KR101492402B1 - Method for increasing total fatty acid content and useful fatty acid ratio in transgenic microalgae overexpressing FAB2 gene - Google Patents
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Abstract
본 발명은 미세조류 유래의 FAB2(stearoyl-acyl carrier protein desaturase) 단백질을 코딩하는 유전자를 미세조류에서 과발현시켜 미세조류에서 총 지방산 함량 및 유용지방산 비율을 증가시키는 방법 및 바이오디젤의 생산 방법을 제공한다.The present invention provides a method of overexpressing a gene encoding a microarray-derived stearoyl-acyl carrier protein desaturase (FAB2) protein in microalgae to increase total fatty acid content and useful fatty acid ratio in microalgae and a method for producing biodiesel .
Description
본 발명은 FAB2 유전자를 과발현하는 형질전환 미세조류에서 총 지방산 함량 및 유용지방산 비율을 증가시키는 방법에 관한 것으로, 더욱 상세하게는 미세조류 유래의 FAB2(stearoyl-acyl carrier protein desaturase) 단백질을 코딩하는 유전자를 미세조류에서 과발현시켜 미세조류에서 총 지방산 함량 및 유용지방산 비율을 증가시키는 방법 및 바이오디젤의 생산 방법에 관한 것이다.The present invention relates to a method for increasing total fatty acid content and useful fatty acid ratio in transgenic microalgae overexpressing FAB2 gene, and more particularly, to a method for increasing the total fatty acid content and useful fatty acid ratio of a gene encoding a microarray-derived stearoyl-acyl carrier protein desaturase (FAB2) To a method for increasing total fatty acid content and useful fatty acid ratio in microalgae, and a method for producing biodiesel.
재생에너지로서 바이오디젤은 현재 동물성 지방, 폐 식용유 그리고 식물성 기름을 이용하여 생산되고 있다. 그러나 이러한 방법으로는 바이오디젤의 수요를 충족할 수 없다. 미세조류는 작물을 이용한 기름 생산과 비교하여 볼 때 생산성이 매우 높아 매력적인 바이오디젤 생산 원료이다. 그러나 미세조류를 이용해 생산된 기름의 취약점은 고도불포화 지방산(polyunsaturated fatty acids)을 함유하고 있어 산화 안정성이 취약해서 보관이 어렵다는 단점을 가지고 있다(Chisti et al., 2007 Biotechnol Adv, 25(3), 294-306). 미세조류에서 생산된 기름의 산화 안정성을 높이기 위해서는 총 지방산 중 불포화 지방산이면서 산화안정성이 비교적 높은 올레산과 리놀레산의 비율을 높이는 것을 필요로 한다.As renewable energy, biodiesel is currently produced using animal fats, waste cooking oil and vegetable oil. However, this method can not meet the demand of biodiesel. Microalgae is an attractive biodiesel production raw material because it is highly productive compared to oil production using crops. However, the weakness of oil produced by microalgae has the disadvantage that it contains polyunsaturated fatty acids, which makes it difficult to store because of its poor oxidative stability (Chisti et al., 2007 Biotechnol Adv. , 25 (3), 294-306). In order to increase the oxidation stability of oil produced from microalgae, it is necessary to increase the ratio of oleic acid and linoleic acid, which are unsaturated fatty acids and relatively high oxidation stability among total fatty acids.
지방산 불포화효소(fatty acid desaturase)는 지방산의 수소 원자 2개를 제거함으로써 지방산 내의 이중결합을 만들어주는 역할을 한다. 이러한 과정은 고등식물에서 색소체와 소포체에서 일어난다. 여러 다른 종류의 지방산 불포화 효소는 고등식물 유전체에 존재한다고 알려져 있으며, 고등식물의 FAB2 (stearoyl-acyl carrier protein desaturase; 다른 이름으로는 SSI2로 불림)는 포화 스테아르산(18:0)을 하나의 이중결합을 가지는 불포화 올레산(18:1)로 전환해 주는 역할을 하는 효소이다. 애기장대(Arabidopsis)에서 FAB2의 발현을 억제시킨 형질전환체의 경우 올레산의 축적이 감소하였으며, 올레산의 전구물질인 스테아르산의 축적은 증가하였다. 이러한 연구결과는 FAB2가 올레산을 합성하는 주효소라는 것을 입증하고 있다. 그러나 FAB2를 과발현시킨 식물체에서는 지방산 조성의 변화를 관찰할 수 없었다(Kachroo et al., 2007 Plant Mol Biol, 63(2), 257-271).Fatty acid desaturase plays a role in producing double bonds in fatty acids by removing two hydrogen atoms of fatty acid. This process occurs in pigment and endoplasmic reticulum in higher plants. Several different types of fatty acid unsaturation enzymes are known to be present in higher plant genomes and the higher plant FAB2 (stearoyl-acyl carrier protein desaturase; otherwise known as SSI2) contains saturated stearic acid (18: 0) (18: 1), which is an unsaturated oleic acid. In Arabidopsis, the accumulation of oleic acid was decreased and the accumulation of stearic acid, a precursor of oleic acid, was increased in transformants inhibiting FAB2 expression in Arabidopsis. These results demonstrate that FAB2 is the main enzyme for the synthesis of oleic acid. However, changes in fatty acid composition could not be observed in plants overexpressing FAB2 (Kachroo et al., 2007 Plant Mol Biol , 63 (2), 257-271).
본 발명에서 사용한 미세녹조류인 클라미도모나스 레인하드티(Chlamydomonas reinhardtii)는 지방산 합성 경로의 연구모델로 활용되고 있으며, 고등식물과 마찬가지로 엽록체와 소포체에서 지방산 생합성이 이루어진다. 또한 고등식물에서 알려진 지방산 생합성 관련 유전자의 오쏘로그(orthologs)로 생각되는 유전자들이 클라미도모나스 유전체에서 존재한다고 보고되었다(Chi et al., 2011 Plant Mol Biol Rep, 29, 769-783).Chlamydomonas reinhardtii, a microalgae used in the present invention, has been utilized as a research model for fatty acid synthesis pathways and fatty acid biosynthesis is performed in chloroplasts and endoplasmic cells as well as in higher plants. Also, genes that are thought to be orthologs of the fatty acid biosynthesis-related genes known in higher plants have been reported to be present in the clamidomonas genome (Chi et al., 2011 Plant Mol Biol Rep , 29 , 769-783).
미국공개특허 제2004-0049807호에서는 식물 방어 신호전달 경로의 활성화를 조절하는 지방산 불포화효소 유전자 및 단백질에 대해 개시되어 있고, 한국공개특허 제2011-0125576호에서는 북극 해양에서 분리한 지질 고생산 미세조류 클라미도모나스 세포주 및 이의 용도가 개시되어 있으나, 본 발명에서와 같이 FAB2 유전자를 이용한 형질전환 미세조류를 사용하여 지방산을 대량생산하는 방법에 대해서는 밝혀진 바가 없다.U.S. Patent Publication No. 2004-0049807 discloses fatty acid desaturase genes and proteins that regulate the activation of the plant defense signaling pathway, Korean Patent Publication No. 2011-0125576 discloses a lipid-producing microalgae Clamidomonas cell line and its use have been disclosed, but a method of mass-producing fatty acids using the transformed microalgae using the FAB2 gene as in the present invention has not been disclosed.
본 발명은 상기와 같은 요구에 의해 안출된 것으로서, 본 발명자는 미세조류인 클라미도모나스의 FAB2 유전자를 클로닝하여 형질전환용 벡터를 제작하였으며, 이를 클라미도모나스에 도입하고 FAB2 유전자를 과발현시킴으로써 미세조류를 이용한 바이오디젤 생산에서 중요한 올레산과 리놀레산의 조성의 증가 및 팔미트산의 조성증가를 확인하였다. 또한 총 지방산 함량이 증가된 것을 확인함으로써, 본 발명을 완성하였다. The present invention has been made in view of the above-described needs. The present inventors prepared a vector for transformation by cloning the FAB2 gene of microalgae, Clamidomonas, and introduced it into Clamidomonas and overexpressed the FAB2 gene, Which is important for the production of biodiesel using oleic acid and linoleic acid, and the increase of the composition of palmitic acid. And confirming that the total fatty acid content was increased, thereby completing the present invention.
상기 과제를 해결하기 위해, 본 발명은 미세조류 유래의 FAB2(stearoyl-acyl carrier protein desaturase) 단백질을 코딩하는 유전자를 미세조류에서 과발현시키는 단계를 포함하는 미세조류에서 총 지방산 함량 및 유용지방산 비율을 증가시키는 방법을 제공한다.In order to solve the above problems, the present invention provides a method for increasing the total fatty acid content and the useful fatty acid ratio in a microalgae including overexpressing a gene encoding a microarray-derived stearoyl-acyl carrier protein desaturase (FAB2) .
또한, 본 발명은 미세조류 유래의 FAB2 단백질을 코딩하는 유전자를 포함하는 재조합 벡터를 미세조류에 형질전환시켜 FAB2 단백질 코딩 유전자를 과발현시키는 단계를 포함하는 야생형 미세조류에 비해 총 지방산 함량 및 유용지방산 비율이 증가된 형질전환 미세조류의 제조 방법을 제공한다.The present invention also relates to a method for producing a microalgae, which comprises transforming microbial algae with a recombinant vector containing a gene encoding a microalgae-derived FAB2 protein, thereby over-expressing the FAB2 protein coding gene, Thereby providing a method for producing the increased transformed microalgae.
또한, 본 발명은 상기 방법에 의해 제조된 야생형 미세조류에 비해 총 지방산 함량 및 유용지방산 비율이 증가된 형질전환 미세조류를 제공한다.The present invention also provides a transformed microalgae having increased total fatty acid content and useful fatty acid ratio as compared to wild-type microalgae produced by the above method.
또한, 본 발명은 미세조류 유래의 FAB2 단백질을 코딩하는 유전자를 포함하는, 미세조류에서 총 지방산 함량 및 유용지방산 비율을 증가시키기 위한 조성물을 제공한다.The present invention also provides a composition for increasing total fatty acid content and useful fatty acid content in microalgae, which comprises a gene encoding a microalgae-derived FAB2 protein.
또한, 본 발명은 미세조류 유래의 FAB2 단백질을 코딩하는 유전자를 미세조류에서 과발현시켜 미세조류에서 지방산을 생산하는 단계를 포함하는 바이오디젤의 생산 방법을 제공한다.The present invention also provides a method for producing biodiesel comprising the step of overexpressing a gene encoding a microalgae-derived FAB2 protein in a microalgae to produce a fatty acid in a microalgae.
본 발명은 모든 미세조류의 지방산 생합성 경로의 조절이 가능한 FAB2 유전자의 새로운 용도를 제공하며, 본 유전자로 형질전환된 미세조류는 총 지방산 함량이 증가 되었으며, 특히 불포화 지방산이면서 산화안정성이 비교적 높은 올레산, 리놀레산 및 팔미트산의 조성 비율이 증가되어 질적/양적으로 우수한 바이오디젤 생산용 미세조류로 매우 유용하게 사용될 수 있다.The present invention provides a novel use of the FAB2 gene capable of controlling the fatty acid biosynthetic pathway of all microalgae. The microalgae transformed with this gene have an increased total fatty acid content. In particular, oleic acid, which is an unsaturated fatty acid and has a relatively high oxidation stability, Linoleic acid, and palmitic acid, and thus can be very useful as microalgae for producing biodiesel excellent in quality / quantity.
도 1은 본 발명의 FAB2 유전자를 포함하고 있는 미세조류 형질전환용 벡터의 모식도이다. CrFAB2는 클라미도모나스 레인하드티 유래의 FAB2 단백질을 코딩하는 유전자의 cDNA를 나타낸다.
도 2는 본 발명의 형질전환된 미세조류에서 형질전환용 벡터의 삽입 여부를 나타낸다. 형질전환된 미세조류의 DNA를 이용한 서던 블럿 분석은 형질전환용 벡터가 도입되었음을 나타낸다. 형질전환 라인들이 대조구인 cc-125와 비교하여 크기가 다른 하나 이상의 CrFAB2 DNA 절편을 가지고 있음을 나타낸다. cc-125 (형질전환되지 않는 cc-125, 대조구), CrFAB2-ov-1(형질전환 라인), CrFAB2-ov-3(형질전환 라인), CrFAB2-ov-2(형질전환 라인)
도 3은 도입한 FAB2 유전자의 mRNA의 발현을 RT-PCR(reverse transcription PCR) 분석으로 확인한 결과를 나타낸다. a는 형질전환용 벡터에서 발현되는 FAB2의 mRNA를 보여주는 사진이다. 대조구인 cc-125에서는 발현이 되지 않지만 형질전환 라인에서는 발현이 되는 것을 보여준다. Tub-α는 각 레인별로 동일한 양의 cDNA가 사용되었음을 보여준다. b는 세포내 전체 FAB2의 mRNA 발현량을 정량적으로 나타낸 것으로, 형질전환된 미세조류 라인이 대조구 보다 높은 FAB2 발현량을 가지고 있다는 것을 보여준다. cc-125 (형질전환되지 않는 cc-125, 대조구), CrFAB2-ov-1(형질전환 라인), CrFAB2-ov-2(형질전환 라인), CrFAB2-ov-3(형질전환 라인)
도 4는 본 발명의 FAB2가 도입된 형질전환체의 지방산 조성 비율 및 지방산의 총량 변화를 보여준다. a는 형질전환체의 지방산 조성 비율을 나타내는데, 올레산, 리놀레산 및 팔미트산의 조성이 증가된 것을 보여준다. b는 FAB2가 삽입된 형질전환체의 총 지방산 함량을 나타낸 것으로, 3개의 형질전환 라인의 총 지방산양이 평균적으로 28% 증가된 것을 나타낸다.BRIEF DESCRIPTION OF THE DRAWINGS FIG. 1 is a schematic diagram of a microalgae transformation vector containing the FAB2 gene of the present invention. FIG. CrFAB2 represents the cDNA of the gene encoding the FAB2 protein derived from Cladidomonas reinhardtii.
Figure 2 shows the insertion of a transfection vector in the transformed microalgae of the present invention. Southern blot analysis using the DNA of the transformed microalgae indicates that a transfection vector has been introduced. Indicating that the transformed lines have one or more CrFAB2 DNA fragments of different sizes compared to the control cc-125. (transfection line), CrFAB2-ov-3 (transfection line), CrFAB2-ov-2 (transfection line)
FIG. 3 shows the results of RT-PCR (reverse transcription PCR) analysis of the expression of mRNA of the introduced FAB2 gene. a is a photograph showing mRNA of FAB2 expressed in the transfection vector. It is not expressed in the control cc-125 but it is expressed in the transformation line. Tub-α shows that the same amount of cDNA was used for each lane. b shows quantitatively the amount of mRNA expression of whole FAB2 in the cells, showing that the transformed microalga line has a higher expression level of FAB2 than the control. (transformation line), CrFAB2-ov-3 (transformation line), CrFAB2-ov-3 (transformation line)
Fig. 4 shows changes in the fatty acid composition ratio and the total amount of fatty acids of the transformants into which FAB2 was introduced according to the present invention. a shows the fatty acid composition ratio of the transformant, showing that the composition of oleic acid, linoleic acid and palmitic acid is increased. b shows the total fatty acid content of the transformants in which FAB2 was inserted, indicating that the total fat mass of the three transfection lines was increased by 28% on average.
본 발명의 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 미세조류 유래의 FAB2(stearoyl-acyl carrier protein desaturase) 단백질을 코딩하는 유전자를 미세조류에서 과발현시키는 단계를 포함하는 미세조류에서 총 지방산 함량 및 유용지방산 비율을 증가시키는 방법을 제공한다.In order to accomplish the object of the present invention, the present invention provides a method for producing microalgae, comprising the step of overexpressing a gene encoding a microarray-derived stearoyl-acyl carrier protein desaturase (FAB2) protein in a microalgae, Is increased.
본 발명의 일 구현 예에 따른 방법에서, 상기 FAB2 단백질은 미세조류 유래일 수 있으며, 바람직하게는 클라미도모나스 (Chlamydomonas) 속 유래일 수 있으며, 더욱 바람직하게는 클라미도모나스 레인하드티(Chlamydomonas reinhardtti) 유래일 수 있으며, 가장 바람직하게는 서열번호 2의 아미노산 서열로 이루어질 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.In the method according to one embodiment of the present invention, the FAB2 protein may be derived from microalgae, preferably from the genus Chlamydomonas , more preferably from Chlamydomonas reinhardtti ), most preferably, but not exclusively, the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2.
또한, 본 발명의 FAB2 단백질을 코딩하는 유전자는 서열번호 1의 염기서열로 이루어질 수 있다. 또한, 상기 염기 서열의 변이체가 본 발명의 범위 내에 포함된다. 구체적으로, 상기 유전자는 서열번호 1의 염기 서열과 각각 70% 이상, 더욱 바람직하게는 80% 이상, 더 더욱 바람직하게는 90% 이상, 가장 바람직하게는 95% 이상의 서열 상동성을 가지는 염기 서열을 포함할 수 있다. 폴리뉴클레오티드에 대한 "서열 상동성의 %"는 두 개의 최적으로 배열된 서열과 비교 영역을 비교함으로써 확인되며, 비교 영역에서의 폴리뉴클레오티드 서열의 일부는 두 서열의 최적 배열에 대한 참고 서열(추가 또는 삭제를 포함하지 않음)에 비해 추가 또는 삭제(즉, 갭)를 포함할 수 있다.In addition, the gene encoding the FAB2 protein of the present invention may comprise the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1. Variants of the above base sequences are also included within the scope of the present invention. Specifically, the gene has a nucleotide sequence having a sequence homology of 70% or more, more preferably 80% or more, still more preferably 90% or more, and most preferably 95% or more, with the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1 . "% Of sequence homology to polynucleotides" is ascertained by comparing the comparison region with two optimally aligned sequences, and a portion of the polynucleotide sequence in the comparison region is the reference sequence for the optimal alignment of the two sequences (I. E., A gap) relative to the < / RTI >
본 발명의 일 구현 예에 따른 방법에서, 상기 미세조류는 클로렐라 엘립소이데아 (Chlorella ellipsoidea), 클로렐라 소로키니아나 (Chlorella sorokiniana) 및 클로렐라 불가리스 (Chlorella vulgaris)와 같은 해수 및 담수에 사는 클로렐라, 클라미도모나스 (Chlamydomonas), 볼복스 (Volvox), 케아토세로스 (Cheatoceros), 패오닥틸룸 (Phaeodactylum), 스켈렉토네마 (Skelectonema), 나비쿨라 (Navicula), 칼로네이세 (Caloneise), 니츠스키아 (Nitzschia), 탈라시오시라 (Thalassiosira), 암포라 (Amphora), 난노클로리스 (Nannochloris), 난노클로롭시스 (Nannochloropsis), 테트라셀미스 (Tetraselmis), 둔나리엘라 (Dunaliella), 스피루리나 (Spirulina), 마이크로사이스티스 (Microcystis), 오실라토리아 (Oscillatoria), 트리코데스미누스 (Tricodesminus), 이소크리오시스 (Isochryosis), 파블로바 (Pavlova) 또는 디노피새에 (Dinophyseae)일 수 있고, 바람직하게는 클로미도모나스 속일 수 있으며, 더욱 바람직하게는 클라미도모나스 레인하드티(Chlamydomonas reinhardtti)일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.In the method according to one embodiment of the present invention, the microalgae is selected from the group consisting of chlorella ellipsoidadea ellipsoidea), Chlorella Thoreau Kearney Ana (Chlorella sorokiniana) and Chlorella vulgaris (Chlorella Chlorella living in sea water and fresh water, such as vulgaris), Chlamydomonas (Chlamydomonas), see carboxamide (Volvox), Kane ATO three Ross (Cheatoceros), L ohdak tilrum (Phaeodactylum), skeletal rekto nematic (Skelectonema), butterfly Kula (Navicula ), Carlo Naples three (Caloneise), Chemnitz Skiathos (Nitzschia), Tala Please Syrah (Thalassiosira), amphorae (Amphora), nanno keulroriseu (Nannochloris), nanno claw Rob sheath (Nannochloropsis), tetra-cell Miss (Tetraselmis), based Canary Ella (Dunaliella), Spirulina (Spirulina), micro between seutiseu (Microcystis), come la thoria (Oscillatoria), tricot des US Taunus (Tricodesminus), isopropyl keurioh sheath (Isochryosis), Pavlova (Dinophyseae a (Pavlova) or Dino pisae ), Preferably a chlamydomonas spp., More preferably a Chlamydomonas reinhardtii , but is not limited thereto Do not.
본 발명의 일 구현 예에 따른 방법에서, 상기 유용지방산은 올레산(oleic acid) 또는 리놀레산(linoleic acid)일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.In the method according to an embodiment of the present invention, the useful fatty acid may be oleic acid or linoleic acid, but is not limited thereto.
또한, 본 발명은 미세조류 유래의 FAB2(stearoyl-acyl carrier protein desaturase) 단백질을 코딩하는 유전자를 포함하는 재조합 벡터를 미세조류에 형질전환시켜 FAB2 단백질 코딩 유전자를 과발현시키는 단계를 포함하는 야생형 미세조류에 비해 총 지방산 함량 및 유용지방산 비율이 증가된 형질전환 미세조류의 제조 방법을 제공한다.The present invention also relates to a method for producing a microalgae comprising the step of over-expressing a FAB2 protein coding gene by transforming a microalgae with a recombinant vector comprising a gene encoding a microarray-derived stearoyl-acyl carrier protein desaturase (FAB2) The present invention provides a method for producing transformed microalgae having increased total fatty acid content and useful fatty acid ratio.
본 발명의 야생형 미세조류에 비해 총 지방산 함량 및 유용지방산 비율이 증가된 형질전환 미세조류의 제조 방법에서, FAB2 단백질, 미세조류 및 유용지방산은 전술한 바와 같다.The FAB2 protein, microalgae and useful fatty acids in the method for producing the transformed microalgae have increased total fatty acid content and useful fatty acid ratio compared to the wild-type microalgae of the present invention, as described above.
용어 "재조합"은 세포가 이종 또는 동종의 새로운 조합의 핵산을 복제하거나, 상기 핵산을 발현하거나 또는 펩티드, 이종의 펩티드 또는 이종의 핵산에 의해 암호화된 단백질을 발현하는 세포를 지칭하는 것이다. 재조합 세포는 상기 세포의 천연 형태에서는 발견되지 않는 유전자 또는 유전자 절편을, 센스 또는 안티센스 형태 중 하나로 발현할 수 있다. 또한 재조합 세포는 천연 상태의 세포에서 발견되는 유전자를 발현할 수 있으며, 그러나 상기 유전자는 변형된 것으로서 인위적인 수단에 의해 세포 내 재도입된 것이다.The term "recombinant" refers to a cell in which a cell replicates a new, heterologous or homologous recombinant nucleic acid, expresses the nucleic acid, or expresses a protein encoded by a peptide, heterologous peptide or heterologous nucleic acid. The recombinant cell can express a gene or a gene fragment that is not found in the natural form of the cell in one of the sense or antisense form. In addition, the recombinant cell can express a gene found in a cell in its natural state, but the gene has been modified and reintroduced intracellularly by an artificial means.
용어 "벡터"는 세포 내로 전달하는 DNA 단편(들), 핵산 분자를 지칭할 때 사용된다. 벡터는 DNA를 복제시키고, 숙주세포에서 발현카세트(프로모터, 인핸서, 종결신호 및 폴리아데닐레이션 신호)는 독립적으로 재생산될 수 있다. 용어 "전달체"는 흔히 "벡터"와 호환하여 사용된다. 용어 "발현 벡터"는 목적한 코딩 서열과, 특정 숙주 생물에서 작동가능하게 연결된 코딩 서열을 발현하는데 필수적인 적정 핵산 서열을 포함하는 재조합 DNA 분자를 의미한다. 진핵세포에서 이용 가능한 프로모터, 인핸서, 종결신호 및 폴리아데닐레이션 신호는 공지되어 있다.The term "vector" is used to refer to a DNA fragment (s), nucleic acid molecule, which is transferred into a cell. The vector replicates the DNA, and the expression cassette (promoter, enhancer, termination signal, and polyadenylation signal) in the host cell can be independently regenerated. The term "carrier" is often used interchangeably with "vector ". The term "expression vector" means a recombinant DNA molecule comprising a desired coding sequence and a suitable nucleic acid sequence necessary for expressing a coding sequence operably linked in a particular host organism. Promoters, enhancers, termination signals and polyadenylation signals available in eukaryotic cells are known.
발현 벡터는 바람직하게는 하나 이상의 선택성 마커를 포함할 것이다. 상기 마커는 통상적으로 화학적인 방법으로 선택될 수 있는 특성을 갖는 핵산 서열로, 형질전환된 세포를 비형질전환 세포로부터 구별할 수 있는 모든 유전자가 이에 해당된다. 그 예로는 카나마이신(Kanamycin), G418, 블레오마이신(Bleomycin), 하이그로마이신(hygromycin), 클로람페니콜(chloramphenicol), 파로모마이신 (paromomycin)과 같은 항생제 내성 유전자가 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.The expression vector will preferably comprise one or more selectable markers. The marker is typically a nucleic acid sequence having a property that can be selected by a chemical method, and includes all genes capable of distinguishing a transformed cell from a non-transformed cell. Examples include, but are not limited to, antibiotic resistance genes such as Kanamycin, G418, Bleomycin, hygromycin, chloramphenicol, paromomycin.
본 발명의 재조합 벡터에서, 프로모터는 클라미도모나스의 열충격 단백질을 지정하는 pHsp70A 유전자, 리불로즈 포스페이트 신타제(ribulose-5-phosphate synthase)의 작은 소단위체 유전자 rbcS2, 베타튜불린 (beta-tubulin) 유전자 및 광계 I 복합체(photosystem I complex)를 구성하는 pSaD 유전자의 프로모터들로 구성된 군에서 선택되는 프로모터일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. "프로모터"란 용어는 구조 유전자로부터의 DNA 업스트림의 영역을 의미하며 전사를 개시하기 위하여 RNA 폴리머라아제가 결합하는 DNA 분자를 말한다. "미세조류 프로모터"는 미세조류 세포에서 전사를 개시할 수 있는 프로모터이다. "구성적(constitutive) 프로모터"는 대부분의 환경 조건 및 발달 상태 또는 세포 분화하에서 활성이 있는 프로모터이다. 형질전환체의 선택이 각종 단계에서 각종 조직에 의해서 이루어질 수 있기 때문에 구성적 프로모터가 본 발명에서 바람직할 수 있다. 따라서, 구성적 프로모터는 선택 가능성을 제한하지 않는다.In the recombinant vector of the present invention, the promoter is selected from the group consisting of a pHsp70A gene designating a thermal shock protein of Clamidomonas, a small subunit gene rbcS2 of ribulose-5-phosphate synthase, a beta-tubulin gene And promoters of the pSaD gene constituting the photosystem I complex, but are not limited thereto. The term "promoter " refers to the region of DNA upstream from the structural gene and refers to a DNA molecule to which an RNA polymerase binds to initiate transcription. A "microalgae promoter" is a promoter capable of initiating transcription in microalgae cells. A "constitutive promoter" is a promoter that is active under most environmental conditions and developmental conditions or cell differentiation. Constructive promoters may be preferred in the present invention because the choice of transformants can be made by various tissues at various stages. Thus, constitutive promoters do not limit selectivity.
본 발명의 재조합 벡터에서, 통상의 터미네이터를 사용할 수 있으며, 그 예로는 광계 I 소단위체 유전자(PsaD), 아그로박테리움 투머파시엔스(Agrobacterium tumefaciens)의 옥토파인(Octopine) 유전자의 터미네이터 등이 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 터미네이터의 필요성에 관하여, 그러한 영역이 미세조류 세포에서의 전사의 확실성 및 효율을 증가시키는 것으로 일반적으로 알려져 있다. 그러므로, 터미네이터의 사용은 본 발명의 내용에서 매우 바람직하다.In the recombinant vector of the present invention, a conventional terminator can be used. Examples of the terminator include a photosystem I subunit gene (PsaD) and a terminator of the Octopine gene of Agrobacterium tumefaciens. But is not limited thereto. Regarding the need for terminators, it is generally known that such regions increase the certainty and efficiency of transcription in microalgal cells. Therefore, the use of a terminator is highly desirable in the context of the present invention.
또한, 본 발명은 상기 방법에 의해 제조된 야생형 미세조류에 비해 총 지방산 함량 및 유용지방산 비율이 증가된 형질전환 미세조류를 제공한다.The present invention also provides a transformed microalgae having increased total fatty acid content and useful fatty acid ratio as compared to wild-type microalgae produced by the above method.
미세조류는 식물과 유사한 특성을 가지고 있으므로 미세조류에 외래 유전자를 도입하기 위한 형질전환 방법으로 유전자총(particle bombardment), 전기천공법(electroporation), 유리구슬(glass bead) 또는 실리콘 섬유(silicon fibers) 교반(agitation)법, 아그로박테리움(Agrobacterium)에 의한 형질전환법 등을 사용할 수 있으며, 바람직하게는 미세조류의 원형질체를 분리하여 벡터와 혼합한 후 유리 구슬 교반에 의한 형질전환법을 사용할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.Since microalgae have similar characteristics to plants, they can be transformed into microbial algae by particle bombardment, electroporation, glass beads or silicon fibers. Agrobacterium, Agrobacterium, etc. Preferably, microorganism protoplasts are isolated and mixed with a vector, followed by transformation by glass bead agitation. However, , But is not limited thereto.
본 발명의 일 구현 예에 따른 형질전환 미세조류에서, 상기 미세조류는 바람직하게는 클라미도모나스 (Chlamydomonas) 속일 수 있으며, 더욱 바람직하게는 클라미도모나스 레인하드티일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.In the transgenic microalga according to an embodiment of the present invention, the microalgae may be preferably a Chlamydomonas spp., And more preferably, it may be a clamidomonas hardhide, but is not limited thereto.
본 발명의 일 구현 예에 따른 형질전환 미세조류에서, 상기 유용지방산은 올레산 또는 리놀레산일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.In the transgenic microalgae according to one embodiment of the present invention, the useful fatty acid may be oleic acid or linoleic acid, but is not limited thereto.
또한, 본 발명은 미세조류 유래의 FAB2(stearoyl-acyl carrier protein desaturase) 단백질을 코딩하는 유전자를 포함하는, 미세조류에서 총 지방산 함량 및 유용지방산 비율을 증가시키기 위한 조성물을 제공한다.In addition, the present invention provides a composition for increasing total fatty acid content and useful fatty acid content in microalgae, comprising a gene encoding a microarray-derived stearoyl-acyl carrier protein desaturase (FAB2) protein.
상기 조성물은 유효성분으로 미세조류 유래, 바람직하게는 클라미도모나스 (Chlamydomonas) 속 유래, 더욱 바람직하게는 클라미도모나스 레인하드티 (Chlamydomonas reinhardtti) 유래, 가장 바람직하게는 서열번호 2의 아미노산 서열로 이루어진 FAB2 단백질을 코딩하는 유전자를 포함하며, 상기 유전자를 미세조류에 형질전환시킴으로써 미세조류에서 총 지방산 함량 및 유용지방산 비율을 증가시킬 수 있는 것이다.The composition comprises an active ingredient derived from microalgae, preferably from the genus Chlamydomonas , more preferably from Chlamydomonas reinhardtii , most preferably from the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 And a gene coding for FAB2 protein. By transforming the gene into microalgae, the total fatty acid content and the ratio of the useful fatty acid can be increased in the microalgae.
또한, 본 발명은 In addition,
미세조류 유래의 FAB2(stearoyl-acyl carrier protein desaturase) 단백질을 코딩하는 유전자를 미세조류에서 과발현시켜 미세조류에서 지방산을 생산하는 단계; 및Overexpressing a gene encoding a microalgae-derived FAB2 (stearoyl-acyl carrier protein desaturase) protein in a microalgae to produce a fatty acid in a microalgae; And
상기 생산된 지방산을 바이오디젤로 전환하는 단계를 포함하는 바이오디젤의 생산 방법을 제공한다.And converting the produced fatty acid into biodiesel. The present invention also provides a method for producing biodiesel.
본 발명의 일 구현 예에 따른 방법에서, 상기 FAB2 단백질은 미세조류 유래, 바람직하게는 클라미도모나스 (Chlamydomonas) 속 유래, 더욱 바람직하게는 클라미도모나스 레인하드티 (Chlamydomonas reinhardtti) 유래, 가장 바람직하게는 서열번호 2의 아미노산 서열로 이루어질 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.In the process according to one embodiment of the invention, the FAB2 proteins derived from microalgae, preferably from Chlamydomonas (Chlamydomonas) in origin, and more preferably from Chlamydomonas lane hard Ti (Chlamydomonas reinhardtti ), most preferably the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2.
본 발명의 일 구현 예에 따른 방법에서, 생산된 지방산을 바이오디젤로 전환하는 방법은 당업계에 공지된 임의의 방법을 이용할 수 있으며, 특정 방법에 특별히 제한되는 것은 아니다.
In the method according to one embodiment of the present invention, the method of converting the produced fatty acid into biodiesel can use any method known in the art, and is not particularly limited to a specific method.
이하, 본 발명을 실시예에 의해 상세히 설명한다. 단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다.
Hereinafter, the present invention will be described in detail by way of examples. However, the following examples are illustrative of the present invention, and the present invention is not limited to the following examples.
실시예Example 1: One: FAB2FAB2 유전자의 확보 Securing genes
미세조류인 클라미도모나스 레인하드티(Chlamydomonas reinhardtii)의 RNA를 추출하여 cDNA를 합성 후 PCR로 증폭하여 서열번호 1에 해당하는 FAB2 cDNA를 확보하였다. RNA 추출법은 다음과 같다. TRI 용액(Molecular Research Center, Cincinnati, OH, USA)를 사용하여 형질전환 클라미도모나스로부터 총 RNA를 분리하였고, 2 ㎍의 RNA를 cDNA 합성에 이용하였다.
The cDNA of the microalgae, Chlamydomonas reinhardtii , was extracted and amplified by PCR to obtain FAB2 cDNA corresponding to SEQ ID NO: 1. The RNA extraction method is as follows. Total RNA was isolated from the transformed clamidomonas using TRI solution (Molecular Research Center, Cincinnati, OH, USA) and 2 ug of RNA was used for cDNA synthesis.
실시예Example 2: 2: FAB2FAB2 유전자를 가지는 형질전환 벡터 제작 Production of transgenic vector with gene
상기 실시예 1의 FAB2 유전자를 제한효소 NcoI과 EcoRV로 동시 절단한 1206bp 크기의 FAB2 DNA를 NcoI과 EcoRV로 동시 절단한 pCr102 (Kim et al., 2011 J Phycol, 47(4), 821-828) 벡터로 삽입하여 클라미도모나스 형질전환벡터 pCr102-FAB2를 제작하였다(도 1).
PCr102 (Kim et al., 2011 J Phycol, 47 (4), 821-828) in which 1206 bp FAB2 DNA obtained by simultaneously digesting the FAB2 gene of Example 1 with restriction enzymes NcoI and EcoRV was simultaneously digested with NcoI and EcoRV, Vector to prepare a clamidomonas transformant vector pCr102-FAB2 (Fig. 1).
실시예Example 3: 미세조류인 3: Microalgae 클라미도모나스에Clamidomonas FAB2FAB2 유전자의 형질전환 Transformation of genes
클라미도모나스 레인하드티(Chlamydomonas reinhardtti) 야생형 균주 CC-125를 TAP 기본배지(Tris-acetate-phosphate)에서 25℃, 16시간 명조건으로 3일간 배양하여 형질전환에 사용하였다. 형질전환을 위하여 pCr102-FAB2 벡터와 오토리신(Autolysin) 처리로 분리된 클라미도모나스 원형질체를 혼합하여 유리구슬 방법(Kindle, 1990 Proc Natl Acad Sci USA, 87(3), 1228-1232)으로 형질전환을 수행하였다. 형질전환 후 하이그로마이신 저항성을 가지는 라인을 선발하였다. 항생제 저항성을 갖는 라인의 pCr102-FAB2 벡터의 도입 여부를 확인하기 위하여 서던블럿 분석방법을 수행하여 벡터가 삽입된 라인을 선별하였다. 게놈 DNA 분리, PCR, 전기영동, 서던블럿 분석은 표준방법을 사용하였다(Sambrook and Russell 2001, Cold Spring Harbor: Cold Spring Harbor Laboratory Press). 형질전환 클라미도모나스로부터 분리한 10 μg의 게놈 DNA를 KpnI 제한효소로 처리하여 서던블럿 분석에 이용하였다. FAB2 유전자를 PCR로 증폭 후 32P로 표지하여 프로브로 사용하였으며, imaging plate(Fujifilm, Japan)를 이용하여 프로브 신호를 분석하였다. 그 결과 라인 별로 다양한 카피 수의 FAB2 유전자 삽입이 확인되었다(도 2). 형질전환 라인에서 FAB2 유전자의 발현 여부를 확인하기 위하여 RT-PCR을 수행하였다. RNA 추출법 및 cDNA 합성은 상기 실시예 1에서 언급한 동일한 방법을 사용하였다. 형질전환체에서 도입한 pCr102-FAB2 벡터 유래의 FAB2 mRNA가 정상적으로 발현되는 것을 확인하였고(도 3a), 형질전환체의 FAB2 mRNA의 발현 총량도 대조구(cc-125)보다 높다는 것을 확인하였다(도 3b).
The Chlamydomonas reinhardtti ) wild-type strain CC-125 was cultured in TAP-acetate-phosphate at 25 ° C for 16 hours for 3 days and used for transformation. For transformation, pCr102-FAB2 vector and clomidomonas protoplasts isolated by autolysin treatment were mixed and transformed with glass beads method (Kindle, 1990 Proc Natl Acad Sci USA, 87 (3), 1228-1232) Respectively. After transformation, lines with hygromycin resistance were selected. In order to confirm the introduction of the pCr102-FAB2 vector of the antibiotic resistant line, the Southern blot analysis method was performed to select the line into which the vector was inserted. Standard methods were used for genomic DNA isolation, PCR, electrophoresis, and Southern blot analysis (Sambrook and Russell 2001, Cold Spring Harbor: Cold Spring Harbor Laboratory Press). 10 [mu] g of genomic DNA isolated from the transformed clamidomonas was treated with KpnI restriction enzyme and used for Southern blot analysis. The FAB2 gene was amplified by PCR and labeled with 32 P and used as a probe. The probe signal was analyzed using an imaging plate (Fujifilm, Japan). As a result, various copies of the FAB2 gene were inserted in each line (FIG. 2). RT-PCR was performed to confirm the expression of the FAB2 gene in the transformation line. RNA extraction and cDNA synthesis were carried out in the same manner as described in Example 1 above. It was confirmed that the FAB2 mRNA derived from the pCr102-FAB2 vector introduced from the transformant was expressed normally (Fig. 3A), and the total expression amount of the FAB2 mRNA of the transformant was higher than that of the control (cc-125) ).
실시예Example 4. 4. 클라미도모나스에서From Clermido Monas FAB2FAB2 유전자의 기능 검정 Functional testing of genes
클라미도모나스에서 FAB2에 대한 연구는 수행된 바 없다. 클라미도모나스 FAB2 과발현 형질전환체에서 올레산의 증가가 확인되면 클라미도모나스 FAB2 유전가 올레산의 합성을 촉매한다고 간주할 수 있다. 따라서 본 실시예에서는 형질전환된 클라미도모나스에서 총지방을 추출하고 지방산의 조성변화를 관찰하기 위하여 GC 분석을 수행하였다(도 4). 총지방 분리는 20 mg의 동결건조 샘플을 사용하여 수행하였고, 추출법은 Sasser (Sasser 1990 USFCC Newsletter, 20, 1-6)의 방법을 사용하였다. 분석 장비는 아래와 같다; 가스 크로마토그래피 (YL-6100GC, 영린과학, 한국), INNOWAX 모세관 칼럼 (Agilent, 미국, 30 m × 0.32 mm × 0.5 μm). 각각의 지방산은 표준물질인 Supelco37 Component FAME Mix (Sigma, 미국)와 비교하여 분석하였다. 분석에 사용된 세 개의 형질전환 라인 모두에서 올레산의 증가가 확인되었으며, 팔미트산과 리놀레산의 증가가 함께 관찰되었다(도 4a). 또한 총 지방산 함량의 증가가 관찰되었다 (도 4b). 이 결과는 미세조류인 클라미도모나스에서 FAB2가 올레산 합성에 관여한다는 것을 증명하는 것이며, 또한 이 유전자는 팔미트산, 리놀레산 및 총 지방산 함량의 조절에 관여하는 중요한 유전자임을 증명하는 것이다.No studies have been performed on FAB2 in Clamidomonas. Once the increase in oleic acid in the clomidomonas FAB2 overexpressing transformant is confirmed, it can be considered that the climidomonas FAB2 genetic material catalyzes the synthesis of oleic acid. Therefore, in this example, GC analysis was performed to extract total fat from the transformed Clamidomonas and to observe changes in fatty acid composition (FIG. 4). Total lipid separation was performed using 20 mg of lyophilized sample and the extraction method was Sasser (Sasser 1990 USFCC Newsletter, 20 , 1-6). The analysis equipment is as follows; Gas chromatography (YL-6100GC, Younglin Sci., Korea), INNOWAX capillary column (Agilent, USA, 30 m × 0.32 mm × 0.5 μm). Each fatty acid was analyzed in comparison with the standard Supelco 37 Component FAME Mix (Sigma, USA). Increase in oleic acid was observed in all three transformation lines used in the analysis and increase in palmitic acid and linoleic acid was observed (FIG. 4A). An increase in total fatty acid content was also observed (Figure 4b). These results demonstrate that FAB2 is involved in the synthesis of oleic acid in microalgae, Clamidomonas, and it also demonstrates that this gene is an important gene involved in the regulation of palmitic acid, linoleic acid and total fatty acid content.
<110> Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology <120> Method for increasing total fatty acid content and useful fatty acid ratio in transgenic microalgae overexpressing FAB2 gene <130> PN12149 <160> 2 <170> KopatentIn 2.0 <210> 1 <211> 1206 <212> DNA <213> Chlamydomonas reinhardtti <400> 1 atggctctgg gccagcaggc gatgcagcgc aagggcgccc ttaacgccaa cagggcctcg 60 cgcaaggctt gcgtcgtccg cgcgcaggcg gttgcctcgg ctccccaaca gccggccact 120 gcttcgcagt atgttcctca cgtccagggc ccgatcatca tgaatggtca ggtgctgcac 180 agcatcacgg ctgagcgcct ggatgtggtg cgcagcctgg aggacggcta cctgcagagc 240 caggtggtgc ctctgctgaa gcccgtggag aagtgctggc agcccgccga cttcctgccg 300 ccctcggagg accccgactt cctggacaag gtgcgcgagc tgcgcaagcg cgctgccaac 360 ctgcccgatg actacctggt ggtcttcacc ggcgacatga tcaccgagga ggcgctgccc 420 acctacatga ccatgctcaa caccctggac ggcgttcgcg atgagaccgg cgccagccag 480 accccctggg ccaagtggac gcgcgagtgg accgccgagg agaaccgcca cggcgacgtc 540 atgaaccgct acatgtacct gactggccgc gtcaacatga aggcggtgga ggtgaccgtg 600 cagaacctga ttggctccgg catggacccc aagaccgaga acaaccccta cctgggcttc 660 tgctacacct ccttccagga gcgcgccacc aaggtgtccc acggcaacac cgcccgccac 720 gctctggagc acggcgacga cgtgctggcc aagatctgcg gctccatcgc ctcggacgag 780 ggccgccacg agatcgccta ctgcaagatc atggacggcc tgtttgagcg cgaccccagc 840 ggcgccatga ttgcgttcgg cgacatgatg aagaagcaga tcgtgatgcc cgcccacctc 900 atgaacgaca acgtgcacca cgccaacacc ggccgcaacc tgttcgcgga cttctccgct 960 gtggctgaga acacgggcac ctacaccgcc atggactacg ctgacatcat ggagcacctg 1020 gtgggccgct ggaacgtcaa gaacctgacc ggcctcaacg gcgacgccgc cgccatgcag 1080 gagtacgtca tcaagctgcc cgaccgcatc cgcaagctgg cggagaaggc caccgcccgc 1140 cggaagaagg gcaaggtcgt gcacgcgccc ttcagctggg tgttcaaccg cgaggtggcc 1200 ctgtaa 1206 <210> 2 <211> 401 <212> PRT <213> Chlamydomonas reinhardtti <400> 2 Met Ala Leu Gly Gln Gln Ala Met Gln Arg Lys Gly Ala Leu Asn Ala 1 5 10 15 Asn Arg Ala Ser Arg Lys Ala Cys Val Val Arg Ala Gln Ala Val Ala 20 25 30 Ser Ala Pro Gln Gln Pro Ala Thr Ala Ser Gln Tyr Val Pro His Val 35 40 45 Gln Gly Pro Ile Ile Met Asn Gly Gln Val Leu His Ser Ile Thr Ala 50 55 60 Glu Arg Leu Asp Val Val Arg Ser Leu Glu Asp Gly Tyr Leu Gln Ser 65 70 75 80 Gln Val Val Pro Leu Leu Lys Pro Val Glu Lys Cys Trp Gln Pro Ala 85 90 95 Asp Phe Leu Pro Pro Ser Glu Asp Pro Asp Phe Leu Asp Lys Val Arg 100 105 110 Glu Leu Arg Lys Arg Ala Ala Asn Leu Pro Asp Asp Tyr Leu Val Val 115 120 125 Phe Thr Gly Asp Met Ile Thr Glu Glu Ala Leu Pro Thr Tyr Met Thr 130 135 140 Met Leu Asn Thr Leu Asp Gly Val Arg Asp Glu Thr Gly Ala Ser Gln 145 150 155 160 Thr Pro Trp Ala Lys Trp Thr Arg Glu Trp Thr Ala Glu Glu Asn Arg 165 170 175 His Gly Asp Val Met Asn Arg Tyr Met Tyr Leu Thr Gly Arg Val Asn 180 185 190 Met Lys Ala Val Glu Val Thr Val Gln Asn Leu Ile Gly Ser Gly Met 195 200 205 Asp Pro Lys Thr Glu Asn Asn Pro Tyr Leu Gly Phe Cys Tyr Thr Ser 210 215 220 Phe Gln Glu Arg Ala Thr Lys Val Ser His Gly Asn Thr Ala Arg His 225 230 235 240 Ala Leu Glu His Gly Asp Asp Val Leu Ala Lys Ile Cys Gly Ser Ile 245 250 255 Ala Ser Asp Glu Gly Arg His Glu Ile Ala Tyr Cys Lys Ile Met Asp 260 265 270 Gly Leu Phe Glu Arg Asp Pro Ser Gly Ala Met Ile Ala Phe Gly Asp 275 280 285 Met Met Lys Lys Gln Ile Val Met Pro Ala His Leu Met Asn Asp Asn 290 295 300 Val His His Ala Asn Thr Gly Arg Asn Leu Phe Ala Asp Phe Ser Ala 305 310 315 320 Val Ala Glu Asn Thr Gly Thr Tyr Thr Ala Met Asp Tyr Ala Asp Ile 325 330 335 Met Glu His Leu Val Gly Arg Trp Asn Val Lys Asn Leu Thr Gly Leu 340 345 350 Asn Gly Asp Ala Ala Ala Met Gln Glu Tyr Val Ile Lys Leu Pro Asp 355 360 365 Arg Ile Arg Lys Leu Ala Glu Lys Ala Thr Ala Arg Arg Lys Lys Gly 370 375 380 Lys Val Val His Ala Pro Phe Ser Trp Val Phe Asn Arg Glu Val Ala 385 390 395 400 Leu <110> Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology <120> Method for increasing total fatty acid content and useful fatty acid ratio in transgenic microalgae overexpressing FAB2 gene <130> PN12149 <160> 2 <170> Kopatentin 2.0 <210> 1 <211> 1206 <212> DNA <213> Chlamydomonas reinhardtti <400> 1 atggctctgg gccagcaggc gatgcagcgc aagggcgccc ttaacgccaa cagggcctcg 60 cgcaaggctt gcgtcgtccg cgcgcaggcg gttgcctcgg ctccccaaca gccggccact 120 gcttcgcagt atgttcctca cgtccagggc ccgatcatca tgaatggtca ggtgctgcac 180 agcatcacgg ctgagcgcct ggatgtggtg cgcagcctgg aggacggcta cctgcagagc 240 caggtggtgc ctctgctgaa gcccgtggag aagtgctggc agcccgccga cttcctgccg 300 ccctcggagg accccgactt cctggacaag gtgcgcgagc tgcgcaagcg cgctgccaac 360 ctgcccgatg actacctggt ggtcttcacc ggcgacatga tcaccgagga ggcgctgccc 420 acctacatga ccatgctcaa caccctggac ggcgttcgcg atgagaccgg cgccagccag 480 accccctggg ccaagtggac gcgcgagtgg accgccgagg agaaccgcca cggcgacgtc 540 atgaaccgct acatgtacct gactggccgc gtcaacatga aggcggtgga ggtgaccgtg 600 cagaacctga ttggctccgg catggacccc aagaccgaga acaaccccta cctgggcttc 660 tgctacacct ccttccagga gcgcgccacc aaggtgtccc acggcaacac cgcccgccac 720 gctctggagc acggcgacga cgtgctggcc aagatctgcg gctccatcgc ctcggacgag 780 ggccgccacg agatcgccta ctgcaagatc atggacggcc tgtttgagcg cgaccccagc 840 ggcgccatga 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Claims (12)
상기 생산된 지방산을 바이오디젤로 전환하는 단계를 포함하는 바이오디젤의 생산 방법.Overexpressing a gene encoding a stearoyl-acyl carrier protein desaturase (FAB2) protein derived from Chlamydomonas reinhardtii in a microalgae to produce a fatty acid in a microalgae; And
And converting the produced fatty acid to biodiesel.
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