[go: up one dir, main page]

RU2010858C1 - Способ иммобилизации алкогольоксидазы - Google Patents

Способ иммобилизации алкогольоксидазы Download PDF

Info

Publication number
RU2010858C1
RU2010858C1 SU915008288A SU5008288A RU2010858C1 RU 2010858 C1 RU2010858 C1 RU 2010858C1 SU 915008288 A SU915008288 A SU 915008288A SU 5008288 A SU5008288 A SU 5008288A RU 2010858 C1 RU2010858 C1 RU 2010858C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
enzyme
alcohol oxidase
immobilized
activity
concentration
Prior art date
Application number
SU915008288A
Other languages
English (en)
Inventor
Й.А. Марцинкявичене
Ю.Ю. Кулис
В.А. Лауринавичюс
Original Assignee
Институт биохимии Литовской Академии наук
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт биохимии Литовской Академии наук filed Critical Институт биохимии Литовской Академии наук
Priority to SU915008288A priority Critical patent/RU2010858C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2010858C1 publication Critical patent/RU2010858C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Abstract

Использование: биохимия, в частности в анализаторах для определения метаболитов в крови и других биологических растворах. Сущность изобретения: при введении фермента в гелевую структуру, содержащую альбумин, глутаровый альдегид и азид натрия, дополнительно вводят комплекс меди и гистидина Cu(His) в концентрации 0,5 - 1,5 мг/мл. Положительный эффект: активность иммобилизованного фермента увеличивается в 3,6 - 4,6 раз по сравнению с известным; стабильность сохраняется достаточно длительное время. Например, в течение 4 мес активность уменьшается на 30% , тогда как известным способом иммобилизованная алкогольоксида при эксплуатации за это же время полностью теряет активность. 2 табл.

Description

Изобретение относится к способам иммобилизации ферментов, а именно к технологии получения иммобилизованной алкогольоксидазы, которая используется в анализаторах для определения этилового спирта в крови и других биологических растворах.
Известны способы получения иммобилизованных ферментов путем включения фермента в пространственную структуру гелей, например, альбуминового геля в присутствии глутарового альдегида [1] .
Недостаток этого способа связан с трудностью регулировать прочность и эластичность геля, содержащего фермент.
Известен способ иммобилизации ферментов путем их связывания с нерастворимым пленочным носителем в присутствии сывороточного альбумина и глутарового альдегида [2] , но он тоже не обеспечивает высокого качества иммобилизованной алкогольоксидазы.
Недостатком способа является ограниченная применимость, так как полученная этим способом иммобилизованная алкогольоксидаза при использовании в анализаторах определения этилового спирта не отличается высокой активностью и стабильностью. По-видимому алкогольоксидаза быстро инактивируется под действием глутарового альдегида.
Наиболее близким к изобретению является способ иммобилизации алкогольоксидазы при pH 8,0-9,0, включающий введение алкогольоксидазы в гелевую структуру, содержащую сывороточный альбумин, глутаровый альдегид и азид натрия в буферном растворе, и последующее нанесение на лавсановую мембрану - ядерный фильтр [3] . Сущность способа объясняется тем, что азид натрия комплексируется в активном центре алкогольоксидазы.
Недостатком способа является сравнительно низкое качество целевого продукта: иммобилизованная алкогольоксидаза при использовании в анализаторах определения этилового спирта отличается сравнительно низкой активностью и стабильностью (см. табл. 1).
Цель изобретения - повышение активности и стабильности иммобилизованной алкогольоксидазы.
Способ заключается в том, что при иммобилизации алкогольоксидазы путем включения фермента в гелевую структуру, содержащую сывороточный альбумин, глутаровый альдегид и азид натрия в коцентрации 0,25-500 мМ, в буферном растворе, pH 8,0-9,0, и последующего нанесения его на лавсановую мембрану - ядерный фильтр, в гелевую структуру дополнительно вводят комплекс меди и гистадина Cu (His) в концентрации (0,5-1,5) мг/мл.
Сущность способа может быть объяснена тем, что в активном центре алкогольоксидазы значительная часть флавинадениндинуклеотидов (Е-ФАД) является в семихиноновом состоянии (E-ФАД. ), т. е. приблизительно шесть из восьми. При хранении фермента флавинадениндинуклеотидсемихинон претерпевает редокс превращение с образованием супероксидрадикала (O2 -. ):
Е-ФАД-. +O2 --- E-ФАД+O2 -.
Образовавшийся радикал O2 -. является очень реактивным агентом, который разрушает четвертичную структуру фермента и приводит к его инактивации. Дополнительно используемый в процессе иммобилизации комплекс Cu(His) моделирует активный центр супероксиддисмутазы, элиминирующий O2 -. , что и обеспечивает повышение активности иммобилизованной алкогольоксидазы.
Комплекс меди и гистидина получают по методике, описанной в литературе.
Для иммобилизации используют алкогольоксидазу из Candida boidinii или Pichia pastoris.
П р и м е р 1. 0,1 М раствор CuSO4 смешивают с 10% избытком 0,1 М раствора гистидина. Спектрофотометрически наблюдают появление полосы поглощения при 610 нм. Методом спектрофотометрического титрования установлено, что образуется комплекс гистидина и меди в соотношении 2: 1.
П р и м е р 2. 0,1 мл алкогольоксидазы (500 U/мл), 8 мл бычьего сывороточного альбумина растворяют в 0,1 мл 0,01 М фосфатного буфера pH 8,0, cодержащего 0,1 М KCl, 1 мМ ЭДТА, 50 мМ азида натрия и 1 мг/мл Cu (His). В раствор добавляют 0,02 мл 5% глутарового альдегида, смесь тщательно перемешивают и выливают на лавсановую мембрану (ядерный фильтр) проницаемостью 10,7 % и диаметром пор 0,16 мкм, площадью 9 см2. Для получения ферментной мембраны, применяемой в анализаторах для определения этилового спирта, на поверхность приготовленной двухслойной мембраны надевают ацетатцеллюлозную мембрану толщиной 10 мкм. Полученную трехслойную мембрану с каплей буфера помещают в холодильник на сутки, затем надевают на электрод и тщательно отмыв струей буфера определяют ток ферментного электрода при pH 8,0 при 0,6 В отн. Ag/AgCl электрода сравнения.
Аналогично проводят иммобилизацию алкогольоксидазы с использованием комплекса Cu(His) в концентрации 0,5 и 1,5 мг/мл или в отсутствии комплекса по известному способу. Готовят аналогичные примеру 2 ферментные электроды.
В табл. 1 приведены сравнительные параметры полученных электродов. Измерения проведены в 0,01 М фосфатном буфере (0,1 М KCl, 1 мМ ЭДТА), pH 8,0.
Из табл. 1 видно, что при тех же концентрациях этилового спирта плотность тока или чувствительность электродов (2-4), содержащих иммобилизованные мембраны согласно предлагаемому способу, гораздо выше, чем содержащих мембрану (1), приготовленную согласно прототипу. Повышение активности иммобилизованной алкогольоксидазы обеспечивается при концентрациях Cu(His) 0,5-1,5 мг/мл. Однако наилучшие результаты реализации способа получены при концентрации комплекса 1 мг/мл, так как плотность тока электрода, изготовленного на основе этой иммобилизованной алкогольоксидазы, при всех концентрациях алкоголя (в интервале 5-80 мМ) увеличивается в 3,6-4,6 раза по сравнению с прототипом (ср. например, плотность тока при концентрации алкоголя 70 мМ равную 40,04 и 8,63 соответственно).
П р и м е р 3. Для определения стабильности иммобилизованной алкогольосидазы изготавливают электроды с ферментными мембранами, изготовленными по предложенному способу с использованием комплекса Cu(His) в концентрации 1 мг/мл и по прототипу, и определяют зависимость тока электродов от продолжительности хранения. Полученные результаты приведены в табл. 2. (концентрация этилового спирта в ячейки 0,5 мМ, другие условия как в примере 2). Ферментная мембрана хранится в холодильнике.
Из табл. 2 видно, что в течение 4 мес эксплуатации чувствительность электрода, приготовленного на основе иммобилизованной глюкозооксидазы по данному способу, уменьшается на 30% , тогда как мембрана, приготовленная по прототипу, за этом время полностью теряет активность, а в течение одного месяца на 50% . (56) 1. Ю. Ю. Кулис. Аналитические системы на основании иммобилизованных ферментов. Вильнюс, "Мокслас", 1981, с. 8-23.
2. Авторское свидетельство СССР N 1326978, кл. G 01 N 27/46, 1989.
3. Авторское свидетельство СССР N 1615179, кл. C 12 N 11/08, 1990.

Claims (1)

  1. СПОСОБ ИММОБИЛИЗАЦИИ АЛКОГОЛЬОКСИДАЗЫ, предусматривающий включение дрожжевой алкогольоксидазы в гелевую структуру, содержащую сывороточный альбумин, глутаровый альдегид и азид натрия в буферном растворе, перемешивание и последующее нанесение на ядерный фильтр, отличающийся тем, что, с целью повышения активности и стабильности целевого продукта, в гелевую структуру дополнительно вводят комплекс меди и гистидина Cu (His) в концентрации 0,5 - 1,5 мг/мл.
SU915008288A 1991-07-03 1991-07-03 Способ иммобилизации алкогольоксидазы RU2010858C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU915008288A RU2010858C1 (ru) 1991-07-03 1991-07-03 Способ иммобилизации алкогольоксидазы

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU915008288A RU2010858C1 (ru) 1991-07-03 1991-07-03 Способ иммобилизации алкогольоксидазы

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2010858C1 true RU2010858C1 (ru) 1994-04-15

Family

ID=21588364

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU915008288A RU2010858C1 (ru) 1991-07-03 1991-07-03 Способ иммобилизации алкогольоксидазы

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2010858C1 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2199347C2 (ru) * 1996-08-02 2003-02-27 Орто-Макнейл Фармасьютикал, Инк. Полипептиды, обладающие единственным ковалентно связанным n-концевым водорастворимым полимером
CN117884176A (zh) * 2023-12-12 2024-04-16 广东省科学院江门产业技术研究院有限公司 一种多糖凝胶包覆的铁纳米酶制备方法及其醇溶蛋白改性应用

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2199347C2 (ru) * 1996-08-02 2003-02-27 Орто-Макнейл Фармасьютикал, Инк. Полипептиды, обладающие единственным ковалентно связанным n-концевым водорастворимым полимером
CN117884176A (zh) * 2023-12-12 2024-04-16 广东省科学院江门产业技术研究院有限公司 一种多糖凝胶包覆的铁纳米酶制备方法及其醇溶蛋白改性应用

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4919767A (en) Sensor and method for analyte determination
EP0216577B1 (en) Sensor
Bennet-Clark et al. Water relations of plant cells. III. The respiration of plasmolysed tissues
JP2685145B2 (ja) 酵素電極
Campbell et al. Enzymatic recycling of coenzymes by a multi-enzyme system immobilized within semipermeable collodion microcapsules
JPH0761280B2 (ja) グルコ−ス及び1,5−アンヒドログルシト−ルの同時測定法
CA1205402A (en) Method for production of an immobilized enzyme by means of a crosslinking agent
DE2305320A1 (de) Durch einschluss in ein wasserloesliches, hydrophiles polymer stabilisierte enzymkoerper
EP0105736B1 (en) Immobilization of proteins on polymeric supports
RU2010858C1 (ru) Способ иммобилизации алкогольоксидазы
JPS61145447A (ja) 固定化酵素膜
Boguslaski et al. A kinetic study of microencapsulated bovine carbonic anhydrase
DE2553649A1 (de) Verfahren zur durchfuehrung von enzymatischen reaktionen
SU1615179A1 (ru) Способ иммобилизации алкогольоксидазы
Yoshida et al. Immobilization of glucoamylase on polymer surface by radiation‐induced polymerization of glass‐forming monomers at low temperatures
Tang et al. Optimisation of enzyme electrodes
SU1057535A1 (ru) Способ получени иммобилизованной дрожжевой алкогольдегидрогеназы
SU1130598A1 (ru) Способ получени иммобилизованных оксидоредуктаз
DE2634562A1 (de) Enzym-membran
Ohki et al. The reduction of methemoglobin in Neo Red Cell
Ohki et al. Enzyme Electrode for Hydrogen Peroxide Using a New Enzyme-Immobilization" Polymer-Enzyme Aggregate".
SU665635A1 (ru) Способ иммобилизации нуклеиновых кислот
SU1341189A1 (ru) Способ получени иммобилизованной люциферазы светл ков
CA1283615C (en) Removal of bilirubin by the pseudoperoxidase activity of immobilized hemoglobin
JPS62150166A (ja) 液体試料成分測定用試験片