인 물질과 함께 다른 유효 웅성 스테로이드(steroid)를 함께 제거함으로써, 수퇘지의 성장속도를 떨어뜨리고 어린 시절 돼지에게 심한 스트레스를 주어 결국 사육기간이 길어짐으로써, 농가에 경제적 피해를 주고 있는 실정이다.On the other hand, most of the domestic pig farming farms are using the method of castration and breeding the boar of the boar immediately after birth in order to produce the high quality pork by removing the odor generated from the male pork. However, this castration removes other effective male steroids along with the substance that generates boar's swell, which slows down the growth of the boar and puts stress on pigs in childhood, resulting in longer breeding periods. It is causing economic damage.

이러한 문제를 해결하기 위하여, 돼지의 나이가 많을 때 거세하는 것은 출생 직후에서 2주령 때의 어린 나이에 거세하는 방법에 비해 매우 많은 노력이 필요하며, 실제로 출생 시부터 2주 사이에 수퇘지를 거세하지 못하는 경우, 농가는 통상적으로 거세를 포기하고 돼지를 사육하고 있는 실정이다. 이러한 비거세돈의 경우, 출하과정에서 거세돈에 비해 저급돈육으로 등급이 매겨지게 되고, 이는 농가의 경제적 손실의 원인이 되게 된다. To solve this problem, castration when a pig is old requires a lot of effort compared to castration at birth after 2 weeks of age, and does not actually boil between two weeks after birth. If this is not the case, farmers usually give up castration and raise pigs. In the case of such non-taxeous pigs, they are graded as low-grade pigs compared to the caste during the shipping process, which causes the economic loss of the farm.

또한, 이러한 거세를 하지 않은 비거세돈은 도축장에서 도축과정 중 정소를 적출하고 있으며, 적출된 정소는 현재 산업적으로 이용가치가 매우 낮아 극히 일부 만 구이용으로 음식점에 제공되고 있고 나머지 대부분은 도축부산물로 폐기처분 되거나 일부가 가축의 사료로 재활용되었다. In addition, non-castrated pigs that do not use these castrations are extracted from the slaughterhouse during the slaughter process, and the extracted testes are currently of low industrial value and are provided to restaurants for roasting only a small portion, and most of them are slaughter by-products. It was disposed of or partly recycled as animal feed.

본 발명은 상기와 같은 종래기술의 문제점을 개선하기 위하여, 난드롤론을 제조하는 방법을 제공하는 것을 목적으로 한다.The present invention is to provide a method for producing nandrolone in order to improve the problems of the prior art as described above.

또한, 본 발명은 난드롤론 제조용 조성물을 제공하는 것을 목적으로 한다.Moreover, an object of this invention is to provide the composition for nandrolone manufacture.

상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 난드롤론(nandrolone)을 제조하는 방법을 제공한다. 상기 생산방법은 구체적으로는, 수퇘지(boar)의 정소(testis)에서 분리한 간질세포(Leydig cell)을 이용하는 방법과 수퇘지의 정소 추출물을 이용하는 방법일 수 있다.In order to achieve the above object, the present invention provides a method for producing nandrolone. Specifically, the production method may be a method of using lydig cells isolated from testis of boar and a method of extracting bovine testis.

또한, 본 발명은 상기 목적을 달성하기 위하여 난드롤론 제조용 조성물을 제공한다. In addition, the present invention provides a composition for preparing nandrolone in order to achieve the above object.

본 발명자들은 다른 동물에서는 일반적으로 잘 만들어지지 않는 난드롤론이 수퇘지의 정소에는 다량 포함되어 있고, 특히 수퇘지의 정소의 간질세포는 난드롤론을 비롯한 다양한 스테로이드호르몬이 생산되며, 상기 간질세포를 분리 배양하는 경우, 시험관 내 방법(in vitro)으로 난드롤론을 생산할 수 있고, 상기 수퇘지의 정소의 간질세포에 의해 생산되는 난드롤론(19-nortestoterone)의 경우, 5α-reductase에 의해 dihydrotestosterone으로 전환되는 경우가 적다는 것을 확인하여 본 발명을 완성하였다.The present inventors have a large amount of nandrolone, which is generally not well-produced in other animals, is contained in the boar's testis, and in particular, the stromal cells of the boar's testis are produced with various steroid hormones, including nandrolone, and are cultured by separating the stromal cells. In this case, an in vitro method can produce nandrolone, and in the case of 19-nortestoterone produced by the bovine stromal stromal cells, less conversion to dihydrotestosterone by 5α-reductase is possible. It was confirmed that the present invention was completed.

이하, 본 발명을 보다 상세하게 설명한다.Hereinafter, the present invention will be described in more detail.

본 발명은 난드롤론 생산방법에 관한 것이다. 또한, 본 발명은 난드롤론 제조용 조성물에 관한 것이다.The present invention relates to a method of producing nandrolone. The present invention also relates to a composition for producing nandrolone.

본 발명의 난드롤론 생산방법은 돼지 정소의 간질세포를 이용하는 방법 및 돼지 정소 추출물을 이용하는 방법으로 이루어진 군에서 선택된 1 이상일 수 있다. The method for producing nandrolone of the present invention may be at least one selected from the group consisting of a method of using interstitial cells of pig testis and a method of using a testis extract of swine.

상기 돼지 정소의 간질세포를 이용하는 방법은 구체적으로는, 돼지 정소의 간질세포를 배양액에 배양하는 단계; 및 상기 간질세포를 배양한 세포 배양액으로부터 난드롤론을 분리하는 단계를 포함할 수 있다.Specifically, the method using the interstitial cells of the swine testis comprises the steps of culturing the interstitial cells of the swine testes in a culture medium; And separating nandrolone from the cell culture medium in which the stromal cells are cultured.

상기 배양액은 통상의 동물 세포 배양액일 수 있으며, 일 예로, DMEM, DMEM/F12 또는 FBS가 포함된 DMEM일 수 있다. 상기 간질세포를 배양한 세포 배양액은 간질세포가 포함되거나 포함되지 아니할 수 있다.The culture may be a conventional animal cell culture, for example, may be DMEM, DMEM, DMEM / F12 or DMEM containing FBS. The cell culture medium in which the stromal cells are cultured may or may not contain stromal cells.

본 발명의 일 실시예에 의하면, 상기 생산방법은According to an embodiment of the present invention, the production method

a) 돼지 정소로부터 간질세포를 분리하는 단계;a) separating stromal cells from porcine testes;

b) 분리된 간질세포를 배양액에서 배양하는 단계; 및b) culturing the isolated stromal cells in the culture medium; And

c) 상기 간질세포를 배양한 세포 배양액으로부터 난드롤론을 분리하는 단계를 포함하는 것일 수 있다.c) separating the nandrolone from the cell culture medium in which the stromal cells are cultured.

상기 a) 단계는 통상의 동물세포 분리방법으로 수행할 수 있으며, 일 예로 percoll을 사용한 percoll gradient법일 수 있으나, 바람직하게는 percoll을 사용하지 아니하고 간질세포를 분리하는 방법인 계대배양법으로 수행할 수 있다. The a) step may be performed by a conventional method for separating animal cells, for example, may be a percoll gradient method using a percoll, but preferably may be performed by a subculture method that is a method of separating interstitial cells without using a percoll. .

최근에 percoll의 생산자인 Pharmacia사의 보고에 의하면, PVP로 코팅된 실 리카 조각(silica particle)인 percoll은 PVP 성분이 다소 독성이 있고, 소금이 첨가된 배양액 내에서 사용하는 경우, PVP와 실리카의 결합이 약해져, 최종적으로 실리카 겔(silica gel)이 배양액 내에 노출되어, 분리대상인 세포의 DNA 구조에 영향을 줄 수 있는 문제점이 있다.According to a recent report by Pharmacia, the producer of percoll, percoll, a silica particle coated with PVP, has a slightly toxic PVP component and, when used in a salted culture, the combination of PVP and silica This weakens and finally the silica gel (silica gel) is exposed in the culture, there is a problem that can affect the DNA structure of the cells to be separated.

따라서, 최종적으로 난드롤론을 연속적으로 대량 생산하기 위한 본 발명의 생산방법은 percoll을 사용하는 percoll gradient법을 대체할 수 있는 방법으로 수행하는 것이 바람직하다.Therefore, the production method of the present invention for the final mass production of nandrolone is preferably carried out by a method that can replace the percoll gradient method using a percoll.

본 발명의 간질세포 분리 방법은 수퇘지의 간질세포의 경우, 수퇘지의 정소 내에 있는 다른 세포에 비하여 부착능이 뛰어나다는 것을 확인하여 완성된 것으로, 이러한 간질세포의 특징을 이용하여 percoll을 사용하지 않고 간질세포를 분리하는 방법을 제공한다. 본 발명의 세포 분리 방법은 percoll을 사용하는 percoll gradient법의 경우 문제가 되는 세포 손상의 위험으로부터 안전하고, 단시간 내에 저비용으로, 대량의 세포를 분리할 수 있는 방법이다.The interstitial cell separation method of the present invention was completed by confirming that the interstitial cells of boars are superior in adhesion ability to other cells in the bovine testes. Provides a way to separate. The cell separation method of the present invention is a method capable of separating a large number of cells at low cost in a short time, safe from the risk of cell damage, which is a problem in the percoll gradient method using percoll.

상기 간질세포 분리 방법은 계대배양법일 수 있으며, 구체적으로 상기 간질 세포 분리 방법은 돼지 정소를 세절하는 과정; 상기 세절된 돼지 정소를 효소처리하는 과정; 상기 효소처리된 돼지 정소를 배양액에 배양하는 과정; 상기 돼지 정소를 배양한 배양액으로부터 세포를 분리하는 과정; 및 상기 분리된 세포를 배양액에 계대배양하는 과정을 포함하는 방법일 수 있다.The stromal cell separation method may be a subculture, and specifically, the stromal cell separation method may include: cutting a pig testis; Enzymatically treating the sliced pig testis; Culturing the enzyme treated pig testis in a culture solution; Separating the cells from the culture medium in which the pig testis has been cultured; And it may be a method comprising the step of subcultured to the cultured cells.

상기 계대배양은 상기 분리된 세포를 배양그릇(dish)에 담긴 배양액에 배양하는 과정; 및 상기 세포를 배양한 배양액에서 배양그릇에 부착되지 않은 세포를 분리하는 과정를 포함하는 것일 수 있다. 상기 계대배양법은 상기 돼지 정소의 간질 세포가 다른 돼지 정소의 세포에 비하여 우수한 부착능을 가지고 있음을 확인하여 완성한 것으로, 보다 구체적으로는 상기 분리된 세포를 배양그릇(dish)에 담긴 배양액에 배양하는 과정은 상기 분리된 세포를 배양그릇에 담긴 배양액에서 배양을 시작한 후 30분 내지 20 시간, 바람직하게는 1 시간 내지 10 시간, 더욱 바람직하게는 1시간 30분 내지 8시간 동안 수행할 수 있다. The subculture is a step of culturing the separated cells in a culture solution contained in a culture dish (dish); And separating the cells which are not attached to the culture vessel from the culture medium in which the cells are cultured. The passaging method was completed by confirming that the interstitial cells of the swine testis have excellent adhesion ability compared with the cells of other swine testis, and more specifically, the isolated cells are cultured in a culture solution in a dish. The process may be performed for 30 minutes to 20 hours, preferably 1 hour to 10 hours, more preferably 1 hour 30 minutes to 8 hours after starting the culture of the separated cells in the culture solution contained in the culture vessel.

상기 분리된 세포의 배양 시간은 세포를 분리한 돼지의 연령에 따라 영향을 받을 수 있다. 일예로 1주령 내지 4주령된 돼지의 경우, 세포의 배양시간은 1시간 내지 3시간, 바람직하게는 1시간 30분 내지 2시간일 수 있으며, 생후 5개월 내지 9개월, 바람직하게는 생후 6 개월 내지 8 개월된 돼지의 경우, 세포의 배양시간은 4시간 내지 10시간, 바람직하게는 5시간 내지 8시간일 수 있다.Incubation time of the isolated cells may be affected by the age of the pigs from which the cells are separated. For example, in the case of pigs 1 week to 4 weeks old, the culture time of the cells may be 1 hour to 3 hours, preferably 1 hour 30 minutes to 2 hours, and 5 months to 9 months, preferably 6 months after birth. For pigs that are 8 months old, the incubation time of the cells may be 4 hours to 10 hours, preferably 5 hours to 8 hours.

상기 배양액은 통상의 동물세포의 배양액일 수 있고, 상기 돼지 정소 또는 세포를 배양한 배양액은 세포를 포함하거나 포함하지 아니할 수 있다.The culture solution may be a culture solution of a conventional animal cell, and the culture medium in which the pig testis or cells are cultured may or may not include cells.

상기 세절된 돼지 정소를 효소처리하는 과정은 상기 세절된 돼지 정소를 효소액과 혼합하고, 상기 혼합액을 섞은 후 상층액을 회수하는 방법으로 수행할 수 있으며, 상기 효소액은 단백질 분해효소가 포함된 동물세포 분리방법에서 통상적으로 사용되는 효소액일 수 있고, 일 예로 트립신(trypsin)과 EDTA가 포함된 것일 수 있다.The process of enzymatically processing the sliced pig testis may be performed by mixing the sliced pig testis with an enzyme solution, mixing the mixture solution, and recovering the supernatant, wherein the enzyme solution is an animal cell containing a proteolytic enzyme. It may be an enzyme solution commonly used in the separation method, for example, may include trypsin and EDTA.

상기 b) 단계는 통상의 동물 세포 배양조건 및 배양방법으로 수행할 수 있다. 또한, 상기 세포 배양 단계는 배양액에 호르몬을 추가로 처리하여 수행할 수 있다. 상기 호르몬은 바람직하게는 안드로스테네디온(androstenedione), 프로게스테론(progesterone) 및 테스토스테론(testosterone)일 수 있으며, 더욱 바람직하게는 안드로스테네디온일 수 있다.Step b) may be carried out by conventional animal cell culture conditions and culture methods. In addition, the cell culture step may be performed by further treating the hormone in the culture. The hormone is preferably androstenedione (androstenedione), progesterone (progesterone) and testosterone (testosterone), more preferably androstenedione may be.

상기 c) 단계는 세포 배양액으로부터 스테로이드계 호르몬을 분리하는 통상의 방법을 이용할 수 있다. 일 예로, 상기 방법은 요구되는 순도에 따라, 고성능액체크로마토그래피를 이용하거나 EIA kit을 이용할 수 있다. 상기 고성능액체크로마토그래피의 조건은 스테로이드계 호르몬, 바람직하게는 난드롤론을 분리하기 위한 통상의 조건으로 수행할 수 있다.Step c) may use a conventional method for separating steroid hormones from cell culture. For example, the method may use high performance liquid chromatography or EIA kit, depending on the required purity. The conditions of the high performance liquid chromatography may be carried out under conventional conditions for separating steroid hormones, preferably nandrolone.

또한, 본 발명은 돼지 정소의 간질 세포를 포함하는 난드롤론 제조용 조성물에 관한 것이다.In addition, the present invention relates to a composition for preparing nandrolone, including interstitial cells of porcine testis.

본 발명자는 대부분의 동물에서 극히 미량 존재하거나 거의 존재하지 않는 난드롤론이 돼지 정소의 간질세포에서 생산된다는 것을 확인하여 본 발명을 완성하였다.The present inventors have completed the present invention by confirming that extremely little or no androlone, which is present in most animals, is produced in interstitial cells of swine testis.

상기 돼지 정소의 간질세포는 비교적 여러 번의 계대배양을 통해서도 지속적으로 난드롤론을 생산할 수 있기 때문에, 상기 간질세포를 포함하는 난드롤론 제조용 조성물을 이용하는 경우, 난드롤론의 대량 생산이 가능하다.Since the interstitial cells of the swine testis can continuously produce nandrolone through a relatively several passages, when using a composition for preparing a nadrrone containing the interstitial cells, mass production of nandrolone is possible.

상기 난드롤론 제조용 조성물은 상기 간질 세포외에 상기 간질 세포를 배양하기 위한 배양액 및 난드롤론 생산 촉진 물질을 추가로 포함하는 것일 수 있다.The composition for preparing nandrolone may further include a culture solution for culturing the interstitial cells in addition to the interstitial cells and a substance for promoting nandrolone production.

상기 배양액은 동물 세포의 배양에 사용되는 통상의 동물 세포 배양액일 수 있으며, 일 예로, DMEM 또는 FBS가 포함된 DMEM일 수 있다. 상기 배양액은 간질세 포가 포함되지 아니한 것일 수 있다.The culture may be a conventional animal cell culture used for culturing animal cells, for example, may be DMEM or DMEM containing FBS. The culture solution may be one that does not contain interstitial cells.

또한, 상기 난드롤론 생산 촉진 물질은 간질세포의 배양액에 첨가하여, 간질세포에 작용함으로써, 간질세포의 난드롤론 생산량을 촉진할 수 있는 물질을 의미할 수 있으며, 일 예로 호르몬 또는 스테로이드 호르몬일 수 있다. 상기 호르몬은 바람직하게는 안드로스테네디온(androstenedione), 프로게스테론(progesterone) 및 테스토스테론(testosterone)으로 이루어진 군에서 선택된 1 이상일 수 있으며, 더욱 바람직하게는 안드로스테네디온일 수 있다.In addition, the nandrolone production-promoting substance may mean a substance that can be added to the culture medium of stromal cells to act on the stromal cells, thereby promoting the production of androlone production of stromal cells, for example, hormones or steroid hormones. . The hormone is preferably at least one selected from the group consisting of androstenedione (androstenedione), progesterone (testgeone) and testosterone (testosterone), more preferably androstenedione.

또한, 본 발명은 돼지 정소 추출물을 이용하는 난드롤론 생산방법에 관한 것이다. 본 발명의 발명자는 다른 동물과 달리 돼지 정소의 경우, 다량의 난드롤론이 함유되어 있어, 난드롤론의 추출물 위한 최적의 추출용매와 추출방법을 선택하여 응용하는 경우에, 높은 순도의 난드롤론을 손쉽게 생산할 수 있는 것을 확인하여 본 발명을 완성하였다. The present invention also relates to a method for producing nandrolone using a pig testis extract. In contrast to other animals, the inventors of the present invention contain a large amount of nandrolone in the case of swine testis, and when the optimal extraction solvent and extraction method for extracting nandrolone are selected and applied, high purity nandrolone is easily The present invention was completed by confirming that it could be produced.

상기 정소란 수컷의 생식세포인 정자를 만드는 기관으로, 포유동물의 경우에는 고한이라고도 한다. 상기 정소에서는 주로 정자와 안드로겐과 같은 남성호르몬이 생산된다. 한편, 수퇘지(boar)의 정소(testis) 즉, 적출된 수퇘지의 정소는 극히 일부만 구이용으로 음식점에 제공되고 있고 나머지 대부분은 도축부산물로 폐기처분 되거나 일부가 가축의 사료로 재활용되는 등, 현재로서는 산업적으로 이용가치가 매우 낮다. The testis is an organ that makes sperm, which is a male germ cell, and is also called gohan in mammals. In the testes, mainly male hormones such as sperm and androgen are produced. On the other hand, boar testis, that is, the extracted boar testis, is only provided to restaurants for roasting only a portion, most of which is disposed of as slaughter by-products or partially recycled as animal feed. The value of use is very low.

상기 정소는 바람직하게는 부정소를 모두 제거한 것일 수 있다. 상기 정소는 정소 추출물의 제조를 위하여, 부정소를 모두 제거한 후, 절단한 것일 수 있다. 상기 절단과정은 조직균질기를 이용하여 수행할 수 있다.The testis may be preferably to remove all the indefinite. The testis may be cut after removing all the indefinite, for the production of testis extract. The cutting process can be performed using a tissue homogenizer.

상기 추출물(extract)이란 바람직하게는 동물 추출물(animal extract)일 수 있다. 동물 추출물이란 동물의 몸에서 추출한 물질 즉, 용매를 사용해서 추출대상인 고체 또는 액체 속에서 어떤 특정한 물질을 용해 · 분리하는 조작을 통하여 수득한 물질을 의미한다.The extract may preferably be an animal extract. Animal extract means a substance extracted from the body of an animal, that is, a substance obtained by dissolving and separating a specific substance in a solid or liquid to be extracted using a solvent.

본 발명의 추출용매는 물, 50% 내지 100%의 메탄올, 에탄올 등의 탄소수 1 내지 4의 알콜, 에틸아세테이트 등의 극성용매와 클로로포름, 에테르, 헥산 또는 디클로로메탄의 비극성용매와 같은 유기용매, 이들의 혼합용매일 수 있으며, 바람직하게는 클로로포름 또는 50% 내지 100%의 메탄올, 에탄올 등의 탄소수 1 내지 4의 알콜과 클로로포름 혼합액일 수 있으며, 더욱 바람직하게는 50% 내지 100%의 에탄올 또는 메탄올과 클로로포름 혼합액일 수 있다. 또한, 상기 탄소수 1 내지 4의 알콜과 클로로포름 혼합액은 부피비를 기준으로 5:1 내지 1:5(클로로포름:에탄올), 바람직하게는 3:1 내지 1:3, 가장 바람직하게는 2:1 내지 1:2로 혼합한 것일 수 있다. 또한, 상기 추출시 추출용매는 1종 이상 사용할 수 있다.The extraction solvent of the present invention is water, 50% to 100% methanol, alcohol having 1 to 4 carbon atoms such as ethanol, polar solvent such as ethyl acetate and organic solvents such as non-polar solvent of chloroform, ether, hexane or dichloromethane, these It may be a mixed solvent of, preferably chloroform or a mixture of alcohol having 1 to 4 carbon atoms and chloroform, such as 50% to 100% methanol, ethanol, more preferably 50% to 100% ethanol or methanol It may be a chloroform mixture. In addition, the alcohol having 1 to 4 carbon atoms and chloroform mixture is 5: 1 to 1: 5 (chloroform: ethanol), preferably 3: 1 to 1: 3, most preferably 2: 1 to 1 based on the volume ratio It may be a mixture of 2 :. In addition, the extraction solvent may be used at least one type.

본 발명의 추출물은 통상의 동물 추출물의 생산방법에 따라 제조된 것일 수 있으며, 구체적으로는 냉침추출법, 온침추출법 또는 열 추출법 등일 수 있으며, 통상의 추출기기, 초음파분쇄 추출기 또는 분획기를 이용할 수 있다. 또한, 상기 추출과정은 4 ℃ 내지 120 ℃에서 수행될 수 있으나, 이에 한정되지는 않는다. Extract of the present invention may be prepared according to the production method of a conventional animal extract, specifically may be cold extraction, hot extraction or heat extraction, etc., may be used a conventional extraction device, ultrasonic grinding extractor or fractionator. In addition, the extraction process may be performed at 4 ℃ to 120 ℃, but is not limited thereto.

구체적으로, 본 발명의 난드롤론 생산방법은 돼지의 정소에 추출용매를 첨가하여 추출하는 단계를 포함하는 것일 수 있다.Specifically, the nandrolone production method of the present invention may include extracting by adding an extraction solvent to the testes of pigs.

상기 제조된 추출물은 이후 여과과정, 농축과정 및 건조과정으로 이루어진 군에서 선택된 1 이상을 추가로 수행할 수 있다. 구체적으로 상기 여과는 여과지 또는 황산나트륨과 여과지를 이용하거나 감압여과기를 이용할 수 있으며, 상기 농축은 감압 농축기, 일예로 회전 증발기를 이용하여 감압 농축할 수 있으며, 상기 건조는 일예로 동결건조법으로 수행할 수 있다.The prepared extract may be further performed at least one selected from the group consisting of filtration, concentration and drying. Specifically, the filtration may be performed using a filter paper or sodium sulfate and a filter paper or a reduced pressure filter, the concentration may be concentrated under reduced pressure using a vacuum condenser, for example, a rotary evaporator, the drying may be carried out by lyophilization. have.

본 발명의 일 실시예에 의하면 본 발명의 난드롤론 생산방법은 도 1에 기재된 방법에 의하여 수행할 수 있다. 보다 상세하게는, 부정소를 모두 제거하여 정소를 수득하는 과정; 수득된 정소에 추출용매를 첨가하여 혼합액을 제조하고 균질화하는 단계 및 상기 혼합액을 정치한 후, 상등액을 제거하는 단계를 포함하는 것일 수 있다. 상기 상등액을 제거하는 단계는 분별깔대기를 이용하여 수행할 수 있다. 상기 상등액을 제거하는 단계에, 상기 상등액을 제거하고 수득한 추출물을 농축하는 단계, 여과하는 단계 및 용매를 제거하는 건조 단계로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나를 추가로 포함할 수 있으며, 상기 농축단계는 감압농축기를 이용하여 수행할 수 있고, 상기 여과단계는 여과지 또는 여과지와 황산나트륨을 이용하여 수행할 수 있으며, 상기 건조 단계는 회전감압 농축기를 이용하거나 중탕법으로 수행할 수 있다.According to one embodiment of the invention the nandrolone production method of the present invention can be carried out by the method described in FIG. More specifically, the process of removing all the indefinite to obtain a testis; It may include the step of preparing and homogenizing the mixed solution by adding an extraction solvent to the obtained testes and after leaving the mixed solution to stand, removing the supernatant. Removing the supernatant may be performed using a separatory funnel. The removing of the supernatant may further include any one selected from the group consisting of removing the supernatant and concentrating the obtained extract, filtration and drying to remove the solvent. It may be carried out using a vacuum concentrator, the filtration step may be carried out using a filter paper or filter paper and sodium sulfate, the drying step may be carried out using a rotary pressure reducer or a water bath method.

본 발명의 발명자는 상기 혼합액에 NaOH를 첨가함을써, 상기 추출물에 축적된 지방산을 제거할 수 있다는 것을 확인하여 본 발명을 완성하였다. 따라서, 본 발명은 상기 돼지 정소 추출물에 NaOH를 추가로 첨가하는 단계를 더욱 포함할 수 있다.The inventor of the present invention completed the present invention by confirming that the fatty acid accumulated in the extract can be removed by adding NaOH to the mixed solution. Therefore, the present invention may further comprise the step of adding NaOH to the pig testis extract.

상기 난드롤론 생산방법은 상기 돼지의 정소에 추출용매를 첨가하여 추출하는 단계에 추가로 탄소수 1 내지 4의 알코올 수용액을 첨가하여 혼합액을 제조하는 단계; 상기 혼합액에 NaOH를 첨가하고 열을 가하는 단계; 및 에테르를 첨가한 후, 에테르 층을 분리하는 단계를 더욱 포함할 수 있다.The nandrolone production method may further include adding an aqueous solvent having 1 to 4 carbon atoms in addition to extracting the extract by adding an extraction solvent to the testes of pigs to prepare a mixed solution; Adding NaOH to the mixed solution and applying heat; And after adding ether, separating the ether layer.

상기 탄소수 1 내지 4의 알코올 수용액은 바람직하게는 부피비로 탄소수 1내지 4의 알코올과 물이 95:5 내지 70:30(알코올:물), 더욱 바람직하게는 90:10 내지 80:20으로 혼합한 것일 수 있다. 상기 열을 가하는 단계는 50℃ 내지 95℃, 바람직하게는 70℃ 내지 90℃로, 10분 내지 120분, 바람직하게는 30분 내지 60분 동안 수행할 수 있으며, 일 예로 중탕법으로 수행할 수 있다.The C 1-4 alcohol solution is preferably a mixture of 1 to 4 carbon atoms and water in a volume ratio of 95: 5 to 70:30 (alcohol: water), more preferably 90:10 to 80:20 It may be. The applying of the heat may be performed at 50 ° C. to 95 ° C., preferably 70 ° C. to 90 ° C., for 10 minutes to 120 minutes, preferably for 30 minutes to 60 minutes. have.

상기 난드롤론 생산방법은 분리된 에테르 층을 농축하는 단계를 추가로 포함할 수 있으며, 상기 농축 단계를 통하여 수득한 농축물에 클로로포름을 첨가하여 난드롤론을 수득하는 단계를 더욱 포함할 수 있다.The nandrolone production method may further include a step of concentrating the separated ether layer, and may further include a step of obtaining nandrolone by adding chloroform to the concentrate obtained through the concentration step.

또한, 본 발명의 난드롤론 생산방법은 상기 수득한 에테르 층 또는 클로로포름을 첨가한 농축물에 대하여, 혼합물에서 스테로이드를 분리하기 통상적으로 사용되는 방법을 추가로 수행할 수 있으며, 일 예로, 상기 스테로이드를 분리하기 위한 방법은 고성능액체크로마토그래피일 수 있다.In addition, the method for producing nandrolone of the present invention may further perform a method commonly used to separate steroids from the mixture with respect to the obtained ether layer or chloroform-added concentrate. For example, The method for separation can be high performance liquid chromatography.

본 발명의 난드롤론 생산방법은 대부분은 도축부산물로 폐기처분 되거나 일부가 가축의 사료로 재활용되는 등, 현재로서는 산업적으로 이용가치가 매우 낮은 수퇘지(boar)의 정소(testis) 또는 이로부터 분리된 간질세포(Leydig cell)를 이용 하여 다양한 질병의 치료용으로 사용할 수 있는 난드롤론을 생산할 수 있는 방법으로, 공정이 간단하고 비용이 저렴할 뿐만 아니라, 이에 의해 수득된 난드롤론은 화학적 방법에 의해 생산된 것과 달리, 식용으로 복용하고 있는 천연물로부터 추출한 것이어서, 부작용의 위험이 극히 낮다는 점에서 그 산업적 효과가 매우 크다 할 것이다. Most of the methods of production of nandrolone of the present invention are discarded as slaughter by-products or partly recycled to livestock feed, such as testis of boar, which is of very low industrial value, or epilepsy isolated from it. A method for producing nandrolone that can be used for the treatment of various diseases by using a Leydig cell is not only simple and inexpensive, but also obtained by the chemical method. Alternatively, since it is extracted from the natural products that are being taken for food, the industrial effect is very large in that the risk of side effects is extremely low.

이하, 본 발명의 바람직한 실시예를 기재한다. 다만, 하기의 실시예는 본 발명의 바람직한 일 실시예일 뿐, 본 발명이 하기 실시예에 의해 한정되는 것은 아니다.Hereinafter, preferred embodiments of the present invention will be described. However, the following examples are only preferred embodiments of the present invention, and the present invention is not limited to the following examples.

실시예 1: 돼지 정소 간질 세포의 분리, 배양 및 이를 이용한 난드롤론 생산Example 1 Isolation, Culture and Production of Nandrolone Using Porcine Testicular Stromal Cells

[실험재료 및 기자재][Experimental Materials and Equipment]

1) DMEM/F12: (Dulbecco's Modified Egle's Medium/Nutrient Mixture F-12 Ham, Sigma D8900)1) DMEM / F12: (Dulbecco's Modified Egle's Medium / Nutrient Mixture F-12 Ham, Sigma D8900)

2) Amphoteripcin B: Gibco Manufactory in UK (Invitrogen co., USA) 2) Amphoteripcin B: Gibco Manufactory in UK (Invitrogen co., USA)

3) 25% Trpsin-EDTA: Gibco 25200 (Invitrogen co., USA) 3) 25% Trpsin-EDTA: Gibco 25200 (Invitrogen co., USA)

4) Penicillin-Streptomycine: Gibco 15140-122 (Invitrogen co., USA) 4) Penicillin-Streptomycine: Gibco 15140-122 (Invitrogen co., USA)

5) Fetal Bovine Serum (FBS): Hyclone 5) Fetal Bovine Serum (FBS): Hyclone

6) Centrifuge 5810R: Eppendorf 6) Centrifuge 5810R: Eppendorf

7) 10 ml Pipette: Falcon 7) 10 ml Pipette: Falcon

8) Tissue Culture Dish 100 x 22 mm: Falcon 8) Tissue Culture Dish 100 x 22 mm: Falcon

9) Iso tomp 215 water bath: Fisher Scientific9) Iso tomp 215 water bath: Fisher Scientific

10) Testosterone (TES, Wako pure pure chemical industries. 208-08341. Japan)10) Testosterone (TES, Wako pure pure chemical industries.208-08341.Japan)

11) Androstenedione (And, 19-Nor-4 androstene-3.17 dione, Wako pure chemical industries. 143-06061)11) Androstenedione (And, 19-Nor-4 androstene-3.17 dione, Wako pure chemical industries. 143-06061)

12) Progesterone (Pro, progesterone,>= 99%) Sigma chemical co.P8783 (St. Louis, USA)12) Progesterone (Pro, progesterone,> = 99%) Sigma chemical co.P8783 (St. Louis, USA)

실시예 1-1 돼지 정소 간질세포의 primary culture(초기배양)Example 1-1 Primary culture of porcine testicular stromal cells (initial culture)

본 실험에 사용된 돼지 정소 간질세포(leydig cell)는 생후 2주령과 7개월 된 Landrace종 돼지의 정소를 농가와 도축장에서 각각 채취하여 75㎍/㎖ penicillin G(Sigma, USA)와 50㎍/㎖ streptomycin sulfate(Sigma, USA)를 첨가한 멸균생리 식염수(0.9% NaCl)로 세척한 후, 멸균생리식염수가 들어있는 병에 보관하여 실험실로 운반하였다. Pig testis leydig cells used in this study were collected from farm and slaughterhouses of two-week-old and seven-month-old Landrace pigs, respectively, at 75 µg / ml penicillin G (Sigma, USA) and 50 µg / ml. After washing with sterile physiological saline (0.9% NaCl) added streptomycin sulfate (Sigma, USA), it was stored in a bottle containing sterile physiological saline and transported to the laboratory.

상기 실험실로 운반한 돼지 정소를 각각 다시 신선한 멸균생리식염수와 알코올로 3회 세척한 후 실험에 공시하였다. 상기 세척한 정소를 각각 약 10 ㅧ 10㎜로 절제하여 채취하였으며, 채취된 정소를 미세하게 세절하고, 0.25% trypsin-EDTA (Gibco, USA)에 첨가한 후, 30분간 vortexing을 실시하였다. 상기 vortexing을 실시한 후, 10분 동안 침지시키고, 상기 혼합액의 상층액을 회수하여 10% FBS가 첨가 된 DMEM/F-12(Sigma, USA) 배양액으로 원심분리를 실시하여 trysin-EDTA를 제거하였다. 상기 trysin-EDTA를 제거한 후, 10% FBS가 첨가된 DMEM/F-12 배양액으로 세포를 분리하였다.Pig testes carried to the laboratory were washed again three times with fresh sterile saline solution and alcohol, respectively, and then disclosed in the experiment. The washed testes were harvested by cutting each sample to about 10 × 10 mm, and the collected testes were finely chopped and added to 0.25% trypsin-EDTA (Gibco, USA), followed by vortexing for 30 minutes. After the vortexing, the solution was immersed for 10 minutes, and the supernatant of the mixed solution was recovered and centrifuged with DMEM / F-12 (Sigma, USA) culture medium to which 10% FBS was added to remove trysin-EDTA. After removing the trysin-EDTA, cells were separated by DMEM / F-12 culture medium to which 10% FBS was added.

상기 분리된 세포는 10% FBS가 첨가된 DMEM/F-12를 100ㅧ 20㎜ dish(Falcon, USA)에 분주하여 5% CO2 및 37℃의 조건으로 배양을 실시하였으며, 생후 2주령 돼지의 정소로부터 분리된 세포는 2시간, 생후 7개월 돼지의 정소로부터 분리된 세포는 6시간씩 배양을 하였다. 각각의 시간 동안 배양 후에 바닥에 붙지 않은 세포를 제거하고 신선한 DMEM/F-12 배양액으로 48시간마다 교체하면서 12일 동안 배양을 실시하였다. 배양시간을 상기 시간보다 과도하게 오래한 경우에는 간질 세포 이외의 다른 세포들이 부착되어 자라는 것이 관찰되었으며, 이러한 경우 percoll gradient법을 수행했을 때, 간질세포의 수득율이 아주 낮았다. The isolated cells were dispensed with 100% 20 mm dish (Falcon, USA) of DMEM / F-12 with 10% FBS and 5% CO 2. And 37 ° C., the cells isolated from the testes of 2 weeks old pigs were cultured for 2 hours, and the cells isolated from the testes of pigs 7 months old for 6 hours. After each hour of incubation, non-bottom cells were removed and cultured for 12 days with fresh DMEM / F-12 medium replaced every 48 hours. When the incubation time was excessively longer than the above time, it was observed that cells other than the interstitial cells adhered and grew. In this case, when the percoll gradient method was performed, the yield of the interstitial cells was very low.

상기 각각의 배양시간 동안 배양한 후에, 바닥에 붙지 않은 세포를 배양액과 같이 제거하고 새로운 배양액을 첨가하는 방법으로 계대배양을 수행한 후에, 공여세포가 dish에서 90% 이상 자랐을 때 0.25% trypsin-EDTA를 처리하여 부유시킨 다음 1/3정도씩 나누어 배양을 실시하였다. 상기 분리된 세포가 간질세포임을 확인하기 위하여, 상기 세포 배양액을 percoll gradient를 이용하여 원심분리하여 분석한 결과, 전체 세포의 90 %가 간질세포임임이 확인되어, 종래 보고 결과와 비교해서 유의하거나 더 우수한 결과임이 확인되었다.After incubation for each of the incubation time, after subculture by removing the non-bottom cells with the culture medium and adding a new culture medium, 0.25% trypsin-EDTA when the donor cells grew more than 90% in the dish After the treatment was suspended and divided by about 1/3 was carried out incubation. In order to confirm that the isolated cells are interstitial cells, the cell culture solution was analyzed by centrifugation using a percoll gradient. As a result, it was confirmed that 90% of all cells were interstitial cells, which was significantly or more compared with the conventional report. It was confirmed that it is an excellent result.

또한, 상기 세포부착능을 이용하여 계대배양을 실시하여 분리하는 간질세포 의 분리방법은 percoll gradient 법을 이용하는 경우에 비하여, 형태적인 변화가 작게 나타났으며, 오랜 기간 동안 계대배양을 실시한 경우에도 세포의 상태가 양호한 것이 확인되었다. 상기 결과로부터, 본 발명의 계대배양법은 percoll에 의한 분리배양법 보다 세포에 대한 손상을 줄일 수 있는 유리한 효과가 인정되었다. In addition, the separation method of the interstitial cells separated by subculture using the cell adhesion ability showed a small morphological change compared to the case of using the percoll gradient method, and even if the cells were passaged for a long period of time. It was confirmed that the state of was good. From the above results, it was recognized that the passage method of the present invention has an advantageous effect of reducing damage to cells than the separation culture by percoll.

실시예 1-2 돼지 정소 간질세포에 호르몬 처리 Example 1-2 Hormonal Treatment of Porcine Testicular Stromal Cells

호르몬처리는 DMEM/F12와 10% FBS배지에 androstenedione, nortestosterone, testosterone, progesterone를 각각 100 nM의 농도가 되도록 첨가하여 24시간 동안 처리하였다. 24시간 처리한 후, 배지를 수거하고, 상기 수거된 배지에 대해 EIA 분석을 수행하기 전까지 -20℃에 보관하였다.Hormonal treatment was performed for 24 hours by adding androstenedione, nortestosterone, testosterone, and progesterone to DMEM / F12 and 10% FBS medium at 100 nM concentration, respectively. After 24 hours of treatment, the medium was harvested and stored at −20 ° C. until the EIA assay was performed on the harvested medium.

실시예 1-3 EIA KIT을 이용한 난드롤론 함량 분석Example 1-3 Analysis of Nandrolone Content Using EIA KIT

상기 난드롤론의 함량은 EIA KIT(19-Nortestosterone-EIA(Euro-Diagnostica B. V. 5082NOR1p, Netherlands)을 이용하여 수행하였으며, 이와 관련된 실험재료 및 기자재는 하기와같다.The content of nandrolone was performed using EIA KIT (19-Nortestosterone-EIA (Euro-Diagnostica B. V. 5082NOR1p, Netherlands)), and experimental materials and equipment related thereto are as follows.

[실험재료 및 기자재][Experimental Materials and Equipment]

1) Microtitre plate1) Microtitre plate

2) Substrate solution (in dark, 사용 전에는 실온에서, 보관은 4 ℃)2) Substrate solution (in dark, at room temperature before use, storage at 4 ℃)

3) Conjugate solution (in dark, 사용 전에는 실온에서, 보관은 4 ℃, 오랫 동안 사용하려고 하면 ?? 20 ℃에서 보관)3) Conjugate solution (in dark, stored at room temperature before use, stored at 4 ℃, long-term use at 20 ℃)

4) 사용 전에는 실온에서, 보관은 4 ℃에서 보관, power 상태 dilution buffer 4 ml로 녹임)4) Store at room temperature and store at 4 ℃ before use. Dissolve with 4 ml of dilution buffer in power state.)

5) Antibody solution(보관은 4 ℃에서 보관, power 상태 dilution buffer 4 ml로 녹임)5) Antibody solution (Storage should be stored at 4 ℃ and dissolved in 4 ml of power dilution buffer)

6) 호르몬 분석에 사용할 배지는 37 ℃ 항온수조에 넣어 녹인 후 멸균된 3차6) The medium to be used for hormonal analysis was dissolved in a constant temperature water bath at 37 ℃ and sterilized in 3rd

증류수에 10 배, 20 배 희석하여, EIA 분석 Diluted 10 times, 20 times in distilled water, EIA analysis

상기 EIA KIT을 이용한 난드롤론 함량 분석을 위한 플레이트는 도 2에 나타내었다. 상기 도 2의 A1 well에는 zero standard 100 ㎕를 첨가하였고, B1 well에는 zero standard 50 ㎕를 첨가하였으며, B, C, D, E, F, G 및 H의 각 1 well에는 standard 1 내지 6을 각각 첨가 하였다. 나머지 well에는 분석할 샘플을 50 ㎕씩 첨가하고, A1 well을 제외한 나머지 well(standard 및 샘플 well)에 Enzyme conjugate solution 25 ㎕와 Antibody solution 25 ㎕를 첨가하였다. The plate for the analysis of nandrolone content using the EIA KIT is shown in FIG. 2. 100 μl of zero standard was added to A1 well of FIG. 2, and 50 μl of zero standard was added to B1 well, and standard 1 to 6 were added to each well of B, C, D, E, F, G and H, respectively. Was added. 50 μl of sample to be analyzed was added to the remaining wells, and 25 μl of Enzyme conjugate solution and 25 μl of Antibody solution were added to the remaining wells (standard and sample wells) except for the A1 well.

상기 과정을 수행하고 은박지를 이용하여 빛을 차단한 플레이트를 4 ℃에 1 시간동안 인큐베이션한 후 rinsing buffer로 3번 세척하였다. 상기 세척을 마친 플레이트에는 Substrate solution 100 ㎕를 넣고, 30분 동안 인큐베이션한 후, Stop solution 100 ㎕을 첨가하고, 450 nm 에서 O.D(optical density)값을 측정하였으며, 상기 측정한 분석 결과를 표 1 내지 표 3 및 도 3과 도 4에 나타내었다.The process was carried out and the plate was blocked by using silver foil incubated at 4 ℃ for 1 hour and washed three times with rinsing buffer. 100 μl of Substrate solution was added to the plate after the washing, incubated for 30 minutes, 100 μl of Stop solution was added thereto, and an optical density (OD) value was measured at 450 nm. Table 3 and shown in Figures 3 and 4.

[표 1]TABLE 1

Figure 112007084250998-pat00001
Figure 112007084250998-pat00001

[표 2]TABLE 2

Figure 112007084250998-pat00002
Figure 112007084250998-pat00002

[표 3][Table 3]

Figure 112007084250998-pat00003
Figure 112007084250998-pat00003

상기 표 1 내지 표 3 및 도 3과 도 4에 나타낸 바와 같이, 간질세포에 테스토스테론, 안드로스테네디온 및 프로게스테론의 3 종류의 호르몬을 처리하고, 24시간 후 배지를 수거하여, EIA kit으로 난드롤론의 양을 처리한 결과, 난드롤론의 양은 control의 경우 가장 양이 적고, 안드로스테네디온, 프로게스테론 및 테스토스테론의 순서로 난드롤론의 양이 나타나 안드로스테네디온을 첨가한 경우, 가장 많은 난드롤론을 생산할 수 있는 것으로 확인되었다. 따라서, 상기 안드로스테네디온이 가장 우수한 난드롤론 생산 촉진제인 것으로 확인되었다.As shown in Tables 1 to 3 and FIGS. 3 and 4, three kinds of hormones of testosterone, androstenedione, and progesterone were treated to stromal cells, and media were collected after 24 hours, and Nandrolone was treated with EIA kit. As a result, the amount of nandrolone was the lowest in the control, and the amount of nandrolone appeared in the order of androstenedione, progesterone, and testosterone. It was confirmed that it can produce. Thus, the androstenedione was found to be the best nandrolone production promoter.

또한, 상기한 결과로부터 돼지 정소의 간질세포 및 상기 세포의 배양액을 포함하는 조성물은 난드롤론의 생산 촉진 또는 저해물질을 스크리닝(screening) 즉, 검색하는 용도로 사용될 수 있으며, 상기와 같이 간질세포를 배양한 배양액에 난드롤론 생산 촉진 후보물질 또는 난드롤론 저해 촉진 후보물질을 첨가한 후에, 난드롤론 생산량의 변화량을 측정함으로써, 난드롤론 생산 또는 저해 물질을 검색할 수 있는 방법도 제공된다.In addition, from the above results, the composition comprising porcine testes stromal cells and the culture medium of the cells can be used for screening (ie, screening) the screen for the production of nandrolone or an inhibitor, and the stromal cells as described above. There is also provided a method capable of searching for nandrolone production or inhibitor by measuring the amount of change in the production of nandrolone after adding a candidate for promoting nandrolone production or a candidate for promoting inhibition of nandrolone to the culture medium.

실시예 2: 돼지 정소 추출물을 이용한 난드롤론 생산Example 2: Nandrolone Production Using Pork Testis Extract

[실험시약 및 기구][Experimental reagents and instruments]

1)클로로포름 (chloroform): HPLC grade, SK Chemical Co. (Seoul, Korea)1) chloroform: HPLC grade, SK Chemical Co. (Seoul, Korea)

2)메탄올 (methanol): HPLC grade, Merck Co. (Darmstadt, Germany)2) methanol: HPLC grade, Merck Co. (Darmstadt, Germany)

3)1000 mL 메스실린더: 한일이화학 (Seoul, Korea)3) 1000 mL measuring cylinder: Hanil Chemical (Seoul, Korea)

4)1000 mL 비이커: 한일이화학 (Seoul, Korea)4) 1000 mL beaker: Hanil Chemical (Seoul, Korea)

5)250 mL 분별깔대기: 한일이화학 (Seoul, Korea)5) Separation funnel: Hanil Chemical (Seoul, Korea)

6)조직균질기: Ultra-Turrax T25, IKA Co.(USA6) Tissue homogenizer: Ultra-Turrax T25, IKA Co. (USA

7)회전진공건조기: 1200 type, Eyela Co. (Tokyo, Japan)7) Rotary vacuum dryer: 1200 type, Eyela Co. (Tokyo, Japan)

실시예 2-1 돼지 정소 추출물의 제조Example 2-1 Preparation of Porcine Testis Extract

저농축 추출물의 제조Preparation of Low Concentrate Extract

지방 추출을 위한 정소는 부정소를 모두 제거하고 순수한 정소를 분리하였다. 분리한 정소는 조직균질기로 갈기 위해 10 내지 30 g 크기로 미리 잘라서 -20℃ 냉동고에 얼려 보관하였다. 정소의 지방을 추출하기 위한 용매는 부피비를 기준으로, 클로로포름과 에탄올이 1:1로 혼합된 혼합용액을 사용하였다. 1000 mL 비이커에 25 내지 50 g 사이의 정소 조각을 넣고, 8배의 클로로포름/에탄올 혼합용액을 첨가한 후, 3분간 균질화 하였다. 균질화를 수행한 후, Whatman No.2 여과지를 사용해서 여기에 걸리는 잔존물은 모두 제거하고, 지방을 포함한 제품을 제조하기 위해 여과액을 모두 250 mL 분별 깔대기에 넣고 0.9% 생리 식염수용액을 소량 첨가 하여 가볍게 흔들어 준 뒤 약 10분간 정치하였다. 분리된 아래층을 회수병에 넣고 상등액은 다시 한 번 생리식염수를 첨가하여 흔든 뒤 약 20분간 방치하고 이때 분리된 아래층을 회수병에 합쳤다. 이 과정을 한 번 더 실시하여 총 3회를 실시하고 아래층은 모두 같은 회수병에 넣는다. 회수병에 회수된 아래층은 아직 약간의 물 층이 포함되어 있으므로 24시간 동안 가만히 세워두었고, 정치하여 분리된 상층은 pasteur pipette을 사용하여 모두 폐기하였다. 상층의 폐기 후에 남은 유기용매는 round 형태의 감압회전 농축기의 flask에 Whatman No.2 여과지에 미리 10g 내외의 sodium sulphate를 깔고 여과하면서 넣어주었다. 회전 감압 농축기에서 50℃ 로 중탕하면서 모든 용매가 제거될 때까지 농축시키고 잔존물은 회수하여 추가로 가공하였다. The testes for fat extraction removed all the negatives and separated the pure testes. The isolated testes were pre-cut into 10-30 g size for grinding into a tissue homogenizer and stored frozen at -20 ° C freezer. As a solvent for extracting the testis fat, a mixed solution in which chloroform and ethanol were mixed at a volume ratio of 1: 1 was used. A test piece between 25 and 50 g was placed in a 1000 mL beaker, followed by addition of 8 times the chloroform / ethanol mixed solution, followed by homogenization for 3 minutes. After homogenization, remove all residues using Whatman No.2 filter paper, and put all the filtrates in 250 mL separatory funnel to make products containing fat, and add a small amount of 0.9% saline solution. Shake it lightly and let stand for about 10 minutes. The separated lower layer was placed in a recovery bottle, and the supernatant was once again shaken with physiological saline, and left for about 20 minutes. At this time, the separated lower layer was combined with the recovery bottle. This process is repeated one more time, for a total of three times, and the lower floors are all placed in the same collection bottle. The lower layer recovered in the recovery bottle was still standing for 24 hours because it still contained some water layer, and the upper layer separated by standing was discarded using pasteur pipette. After disposing of the upper layer, the remaining organic solvent was added to the Whatman No. 2 filter paper with 10 g of sodium sulphate in a flask of a round-type vacuum condenser and filtered. The mixture was concentrated to 50 ° C. in a rotary vacuum concentrator until all solvents were removed and the residue was recovered and further processed.

고농축 추출물의 제조Preparation of Highly Concentrated Extract

고농도 추출물의 제조는 하기와 같은 방법으로 수행하였다.Preparation of high concentration extract was carried out in the following manner.

우선, 상기의 클로로포름/에탄올 혼합용액을 이용하여 정소로부터 다량의 지방과 기타 스테로이드성 물질을 먼저 추출한 용액을 사용하였다. 이를 회전 감압기를 사용하여 유기용매를 휘발시킨 후 남은 용액의 약 3배의 에탄올/증류수 혼합용액(=85/15, v/v)을 넣고 잘 혼합하여 내용물을 섞어주었다. 여기에 50% NaOH 용액 25 mL을 첨가하고 80 ℃에서 45분간 중탕 후 상온으로 식혔다. 10% 황산용액으로 pH를 중성으로 조정하였다. 내용물은 분별 깔대기에 나누어 담고 에테르를 내용물의 1/2 만큼 넣은 후 흔들어 잘 혼합하고 10분간 가만히 정치하여 층 분리가 되도록 하였다. 층이 깨끗하게 분리되면 아래층은 다시 새로운 분별깔대기에 넣고 한 번 더 분리하여 되도록 많은 양을 추출하였다. 그 후 아래층은 폐기하고 상층의 에테르를 모두 모아 증류수로 세척해서 정제하고 에테르 층만 회전 감압농축기에 넣고 완전 건조하여 농축하였다. 농축물을 회수하기 위해 소량의 chloroform을 넣어 녹인 후 3 mL 시료용 병에 넣어 냉동보관 하였다. 또한 이를 캡슐화에 사용하였다.First, a solution in which a large amount of fat and other steroidal substances were first extracted from the testis using the chloroform / ethanol mixed solution was used. The organic solvent was volatilized using a rotary pressure reducer, and about 3 times of the ethanol / distilled water mixed solution (= 85/15, v / v) of the remaining solution was mixed well and the contents were mixed. 25 mL of a 50% NaOH solution was added thereto, and the mixture was cooled to room temperature after boiling at 80 ° C. for 45 minutes. The pH was adjusted to neutral with 10% sulfuric acid solution. The contents were divided in a separatory funnel, ether was added by half of the contents, shaken well, mixed well, and allowed to stand still for 10 minutes to separate layers. When the layers were separated cleanly, the lower layer was put in a new separatory funnel and separated once more to extract as much as possible. After that, the lower layer was discarded, and all the ethers of the upper layer were collected, washed with distilled water, and purified. The ether layer was placed in a rotary vacuum concentrator, and completely dried and concentrated. To recover the concentrate, a small amount of chloroform was added to dissolve and then stored in a 3 mL sample bottle for freezing. It was also used for encapsulation.

실시예 2-2 난드롤론의 함량 분석Example 2-2 Content Analysis of Nandrolone

난드롤론의 함량 분석은 상기 실시예 1-3과 동일한 EIA KIT을 사용하여 동일한 방법으로 수행하였다. Nandrolone content analysis was performed in the same manner using the same EIA KIT as in Example 1-3.

보다 구체적으로는, A1 well에 zero standard 100 ㎕ 첨가 후 B1 well에 zero standard 50 ㎕ 첨가하고, B, C, D, E, F, G H 1 well 에 standard 1 내지 6을 각각 첨가 하였다. 나머지 well에는 분석할 샘플을 50 ㎕씩 첨가 하고 A1 well을 제외한 나머지 well(standard 및 샘플 well)에 Enzyme conjugate solution 25 ㎕와 Antibody solution 25 ㎕을 넣었다. 앞 과정을 마친 플레이트는 음박지로 빛을 차단하고 4℃에 1 시간 동안 둔 후, rinsing buffer로 3 번을 세척하였다. 세척을 마친 플레이트에는 Substrate solution 100 ㎕을 넣고 30분 동안 방치한 후, Stop solution 100 ㎕을 첨가하고 450 nm 에서 O.D 값(optical density)을 측정하였으며, 그 결과를 표 4와 표 5 및 도 6에 나타내었다. More specifically, after adding 100 μl of zero standard to A1 well, 50 μl of zero standard was added to B1 well, and standard 1 to 6 were added to B, C, D, E, F, and G H 1 wells, respectively. 50 μl of sample to be analyzed was added to the remaining wells, and 25 μl of Enzyme conjugate solution and 25 μl of Antibody solution were added to the remaining wells (standard and sample wells) except for A1 wells. After the above process, the plate was blocked with light paper and placed at 4 ° C for 1 hour, and then washed 3 times with rinsing buffer. After the plate was washed, 100 μl of Substrate solution was added and left for 30 minutes. Then, 100 μl of Stop solution was added thereto, and the OD value (optical density) was measured at 450 nm. The results are shown in Tables 4, 5, and 6. Indicated.

[표 4][Table 4]

Figure 112007084250998-pat00004
Figure 112007084250998-pat00004

[표 5]TABLE 5

Figure 112007084250998-pat00005
Figure 112007084250998-pat00005

상기 표 4 및 표 5에 나타낸 바와 같이, 정소 추출물의 경우 1 ml 당 평균 61.13 ng의 난드롤론이 포함되어 있고, 정소 1 g 당 825.22 ng의 난드롤론이 포함되어 있는 것이 확인되었다.As shown in Table 4 and Table 5, it was confirmed that the testicular extract contained an average of 61.13 ng of nandrolone per 1 ml and 825.22 ng of nandrolone per 1 g of testes.

상기한 결과로부터, 돼지 정소 추출물의 경우, 산업적으로 이용할 수 있을 정도의 난드롤론이 포함되어 있는 것이 확인되었으므로, 돼지 정소 추출물을 이용하여 난드롤론을 생산하는 경우, 저렴하고 간단한 공정으로 화학적 제조방법에 의해 생산된 난드롤론보다 부작용이 적은 난드롤론을 생산할 수 있는 것으로 확인되었다. From the above results, it has been confirmed that the extract of swine testis contains an industrially available degree of nandrolone, and thus, when the production of nandrolone using the swine testis extract is carried out in a cheap and simple process, It was confirmed that it is possible to produce nandrolone with fewer side effects than the nandrolone produced.

도 1은 본 발명의 일 실시예에 따른 돼지 정소 추출물을 이용한 난드롤론 생산방법의 나타내는 흐름도이다.1 is a flowchart showing a method for producing nandrolone using a pig testis extract according to an embodiment of the present invention.

도 2는 본 발명의 일 실시예에 따른 돼지 정소의 간질세포 배양액의 난드롤론 함량을 EIA KIT을 이용하여 분석하기 위한 플레이트(plate)를 나타낸 것이다.Figure 2 shows a plate for analyzing the Nandrolone content of the interstitial cell culture of pig testis according to an embodiment of the present invention using EIA KIT.

도 3은 본 발명의 일 실시예에 따른 난드롤론의 표준 곡선을 나타낸 그래프이다.3 is a graph showing a standard curve of nandrolone according to an embodiment of the present invention.

도 4는 본 발명의 일 실시예에 따른 호르몬 처리에 따른, 간질세포 배양액 내의 난드롤론의 농도를 나타낸 그래프이다. 상기 도 4에서 C는 control, T는 testosterone, A는 androstenedione 및 P는 progesterone을 의미한다.Figure 4 is a graph showing the concentration of nandrolone in the stromal cell culture medium according to the hormone treatment according to an embodiment of the present invention. In FIG. 4, C means control, T means testosterone, A means androstenedione, and P means progesterone.

도 5는 본 발명의 일 실시예에 따른 돼지정소 추출물의 난드롤론 함량을 EIA KIT을 이용하여 분석하기 위한 플레이트(plate)를 나타낸 것이다.5 shows a plate for analyzing the Nandrolone content of the pig testis extract according to an embodiment of the present invention using EIA KIT.

도 6은 본 발명의 일 실시예에 따른 돼지 추출물로부터 수득한 난드롤론의 표준 곡선을 나타낸 그래프이다.6 is a graph showing a standard curve of nandrolone obtained from a pig extract according to an embodiment of the present invention.

Claims (11)

a) 돼지 정소의 간질세포를 배양액에서 배양하는 단계; 및a) culturing the stromal cells of porcine testis in a culture medium; And b) 상기 간질세포를 배양한 세포 배양액으로부터 난드롤론을 분리하는 단계를 포함하는, 돼지 정소의 간질세포를 이용한 난드롤론 생산방법.b) a method for producing nandrolone using interstitial cells of swine testis, comprising the step of separating the nandrolone from the cell culture medium in which the stromal cells are cultured. 삭제delete 제1항에 있어서, The method of claim 1, 상기 a) 단계는 안드로스테네디온(androstenedione), 프로게스테론(progesterone) 및 테스토스테론(testosterone)으로 이루어진 군에서 선택된 1 이상을 추가로 첨가하여 간질세포를 배양하는 난드롤론 생산방법.The step a) is an androstenedione (androstenedione), progesterone (progesterone) and testosterone (testosterone) by adding an additional one or more selected from the group consisting of nandrolone production method for culturing interstitial cells. 제1항 또는 제3항에 있어서, 상기 돼지 정소의 간질세포는 계대배양법으로 수득한 것인 난드롤론 생산방법.4. The method of claim 1 or 3, wherein the interstitial cells of the swine testis are obtained by subculture. 돼지 정소의 간질 세포를 포함하는 난드롤론 제조용 조성물.Nandrolone production composition comprising interstitial cells of porcine testis. 제5항에 있어서, The method of claim 5, 상기 조성물은 DMEM(Dulbecco's modified Eagle's medium) 배양액 또는 FBS(fetal bovine serum) 가 포함된 DMEM 배양액을 추가로 포함하는 것인 난드롤론 제조용 조성물.Wherein the composition further comprises a DMEM culture medium containing DMEM (Dulbecco's modified Eagle's medium) or FBS (fetal bovine serum). 제5항에 있어서, The method of claim 5, 상기 조성물은 안드로스테네디온(androstenedione), 프로게스테론(progesterone) 및 테스토스테론(testosterone)으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상인 난드롤론 생산 촉진 물질을 추가로 포함하는 난드롤론 제조용 조성물.The composition is a composition for producing nandrolone, further comprising one or more nandrolone production promoting material selected from the group consisting of androstenedione (androstenedione), progesterone (progesterone) and testosterone (testosterone). 돼지 정소 추출물로부터 난드롤론을 분리하는 단계를 포함하는 난드롤론 생산방법.Nandrolone production method comprising the step of separating the nandrolone from the pig testis extract. 제8항에 있어서,The method of claim 8, 상기 난드롤론 생산방법은 돼지 정소에 물, 탄소수 1 내지 4의 알콜, 에틸아세테이트, 클로로포름, 에테르, 헥산 및 디클로로메탄으로 이루어진 군에서 선택된 1 종 이상을 추출용매를 첨가하여 돼지 정소 추출물을 수득하는 단계를 포함하는 것인 난드롤론 생산방법.The nandrolone production method comprises the steps of obtaining a pig testis extract by adding an extraction solvent to one or more selected from the group consisting of water, alcohol having 1 to 4 carbon atoms, ethyl acetate, chloroform, ether, hexane and dichloromethane in pig testis. Nandrolone production method comprising a. 제9항에 있어서, 10. The method of claim 9, 상기 난드롤론 생산방법은 상기 돼지 정소 추출물에 NaOH를 추가로 첨가하는 단계를 더욱 포함하는 것인 난드롤론 생산방법.The nandrolone production method further comprises the step of additionally adding NaOH to the pig testis extract. 제10항에 있어서, The method of claim 10, 상기 난드롤론 생산방법은 상기 돼지 정소 추출물에 에테르를 추가로 첨가하고 에테르 층만을 수득하는 단계를 더욱 포함하는 것인 난드롤론 생산방법.The nandrolone production method further comprises the step of additionally adding ether to the pig testis extract and obtaining only an ether layer.
KR1020070119975A 2007-11-23 2007-11-23 Nandrolone Production Method Expired - Fee Related KR101053640B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020070119975A KR101053640B1 (en) 2007-11-23 2007-11-23 Nandrolone Production Method

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020070119975A KR101053640B1 (en) 2007-11-23 2007-11-23 Nandrolone Production Method

Publications (2)

Publication Number Publication Date
KR20090053238A KR20090053238A (en) 2009-05-27
KR101053640B1 true KR101053640B1 (en) 2011-08-02

Family

ID=40860769

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1020070119975A Expired - Fee Related KR101053640B1 (en) 2007-11-23 2007-11-23 Nandrolone Production Method

Country Status (1)

Country Link
KR (1) KR101053640B1 (en)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR101133226B1 (en) * 2009-12-30 2012-04-05 영남대학교 산학협력단 A Composition Containing Pig Testis Extracts for Preventing and Treating Anemia
KR101133227B1 (en) * 2009-12-30 2012-04-05 영남대학교 산학협력단 A Composition Containing Pig Testis Extracts for Preventing and Treating Anemia
US20130018022A1 (en) * 2009-12-30 2013-01-17 Industry-Academic Cooperation Foundation, Yeungnam University Pharmaceutical composition including a testis extract as an active ingredient for treating and preventing anemia

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR980000373A (en) * 1996-06-28 1998-03-30 다니구치 유즈루 Denture Making Organization
JP2005512568A (en) 2001-12-20 2005-05-12 ティ・ジー・エヌ バイオテック インコーポレイテッド Seminal vesicle tissue-specific promoter and use thereof
KR100642080B1 (en) 2006-02-11 2006-11-13 케이에이취팜 주식회사 Food composition for improving menopausal / menopausal disorders containing pig placenta extract, health functional food comprising the same and method for producing same

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR980000373A (en) * 1996-06-28 1998-03-30 다니구치 유즈루 Denture Making Organization
JP2005512568A (en) 2001-12-20 2005-05-12 ティ・ジー・エヌ バイオテック インコーポレイテッド Seminal vesicle tissue-specific promoter and use thereof
KR100642080B1 (en) 2006-02-11 2006-11-13 케이에이취팜 주식회사 Food composition for improving menopausal / menopausal disorders containing pig placenta extract, health functional food comprising the same and method for producing same

Also Published As

Publication number Publication date
KR20090053238A (en) 2009-05-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Chang et al. Effect of Cordyceps militaris supplementation on sperm production, sperm motility and hormones in Sprague-Dawley rats
Rodrigo et al. A method for the extraction of high-quality RNA and protein from single small samples of arteries and veins preserved in RNAlater
Slater et al. Androgens and immunocompetence in salmonids: specific binding in and reduced immunocompetence of salmonid lymphocytes exposed to natural and synthetic androgens
Huo et al. Improving effects of Epimedium flavonoids on the selected reproductive features in layer hens after forced molting
KR101053640B1 (en) Nandrolone Production Method
Kashani et al. The effect of aqueous extract of Salep prepared from root-tubers of Dactylorhiza maculate (Orchidaceae) on the testes and sexual hormones of immature male mice
Fairbairn et al. The lipid components in the vitelline membrane of Ascaris lumbricoides eggs
Howland et al. Changes in serum levels of gonadotropins and testosterone in the male rat in response to fasting, surgery and ether
CN116173093B (en) Application of eucommia male flower extract in preparing food or medicine for resisting muscle aging
KR101151129B1 (en) Composition for treating or preventing diseases comprising placenta extract
Iimori et al. Testosterone secretion and pharmacological spermatozoal recovery in the cane toad (Bufo marinus)
KR101074377B1 (en) Composition for treating or preventing diseases comprising testis extract
Agiang et al. Effect of some traditional edible oils on sex hormones of albino Wistar rats
KR101064693B1 (en) Androstenone production method
Dilshad et al. Effect of flax seeds (Linum usitatissimum) on uterine and ovarian protein contents, ovarian cholesterol, serum estradiol and onset of puberty in immature female mice.
US20140011781A1 (en) Method for treating or preventing anemia using testis extract as active ingredient
KR101612501B1 (en) Composition for Improving Male Reproduction Capability Comprising Extract of Equisetum hyemale, Dioscorea batatas, Cuscutae Semen crudus and Curculiginis Rhizoma
Hertelendy et al. A chromatographic investigation of egg yolk for the presence of steroid estrogens
KR101296934B1 (en) Adipogenesis stimulator comprising testis or placenta extract
Al Za’abi et al. Research Article The Effect of an Extract and Fractions of Date Pits on Some Plasma Constituents, Reproductive Hormones, and Testicular Histology in Male Mice
KR101024145B1 (en) Method of producing sex specific bovine serum
CZ2009117A3 (en) Biotechnological preparation process of bovine haemoderivative and use of such bovine haemoderivative
Ettinger et al. Acetylcholine in ox and dog blood
KR102335267B1 (en) Method of extraction of testosterone from rainbow trout testis
Sira et al. The development of the national monograph of the State Pharmacopoeia of Ukraine on medicinal plant raw material-Black horehound herb (Ballotae nigrae herba)

Legal Events

Date Code Title Description
PA0109 Patent application

St.27 status event code: A-0-1-A10-A12-nap-PA0109

R18-X000 Changes to party contact information recorded

St.27 status event code: A-3-3-R10-R18-oth-X000

A201 Request for examination
P11-X000 Amendment of application requested

St.27 status event code: A-2-2-P10-P11-nap-X000

P13-X000 Application amended

St.27 status event code: A-2-2-P10-P13-nap-X000

PA0201 Request for examination

St.27 status event code: A-1-2-D10-D11-exm-PA0201

PG1501 Laying open of application

St.27 status event code: A-1-1-Q10-Q12-nap-PG1501

D13-X000 Search requested

St.27 status event code: A-1-2-D10-D13-srh-X000

D14-X000 Search report completed

St.27 status event code: A-1-2-D10-D14-srh-X000

E902 Notification of reason for refusal
PE0902 Notice of grounds for rejection

St.27 status event code: A-1-2-D10-D21-exm-PE0902

E13-X000 Pre-grant limitation requested

St.27 status event code: A-2-3-E10-E13-lim-X000

P11-X000 Amendment of application requested

St.27 status event code: A-2-2-P10-P11-nap-X000

P13-X000 Application amended

St.27 status event code: A-2-2-P10-P13-nap-X000

E701 Decision to grant or registration of patent right
PE0701 Decision of registration

St.27 status event code: A-1-2-D10-D22-exm-PE0701

GRNT Written decision to grant
PR0701 Registration of establishment

St.27 status event code: A-2-4-F10-F11-exm-PR0701

PR1002 Payment of registration fee

Fee payment year number: 1

St.27 status event code: A-2-2-U10-U11-oth-PR1002

PG1601 Publication of registration

St.27 status event code: A-4-4-Q10-Q13-nap-PG1601

R18-X000 Changes to party contact information recorded

St.27 status event code: A-5-5-R10-R18-oth-X000

PN2301 Change of applicant

St.27 status event code: A-5-5-R10-R11-asn-PN2301

St.27 status event code: A-5-5-R10-R13-asn-PN2301

FPAY Annual fee payment

Payment date: 20140703

Year of fee payment: 4

PR1001 Payment of annual fee

Fee payment year number: 4

St.27 status event code: A-4-4-U10-U11-oth-PR1001

FPAY Annual fee payment

Payment date: 20150601

Year of fee payment: 5

PR1001 Payment of annual fee

Fee payment year number: 5

St.27 status event code: A-4-4-U10-U11-oth-PR1001

FPAY Annual fee payment

Payment date: 20160725

Year of fee payment: 6

PR1001 Payment of annual fee

Fee payment year number: 6

St.27 status event code: A-4-4-U10-U11-oth-PR1001

P22-X000 Classification modified

St.27 status event code: A-4-4-P10-P22-nap-X000

LAPS Lapse due to unpaid annual fee
PC1903 Unpaid annual fee

Not in force date: 20170728

Payment event data comment text: Termination Category : DEFAULT_OF_REGISTRATION_FEE

St.27 status event code: A-4-4-U10-U13-oth-PC1903

PN2301 Change of applicant

St.27 status event code: A-5-5-R10-R11-asn-PN2301

St.27 status event code: A-5-5-R10-R13-asn-PN2301

PC1903 Unpaid annual fee

Ip right cessation event data comment text: Termination Category : DEFAULT_OF_REGISTRATION_FEE

Not in force date: 20170728

St.27 status event code: N-4-6-H10-H13-oth-PC1903

R18-X000 Changes to party contact information recorded

St.27 status event code: A-5-5-R10-R18-oth-X000

R18-X000 Changes to party contact information recorded

St.27 status event code: A-5-5-R10-R18-oth-X000

R18-X000 Changes to party contact information recorded

St.27 status event code: A-5-5-R10-R18-oth-X000

R18-X000 Changes to party contact information recorded

St.27 status event code: A-5-5-R10-R18-oth-X000