[go: up one dir, main page]

KR102702216B1 - Diagnostic microfluidic chip, system and IoT-based genetic analysis system including the same - Google Patents

Diagnostic microfluidic chip, system and IoT-based genetic analysis system including the same Download PDF

Info

Publication number
KR102702216B1
KR102702216B1 KR1020210132311A KR20210132311A KR102702216B1 KR 102702216 B1 KR102702216 B1 KR 102702216B1 KR 1020210132311 A KR1020210132311 A KR 1020210132311A KR 20210132311 A KR20210132311 A KR 20210132311A KR 102702216 B1 KR102702216 B1 KR 102702216B1
Authority
KR
South Korea
Prior art keywords
reaction
diagnostic
chamber
wax
iot
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
KR1020210132311A
Other languages
Korean (ko)
Other versions
KR20230049323A (en
Inventor
서태석
꿕 후인 응우옌
O 후인 응우옌
Original Assignee
경희대학교 산학협력단
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 경희대학교 산학협력단 filed Critical 경희대학교 산학협력단
Priority to KR1020210132311A priority Critical patent/KR102702216B1/en
Priority to PCT/KR2022/015060 priority patent/WO2023059109A1/en
Publication of KR20230049323A publication Critical patent/KR20230049323A/en
Application granted granted Critical
Publication of KR102702216B1 publication Critical patent/KR102702216B1/en
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00—Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
    • B01L3/50—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes
    • B01L3/502—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures
    • B01L3/5027—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip
    • B01L3/502738—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip characterised by integrated valves
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00—Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L7/00—Heating or cooling apparatus; Heat insulating devices
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L7/00—Heating or cooling apparatus; Heat insulating devices
    • B01L7/52—Heating or cooling apparatus; Heat insulating devices with provision for submitting samples to a predetermined sequence of different temperatures, e.g. for treating nucleic acid samples
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/70—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving virus or bacteriophage
    • G—PHYSICS
    • G16—INFORMATION AND COMMUNICATION TECHNOLOGY [ICT] SPECIALLY ADAPTED FOR SPECIFIC APPLICATION FIELDS
    • G16Y—INFORMATION AND COMMUNICATION TECHNOLOGY SPECIALLY ADAPTED FOR THE INTERNET OF THINGS [IoT]
    • G16Y40/00—IoT characterised by the purpose of the information processing
    • G16Y40/10—Detection; Monitoring
    • G—PHYSICS
    • G16—INFORMATION AND COMMUNICATION TECHNOLOGY [ICT] SPECIALLY ADAPTED FOR SPECIFIC APPLICATION FIELDS
    • G16Y—INFORMATION AND COMMUNICATION TECHNOLOGY SPECIALLY ADAPTED FOR THE INTERNET OF THINGS [IoT]
    • G16Y40/00—IoT characterised by the purpose of the information processing
    • G16Y40/20—Analytics; Diagnosis
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2200/00—Solutions for specific problems relating to chemical or physical laboratory apparatus
    • B01L2200/06—Fluid handling related problems
    • B01L2200/0647—Handling flowable solids, e.g. microscopic beads, cells, particles
    • B01L2200/0663—Stretching or orienting elongated molecules or particles
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2200/00—Solutions for specific problems relating to chemical or physical laboratory apparatus
    • B01L2200/06—Fluid handling related problems
    • B01L2200/0689—Sealing
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00—Additional constructional details
    • B01L2300/02—Identification, exchange or storage of information
    • B01L2300/023—Sending and receiving of information, e.g. using bluetooth
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00—Additional constructional details
    • B01L2300/18—Means for temperature control
    • B01L2300/1805—Conductive heating, heat from thermostatted solids is conducted to receptacles, e.g. heating plates, blocks
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2527/00—Reactions demanding special reaction conditions
    • C12Q2527/101—Temperature

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Computing Systems (AREA)
  • Clinical Laboratory Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)

Abstract

진단용 미세유체 칩으로, 샘플이 주입된 후 용해되는 용해챔버(100); 상기 용해챔버(100)로부터 용액을 유입받은 후, 중합효소와 혼합하는 혼합챔버(200); 상기 혼합챔버로부터의 용액을 유입받은 후 프라이머와 혼합한 후, 증폭반응을 진행하는 반응챔버(300)를 포함하며, 상기 반응챔버(300)는 적어도 2개 이상이며, 상기 반응챔버(300)는 상기 혼합챔버(200)로부터 유입된 용액의 증폭반응이 반응챔버간 서로 격리되어 분리된 채 진행되는 것을 특징으로 하는 진단용 미세유체 칩이 제공된다. A diagnostic microfluidic chip is provided, comprising: a dissolution chamber (100) in which a sample is injected and then dissolved; a mixing chamber (200) in which a solution is introduced from the dissolution chamber (100) and mixed with a polymerase; and a reaction chamber (300) in which a solution is introduced from the mixing chamber and mixed with a primer and then an amplification reaction is performed, wherein there are at least two reaction chambers (300), and the amplification reaction of the solution introduced from the mixing chamber (200) is performed in isolation between the reaction chambers.

Description

진단용 미세유체 칩 시스템 및 이를 포함하는 IoT 기반 유전자 분석시스템{Diagnostic microfluidic chip, system and IoT-based genetic analysis system including the same}Diagnostic microfluidic chip system and IoT-based genetic analysis system including the same {Diagnostic microfluidic chip, system and IoT-based genetic analysis system including the same}

본 발명은 진단용 미세유체 칩 시스템 및 이를 포함하는 IoT 기반 유전자 분석시스템에 관한 것으로, 보다 상세하게는 저전력으로 휴대용 배터리로 현장에서 분석기를 조작, 감염병 유무를 진단하여 이를 모바일 기기로 확인할 수 있고, 그 결과 등을 외부로 전송할 수 있는, 진단용 미세유체 칩 시스템 및 이를 포함하는 IoT 기반 유전자 분석시스템에 관한 것이다. The present invention relates to a diagnostic microfluidic chip system and an IoT-based genetic analysis system including the same, and more specifically, to a diagnostic microfluidic chip system capable of operating an analyzer in the field with a low-power portable battery, diagnosing the presence or absence of an infectious disease and confirming the result with a mobile device, and transmitting the result, etc. to the outside.

지난 20년 동안 세계 보건 기구와 전 세계 많은 국가는 코로나바이러스 질병의 확산을 통제하기 위해 노력하고 있다. 표면에 왕관 모양의 스파이크가 있는 양성 감각 단일 가닥 RNA 바이러스인 코로나바이러스는 사람 간에 전염될 수 있으며 일반적으로 가벼운 호흡기 질환을 유발한다(WHO, 2020). Over the past two decades, the World Health Organization and many countries around the world have been working to control the spread of coronavirus disease. Coronaviruses, which are positive-sense single-stranded RNA viruses with crown-shaped spikes on their surface, can be transmitted from person to person and usually cause mild respiratory illness (WHO, 2020).

2002년 중국 광둥성에서 발생한 최초의 중증급성호흡기증후군 코로나바이러스(SARS-CoV)는 약 10%의 사망률로 전 세계적으로 8000명 이상의 확인 사례를 초래하였으며(WHO, 2003), 2012년 사우디아라비아 제다에서 중동호흡기증후군(MERS)이 처음 보고됐다.The first severe acute respiratory syndrome coronavirus (SARS-CoV) emerged in Guangdong Province, China in 2002, causing more than 8,000 confirmed cases worldwide with a mortality rate of approximately 10% (WHO, 2003), and Middle East respiratory syndrome (MERS) was first reported in Jeddah, Saudi Arabia in 2012.

배타 코로나바이러스(MERS-CoV)는 27개국에 퍼져 약 2500명의 확인 사례를 일으켰고 약 34%의 높은 사망률을 보였다(WHO, 2018; Zaki et al., 2012). 2019년 12월, 중국 우한에서 또 다른 신종 코로나바이러스(SARS-CoV-2)의 발병이 보고되었는데, 발병 후 1년 반이 지난 2021년 7월 6일 기준으로 1억 8,300만 건이 넘는 사례와 거의 400만 명이 사망하였다(WHO, 2021).MERS-CoV has spread to 27 countries, causing about 2,500 confirmed cases and a high mortality rate of about 34% (WHO, 2018; Zaki et al., 2012). In December 2019, an outbreak of another novel coronavirus (SARS-CoV-2) was reported in Wuhan, China, which has resulted in over 183 million cases and nearly 4 million deaths as of July 6, 2021, more than a year and a half after the outbreak (WHO, 2021).

일부 국가에서 전염병이 진정될 조짐을 보이기 시작했지만 많은 국가에서는 새로운 SARS-CoV-2 변종 확산으로 계속 어려움을 겪고 있다. 보건 기관과 정부는 증가하는 SARS-CoV-2 테스트를 처리하고, 효과적인 치료법을 찾고, 백신을 개발 및 배포함으로써 전염병을 통제해야 하는 과도한 부담을 안고 있다(Taleghani and Taghipour, 2021). While some countries are beginning to show signs of easing, many continue to struggle with the spread of new SARS-CoV-2 variants. Health agencies and governments are under enormous pressure to control the pandemic by handling increasing SARS-CoV-2 testing, finding effective treatments, and developing and distributing vaccines (Taleghani and Taghipour, 2021).

백신 개발은 알려진 변이체에 대해 긍정적인 결과를 보여주지만 다가오는 SARS-CoV-2 변종에 대해 동일한 면역 효과를 유지한다는 보장은 없으며, 이 대유행을 통제하는 열쇠 중 하나는 휴대형의 신속한 진단 시스템을 개발하고, 감염된 개인을 적절히 초기에 격리하는 것에 있다. While vaccine development has shown promising results against known variants, there is no guarantee that the same immune effect will be maintained against upcoming SARS-CoV-2 variants, and one of the keys to controlling this pandemic lies in developing portable, rapid diagnostic systems and appropriate early isolation of infected individuals.

다른 형태의 바이러스 감염성 폐렴에 사용되는 것과 유사한 SARS-CoV-2의 기존 검출 방법은 일반적으로 컴퓨터 단층 촬영, 혈청 검사 및 분자 진단을 기반이며, 이들 방법 중 분자진단은 SARS-CoV-2를 검출하는 가장 특이적이고 민감한 방법으로 보고되었다(Kubina and Dziedzic, 2020). Existing detection methods for SARS-CoV-2, similar to those used for other forms of viral pneumonia, are generally based on computed tomography, serological tests, and molecular diagnostics, among which molecular diagnostics has been reported to be the most specific and sensitive method for detecting SARS-CoV-2 (Kubina and Dziedzic, 2020).

하지만 PCR과 같은 분자 테스트에는 일반적으로 시설과 인력 같이 검사자원이 풍부한 시설, 여러가지 시약과 단계를 필요로 하며, 숙련된 인력 또한 필요하다(Lei et al., 2021). However, molecular tests such as PCR generally require facilities with abundant testing resources such as facilities and personnel, various reagents and steps, and skilled personnel (Lei et al., 2021).

따라서 분자진단을 위한 POC 장치의 개선이 필요하며, 세계보건기구(WHO)는 자원이 제한된 환경에서 가장 적절한 POC 진단 테스트를 정의하기 위해 ASSURED 기준(저렴, 민감, 구체, 사용자 친화, 신속 강력, 장비 불필요, 최종 사용자에게 전달가능)이라는 기준을 권장한다(Kosack et al. al., 2017; Mauk et al., 2018).Therefore, improvements in POC devices for molecular diagnostics are needed, and the World Health Organization (WHO) recommends the ASSURED criteria (low-cost, sensitive, specific, user-friendly, rapid, robust, equipment-free, and end-user-transferable) to define the most appropriate POC diagnostic tests in resource-limited settings (Kosack et al., 2017; Mauk et al., 2018).

이러한 ASSURED 기준은 배터리 전원 또는 전기가 필요 없는 진단 장치와 같은 최소 계측 형식과 원격 이동 통신 및 GPS 위치를 위한 스마트폰 활용을 포함하는 POC 진단 개발의 최근 동향을 유도하고 있는데, 이러한 휴대용 장치는 일반적으로 한번 사용하며, 시약이 미리 로링된 플라스틱 미세유체 칩 또는 카트리지를 사용한다. These ASSURED criteria are driving recent trends in the development of POC diagnostics, including minimal instrumentation formats such as battery-powered or power-free diagnostic devices and the use of smartphones for remote mobile communication and GPS location; these portable devices are typically single-use, using plastic microfluidic chips or cartridges preloaded with reagents.

이러한 미세유체 기술이 가지는 장점으로 인해, 미세유체 칩을 사용하는 통합 POC 진단 시스템은 테스트 시간을 단축하고 시약 소비를 줄이며 사람의 간섭을 최소화할 수 있는 장점이 있다. 또한 IoT 기술과 POCT 시스템이 결합되면 클라우드 서비스에 저장된 진단 데이터를 공유하여 의사와 환자 간의 유비쿼터스 의료 모니터링 또한 가능하다. Due to the advantages of these microfluidic technologies, integrated POC diagnostic systems using microfluidic chips have the advantage of shortening test times, reducing reagent consumption, and minimizing human intervention. In addition, when IoT technology is combined with POCT systems, ubiquitous medical monitoring between doctors and patients is also possible by sharing diagnostic data stored in cloud services.

이러한 IoT 기반 플랫폼은 데이터를 분석 및 저장하고 의료 센터와 자동으로 연동되어, 정부가 팬데믹 상황을 신속하고 명확하게 파악하여 더 나은 결정을 내릴 수 있게 한다. 따라서 IoT 기술이 통합된 미래 POC 진단 장치의 개발은 기존 진단 방법에 필적하는 정확도와 감도를 유지하면서 제한된 리소스 환경에서 여러 즉각적인 테스트를 용이하게 하는 데 필수적안 요소로 여겨진다.These IoT-based platforms will analyze and store data and automatically connect with medical centers, allowing governments to quickly and clearly understand the pandemic situation and make better decisions. Therefore, the development of future POC diagnostic devices that integrate IoT technology is considered essential to facilitate multiple immediate tests in limited resource environments while maintaining accuracy and sensitivity comparable to existing diagnostic methods.

칩 기반(On-chip) 분자 진단은 일반적으로 다음과 같은 순차적 단계로 구성된다. On-chip molecular diagnostics typically consist of the following sequential steps:

(1) 세포 또는 바이러스 입자의 용해 (1) Lysis of cells or virus particles

(2) 용해물로부터 DNA 또는 RNA 추출(2) Extraction of DNA or RNA from the solution

(3) 특정 핵산 표적 서열의 증폭(3) Amplification of specific nucleic acid target sequence

(4) 광학 또는 전기화학적 기기에 의한 최종 앰플리콘의 종말점 또는 실시간 검출(Nguyen et al., 2019; Taleghani 및 Taghipour, 2021). (4) End-point or real-time detection of final amplicons by optical or electrochemical devices (Nguyen et al., 2019; Taleghani and Taghipour, 2021).

분자 진단은 대부분 표적 서열의 효소적 증폭을 위한 중합효소 연쇄 반응(PCR)에 의존하며(Park et al., 2011; Saiki et al., 1988), 증폭을 위한 PCR은 정밀한(±0.5°C) 및 빠른(>10°C/s) 열 순환을 달성하기 위해 상대적으로 비싸고 정교하며 부피가 큰 기기가 필요하다는 단점이 있다. Molecular diagnostics mostly rely on polymerase chain reaction (PCR) for enzymatic amplification of target sequences (Park et al., 2011; Saiki et al., 1988), but PCR for amplification has the disadvantage of requiring relatively expensive, sophisticated, and bulky equipment to achieve precise (±0.5°C) and rapid (>10°C/s) thermal cycling.

열적 싸이크링과정과 히팅시스템을 단순화하기 위해 다양한 등온 증폭 방법이 제안되었으며, 이러한 방법은 종래 PCR보다 순도 측면에서 우수하여, POC 진단에 더 적합하다(Taleghani and Taghipour, 2021). recombinase polymerase amplification, helicase 의존 증폭, 핵산 염기서열 기반 증폭, 롤링 서클 증폭, 가닥 치환 증폭 등의 등온 증폭 기술(Oh et al., 2016) 중에서 LAMP(Loop-mediated isothermal amplification)는 가장 유망한 방법 중 하나이다. To simplify the thermal cycling process and heating system, various isothermal amplification methods have been proposed, and these methods are superior to conventional PCR in terms of purity, making them more suitable for POC diagnostics (Taleghani and Taghipour, 2021). Among isothermal amplification techniques such as recombinase polymerase amplification, helicase-dependent amplification, nucleic acid sequence-based amplification, rolling circle amplification, and strand displacement amplification (Oh et al., 2016), LAMP (Loop-mediated isothermal amplification) is one of the most promising methods.

LAMP법은, 템플릿과의 엄격한 결합을 위해 4개의 프라이머와 증폭 효율을 높이기 위해 2세트의 루프 프라이머를 사용한다(Inaba et al., 2021; Khan et al., 2018; Singh et al., 2019). 또한 온화한 반응 온도(63~65°C)로 인해 기포 형성 및 증발 문제가 방지되고(Dan Van et al., 2019; Lee et al., 2016; Mauk et al., 2018; Nguyen et al., 2020), LAMP 반응의 Bst 중합효소는 임상 표본에서 일반적으로 발견되는 억제제에 대한 내성이 더 높다(Francois et al., 2011; Kaneko et al., 2007; Nkouawa et al., 2010). The LAMP method uses four primers for strict binding to the template and two sets of loop primers to increase amplification efficiency (Inaba et al., 2021; Khan et al., 2018; Singh et al., 2019). In addition, the mild reaction temperature (63–65 °C) prevents bubble formation and evaporation problems (Dan Van et al., 2019; Lee et al., 2016; Mauk et al., 2018; Nguyen et al., 2020), and the Bst polymerase of the LAMP reaction has higher resistance to inhibitors commonly found in clinical specimens (Francois et al., 2011; Kaneko et al., 2007; Nkouawa et al., 2010).

또한, DNA/RNA 정제 없이 세포 용해와 유전적 증폭이 동시에 일어나는 "직접" LAMP 반응이 보고되었으며(Dudley et al., 2020; Gadkar et al., 2018; Lee et al., 2016), 이로써 직접 용해 완충액과 LAMP 반응의 조합을 통해 단순화된 POC 분자 진단 시스템을 구현할 수 있다. In addition, a “direct” LAMP reaction has been reported in which cell lysis and genetic amplification occur simultaneously without DNA/RNA purification (Dudley et al., 2020; Gadkar et al., 2018; Lee et al., 2016), which allows for a simplified POC molecular diagnostic system through the combination of direct lysis buffer and LAMP reaction.

하지만 휴대전화를 이용하는 IoT 기술과 LAMP 기술을 융합하여 정확한 진단과 현장형 신속진단을 동시에 구현하는 효과적 기술은 아직 개시되지 않은 상황이다. However, an effective technology that simultaneously implements accurate diagnosis and on-site rapid diagnosis by combining IoT technology and LAMP technology using mobile phones has not yet been disclosed.

따라서, 본 발명이 해결하고자 하는 과제는 IoT 기반 현장진단이 가능한 미세유체 칩과, 이를 활용한 진단시스템을 제공하는 것이다. Therefore, the problem that the present invention seeks to solve is to provide a microfluidic chip capable of IoT-based on-site diagnosis and a diagnostic system utilizing the same.

상기 과제를 해결하기 위하여, 본 발명은 진단용 미세유체 칩으로, 샘플이 주입된 후 용해되는 용해챔버(100);상기 용해챔버(100)로부터 용액을 유입받은 후, 중합효소와 혼합하는 혼합챔버(200); 상기 혼합챔버로부터의 용액을 유입받은 후 프라이머와 혼합한 후, 증폭반응을 진행하는 반응챔버(300)를 포함하며, 상기 반응챔버(300)는 적어도 2개 이상이며, 상기 반응챔버(300)는 상기 혼합챔버(200)로부터 유입된 용액의 증폭반응이 반응챔버간 서로 격리되어 분리된 채 진행되는 것을 특징으로 하는 진단용 미세유체 칩을 제공한다. In order to solve the above problem, the present invention provides a diagnostic microfluidic chip, which comprises a dissolution chamber (100) in which a sample is injected and then dissolved; a mixing chamber (200) in which a solution is introduced from the dissolution chamber (100) and then mixed with a polymerase; and a reaction chamber (300) in which a solution is introduced from the mixing chamber and then mixed with a primer and then an amplification reaction is performed, wherein the number of reaction chambers (300) is at least two, and the reaction chambers (300) are characterized in that an amplification reaction of a solution introduced from the mixing chamber (200) is performed in isolation between the reaction chambers.

본 발명의 일 실시예에서, 상기 증폭반응은 직접 RT-LAMP(Direct RT-LAMP) 반응이며, 상기 진단용 미세유체칩은, 상기 증폭반응시 상기 반응챔버 각각의 입구와 출구룰 밀봉하는 제 2 왁스밸브(320)을 더 포함하며, 상기 제 2 왁스밸브(320)의 왁스는 상기 증폭반응 온도에서 녹아 상기 반응챔버의 입구과 출구를 밀봉한다. In one embodiment of the present invention, the amplification reaction is a direct RT-LAMP reaction, and the diagnostic microfluidic chip further includes a second wax valve (320) that seals the inlet and outlet of each reaction chamber during the amplification reaction, and the wax of the second wax valve (320) melts at the amplification reaction temperature to seal the inlet and outlet of the reaction chamber.

본 발명의 일 실시예에서, 상기 진단용 미세유체 칩은, 상기 혼합챔버(200)로부터의 용액을 적어도 2개 이상의 반응챔버(300)를 나눈 후, 상기 반응챔버(300)출구로부터 나오는 채널을 합치는 분취채널구조를 가지며, 상기 분취 구조의 입구와 출구에는 각각 제 1 왁스밸브(310)가 구비된다. In one embodiment of the present invention, the diagnostic microfluidic chip has a separation channel structure that divides a solution from the mixing chamber (200) into at least two reaction chambers (300) and then merges channels coming out of the exits of the reaction chambers (300), and a first wax valve (310) is provided at each of the inlet and outlet of the separation structure.

본 발명은 또한 상술한 진단용 미세유체 칩; 및 상기 진단용 미세유체 칩에 열을 인가히기 위한 히터를 포함하며, 여기에서 상기 히터는, 상기 용해챔버에 열을 인가하기 위한 용해히터; 상기 제 1 왁스밸브에 열을 인가하여 왁스를 녹이기 위한 왁스히터; 및 상기 반응챔버에 열을 인가하기 위한 반응히터를 포함하는 진단용 미세유체 시스템을 제공한다. The present invention also provides a diagnostic microfluidic system including the above-described diagnostic microfluidic chip; and a heater for applying heat to the diagnostic microfluidic chip, wherein the heater includes: a dissolution heater for applying heat to the dissolution chamber; a wax heater for applying heat to the first wax valve to melt wax; and a reaction heater for applying heat to the reaction chamber.

본 발명의 일 실시예에서, 상기 반응히터에 의하여 제 3항의 제 2 왁스밸브의 왁스는 녹아 상기 반응챔버를 입구와 출구를 밀봉하며, 상기 시스템은, 상기 용해챔버와 물리적으로 접촉하여 상기 용해챔버에 진동을 인가하기 위한 진동수단을 더 포함할 수 있다. In one embodiment of the present invention, the wax of the second wax valve of the third clause is melted by the reaction heater to seal the inlet and the outlet of the reaction chamber, and the system may further include a vibration means for physically contacting the melting chamber and applying vibration to the melting chamber.

본 발명의 일 실시예에서, 상기 진동수단 및 상기 히터는 휴대용 배터리에 의하여 전력을 공급받을 수 있다. In one embodiment of the present invention, the vibrating means and the heater can be powered by a portable battery.

본 발명은 또한 상술한 진단용 미세유체 시스템을 포함하는 IoT 기반 유전자 분석시스템으로, 상술한 진단용 미세유체 시스템; 상기 미세유체 시스템에 전력을 공급하기 위한 휴대용 배터리; 상기 미세유체 시스템의 진단결과를 확인하는 영상시스템; 및 상기 미세유체 시스템을 조작하고 상기 영상시스템으로부터 진단결과를 수신하여 표시하는 모바일 기기를 포함하는 것을 특징으로 하는 IoT 기반 유전자 분석시스템을 제공한다. The present invention also provides an IoT-based genetic analysis system including the above-described diagnostic microfluidic system, characterized by including: the above-described diagnostic microfluidic system; a portable battery for supplying power to the microfluidic system; an imaging system for confirming the diagnostic results of the microfluidic system; and a mobile device for operating the microfluidic system and receiving and displaying the diagnostic results from the imaging system.

본 발명의 일 실시예에서, 상기 IoT 기반 유전자 분석시스템은, 상기 모바일 기기를 통하여 상기 진단결과를 외부로 전송하며, 상기 모바일 기기는 적어도 둘 이상의 반응챔버에서의 진단결과를 구분하여 표시할 수 있다. In one embodiment of the present invention, the IoT-based genetic analysis system transmits the diagnosis results to the outside via the mobile device, and the mobile device can display the diagnosis results from at least two reaction chambers separately.

본 발명의 일 실시예에서, 상기 영상시스템은, 실시간 형광 검출용 CMOS 센서로 상기 반응 챔버에서 방출된 빛을 포착할 수 있다. In one embodiment of the present invention, the imaging system can capture light emitted from the reaction chamber with a CMOS sensor for real-time fluorescence detection.

본 발명의 일 실시예에서, 상기 모바일 기기는 휴대전화이며, 상기 진단결과를 외부통신망을 통하여 외부로 송신 가능하며, 상기 영상시스템은 상기 모바일 기기의 카메라를 사용한다. In one embodiment of the present invention, the mobile device is a mobile phone, the diagnosis result can be transmitted to the outside through an external communication network, and the imaging system uses a camera of the mobile device.

본 발명의 일 실시예에서, 상기 휴대용 배터리는 상기 미세유체 시스템의 히터, 진동수단 및 영상시스템에 에너지를 공급한다. In one embodiment of the present invention, the portable battery supplies energy to the heater, vibrating means and imaging system of the microfluidic system.

본 발명에 따른 통합 미세유체 칩과 현장진단(POC) 장치 통합 시스템은 샘플에 대한 측정 방식으로 SARS-CoV-2 등과 같은 감염병 진단이 가능하며, 특히 손바닥 크기의 IoT 기반 유전자 분석 시스템을 제공하며, 본 발명에 따른 플랫폼은 저전력으로 구동되므로 휴대용 배터리로 작동할 수 있다. The integrated microfluidic chip and point-of-care (POC) device integration system according to the present invention can diagnose infectious diseases such as SARS-CoV-2 by measuring samples, and in particular, provides a palm-sized IoT-based genetic analysis system, and since the platform according to the present invention operates at low power, it can be operated with a portable battery.

또한 RT-LAMP 온도 제어, 진동 기능, 데이터 표시 등을 모바일 기기로 조작할 수 있으며, 바이러스 용해, 직접 RT-LAMP 반응 및 실시간 형광 검출과 같은 전체 프로세스를 미세 유체 칩에서 자동으로 수행할 수 있다. 더 나아가, SARS-CoV-2의 다중 유전자를 동시에 분석하여 낮은 LOD로 판단의 정확도를 향상시킬 수 있다. In addition, RT-LAMP temperature control, vibration function, data display, etc. can be controlled by mobile devices, and the entire process such as virus lysis, direct RT-LAMP reaction, and real-time fluorescence detection can be automatically performed on the microfluidic chip. Furthermore, multiple genes of SARS-CoV-2 can be analyzed simultaneously to improve the accuracy of judgment with low LOD.

도 1은 본 발명의 일 실시예에 따른 미세유체 칩의 레이아웃에 대한 구성도이다.
도 2는 본 발명의 일 실시예에 따른 미세유체 칩에서의 반응 단계를 설명하는 도면이다.
도 3은 본 발명의 시스템에 구비된 전극 히터와 시스템간 대응 모식도이다.
도 4는 본 발명의 일 실시예에 따른 용해히터, 왁스 밀봉 히터 및 RT-LAMP 반응히터의 가열 프로파일이다.
도 5는 (A) 진동효과를 이용한 생성된 기포의 제거를 보여주는 도면, (B) 진동 유무에 따른 용해 샘플의 증폭 곡선. (C) 진동 유무에 따른 샘플의 용해 효율을 나타내는 도면이다.
도 6은 (A) 반응 챔버 C1 및 C3에서 사전 건조된 A1se 유전자의 프라이머 세트가 있는 칩의 증폭 프로파일, (B) 반응 챔버 C2 및 C4에서 사전 건조된 SARS-CoV-2의 A1se 유전자 프라이머 세트를 갖는 칩의 증폭 프로파일이다.
도 7은 (A) 바이러스 농도에 따른 SARS-CoV-2의 3개 유전자(As1e, N 및 E 유전자)의 증폭 프로파일 및 (B) SARS-CoV-2의 3개 유전자에 대한 해당 임계값 시간에 대한 결과이다.
도 8은 임상 시료에 대한 분석결과이다. 도 8에서 (A)의 증폭 프로파일은 상용 qPCR 기계를 사용하여 테스트한 각 바이러스에 대한 양성 결과를 보여주며, (B)는 본 발명에 따른 플랫폼의 임상 샘플 분석결과로, 증폭 프로파일은 (1) SARS-CoV-2, (2) 인플루엔자 A, (3) RSV A, (4) RSV B의 바이러스 샘플에 대한 진단 분석 결과이다.
도 9는 본 발명의 일 실시예에 따라 제조된 이동형 현장진단시스템의 사진이다.FIG. 1 is a schematic diagram of the layout of a microfluidic chip according to one embodiment of the present invention.
FIG. 2 is a drawing illustrating a reaction step in a microfluidic chip according to one embodiment of the present invention.
Figure 3 is a schematic diagram showing the correspondence between the electrode heater and the system provided in the system of the present invention.
FIG. 4 is a heating profile of a melting heater, a wax sealing heater, and an RT-LAMP reaction heater according to one embodiment of the present invention.
Figure 5 is a diagram showing (A) the removal of bubbles generated using the vibration effect, (B) an amplification curve of a dissolved sample depending on the presence or absence of vibration, and (C) a diagram showing the dissolution efficiency of a sample depending on the presence or absence of vibration.
Figure 6 shows (A) the amplification profile of the chip with the primer set of the A1se gene pre-dried in reaction chambers C1 and C3, and (B) the amplification profile of the chip with the primer set of the A1se gene of SARS-CoV-2 pre-dried in reaction chambers C2 and C4.
Figure 7 shows (A) the amplification profiles of three genes (As1e, N, and E genes) of SARS-CoV-2 according to the virus concentration and (B) the results for the corresponding threshold times for the three genes of SARS-CoV-2.
Figure 8 shows the analysis results for clinical samples. In Figure 8, the amplification profile of (A) shows a positive result for each virus tested using a commercial qPCR machine, and (B) is the analysis result of a clinical sample of the platform according to the present invention, and the amplification profiles are the diagnostic analysis results for virus samples of (1) SARS-CoV-2, (2) influenza A, (3) RSV A, and (4) RSV B.
FIG. 9 is a photograph of a mobile on-site diagnostic system manufactured according to one embodiment of the present invention.

이하, 첨부한 도면을 참고로 하여 본 발명의 바람직한 실시예에 대하여 상세히 설명하면 다음과 같다.Hereinafter, a preferred embodiment of the present invention will be described in detail with reference to the attached drawings.

본 발명을 상세하게 설명하기 전에, 본 명세서에서 사용된 용어나 단어는 통상적이거나 사전적인 의미로 무조건 한정하여 해석되어서는 아니 되며, 본 발명의 발명자가 자신의 발명을 가장 최선의 방법으로 설명하기 위해서 각종 용어의 개념을 적절하게 정의하여 사용할 수 있다.Before describing the present invention in detail, it should be noted that the terms or words used in this specification should not be interpreted as having a limited, conventional or dictionary meaning, and the inventor of the present invention may appropriately define and use the concepts of various terms in order to describe his or her invention in the best possible manner.

더 나아가 이들 용어나 단어는 본 발명의 기술적 사상에 부합하는 의미와 개념으로 해석되어야 함을 알아야 한다.Furthermore, it should be noted that these terms and words should be interpreted with meanings and concepts consistent with the technical idea of the present invention.

즉, 본 명세서에서 사용된 용어는 본 발명의 바람직한 실시예를 설명하기 위해서 사용되는 것일 뿐이고, 본 발명의 내용을 구체적으로 한정하려는 의도로 사용된 것이 아니다.That is, the terms used in this specification are only used to describe preferred embodiments of the present invention, and are not intended to specifically limit the contents of the present invention.

이들 용어는 본 발명의 여러 가지 가능성을 고려하여 정의된 용어임을 알아야 한다.It should be noted that these terms are defined taking into account the various possibilities of the present invention.

또한, 본 명세서에 있어서, 단수의 표현은 문맥상 명확하게 다른 의미로 지시하지 않는 이상, 복수의 표현을 포함할 수 있다.Additionally, in this specification, a singular expression may include a plural expression unless the context clearly indicates a different meaning.

또한, 유사하게 복수로 표현되어 있다고 하더라도 단수의 의미를 포함할 수 있음을 알아야 한다.Also, it should be noted that even if similarly expressed in plural, it can contain singular meaning.

본 명세서의 전체에 걸쳐서 어떤 구성 요소가 다른 구성 요소를 "포함"한다고 기재하는 경우에는, 특별히 반대되는 의미의 기재가 없는 한 임의의 다른 구성 요소를 제외하는 것이 아니라 임의의 다른 구성 요소를 더 포함할 수도 있다는 것을 의미할 수 있다.Throughout this specification, whenever a component is described as "including" another component, this may mean that the component may further include any other component, rather than excluding any other component, unless otherwise specifically stated.

더 나아가서, 어떤 구성 요소가 다른 구성 요소의 "내부에 존재하거나, 연결되어 설치된다"고 기재한 경우에는, 이 구성 요소가 다른 구성 요소와 직접적으로 연결되어 있거나 접촉하여 설치되어 있을 수 있다.Furthermore, when a component is described as being "internal to, or installed in connection with" another component, it is understood that the component may be installed in direct connection with, or in contact with, the other component.

또한, 일정한 거리를 두고 이격되어 설치되어 있을 수도 있으며, 일정한 거리를 두고 이격되어 설치되어 있는 경우에 대해서는 해당 구성 요소를 다른 구성 요소에 고정 내지 연결시키기 위한 제 3의 구성 요소 또는 수단이 존재할 수 있다.Additionally, they may be installed spaced apart at a certain distance, and in the case where they are installed spaced apart at a certain distance, there may be a third component or means for fixing or connecting the component to the other component.

한편, 상기 제 3의 구성 요소 또는 수단에 대한 설명은 생략될 수도 있음을 알아야 한다.Meanwhile, it should be noted that the description of the third component or means may be omitted.

반면에, 어떤 구성 요소가 다른 구성 요소에 "직접 연결"되어 있다거나, 또는 "직접 접속"되어 있다고 기재되는 경우에는, 제 3의 구성 요소 또는 수단이 존재하지 않는 것으로 이해하여야 한다.On the other hand, when a component is described as being "directly connected" or "directly connected" to another component, it should be understood that no third component or means is present.

마찬가지로, 각 구성 요소 간의 관계를 설명하는 다른 표현들, 즉 " ~ 사이에"와 "바로 ~ 사이에", 또는 " ~ 에 이웃하는"과 " ~ 에 직접 이웃하는" 등도 마찬가지의 취지를 가지고 있는 것으로 해석되어야 한다.Likewise, other expressions that describe the relationship between each component, such as "between" and "directly between", or "adjacent to" and "directly adjacent to", should be interpreted as having the same meaning.

또한, 본 명세서에 있어서 "일면", "타면", "일측", "타측", "제 1", "제 2" 등의 용어는, 하나의 구성 요소에 대해서 이 하나의 구성 요소가 다른 구성 요소로부터 명확하게 구별될 수 있도록 하기 위해서 사용된다.Additionally, in this specification, terms such as “one side,” “the other side,” “one side,” “the other side,” “first,” and “second” are used to clearly distinguish one component from another component.

하지만, 이와 같은 용어에 의해서 해당 구성 요소의 의미가 제한적으로 사용되는 것은 아님을 알아야 한다.However, it should be noted that the meaning of the component is not limited by such terms.

또한, 본 명세서에서 "상", "하", "좌", "우" 등의 위치와 관련된 용어는, 사용된다면, 해당 구성 요소에 대해서 해당 도면에서의 상대적인 위치를 나타내고 있는 것으로 이해하여야 한다.Additionally, terms relating to position, such as “upper,” “lower,” “left,” and “right,” if used in this specification, should be understood to indicate relative positions of the corresponding components in the corresponding drawings.

또한, 이들의 위치에 대해서 절대적인 위치를 특정하지 않는 이상은, 이들 위치 관련 용어가 절대적인 위치를 언급하고 있는 것으로 이해하여서는 아니 된다.Additionally, unless absolute locations are specified for their locations, these location-related terms should not be understood as referring to absolute locations.

더욱이, 본 발명의 명세서에서는, "…부", "…기", "모듈", "장치" 등의 용어는, 사용된다면, 하나 이상의 기능이나 동작을 처리할 수 있는 단위를 의미한다.Moreover, in the specification of the present invention, the terms “part”, “unit”, “module”, “device”, etc., if used, mean a unit capable of processing one or more functions or operations.

이는 하드웨어 또는 소프트웨어, 또는 하드웨어와 소프트웨어의 결합으로 구현될 수 있음을 알아야 한다.It should be noted that this can be implemented in hardware, software, or a combination of hardware and software.

본 명세서에 첨부된 도면에서 본 발명을 구성하는 각 구성 요소의 크기, 위치, 결합 관계 등은 본 발명의 사상을 충분히 명확하게 전달할 수 있도록 하기 위해서 또는 설명의 편의를 위해서 일부 과장 또는 축소되거나 생략되어 기술되어 있을 수 있고, 따라서 그 비례나 축척은 엄밀하지 않을 수 있다.In the drawings attached to this specification, the size, position, connection relationship, etc. of each component constituting the present invention may be described in an exaggerated, reduced, or omitted manner in order to sufficiently clearly convey the idea of the present invention or for convenience of explanation, and therefore the proportions or scales may not be strict.

또한, 이하에서, 본 발명을 설명함에 있어서, 본 발명의 요지를 불필요하게 흐릴 수 있다고 판단되는 구성, 예를 들어, 종래 기술을 포함하는 공지 기술에 대한 상세한 설명은 생략될 수도 있다.In addition, in the following description of the present invention, a detailed description of a configuration that is judged to unnecessarily obscure the gist of the present invention, for example, a known technology including a prior art, may be omitted.

본 발명은 COVID-19 전염병에 대처하기 위해 신속 SARS-CoV-2 진단 플랫폼을 개발하였다. 특히, SARS-CoV-2를 진단하기 위한 실시간 RT-LAMP 기반 첨단 IoT 기반 POC 장치를 제공하며, 특히 본 발명에 따른 진단장치는 휴대용 배터리로 구동될 수 있는 저전력이며, 통합 미세유체 칩에서 바이러스 용해(Lysis) 및 RT-LAMP 반응을 동시에 수행할 수 있다. The present invention develops a rapid SARS-CoV-2 diagnostic platform to cope with the COVID-19 pandemic. In particular, a real-time RT-LAMP-based advanced IoT-based POC device for diagnosing SARS-CoV-2 is provided. In particular, the diagnostic device according to the present invention is low-power and can be powered by a portable battery, and can simultaneously perform virus lysis and RT-LAMP reactions in an integrated microfluidic chip.

또한, 본 발명에 따른 진단 플랫폼은, 반응 중 각 반응 챔버의 형광 신호를 병렬로 자동측정, 처리하여 Wi-Fi 네트워크를 통해 실시간으로 스마트폰으로 전송한다. In addition, the diagnostic platform according to the present invention automatically measures and processes the fluorescence signals of each reaction chamber in parallel during the reaction and transmits them to a smartphone in real time via a Wi-Fi network.

본 발명의 일 실시예에서는 SARS-CoV-2의 3가지 표적 유전자(As1e, N, E 유전자)를 분석, 위양성 결과를 방지하는 효과를 보여주었으며, 더 나아가 SARS-CoV-2 바이러스를 또한 다른 호흡기 바이러스(인플루엔자 A, RSV A 및 RSV B)와 함께 분석, 진단하였다. 이것은 결국 현장에서 구현되는 IoT 기반 분자 진단 플랫폼으로서의 본 발명의 효과를 나타내는데, 이는 이하 보다 상세히 설명한다. In one embodiment of the present invention, three target genes (As1e, N, E genes) of SARS-CoV-2 were analyzed, and the effect of preventing false positive results was demonstrated, and further, the SARS-CoV-2 virus was also analyzed and diagnosed together with other respiratory viruses (influenza A, RSV A, and RSV B). This ultimately demonstrates the effect of the present invention as an IoT-based molecular diagnostic platform implemented in the field, which will be described in more detail below.

도 1은 본 발명의 일 실시예에 따른 미세유체 칩 레이아웃에 대한 구성도이다. FIG. 1 is a schematic diagram of a microfluidic chip layout according to one embodiment of the present invention.

도 1을 참조하면, 본 발명의 일 실시예에 따른 미세유체 칩은 샘플이 용해되는 용해챔버(100), 상기 용해챔버로부터의 유체와 중합효소를 혼합하는 혼합챔버(200), 상기 혼합챔버로부터 중합효소와 유체를 프라이머와 혼합한 후, 증폭반응을 진행하는 반응챔버(300)를 포함한다. 도 1에서는 총 4개의 반응챔버가 개시되나 본 발명의 범위는 이에 제한되지 않는다. 본 발명에 따른 반응챔버(300)는 적어도 2개 이상이며, 상기 반응챔버(300)는 상기 혼합챔버(200)로부터 유입된 RT-LAMP 액의 RT-LAMP 반응이 챔버간 상호 격리되어 분리된 채 진행된다. Referring to FIG. 1, a microfluidic chip according to one embodiment of the present invention includes a dissolution chamber (100) in which a sample is dissolved, a mixing chamber (200) in which a fluid from the dissolution chamber is mixed with a polymerase, and a reaction chamber (300) in which the polymerase and the fluid from the mixing chamber are mixed with a primer and an amplification reaction is performed. A total of four reaction chambers are disclosed in FIG. 1, but the scope of the present invention is not limited thereto. The number of reaction chambers (300) according to the present invention is at least two, and the RT-LAMP reaction of the RT-LAMP liquid introduced from the mixing chamber (200) is performed in isolation between the chambers.

본 발명은 이를 위하여 용해챔버(100)-혼합챔버(200) 사이, 상기 혼합챔버(200)와 반응챔버(300), 그리고 상기 반응챔버(300)와 외부로 시료가 배출되는 연결포트(400) 사이에는, “패시브 밸브((Passive valve)"가 구비되는데, 여기에서 패시브 밸브는 소수성으로 코팅된 채널 구간으로 외부 주사기 등에 의한 흡인력이 인가되지 않는 경우 채널로 친수성 용액이 흐르지 않는 구간을 말한다. To this end, the present invention provides a “passive valve” between a dissolution chamber (100) and a mixing chamber (200), between the mixing chamber (200) and the reaction chamber (300), and between the reaction chamber (300) and a connection port (400) through which a sample is discharged to the outside. Here, the passive valve refers to a channel section coated hydrophobically, into which a hydrophilic solution does not flow when a suction force by an external syringe or the like is not applied.

본 발명은 증발, 챔버간 의도하지 않는 혼합 등에 의한 오염 등을 방지하기 위하여 온도에 따라 점성이 바뀌어 채널을 채우게 되는 제 2 왁스 밀봉 밸브(320)를 상기 반응챔버 각각의 유입과 출구에 구비한다. 또한 반응챔버로 나누어 흐른 후 반응 후 합쳐지는 채널 구조인 분취(aliquot)채널에는 분취 구조의 입구와 출구에 분취구조를 밀봉하게 되는 제 1 왁스 밀봉 밸브(310)가 구비되며, 상기 제 1 왁스 밀봉 밸브(310)는 별도의 히터로 채널을 채워 RT-LAMP 반응챔버로부터의 증발문제를 원천적으로 방지한다. The present invention provides a second wax sealing valve (320) at the inlet and outlet of each reaction chamber to prevent contamination due to evaporation, unintended mixing between chambers, etc., by changing the viscosity according to temperature to fill the channel. In addition, an aliquot channel, which is a channel structure in which liquid flows separately to the reaction chambers and then merges after reaction, is provided with a first wax sealing valve (310) at the inlet and outlet of the aliquot structure to seal the aliquot structure. The first wax sealing valve (310) fills the channel with a separate heater to fundamentally prevent evaporation problems from the RT-LAMP reaction chamber.

도 2는 본 발명의 일 실시예에 따른 미세유체 칩에서의 반응 단계를 설명하는 도면이다. FIG. 2 is a drawing illustrating a reaction step in a microfluidic chip according to one embodiment of the present invention.

도 2를 참조하면, 본 발명에 따른 미세유체 칩을 이용한 공정 방법은 6단계로 구성된다. Referring to FIG. 2, the process method using a microfluidic chip according to the present invention consists of six steps.

도 2를 참조하면, 각 단계별 공정방법은 다음과 같으나, 하기 설명되는 구체적인 실시예의 조건 등에 의하여 본 발명의 범위는 제한되지 않는다. Referring to Figure 2, the process method for each step is as follows, but the scope of the present invention is not limited by the conditions of the specific examples described below.

(1) 샘플 로딩 단계(1) Sample loading step

본 발명의 일 실시예에서 먼저 2.0 μL의 바이러스 샘플을 58 μL의 RT-LAMP 용액이 미리 로드된 미세유체 칩의 용해챔버(도 1의 100)에 로딩하였다. In one embodiment of the present invention, first, 2.0 μL of a virus sample was loaded into the dissolution chamber (100 in Fig. 1) of a microfluidic chip preloaded with 58 μL of RT-LAMP solution.

(2) 바이러스 용해 단계(2) Virus lysis step

시스템에 구비된 용해히터를 섭씨 95도까지 10분 동안 가열하고 진동기가 1분마다 용액을 30초 동안 진동시켜 바이러스를 용해(Lysis)시켰다. The melting heater equipped in the system heated the solution to 95 degrees Celsius for 10 minutes, and the vibrator vibrated the solution for 30 seconds every minute to lyse the virus.

(3) 효소 혼합 단계(3) Enzyme mixing step

연결포트(connection port)에 연결된 주사기를 이용, 흡인(70μL)하여 용해챔버(100)에서 용해된 시료(60μL)를 도 1의 혼합챔버(200)로 옮겼다. 상기 혼합챔버에는 EM(Bst DNA 중합효소 및 역전사효소)이 사전 건조된 상태로 구비되어 있으며, EM과 RT-LAMP 용액 사이의 효율적인 혼합을 위해 진동 효과 등을 이용할 수 있다. Using a syringe connected to the connection port, the dissolved sample (60 μL) was transferred from the dissolution chamber (100) to the mixing chamber (200) of Fig. 1 by aspiration (70 μL). The mixing chamber is equipped with EM (Bst DNA polymerase and reverse transcriptase) in a pre-dried state, and vibration effects, etc. can be used for efficient mixing between the EM and RT-LAMP solution.

(4) 분취 단계(4) Fractionation stage

효소 혼합 단계 후, RT-LAMP 혼합물(60 μL)을 분취채널(반응챔버로 RT-LAMP 용액이 나뉘어 흘러가는 채널 구조)로 천천히 주사기 등을 사용하여 흡인/유동시켰다. 마지막 분취 구조 말단에 있는 패시브 밸브는 소수성 시약으로 코팅되어 RT-LAMP 혼합물이 모든 반응챔버를 부드럽게 채울 수 있었다. After the enzyme mixing step, the RT-LAMP mixture (60 μL) was slowly aspirated/flowed into the separation channel (a channel structure through which the RT-LAMP solution is divided and flows into the reaction chambers) using a syringe, etc. The passive valve at the end of the last separation structure was coated with a hydrophobic reagent so that the RT-LAMP mixture could smoothly fill all the reaction chambers.

(5) 왁스 밀봉 단계(5) Wax sealing step

반응챔버(300)가 RT-LAMP 용액 혼합물(RNA, 중합효소 등)로 채워진 후, 왁스 밀봉 히터의 온도를 2분 동안 섭씨 75도로 상승시켰다. 그 결과, 두 개의 제 1 왁스 밸브(310)에 있는 왁스가 녹아서 연결된 마이크로 채널로 흘러들어가 분취 구조의 입구와 출구를 차단하였다. 도 2B(빨간색 점선 상자)의 단계 (5)는 인접한 마이크로채널로의 왁스 방출과 왁스로 인한 마이크로채널의 녹색 용액 분리를 보여준다. 왁스 밀봉 공정은 특히 RT-LAMP 반응 중에 RT-LAMP 혼합물이 증발하는 것을 방지하는 데 중요한 역할을 하게 된다. After the reaction chamber (300) was filled with the RT-LAMP solution mixture (RNA, polymerase, etc.), the temperature of the wax sealing heater was raised to 75 degrees Celsius for 2 minutes. As a result, the wax in the two first wax valves (310) melted and flowed into the connected microchannels, blocking the inlet and outlet of the precipitation structure. Step (5) of Fig. 2B (red dotted box) shows the release of wax into the adjacent microchannel and the separation of the green solution in the microchannel due to the wax. The wax sealing process plays an important role in preventing the RT-LAMP mixture from evaporating, especially during the RT-LAMP reaction.

(6) RT-LAMP 반응 단계(6) RT-LAMP reaction step

반응히터의 온도를 상승시킨 후, 혼합물을 섭씨 65도에서 60분 동안 인큐베이션하여 1단계 RT-LAMP 반응을 수행한다. 이 온도에서 반응 챔버 입구와 출구 라인에 각각 있는 8개의 왁스 밸브(제 2 왁스 밸브, 320) 내부의 왁스가 녹아서 마이크로 채널로 흘러 반응 챔버가 격리된다. 즉, 본 발명에 따른 제 2 왁스 밸브(320)는 각 반응챔버 각각의 입구와 출구에 구비되며, RT-LAMP 반응온도에서 녹아 각 반응챔버를 분리하여 증발을 차단할 뿐만 아니라 반응 챔버 간의 교차 오염을 방지한다. 이후 인큐베이션 시간 동안 각 반응 챔버의 형광 이미지가 1분마다 기록된다. After increasing the temperature of the reaction heater, the mixture is incubated at 65 degrees Celsius for 60 minutes to perform the first-stage RT-LAMP reaction. At this temperature, the wax inside the eight wax valves (second wax valves, 320) located at the inlet and outlet lines of the reaction chambers, respectively, melts and flows into the microchannels to isolate the reaction chambers. That is, the second wax valves (320) according to the present invention are provided at the inlet and outlet of each reaction chamber, and melt at the RT-LAMP reaction temperature to isolate each reaction chamber, thereby not only blocking evaporation but also preventing cross-contamination between reaction chambers. Thereafter, the fluorescence image of each reaction chamber is recorded every minute during the incubation time.

도 3은 본 발명의 시스템에 구비된 전극 히터와 시스템간 대응 모식도이다. Figure 3 is a schematic diagram showing the correspondence between the electrode heater and the system provided in the system of the present invention.

도 3을 참조하면, 본 발명의 일 실시예에 따른 시스템의 히터는 용해챔버에 대응하는 용해히터(Lysis Heater), 분취채널구조를 밀봉하는 위치에 대응하는 제 1 왁스 밀봉 히터(Wax Sealing Heater), 그리고 RT-LAMP 반응을 위한 반응히터(Reaction Heater)로 구성되며, 각 히터는 대응하는 챔버 또는 왁스밸브에 근접하는 위치로 구성된다. Referring to FIG. 3, the heater of the system according to one embodiment of the present invention is composed of a lysis heater corresponding to a dissolution chamber, a first wax sealing heater corresponding to a position for sealing a fractionation channel structure, and a reaction heater for RT-LAMP reaction, and each heater is configured at a position close to a corresponding chamber or wax valve.

도 4는 본 발명의 일 실시예에 따른 용해히터, 왁스 밀봉 히터 및 RT-LAMP 반응히터의 가열 프로파일이다.FIG. 4 is a heating profile of a melting heater, a wax sealing heater, and an RT-LAMP reaction heater according to one embodiment of the present invention.

진동에 따른 증폭반응 촉진 효과 Vibration-induced amplification reaction promotion effect

본 발명은 상술한 바와 같이 용해 시간 단축과 효율을 향상시키기 위하여 온도만 아니라 진동효과를 이용하였다. 즉, 본 발명은 신속한 on-chip 바이러스 검출을 위해 용해(lysis) 시간을 15분에서 10분으로 단축하고 1분마다 30초 동안 고주파 진동기(10000 RPM)로 용해 효율을 높였다. 본 발명의 일 실시예에서는 2 × 105 copies/μL 농도의 SARS-CoV-2 샘플을 사용하여 As1e 프라이머 세트로 수정된 용해 프로토콜을 검증하였다. As described above, the present invention utilized not only temperature but also vibration effect to shorten the lysis time and improve the efficiency. That is, the present invention shortened the lysis time from 15 minutes to 10 minutes for rapid on-chip virus detection, and increased the lysis efficiency with a high-frequency vibrator (10,000 RPM) for 30 seconds every minute. In one embodiment of the present invention, a lysis protocol modified with the As1e primer set was verified using a SARS-CoV-2 sample having a concentration of 2 × 10 5 copies/μL.

도 5는 (A) 진동효과를 이용한 생성된 기포의 제거를 보여주는 도면, (B) 진동 유무에 따른 용해 샘플의 증폭 곡선. (C) 진동 유무에 따른 샘플의 용해 효율을 나타내는 도면이다. Figure 5 is a diagram showing (A) the removal of bubbles generated using the vibration effect, (B) an amplification curve of a dissolved sample depending on the presence or absence of vibration, and (C) a diagram showing the dissolution efficiency of a sample depending on the presence or absence of vibration.

도 5A에 도시된 바와 같이, 본 발명에서 사용된 진동은 가열 동안 용해 챔버 내부에서 생성된 기포를 제거하는 데 유용하였다. 가열 외에도 용해 챔버의 진동도 칩 상에서의 샘플 용해 효율을 크게 증가시켰으며, 진동으로 용해된 샘플은 진동이 없는 샘플보다 빠르게 증폭되었다(도 5B 참조). 임계값 시간은 30.2분에서 12.8분으로 크게 감소하여 가열 및 진동 기능을 결합하여 우수한 온칩 용해 성능을 확인하였다(도 5C 참조).As shown in Fig. 5A, the vibration used in the present invention was useful for removing bubbles generated inside the dissolution chamber during heating. In addition to heating, the vibration of the dissolution chamber also significantly increased the sample dissolution efficiency on the chip, and the samples dissolved by vibration were amplified faster than those without vibration (see Fig. 5B). The threshold time was significantly reduced from 30.2 minutes to 12.8 minutes, confirming excellent on-chip dissolution performance by combining heating and vibration functions (see Fig. 5C).

교차 오염 테스트Cross contamination test

본 발명에 따른 칩 설계는 표적 유전자의 다중 분석을 위한 4개의 반응 챔버를 포함하므로 RT-LAMP 반응에서 교차 오염이 없는지 확인하여야 한다. Since the chip design according to the present invention includes four reaction chambers for multiplex analysis of target genes, it is necessary to ensure that there is no cross-contamination in the RT-LAMP reaction.

이를 위해 반응 챔버를 둘러싸는 왁스 밸브를 사용하고 섭씨 65도의 온도에서 반응 챔버를 격리하기 위하여, 마이크로 채널에 녹은 왁스를 채웠다. 상술한 바와 같이 상기 반응챔버 입구 및 출구에 각각 구비된 왁스밸브는 도 3 및 4의 왁스 밀봉 히터가 아닌 반응 히터에 의하여 녹게 된다. To this end, a wax valve surrounding the reaction chamber was used, and melted wax was filled into the microchannel to isolate the reaction chamber at a temperature of 65 degrees Celsius. As described above, the wax valves provided at the inlet and outlet of the reaction chamber, respectively, are melted by the reaction heater, not the wax sealing heater of FIGS. 3 and 4.

인접한 반응챔버 사이에 교차 오염이 발생하는지 확인하기 위해 SARS-CoV-2에 대한 As1e 유전자의 프라이머 세트를 반응실 C1과 C3 또는 C2와 C4에서 사전 건조시켰다. To determine whether cross-contamination occurred between adjacent reaction chambers, the primer set for the As1e gene for SARS-CoV-2 was pre-dried in reaction chambers C1 and C3 or C2 and C4.

이후 ARS-CoV-2의 농도가 2 × 102copy/μL인 샘플을 추가하고 전체 프로세스를 본 발명에 따른 미세 유체 칩에서 상술한 프로토콜에 따라 수행하였으며, LAMP 반응 동안 모든 반응 챔버의 형광 강도는 CMOS 센서에 의해 모니터링되었다. Afterwards, a sample with a concentration of ARS-CoV-2 of 2 × 10 2 copies/μL was added, and the entire process was performed according to the protocol described above in the microfluidic chip according to the present invention, and the fluorescence intensity of all reaction chambers during the LAMP reaction was monitored by a CMOS sensor.

도 6은 (A) 반응 챔버 C1 및 C3에서 사전 건조된 A1se 유전자의 프라이머 세트가 있는 칩의 증폭 프로파일, (B) 반응 챔버 C2 및 C4에서 사전 건조된 SARS-CoV-2의 A1se 유전자 프라이머 세트를 갖는 칩의 증폭 프로파일이다. Figure 6 shows (A) the amplification profile of the chip with the primer set of the A1se gene pre-dried in reaction chambers C1 and C3, and (B) the amplification profile of the chip with the primer set of the A1se gene of SARS-CoV-2 pre-dried in reaction chambers C2 and C4.

도 6을 참조하면, As1e 프라이머가 미리 건조된 반응챔버 C1과 C3에서만 형광강도가 점차 증가하였다(도 6A). 유사하게, 반응 챔버 C2 및 C4만이 증폭 프로파일을 나타내며, 여기서 As1e 프라이머는 챔버 C2 및 C4에서만 사전 건조되어 구비된 상태였다(도 6B). 따라서 본 발명에 따라 칩에 RT-LAMP 반응에 따라 녹아서 채널을 밀봉할 수 있는 왁스밸브를 반응챔버에 통합하면 반응챔버간 교차 오염 문제가 제거되어 다중 표적 유전자 검출을 위한 신뢰할 수 있는 데이터를 얻을 수 있다. Referring to FIG. 6, the fluorescence intensity gradually increased only in reaction chambers C1 and C3 where the As1e primer was pre-dried (FIG. 6A). Similarly, only reaction chambers C2 and C4 showed an amplification profile, wherein the As1e primer was pre-dried and provided only in chambers C2 and C4 (FIG. 6B). Therefore, by incorporating a wax valve that can melt and seal the channel according to the RT-LAMP reaction on the chip according to the present invention into the reaction chamber, the problem of cross-contamination between reaction chambers can be eliminated, thereby obtaining reliable data for detection of multiple target genes.

검출 한계 테스트Detection limit test

SARS-CoV-2의 바이러스 소수 입자가 사람의 호흡기를 감염시킬 수 있다는 점을 고려하면 검출 한계(LOD)가 진단 방법에 중요하다. 따라서 본 발명에 따른 진단 플랫폼의 감지 민감도 평가를 본 실험예에서 진행하였다. Considering that a small number of SARS-CoV-2 virus particles can infect the human respiratory tract, the limit of detection (LOD) is important for diagnostic methods. Therefore, the detection sensitivity of the diagnostic platform according to the present invention was evaluated in this experimental example.

이를 위해 열불활성화된 SARS-CoV-2 샘플을 연속 희석하여 다양한 농도를 준비하였다(2 × 105, 2 × 104, 2 × 103, 2 × 102, 2 × 101 genomic copy number/μL). 이후 각 농도별 LOD 테스트를 수행하였다. For this purpose, heat-inactivated SARS-CoV-2 samples were serially diluted to prepare various concentrations (2 × 10 5 , 2 × 10 4 , 2 × 10 3 , 2 × 10 2 , 2 × 10 1 genomic copy number/μL). Then, LOD tests were performed for each concentration.

도 7은 (A) 바이러스 농도에 따른 SARS-CoV-2의 3개 유전자(As1e, N 및 E 유전자)의 증폭 프로파일 및 (B) SARS-CoV-2의 3개 유전자에 대한 해당 임계값 시간에 대한 결과이다. Figure 7 shows (A) the amplification profiles of three genes (As1e, N, and E genes) of SARS-CoV-2 according to the virus concentration and (B) the results for the corresponding threshold times for the three genes of SARS-CoV-2.

도 7을 참조하면, 도 7A에서 SARS-CoV-2의 3개 유전자의 증폭 곡선이 농도에 따라 도시되었다. Referring to Figure 7, the amplification curves of three genes of SARS-CoV-2 in Figure 7A are plotted according to concentration.

도 7을 참조하면, SARS-CoV-2 샘플의 유전자 대부분은 반응 시간 13분에서 51분 사이에 성공적으로 검출되었다. As1e와 N 유전자의 증폭 효율은 비슷해 보이지만 E 유전자의 증폭 효율은 더 느리며, 가장 낮은 농도인 2 × 101 copy/μL에서 증폭은 재현할 수 없었다. Referring to Figure 7, most of the genes in the SARS-CoV-2 sample were successfully detected between 13 and 51 minutes of reaction time. The amplification efficiencies of the As1e and N genes appeared similar, but the amplification efficiency of the E gene was slower, and the amplification was not reproducible at the lowest concentration of 2 × 10 1 copies/μL.

형광 강도의 임계값(Threshold)을 100(흰색 선)으로 설정하여 임계 시간을 결정하였다. 3개의 유전자의 역치 시간은 도 7B에 도시되어 있다. 모든 실험은 3회 이상 반복하였으며, 계산된 표준편차는 오차 막대로 표시하였다. E 유전자의 역치 시간은 As1e 및 N 유전자의 역치 시간보다 훨씬 컸지만 As1e 및 N 유전자의 역치 시간은 상당히 동일하였다. 도 7A의 파란색 선에서 볼 수 있듯이 음성 대조군 실험에서는 항상 형광 신호가 나타나지 않았다. 따라서 3개의 유전자(As1e, N 및 E 유전자)를 사용하여 SARS-CoV-2를 높은 신뢰도로 식별하려면 LOD는 2 × 102 copy/μL이었으며, 만약 두 개의 유전자(As1e 및 N 유전자)를 사용하는 경우라면 LOD는 10배, 즉 2 × 101 copy/μL까지 향상될 수 있다. The threshold time was determined by setting the threshold of fluorescence intensity to 100 (white line). The threshold times of the three genes are shown in Fig. 7B. All experiments were repeated at least three times, and the calculated standard deviations are represented by error bars. The threshold time of the E gene was much longer than those of the As1e and N genes, but the threshold times of the As1e and N genes were quite similar. As shown in the blue line in Fig. 7A, no fluorescence signal was always observed in the negative control experiment. Therefore, the LOD was 2 × 10 2 copies/μL to identify SARS-CoV-2 with high confidence using three genes (As1e, N, and E genes), and if two genes (As1e and N genes) are used, the LOD can be improved by 10 times, i.e., up to 2 × 10 1 copy/μL.

임상 샘플 테스트Clinical sample testing

임상 시료 분석을 위한 현장진단 분자 진단 플랫폼의 실제 적용 가능성을 입증하기 위해 경희대학교 병원에서 4가지 임상 호흡기 바이러스 시료(SARS-CoV-2, Influenza A, RSV A, RSV B)를 입수하여 테스트하였다. 먼저 시판되는 Real-Time PCR 기계를 이용하여 임상 시료를 분석하고, SARS-CoV-2의 As1e, N, E 유전자, Influenza A의 Neuraminidase 유전자, RSV A 및 RSV B에 대한 융합 당단백질 유전자를 분석하였다. To demonstrate the practical applicability of the point-of-care molecular diagnostic platform for clinical sample analysis, four clinical respiratory virus samples (SARS-CoV-2, Influenza A, RSV A, and RSV B) were obtained from Kyung Hee University Hospital and tested. First, clinical samples were analyzed using a commercially available real-time PCR machine, and the As1e, N, and E genes of SARS-CoV-2, the neuraminidase gene of Influenza A, and the fusion glycoprotein genes for RSV A and RSV B were analyzed.

도 8은 임상 시료에 대한 분석결과이다. 도 8에서 (A)의 증폭 프로파일은 상용 qPCR 기계를 사용하여 테스트한 각 바이러스에 대한 양성 결과를 보여주며, (B)는 본 발명에 따른 플랫폼의 임상 샘플 분석결과로, 증폭 프로파일은 (1) SARS-CoV-2, (2) 인플루엔자 A, (3) RSV A, (4) RSV B의 바이러스 샘플에 대한 진단 분석 결과이다. Figure 8 shows the analysis results for clinical samples. In Figure 8, the amplification profile of (A) shows a positive result for each virus tested using a commercial qPCR machine, and (B) is the analysis result of a clinical sample of the platform according to the present invention, and the amplification profiles are the diagnostic analysis results for virus samples of (1) SARS-CoV-2, (2) influenza A, (3) RSV A, and (4) RSV B.

도 8을 참조하면, 네 가지 임상 샘플 모두 양성 결과를 알 수 있다(도 8A). 이후 반응 챔버 C2, C3 및 C4를 각각 As1e, N 및 E 유전자를 표적으로 하는 프라이머 세트로 반응챔버를 코팅하고 챔버 C1에는 교차 오염을 확인하기 위해 음성 대조군으로 프라이머가 코팅하지 않았다. 3개의 반응 챔버(C2, C3, C4)의 증폭 곡선은 SARS-CoV-2의 임상 샘플이 로드되었을 때만 감지할 수 있었다(도 8B(1)). 다른 호흡기 바이러스(인플루엔자 A의 경우 도 8B(2), RSV A의 경우 도 8B(3), RSV B의 경우 도 8B(4))는 형광 신호를 생성하지 않았다. 이러한 결과는 SARS-CoV-2용 RT-LAMP 프라이머가 높은 특이도로 설계되었으며 본 발명에 따른 마이크로 칩을 활용한 휴대용 유전자 분석기가 SARS-CoV-2의 임상 샘플을 높은 정확도로 정확하고 동시에 동시에 검출할 수 있음을 나타낸다. Referring to Fig. 8, all four clinical samples showed positive results (Fig. 8A). Subsequently, reaction chambers C2, C3, and C4 were coated with primer sets targeting the As1e, N, and E genes, respectively, and chamber C1 was not coated with primers as a negative control to check for cross contamination. The amplification curves of the three reaction chambers (C2, C3, and C4) could be detected only when the clinical sample of SARS-CoV-2 was loaded (Fig. 8B (1)). Other respiratory viruses (Fig. 8B (2) for influenza A, Fig. 8B (3) for RSV A, and Fig. 8B (4) for RSV B) did not generate fluorescence signals. These results indicate that the RT-LAMP primers for SARS-CoV-2 are designed with high specificity and that the portable genetic analyzer utilizing the microchip according to the present invention can accurately and simultaneously detect clinical samples of SARS-CoV-2 with high accuracy.

이동형 현장진단시스템 Mobile field diagnostic system

본 발명은 상술한 마이크류 유체칩을, 이동형 장치로부터 전력을 공급받아 진동, 히팅 등을 현장에서 수행하고, 모바일 기기(휴대전화 등)로 시스템을 조작, 결과를 확인하고 필요한 경우 이를 외부로 전송하는 일체형 진단 시스템을 제공한다. The present invention provides an integrated diagnostic system that supplies power to the above-described microfluidic chip from a mobile device to perform vibration, heating, etc. on site, operates the system with a mobile device (such as a mobile phone), checks the results, and transmits them to the outside if necessary.

도 9는 본 발명의 일 실시예에 따라 제조된 이동형 현장진단시스템의 사진이다.FIG. 9 is a photograph of a mobile on-site diagnostic system manufactured according to one embodiment of the present invention.

도 9에서 (A) 마이크로칩이 내장되며, 휴대용 배터리로 구동되며 Wi-Fi 연결을 통해 스마트폰으로 제어되는 휴대용 유전자 분석기, (B) POC 유전자 분석기 내부 구조의 3D 모델, (C) 제작된 POC 유전자 분석기의 전면 및 후면 디지털 이미지이다. 본 발명에 따른 IoT 기반 유전자 분석시스템은, 미세유체 칩, 히터, 진동수단을 포함하는 진단용 미세유체 시스템과, 상기 미세유체 시스템에 전력을 공급하기 위한 휴대용 배터리; 상기 미세유체 시스템의 진단결과를 확인하는 영상시스템; 및 상기 미세유체 시스템을 조작하고 상기 영상시스템으로부터 진단결과를 수신하기 위한 모바일 기기를 포함한다. In Fig. 9, (A) a portable genetic analyzer having a built-in microchip, powered by a portable battery, and controlled by a smartphone via a Wi-Fi connection, (B) a 3D model of the internal structure of the POC genetic analyzer, and (C) digital images of the front and back of the fabricated POC genetic analyzer. The IoT-based genetic analysis system according to the present invention includes a diagnostic microfluidic system including a microfluidic chip, a heater, and a vibration means; a portable battery for supplying power to the microfluidic system; an imaging system for checking the diagnostic results of the microfluidic system; and a mobile device for operating the microfluidic system and receiving the diagnostic results from the imaging system.

본 발명에 따른 시스템의 유체제어 서브시스템은 3mL 주사기를 당기거나 밀기 위해 기어 세트를 작동하는 고토크 서보(TowerPro, MG996R)를 포함한다. 즉, 주사기의 흡입을 위해 서보는 시계 반대 방향으로 회전하고, 밀기를 위해서는 시계 방향으로 회전한다. 따라서, 상술한 통합 미세유체 칩이 휴대용 유전자 분석기에 삽입되면(도 9A의 삽입이미지), 실리콘 튜브(직경 2mm)를 통해 주사기와 연결된 어댑터로 칩의 바닥이 자동으로 클릭된다. 따라서, 미세유체 칩 내부의 용액의 이동은 주사기를 밀거나 당겨서 조작할 수 있다. The fluid control subsystem of the system according to the present invention includes a high-torque servo (TowerPro, MG996R) that operates a gear set to pull or push a 3 mL syringe. That is, the servo rotates counterclockwise for aspiration of the syringe and clockwise for pushing. Accordingly, when the integrated microfluidic chip described above is inserted into a portable genetic analyzer (inset image of FIG. 9A), the bottom of the chip is automatically clicked into an adapter connected to a syringe via a silicone tube (diameter 2 mm). Therefore, the movement of the solution inside the microfluidic chip can be manipulated by pushing or pulling the syringe.

본 발명에 따른 플랫폼의 온도 제어를 위한 서브 시스템은 3개의 독립적인 히터로 구성되며, 이는 상술한 바와 같다, 각각은 칩의 3개 영역(용해 챔버, 왁스 밸브 및 반응 챔버)의 온도를 조정하도록 설계되며, 본 발명에 따른 맞춤형 히터는 0.3mm 엔드밀이 있는 CNC 기계로 1.6mm 두께의 동박 적층판(동박 두께: 18μm)으로 제작되었다. 용해, 왁스 밀봉 및 LAMP 반응을 위해 제작된 히터의 저항은 각각 2.4, 1.6, 2.4옴이었다. The subsystem for temperature control of the platform according to the present invention consists of three independent heaters, which are as described above, each designed to control the temperature of three regions of the chip (melting chamber, wax valve and reaction chamber), and the customized heaters according to the present invention were fabricated from a 1.6 mm thick copper laminate (copper thickness: 18 μm) by a CNC machine with a 0.3 mm end mill. The resistances of the heaters fabricated for melting, wax sealing and LAMP reaction were 2.4, 1.6 and 2.4 ohms, respectively.

본 발명에 따른 플랫폼의 바이러스 용해를 위한 하위 시스템은, 상기 용해챔버와 물리적으로 접촉하여 상기 용해챔버에 진동을 인가하기 위한 진동수단을 포함하는데, 이를 위하여 본 발명은 용해 챔버 뒷면에 접촉하여 이를 진동시키기 위한 작은 진동 모터(직경 2.7mm, 3.5V, 10000RPM)를 포함한다. 상기 진동수단은 바이러스 입자의 용해 효율을 가속화하기 위해 용해 단계 동안 샘플 용액을 진동시키는 역할을 수행한다. The subsystem for virus lysis of the platform according to the present invention includes a vibration means for physically contacting the dissolution chamber and applying vibration to the dissolution chamber. To this end, the present invention includes a small vibration motor (diameter 2.7 mm, 3.5 V, 10000 RPM) for contacting the rear surface of the dissolution chamber and vibrating it. The vibration means serves to vibrate the sample solution during the dissolution step in order to accelerate the dissolution efficiency of virus particles.

또한, 본 발명에 따른 플랫폼은 반응챔버에서의 진단결과를 영상으로 확인하기 위한 영상진단 시스템을 더 포함하는데, 본 발명의 일 실시예에 따른 실시간 형광 검출용 서브시스템은 여기 파장이 488nm(488T-60 DS5, 중국)인 고강도(60mW) 발광 다이오드(LED)와 Sony IMX219 8메가픽셀 CMOS 센서로 구성되며, LED는 반응 챔버를 조명하기 위해 45°로 기울어진 각도로 미세 유체 칩 표면에서 3cm 떨어진 곳에 배치되며, 밴드패스 필터(525 nm CWL, Dia. 25 mm, 70 nm bandwidth, Edmund Optics, USA)로 덮인 CMOS 센서는 반응 챔버에서 방출된 빛을 포착하기 위해 미세 유체 칩의 전면에서 3.5 cm 떨어진 곳에 배치된다.In addition, the platform according to the present invention further includes an image diagnosis system for confirming the diagnosis result in the reaction chamber through an image, and the real-time fluorescence detection subsystem according to one embodiment of the present invention is composed of a high-intensity (60 mW) light-emitting diode (LED) having an excitation wavelength of 488 nm (488T-60 DS5, China) and a Sony IMX219 8-megapixel CMOS sensor, wherein the LED is positioned 3 cm away from the surface of the microfluidic chip at an angle tilted at 45° to illuminate the reaction chamber, and the CMOS sensor covered with a bandpass filter (525 nm CWL, Dia. 25 mm, 70 nm bandwidth, Edmund Optics, USA) is positioned 3.5 cm away from the front of the microfluidic chip to capture the light emitted from the reaction chamber.

이상 설명한 본 발명은 COVID-19의 현장진단 분자 진단을 위한 손바닥 크기의 IoT 기반 유전자 분석 시스템을 제공하며, 본 발명에 따른 플랫폼은 저전력으로 구동되므로 휴대용 배터리로 작동할 수 있다. 특히 RT-LAMP의 유체 제어, 온도 제어, 진동 기능, 데이터 표시 등을 상기 휴대용 배터리로 공급받아, 모바일 기기로 조작하며, 그 결과를 외부통신망을 이용 수신 또는 송신할 수 있다. 따라서, 바이러스 용해, 직접 RT-LAMP 반응 및 실시간 형광 검출과 같은 전체 프로세스를 미세 유체 칩에서 자동으로 수행할 수 있으며, SARS-CoV-2의 다중 유전자를 동시에 분석하여 낮은 LOD로 판단의 정확도를 향상시킬 수 있다. The present invention described above provides a palm-sized IoT-based genetic analysis system for on-site molecular diagnosis of COVID-19, and the platform according to the present invention is driven by low power and can be operated with a portable battery. In particular, the fluid control, temperature control, vibration function, data display, etc. of RT-LAMP are supplied by the portable battery, and are operated with a mobile device, and the results can be received or transmitted using an external communication network. Therefore, the entire process such as virus lysis, direct RT-LAMP reaction, and real-time fluorescence detection can be automatically performed in a microfluidic chip, and multiple genes of SARS-CoV-2 can be analyzed simultaneously to improve the accuracy of judgment with low LOD.

본 발명은 전술한 실시예 및 첨부된 도면에 의해 한정되는 것이 아니다. 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어, 본 발명의 기술적 사상을 벗어나지 않는 범위 내에서 본 발명에 따른 구성요소를 치환, 변형 및 변경할 수 있다는 것이 명백할 것이다.The present invention is not limited to the above-described embodiments and the attached drawings. It will be apparent to those skilled in the art to which the present invention pertains that components according to the present invention can be substituted, modified, and changed within a scope that does not depart from the technical spirit of the present invention.

Claims (15)

진단용 미세유체 칩으로,
샘플이 주입된 후 용해되는 용해챔버(100);
상기 용해챔버(100)로부터 용액을 유입받은 후, 중합효소와 혼합하는 혼합챔버(200);
상기 혼합챔버로부터의 용액을 유입받은 후 프라이머와 혼합한 후, 증폭반응을 진행하는 반응챔버(300)를 포함하며,
상기 반응챔버(300)는 적어도 2개 이상이며, 상기 반응챔버(300)는 상기 혼합챔버(200)로부터 유입된 용액의 증폭반응이 반응챔버간 서로 격리되어 분리된 채 진행되고,
상기 증폭반응시 상기 반응챔버 각각의 입구와 출구룰 밀봉하는 제 2 왁스밸브(320)을 더 포함하며, 상기 제 2 왁스밸브(320)의 왁스는 상기 증폭반응 온도에서 녹아 상기 반응챔버의 입구과 출구를 밀봉하며,
상기 혼합챔버(200)로부터의 용액을 적어도 2개 이상의 반응챔버(300)를 나눈 후, 상기 반응챔버(300)출구로부터 나오는 채널을 합치는 분취채널구조를 가지며, 상기 분취채널구조의 입구와 출구에는 각각 제 1 왁스밸브(310)가 구비되고, 상기 제1 왁스밸브(310)의 왁스는 열이 가해지면 녹아 상기 분취채널구조의 입구와 출구를 차단하는 것을 특징으로 하는 진단용 미세유체 칩.As a diagnostic microfluidic chip,
A dissolution chamber (100) in which a sample is dissolved after being injected;
A mixing chamber (200) that receives a solution from the above dissolution chamber (100) and mixes it with a polymerization enzyme;
It includes a reaction chamber (300) in which a solution from the above mixing chamber is introduced, mixed with a primer, and then an amplification reaction is performed.
The above reaction chambers (300) are at least two, and the amplification reaction of the solution introduced from the mixing chamber (200) is carried out in isolation between the reaction chambers.
It further includes a second wax valve (320) that seals the inlet and outlet of each reaction chamber during the amplification reaction, and the wax of the second wax valve (320) melts at the amplification reaction temperature to seal the inlet and outlet of the reaction chamber.
A diagnostic microfluidic chip characterized in that it has a separation channel structure that divides a solution from the mixing chamber (200) into at least two reaction chambers (300) and then merges channels coming out of the exit of the reaction chamber (300), and a first wax valve (310) is provided at each of the inlet and outlet of the separation channel structure, and the wax of the first wax valve (310) melts when heat is applied to block the inlet and outlet of the separation channel structure. 제 1항에 있어서,
상기 증폭반응은 직접 RT-LAMP(Direct RT-LAMP) 반응인 것을 특징으로 하는 진단용 미세유체 칩.In paragraph 1,
A diagnostic microfluidic chip characterized in that the above amplification reaction is a direct RT-LAMP reaction. 삭제delete 삭제delete 제 1항 내지 제 2항 중 어느 한 항에 따른 진단용 미세유체 칩; 및
상기 진단용 미세유체 칩에 열을 인가히기 위한 히터를 포함하며,
여기에서 상기 히터는, 상기 용해챔버에 열을 인가하기 위한 용해히터;
상기 제 1 왁스밸브에 열을 인가하여 왁스를 녹이기 위한 왁스히터; 및
상기 반응챔버에 열을 인가하기 위한 반응히터를 포함하는 것을 특징으로 하는 진단용 미세유체 시스템. A diagnostic microfluidic chip according to any one of claims 1 to 2; and
Includes a heater for applying heat to the above diagnostic microfluidic chip,
Here, the heater is a melting heater for applying heat to the melting chamber;
A wax heater for melting the wax by applying heat to the first wax valve; and
A diagnostic microfluidic system characterized by including a reaction heater for applying heat to the reaction chamber. 제 5항에 있어서,
상기 반응히터에 의하여 상기 제 2 왁스밸브의 왁스는 녹아 상기 반응챔버를 입구와 출구를 밀봉하는 것을 특징으로 하는 진단용 미세유체 시스템. In paragraph 5,
A diagnostic microfluidic system characterized in that the wax of the second wax valve is melted by the reaction heater to seal the inlet and outlet of the reaction chamber. 제 5항에 있어서,
상기 진단용 미세유체 시스템은, 상기 용해챔버와 물리적으로 접촉하여 상기 용해챔버에 진동을 인가하기 위한 진동수단을 더 포함하는 것을 특징으로 하는 진단용 미세유체 시스템.In paragraph 5,
A diagnostic microfluidic system, characterized in that the diagnostic microfluidic system further includes a vibration means for physically contacting the dissolution chamber and applying vibration to the dissolution chamber. 제 7항에 있어서,
상기 진동수단 및 상기 히터는 휴대용 배터리에 의하여 전력을 공급받는 것을 특징으로 하는 진단용 미세유체 시스템.In Article 7,
A diagnostic microfluidic system, characterized in that the vibration means and the heater are powered by a portable battery. 제 5항에 따른 진단용 미세유체 시스템을 포함하는 IoT 기반 유전자 분석시스템으로,
제 5항에 따른 진단용 미세유체 시스템;
상기 미세유체 시스템에 전력을 공급하기 위한 휴대용 배터리;
상기 미세유체 시스템의 진단결과를 확인하는 영상시스템; 및
상기 미세유체 시스템을 조작하고 상기 영상시스템으로부터 진단결과를 수신하여 표시하는 모바일 기기를 포함하는 것을 특징으로 하는 IoT 기반 유전자 분석시스템. An IoT-based genetic analysis system including a diagnostic microfluidic system according to Article 5,
Diagnostic microfluidic system according to Article 5;
A portable battery for powering the above microfluidic system;
An imaging system for confirming the diagnostic results of the above microfluidic system; and
An IoT-based genetic analysis system characterized by including a mobile device for manipulating the microfluidic system and receiving and displaying diagnostic results from the imaging system. 제 9항에 있어서,
상기 IoT 기반 유전자 분석시스템은, 상기 모바일 기기를 통하여 상기 진단결과를 외부로 전송하는 것을 특징으로 하는 IoT 기반 유전자 분석시스템.In Article 9,
The IoT-based genetic analysis system is characterized in that it transmits the diagnosis results to the outside through the mobile device. 제 9항에 있어서,
상기 모바일 기기는 적어도 둘 이상의 반응챔버에서의 진단결과를 구분하여 표시하는 것을 특징으로 하는 IoT 기반 유전자 분석시스템.In Article 9,
An IoT-based genetic analysis system, characterized in that the mobile device displays diagnostic results from at least two reaction chambers separately. 제 9항에 있어서,
상기 영상시스템은, 실시간 형광 검출용 CMOS 센서로 상기 반응 챔버에서 방출된 빛을 포착하는 것을 특징으로 하는 IoT 기반 유전자 분석시스템.In Article 9,
The above imaging system is an IoT-based genetic analysis system characterized in that it captures light emitted from the reaction chamber with a CMOS sensor for real-time fluorescence detection. 제 9항에 있어서,
상기 모바일 기기는 휴대전화이며, 상기 진단결과를 외부통신망을 통하여 외부로 송신 가능한 것을 특징으로 하는 IoT 기반 유전자 분석시스템.In Article 9,
An IoT-based genetic analysis system characterized in that the above mobile device is a mobile phone and the above diagnostic results can be transmitted externally through an external communication network. 제 9항에 있어서,
상기 영상시스템은 상기 모바일 기기의 카메라를 사용하는 것을 특징으로 하는 IoT 기반 유전자 분석시스템. In Article 9,
The above image system is an IoT-based genetic analysis system characterized by using the camera of the mobile device. 제 9항에 있어서,
상기 휴대용 배터리는 상기 미세유체 시스템의 히터, 진동수단 및 영상시스템에 에너지를 공급하는 것을 특징으로 하는 IoT 기반 유전자 분석시스템.


 In Article 9,
An IoT-based genetic analysis system, wherein the portable battery supplies energy to the heater, vibration means, and imaging system of the microfluidic system.
KR1020210132311A 2021-10-06 2021-10-06 Diagnostic microfluidic chip, system and IoT-based genetic analysis system including the same Active KR102702216B1 (en)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020210132311A KR102702216B1 (en) 2021-10-06 2021-10-06 Diagnostic microfluidic chip, system and IoT-based genetic analysis system including the same
PCT/KR2022/015060 WO2023059109A1 (en) 2021-10-06 2022-10-06 Microfluidic chip for diagnosis, microfluidic chip system for diagnosis, and iot-based gene analysis system including same

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020210132311A KR102702216B1 (en) 2021-10-06 2021-10-06 Diagnostic microfluidic chip, system and IoT-based genetic analysis system including the same

Publications (2)

Publication Number Publication Date
KR20230049323A KR20230049323A (en) 2023-04-13
KR102702216B1 true KR102702216B1 (en) 2024-09-02

Family

ID=85804519

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1020210132311A Active KR102702216B1 (en) 2021-10-06 2021-10-06 Diagnostic microfluidic chip, system and IoT-based genetic analysis system including the same

Country Status (2)

Country Link
KR (1) KR102702216B1 (en)
WO (1) WO2023059109A1 (en)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR102756048B1 (en) * 2022-11-08 2025-01-21 재단법인 오송첨단의료산업진흥재단 Branched biochip for stable loading of reagents
KR20250023075A (en) 2023-08-09 2025-02-18 경희대학교 산학협력단 A gene analysis cartridge and gene analysis device including the same
KR20250023077A (en) 2023-08-09 2025-02-18 경희대학교 산학협력단 A microfluidic chip, cartridge and gene analysis device including the same
KR20250023076A (en) 2023-08-09 2025-02-18 경희대학교 산학협력단 A microfluidic chip, cartridge and gene analysis device including the same

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20150273470A1 (en) 2014-04-01 2015-10-01 Robert Bosch Gmbh Microfluidic Device and Method for Analyzing a Sample of Biological Material
US20210237054A1 (en) 2016-04-19 2021-08-05 Purdue Research Foundation Temperature controlled valves for paper-based microfluidic systems

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20110312682A1 (en) * 2010-06-17 2011-12-22 Geneasys Pty Ltd Loc device for amplifying and detecting target nucleic acid sequences using electrochemiluminescent resonant energy transfer, stem-and-loop probes with covalently attached primers
CA3062287A1 (en) * 2017-04-21 2018-10-25 Mesa Biotech, Inc. Fluidic test cassette
KR102027101B1 (en) * 2018-01-05 2019-10-02 성균관대학교산학협력단 Microfluidic chip and pretreatment method for concentration and purification of samples
KR200494344Y1 (en) * 2019-10-10 2021-09-17 경희대학교 산학협력단 Gene diagnosis unit and gene diagnostic system using smartphone

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20150273470A1 (en) 2014-04-01 2015-10-01 Robert Bosch Gmbh Microfluidic Device and Method for Analyzing a Sample of Biological Material
US20210237054A1 (en) 2016-04-19 2021-08-05 Purdue Research Foundation Temperature controlled valves for paper-based microfluidic systems

Also Published As

Publication number Publication date
WO2023059109A1 (en) 2023-04-13
KR20230049323A (en) 2023-04-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR102702216B1 (en) Diagnostic microfluidic chip, system and IoT-based genetic analysis system including the same
JP6285478B2 (en) Apparatus and method for integrated sample preparation, reaction, and detection
US8338166B2 (en) Sorting, amplification, detection, and identification of nucleic acid subsequences in a complex mixture
JP5993397B2 (en) Assay
CN106660042B (en) Microfluidic device
CN111197003B (en) Integrated nucleic acid extraction amplification detection analysis device and method based on smart phone
JP5266245B2 (en) High density built-in biological analysis
JP2017520239A (en) Microfluidic cartridge and device with integrated assay control for nucleic acid analysis
US20200023360A1 (en) System for Rapid, Portable, and Multiplexed Detection and Identification of Pathogen Specific Nucleic Acid Sequences
EP3987054A1 (en) Systems for sample analysis
EP3030908B1 (en) Digital fluid sample separation apparatus and methods for one-step quantitative sample analysis
KR20230031971A (en) Portable nucleic acid analysis system and high-performance microfluidic electroactive polymer actuators
CA3176075A1 (en) Downloadable software application for guiding a rapid test
KR101765474B1 (en) Diagnosis Kit for Virus
Xu et al. Deep Learning‐Enhanced Hand‐Driven Microfluidic Chip for Multiplexed Nucleic Acid Detection Based on RPA/CRISPR
Jiang et al. UbiNAAT: a multiplexed point-of-care nucleic acid diagnostic platform for rapid at-home pathogen detection
CN117615848A (en) Systems, methods, and apparatus for automated independent biological analysis
G. Mauk et al. Translating nucleic acid amplification assays to the microscale: lab on a chip for point-of-care molecular diagnostics
Zai et al. Handheld RPA-based molecular POCT system for rapid, low-cost 8-plexed detection of respiratory pathogens at home
Song et al. Rapid absolute determination platform of nucleic acid for point-of-care testing
CN119793555A (en) A portable microfluidic chip, detection method and detection device
Chen Smartphone-based systems for mobile infectious disease detection and epidemiology
AU2017201579A1 (en) Apparatus and methods for integrated sample preparation, reaction and detection

Legal Events

Date Code Title Description
PA0109 Patent application

Patent event code: PA01091R01D

Comment text: Patent Application

Patent event date: 20211006

PA0201 Request for examination
PG1501 Laying open of application
E902 Notification of reason for refusal
PE0902 Notice of grounds for rejection

Comment text: Notification of reason for refusal

Patent event date: 20231221

Patent event code: PE09021S01D

E701 Decision to grant or registration of patent right
PE0701 Decision of registration

Patent event code: PE07011S01D

Comment text: Decision to Grant Registration

Patent event date: 20240827

GRNT Written decision to grant
PR0701 Registration of establishment

Comment text: Registration of Establishment

Patent event date: 20240829

Patent event code: PR07011E01D

PR1002 Payment of registration fee

Payment date: 20240829

End annual number: 3

Start annual number: 1

PG1601 Publication of registration