[go: up one dir, main page]

WO1996015235A1 - Composition de transcriptase inverse stable a la conservation - Google Patents

Composition de transcriptase inverse stable a la conservation Download PDF

Info

Publication number
WO1996015235A1
WO1996015235A1 PCT/JP1995/002304 JP9502304W WO9615235A1 WO 1996015235 A1 WO1996015235 A1 WO 1996015235A1 JP 9502304 W JP9502304 W JP 9502304W WO 9615235 A1 WO9615235 A1 WO 9615235A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
reverse transcriptase
composition
nucleic acid
trehalose
molecule
Prior art date
Application number
PCT/JP1995/002304
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Fumitomo Odawara
Original Assignee
Asahi Kasei Kogyo Kabushiki Kaisha
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Asahi Kasei Kogyo Kabushiki Kaisha filed Critical Asahi Kasei Kogyo Kabushiki Kaisha
Priority to EP95936773A priority Critical patent/EP0791650B1/en
Priority to US08/836,380 priority patent/US5935834A/en
Priority to DE69532717T priority patent/DE69532717T2/de
Publication of WO1996015235A1 publication Critical patent/WO1996015235A1/ja

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10—Transferases (2.)
    • C12N9/12—Transferases (2.) transferring phosphorus containing groups, e.g. kinases (2.7)
    • C12N9/1241—Nucleotidyltransferases (2.7.7)
    • C12N9/1276—RNA-directed DNA polymerase (2.7.7.49), i.e. reverse transcriptase or telomerase

Definitions

  • the present invention relates to novel storage-stabilized reverse transcriptase compositions. More specifically, the present invention provides a stabilizing effective amount of at least one organic stabilizer selected from the group consisting of reverse transcriptase, and nucleic acid containing a transcription initiation site of trehulose and reverse transcriptase. And a storage-stabilized reverse transcriptase composition comprising a stabilizing effective amount of a metal salt capable of forming a divalent cation in an aqueous solution. The present invention also provides a method for stabilizing a reverse transcriptase with a stabilizing effective amount of at least one organic stabilizer selected from the group consisting of trehalose and a nucleic acid comprising the transcription initiation site of the reverse transcriptase.
  • the present invention relates to a method for preserving and stabilizing a reverse transcriptase, which comprises adding an effective amount of a stabilizing agent and an effective amount of stabilizing a metal salt capable of generating a divalent cation in an aqueous solution.
  • reverse transcriptase which had to be stored at a low temperature of ⁇ 20 to ⁇ 80 ° C. in order to maintain stability, is stored at least at 4 ° C. for a long time. be able to.
  • the temperature at which the reverse transcriptase can be stably stored is relatively high, the viscosity of the enzyme composition solution decreases. Therefore, an amount corresponding to a desired enzyme activity can be accurately dispensed, and an experiment can be performed with high reproducibility.
  • the storage-stabilized reverse transcriptase composition of the present invention is applicable to various technologies using reverse transcriptase in the fields of genetic engineering and virology. It is extremely useful and can be used advantageously as a standard for viral load, especially in the method of quantifying virus using reverse transcriptase activity as an index, which is currently commonly used. Conventional technology
  • Reverse transcriptase is an enzyme that has the activity of converting RNA into type II and synthesizing DNA with a complementary nucleotide sequence, and is known as a result of recent advances in molecular biology. became. For example, Avian Myeloblast Virus (AMV), Lasoa Sheetets Dovi Nores Type 2 (Ras),
  • HIV human immunodeficiency virus type 2
  • HTLV-1 Human T Cell Leukemia Virus Type 1
  • SIV Saleis Winores
  • FI Cat Eyes Winores
  • reverse transcriptase is also used in the PCR (polymerase chain reaction) method, which is the most commonly used nucleic acid amplification technology in recent years.
  • the PCR method uses a thermostable DNA polymerase and two types of specific primers, and repeats up and down the temperature to obtain one or more nucleic acids of interest.
  • the target is specifically subjected to a widespread reaction while repeating the enzyme reaction and annealing.
  • the reaction specificity of DNA polymerase is specific to DNA
  • the target sample is RNA
  • reverse transcriptase is essential when the research target is R ⁇ , especially recently HIV, HCV, etc.
  • Research on quantifying the amount of the virus as the amount of RNA as well as the kit for quantifying the amount of the virus are increasing, and this is an industrially important enzyme.
  • reverse transcriptase is also used in LCR (1 gaseous chain reaction) as another nucleic acid amplification technology.
  • the LCR method uses a thermostable DNA ligase instead of the thermostable DNA polymerase in the PCR method described above, and performs annealing and ligase reaction at temperatures above and below the same temperature as the PCR method. Repeat for nucleic acid This is a technique for performing amplification.
  • the specificity of the DNA ligase reaction is specific to DNA, when the research target is RNA, it is converted to DNA once by reverse transcriptase as a pretreatment of the sample. Therefore, the RT-LCR method must be performed to perform the above-mentioned amplification reaction, and reverse transcriptase is an essential enzyme as in the PCR method.
  • Reverse transcriptase has also been used as a reagent necessary for nucleic acid technology such as the NASBA (nucleic acid sequence based amplification) method.
  • the NASBA method is a method in which a target nucleic acid is amplified at room temperature by a cascade reaction of enzymes using reverse transcriptase, DNA polymerase, and RNAseH and two types of primers.
  • reverse transcriptase is indispensable due to its size.
  • reverse transcriptase As a standard substance and to quantify the virus by the reverse transcriptase activity contained in the virus. .
  • the origin of the measured reverse transcriptase is, for example, human immunodeficiency virus type 1
  • Human Immunodeficiency Virus Type 1 HIV-1
  • Type 2 Human Immunodeficiency Virus Type 2: HIV-2
  • Human T Cellulase Chemovirus Type 1 Human T Cell Leukemia Virus Type 1: HTLV-1
  • Salois virus SIV
  • Cats virus FMV
  • Mouse tris sarcoma virus etc. it can.
  • reverse transcriptase usually, for example, N a C l and M g C Yo I
  • monovalent or divalent metal salt of l 2 as well as, for example, SH protecting agent such Melka Bed Toeta Nord Ya Jichiosu Rei Torr, its Then, it is stored between 120 ° C and 180 ° C in a buffer solution containing glycerol at a high concentration of about 50 v / v%.
  • the enzyme container when performing the reverse transcriptase reaction at 37 ° C, the enzyme container must be cooled to a room temperature of 4 ° C or higher where the enzyme becomes unstable from a cooling device of 20 to 180 ° C. After taking out the required amount and collecting the required amount, it was again returned to a cooling device at 120 ° C. to 180 ° C.
  • the enzyme is inactive for a long period of time during handling, so the activity is deactivated as the use is repeated, and as a result, a certain activity is obtained for a long time This is difficult.
  • Reverse transcriptase is used as a standard for quantifying the virus at this time.However, since the reverse transcriptase is unstable, many samples must be measured with good reproducibility. It is difficult. In the case of long-term research on molecular biology using reverse transcriptase, for example, the remaining enzyme is inactivated as a result of repeated fractionation from one enzyme container. Such residual enzymes had to be discarded and repurchased or re-prepared, consuming a great deal of effort and cost, and putting pressure on research in terms of time, effort and cost.
  • the temperature at which the enzyme can be stably stored can be made relatively high, the viscosity of the enzyme composition solution is reduced, and the amount corresponding to the desired enzyme activity can be accurately dispensed. It is possible to improve the reproducibility of the data.
  • reverse transcriptase in a method of quantifying virus using reverse transcriptase activity as an index, which is currently generally used, reverse transcriptase can be used as a virus amount standard. If reproducible experimental results can be obtained, it will be possible to cope with the recent increase in the number of samples.
  • the reverse transcriptase includes a group consisting of a nucleic acid containing trehalose and a transcription initiation site of the reverse transcriptase.
  • the reverse transcriptase composition obtained by adding at least one organic stabilizer selected from the group consisting of a metal salt capable of generating a divalent cation in an aqueous solution is added.
  • Object is extremely stable at least at 4 ° C This finding has led to the completion of the present invention.
  • one object of the present invention is to maintain the activity for a long time at a relatively high temperature as compared with the conventional method, so that it is possible to obtain an economical, simple and reproducible measurement result.
  • An object of the present invention is to provide a storage-stabilized reverse transcriptase composition.
  • Another object of the present invention is to provide a method for preserving and stabilizing reverse transcriptase to obtain the above-mentioned effects.
  • the stability of a reverse transcriptase and at least one organic stabilizer selected from the group consisting of a nucleic acid containing a transcription initiation site of a trehalose and a reverse transcriptase is provided.
  • the present invention provides a storage-stabilized reverse transcriptase composition comprising a stabilizing effective amount, and an effective stabilizing amount of a metal salt capable of forming a divalent cation in an aqueous solution.
  • the reverse transcriptase has at least one kind of organic stable substance selected from the group consisting of a nucleic acid containing a transcription initiation site of reverse transcriptase.
  • the reverse transcriptase used in the present invention has the ability to synthesize cDNA from RNA obtained from let-mouth viruses and the like. There is no particular limitation as long as it contains an enzyme that performs the reaction.
  • the reverse s transcriptase derived from Immunodefficiency Virus Type 1) is sold and is the most easily available.
  • the reverse transcriptase used in the present invention is human immunodeficiency virus type 1 (Human
  • Immunodefficiency Virus Type 2 Human T Cell Le Leukemia a Virus, Sanore Aids Inores, Cat Aids Inores, Louss-related Tris Sarcoma Winores, etc. It can also be obtained by treating particles of the retronoleth with a surfactant such as Triton X-100.
  • a surfactant such as Triton X-100.
  • the reverse transcriptase obtained by treating with a surfactant can be purified and used as desired.
  • the reverse transcriptase used in the present invention is a commercially available, highly frequent human immunodeficiency virus (Human).
  • oligodeoxythymine nucleotide oligo dT
  • poly A polyadenine ribonucleotide
  • reverse transcriptase together with mononucleotides. It can be defined as the activity of taking up 10 nmol of nucleotides as synthetic DNA when reacted at C, pH 7.4 for 30 minutes.
  • At least one of the above-mentioned organic stabilizers is a nucleic acid containing trehalose and the transcription initiation site of the reverse transcriptase.
  • the number of molecules bets Reharosu used as one of the organic stabilizer is that it is a 3 0 times ⁇ 3. 1 X 1 0 1 1 times to reverse transcriptase molecule rather than the preferred is, 3 1 times ⁇ 3. 0 9 X 1 0 " times in which the child rather than further preferred, 3 0 0 0-fold to 3. and this is the most is 0 9 X 1 0 1 1 times
  • the amount of trehalose may be 0.0 ;! to 50% by weight based on the whole composition containing the enzyme.
  • the nucleic acid containing the transcription initiation site of reverse transcriptase which is used as another organic stabilizer in the present invention, is a hybrid of DNA as a primer and RNA as a type III. It is preferable that the RNA is a body, and there is no particular limitation as long as the type I RNA hybridized with the primer projects to the 3 'side of the primer. Further, the length of protrusion of the RNA strand on the 3 ′ side of the primer is not particularly limited.
  • Primer- ⁇ combination For example, a hybrid form of a type II RNA substantially consisting of adenine ribonucleotide and a primer substantially consisting of oligodeoxythymine nucleotide, a substantially pure resin A hybrid form of a ribonucleotide RNA and a primer substantially consisting of oligodoxyadenine nucleotide, a guanidine ribonucleotide substantially RNA and substantially A primer consisting essentially of oligodoxycitidine nucleotide, and a type II RNA consisting essentially of guanine ribonucleotide and essentially consisting of oligodoxycitidine nucleotide At least one kind selected from the group consisting of a primer and a hybrid form can be given.
  • Oligo d T—poly A, Oligo d A—poly U, Oligo d C-po 1 yG, Oligo d G—po ⁇ yC, etc. can be used.
  • oligo d T—po 1 y A is particularly preferred.
  • the length of each of the above nucleotides is sufficient if the length is such that reverse transcriptase can recognize the transcription initiation site, and the RNA and DNA strands are double-stranded.
  • the brimer region has at least 5 bases.
  • reverse transcriptase separately use single-stranded DNA or single-stranded RNA having a base sequence that allows the RNA and DNA strands to hybridize to each other. You may do it.
  • the number of molecules of the metal salt in the composition is preferably from 1 to 1.2 ⁇ 10 11 times, preferably from 1.17 to 1.17, per molecule of reverse transcriptase. More preferably, it is X 1011 times, and most preferably it is 11 1 ⁇ to 2.3 4 X 10 '° times.
  • the amount of the metal salt in the composition may be from 0.01 to 500 mM, preferably from 0.1 to 100 mM, based on the whole composition containing the enzyme. . These metal salts may be used alone or in combination.
  • an SH protecting agent such as melcaptoethanol, dithiothreitol, dithioerythritol, or reduced daltathione may be added to a solution containing these components as desired.
  • an appropriate buffer such as Tris buffer, phosphate buffer
  • the pH is adjusted to an optimal pH for stabilizing the enzyme, for example, in an acetate buffer or a Goode buffer.
  • the pH range of the enzyme composition solution of the present invention is preferably 5 to 10, more preferably 6 to 9, and if desired, NaCl.
  • a resin such as lysine or poly-L-lysine.
  • polyamino acid and a surfactant can be added as an adsorption inhibitor.
  • the material of the container is made of polystyrene, polypropylene, teflon, polyethylene, methylpentene resin (TPX), fluororesin, acrylic resin, and polystyrene. It is possible to use plastics such as boronate, polyurethane, and chloride resin, metals such as stainless steel, aluminum, and titanium, glass, and rubber.
  • the solution of the enzyme composition of the present invention is composed of a constituent, such as trehalose, a nucleic acid containing a transcription initiation site of reverse transcriptase, and a stabilizing effective amount of a metal capable of generating a divalent cation in an aqueous solution.
  • the salt and, in some cases, the various additives described above may be added separately, or two or more of them may be added in advance.
  • a solution obtained by adding magnesium chloride and trehalose to a buffer solution as described above, or a solution obtained by adding magnesium chloride, trehalose and oligo dT-po1yA, to a reverse transcriptase solution It can be prepared by adding to
  • At least one of the above reverse transcriptases At least one of the above reverse transcriptases
  • Each of the various organic stabilizers and the metal salt is dissolved in an aqueous solution, whereby an aqueous reverse transcriptase composition having improved storage stability can be obtained.
  • the stabilized composition obtained in this way is required to have a longer storage stability than the stability in a solution state, the above-mentioned storage stability is improved.
  • Freeze-drying of the reverse transcriptase composition can further stabilize it.
  • the mother liquor lyophilized 0 after dissolution in a suitable buffer solution. 0 1-5 0 weight 0 /. 2 relative to I the door Reharo over scan in earthenware pots and reverse transcriptase molecule becomes. 6 4 X 1 0- 4 times ⁇ 5.
  • X 1 0 6 times ⁇ molecules prepared in earthenware pots by the presence -A primer and a metal salt containing a divalent cation prepared so as to have a concentration of 0.01 to 500 mM after dissolution as a metal salt are added to reverse transcriptase and mixed.
  • This may be a freeze-dried product.
  • the freeze-dried mother liquor is preferably prepared at a pH that is optimal for stabilizing the enzyme described above, and may optionally contain additives such as the SH protective agent, salt, and adsorption inhibitor described above. It may be added.
  • the storage-stabilized reverse transcriptase composition of the present invention and the storage-stabilization method of the reverse transcriptase thus prepared provide the reverse transcriptase with a long-term stability of at least 4 ° C. Therefore, it is possible to reduce the labor and cost for various techniques using the conventional reverse transcriptase.
  • the temperature at which the reverse transcriptase can be stored stably is relatively high, the enzyme composition The viscosity of the solution decreases. Therefore, the amount corresponding to the desired enzyme activity can be accurately dispensed, and the experiment can be performed with high reproducibility.
  • HEPES manufactured by Doujin Kagaku, Japan
  • Triton X—100 manufactured by Shimadama, USA
  • bovine serum albumin US Sigma
  • ⁇ 1-1 reverse transcriptase (manufactured by Nippon Seikagaku Corporation) l mU / ⁇ (specific activity 100 000 U // mg to 200 000 U / mg, molecular weight 1 17 K d) and oligo d T 12 — 18 -po 1 y A (Pharmacia, Sweden; average molecular weight 8 86 00) (lower case 12-18 is the average base length of oligo d T) 20 g Z / x] was prepared, and magnesium chloride (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Japan) was added to the solution at 0, 0.5.
  • HEPES manufactured by Dojindo Chemical Co., Ltd. in Japan
  • Triton X—100 manufactured by Sigma, USA
  • bovine serum albumin 0.15% HIV-1 reverse transcriptase (manufactured by Nippon Seikagaku Corporation) 1 m UZ1 and magnesium chloride (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Japan) 20 mM
  • Example 3 In a glass vial, HEPES (manufactured by Dojindo Chemical Co., Ltd. in Japan) (pH 7.8) 0.1 M, Triton X—100 (manufactured by Sigma, USA) 0.1%, bovine serum Albumin (Sigma, USA) .
  • HIV- 1 type reverse transcriptase manufactured by Japan Seikagaku Kogyo
  • lm UZ I lm UZ I
  • preparative Reharosu manufactured by Sigma, USA, Inc. 4 0% o Li Gore d T 12 - 18 - p 0 1 y
  • a solution of 20 / g Zm1 (manufactured by Farma, Sweden) and magnesium chloride (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Japan) 2 O mM was prepared.
  • the solution was stored at 4 ° C at 20 ° C and at 37 ° C, respectively.After 7 days, the stock solution was adjusted to a concentration of 0.4 mU / ml with 0.1% Triton X-100. Reverse transcriptase activity was measured using the prepared solution as a test solution. Reverse transcriptase activity was measured in the same manner as in Example 1. As a control group, preparative Reharosu, oligo d T 12 - 18 - poly A , and subjected to the same experiment in preservation solution of magnesium chloride is not added. The results are shown in Table 3.
  • Example 4 In a glass vial, HEPES (manufactured by Dojindo Chemical Co., Ltd. in Japan) (H7.8) 0.1 M, Triton X—100 (manufactured by Shimadama, USA) 0.1%, bovine serum albumin 0.1%, HIV-1 type reverse transcriptase (manufactured by Nippon Seikagaku Corporation) 1 mU / ju1, Trehalose (manufactured by Sigma, USA) 40% Oligo d T,-p 0 1 y A (manufactured by Vanoremasa, Sweden) 20 ⁇ gm 1, magnesium chloride (Wako Pure Chemical Industries, Japan) A 20 mM solution was prepared.
  • HEPES manufactured by Dojindo Chemical Co., Ltd. in Japan
  • Triton X—100 manufactured by Shimadama, USA
  • bovine serum albumin 0.1%
  • HIV-1 type reverse transcriptase manufactured by Nippon Seikagaku Corporation
  • the solution was stored at 4 ° C, and on the day of preparation, 2 months, 4 months, 6 months, 8 months, 10 months, and 12 months of the preservation solution were stored at 0% In 100, the concentration was adjusted to 0. AmUZinl, and the reverse transcriptase activity was measured as a test solution. Reverse transcriptase activity was measured in the same manner as in Example 1. Trehalose and Oligo d T! — The same experiment was performed using a preservation solution to which po1yA and magnesium chloride were not added, and the results are shown in Table 4. Table 4
  • HEPES manufactured by Dojindo Chemical, Japan
  • Triton X—100 manufactured by Shimadama, USA
  • bovine serum albumin 0.1%
  • HIV-1 type reverse transcriptase manufactured by Nippon Seikagaku Corporation
  • Trehalose manufactured by Sigma, USA
  • Oligo d A.-1 a-P o 1 y U 4 1 3 Control group 0.2
  • the power sale by kana bright et These results Oh Li Gore d T, 2 -, 8 - oly A, not only three-party combination bets Reharo scan and magnesium chloride, a nucleic acid containing a transcriptional initiation site of the reverse transcriptase sediment as a Gore-d T l 2 - 18 - po 1 y a instead oligo d a 12 of - 18 - be added po 1 y U, confirmed and this being to stabilize the reverse transcriptase Was.
  • reverse transcriptase was combined with freeze-dried product by the combination of Oligo d T,, s-po1yA, Trehalose and magnesium chloride. It has been confirmed that it can be stored stably for at least one year.
  • Example 8 In a glass vial, HE PES (manufactured by Dojindo Chemical Co., Ltd. in Japan)
  • Trion X-100 US A solution of 0.1% bovine blood albumin (manufactured by Sigma, USA) 0.15% was prepared, and HIV-1 type reverse transcriptase (manufactured by Nippon Seikagaku Corporation) was prepared in the solution. ) Were adjusted to 1, 1 mU / ⁇ l, 0,1 OlmU and ⁇ l, respectively.
  • Transcriptase activity was measured. Reverse transcriptase activity was measured in the same manner as in Example 1. As a control group, preparative Les Nono B over scan, Oh Li Gore d T 1 2 - 1 8 - po 1 y A and subjected to the same experiment in preservation solution magnesium ⁇ beam chloride is not added, Table 8 and the results (When using lOU / ⁇ preservation solution), Table 9 (when using 1 mU / ⁇ 1 preservation solution), Table 10 (when using 0.1 Olm UZ1 preservation solution: 4 ° C conditions only). Table 8 Using lo lo / ⁇ 1 storage solution
  • the reverse transcriptase l O UZ was determined by the combination of oligo d T 2 —, 8- p01 yA, trehalose, and magnesium chloride. It was confirmed that the stability of the preservation solution having an enzyme concentration of / x 1 to 0.01 U lm U ⁇ 1 at least at 4 ° C could be improved.
  • HEPES manufactured by Dojindo Chemical Co., Ltd.
  • reverse transcriptase activity was measured using a solution prepared by adjusting the stock solution to a concentration of 0.4 mUZml with 0.1% Triton X-100, as a test solution. Reverse transcriptase activity was measured in the same manner as in Example 1. As a control group, the same experiment was performed using a preservation solution to which trehalose and oligo dT 12 — 18 — poly A were not added, and the results are shown in Table 11.
  • an enzyme composition comprising a stabilizing effective amount of a metal salt that generates a divalent cation in an aqueous solution. Since the storage-stabilizing enzyme composition of the present invention is stable at least at 4 ° C for a long period of time, it is possible to reduce the labor and cost required for various techniques using conventional reverse transcriptase. And can be. Furthermore, since the composition of the present invention has a low viscosity, a desired amount can be accurately dispensed, and experiments can be performed with good reproducibility. Therefore, the reverse transcriptase activity is used as an index. It is useful as a standard for virus quantification.

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

明細書
保存安定化逆転写酵素組成物
技術分野
本発明は、 新規な保存安定化逆転写酵素組成物に関する。 更に詳細には、 本発明は、 逆転写酵素と 、 ト レハ ロース及び 逆転写酵素の転写開始部位を含む核酸からなる群よ リ選ばれ る少なく と も 1種の有機安定剤の安定化有効量、 並びに水溶 液中で 2価陽イ オンを生じ う る金属塩の安定化有効量を含ん でなる保存安定化逆転写酵素組成物に関する。 本発明はまた 逆転写酵素に、 安定化有効量の、 ト レハ ロ ース及び逆転写酵 素の転写開始部位を含む核酸からなる群よ リ選ばれる少なく と も 1種の有機安定剤の安定化有効量、 並 άに水溶液中で 2 価陽イ オンを生じ う る金属塩の安定化有効量を添加するこ と を特徴とする逆転写酵素の保存安定化方法に関する。
本発明によれば、 従来、 安定性を維持するために— 2 0 〜 — 8 0 °Cの低温で保存しなく てはならなかった逆転写酵素を 少なく と も 4 °Cで長期間保存するこ とができる。 また、 この よ う に逆転写酵素を安定に保存できる温度が比較的高いこ と から、 酵素組成物溶液の粘度が低下する。 従って、 所望の酵 素活性に相当する量を正確に分注するこ とができ、 高い再現 性でもって実験を行う こ とができ る。
本発明の保存安定化逆転写酵素組成物は、 遺伝子工学及び ウィルス学の分野において逆転写酵素を用いる様々な技術に 極めて有用でぁ リ 、 特に、 現在一般に用いられている、 逆転 写酵素活性を指標に して ウィ ルスを定量する方法において、 ウィルス量のスタ ンダ一 ドと して有利に用いる こ とができ る 従来技術
逆転写酵素は、 R N Aを铸型と して、 これと相補的な塩基 配列の D N Aを合成する活性を有する酵素であ り 、 近年の分 子生物学の発展と と もに知 られる よ う になった。 例えば、 ァ ビア ン ミ エ ロ ブラ ス ト ウイ ノレス （Av i an Mye lob l as t Vi rus ： A M V ) 、 ラ スァ ソ シェ一テ ツ ドウイ ノレス 2型 （Ras
Assoc i at ed Vi rus Ty e 2 ： R A V - 2 ) 、 マ ウスモ ロ ニ一 ミ ュ リ ーン リ ューケ ミ アウイノレス （Mouse Mo 1 ony Mur ine Leukemi a Vi rus ： M ~ M u L V ) 、 ヒ ト免疫不全ウイノレ ス 1 型 (Human Immunodef f i c i ency Vi rus Type 1 ： H 1 V— 1 ) 由来の逆転写酵素は、 市販されてお リ 、 容易に入手でき る。
また、 研究分野では、 逆転写酵素は、 直接ウィルスから酵 素を分離する こ とによって容易に入手でき、 例えば、 ヒ ト免 疫不全ウイノレ ス 2型 (Human Immunode f f i c i ency Vi rus Type 2 : H I V— 2 ) 、 ヒ ト Tセル リ ューケ ミ ア ウィルス 1 型 (Human Tce l l Leukemi a Vi rus Type 1 ： H T L V - 1 ) 、 サルエイ ズウイノレ ス （ S I V ) 、 ネコエイ ズウイノレ ス （ F I
V ) 、 ラ ウス ト リ 肉腫ウィルスなどの レ ト ロ ウイノレス粒子を ト リ ト ン X — 1 0 0 ( T r i t o n X - 1 0 0 ) (米国シグ マ社製） 等の界面活性剤で処理する こ と によって簡単に調製 でき る。 これら逆転写酵素は、 メ ッセンジャー R N Aょ リ c D N Aを合成する際の転写用酵素と して多用されている。
また、 逆転写酵素は、 この他にも、 最近最も一般的に用い られる核酸增幅技術である P C R (polymerase chain react ion) 法においても用いられる。 P C R法とは具体的に は、 耐熱性 D N Aポ リ メ ラ一ゼ、 2種類の特異的ブライマー を用い、 温度の上下の繰 リ 返しによって対象と なる 1 種類以 上の核酸を D N Aポ リ メ ラーゼ反応とァニー リ ングを繰リ 返 しなが ら対象を特異的に增幅反応を行わせる手法である。 こ の際、 D N Aポリ メ ラーゼの反応特異性は D N Aに特異的で あるため、 対象検体が R N Aの場合は、 検体の前処理と して 逆転写酵素によって一度 D N Aに変換してから上記增幅反応 を行わせる R T— P C R (reverse transcri t ion- polymerase chain react ion) 法を Ττわなければな らす、 逆 転写酵素は研究対象が R Ν Αの時には必須であ り 、 特に最近 H I V、 H C Vなどのウィルス量を R N A量と して定量する 研究やその定量用キ ッ トが増加 してぉ リ 、 産業上重要な酵素 である。
また、 他の核酸增幅技術と して L C R ( 1 i gas e chain react ion) 法においても逆転写酵素が使用 される。 L C R法 と は具体的には、 上記 P C R法の耐熱性 D N Aポ リ メ ラ一ゼ の代わ り に耐熱性 D N A リ ガーゼを用い、 P C R法と 同様の 温度の上下でァニー リ ングと リ ガーゼ反応を繰 リ 返して核酸 増幅を行わせる手法である。 こ の手法も、 D N A リ ガ一ゼ反 応特異性が D N Aに対して特異的であるため、 研究対象が R N Aの時は、 検体の前処理と して逆転写酵素によって一度 D N Aに変換してから上記增幅反応を行わせる R T— L C R法 を行わなければならず、 上記 P C R法と 同様逆転写酵素は必 須の酵素である。
また、 逆転写酵素は、 N A S B A (nuc leic ac id sequence based ampl i f icat ion) 法などに代表される核酸 i曽 幅技術に必要な試薬と して も用レ、 られている。 N A S B A法 とは具体的には、 逆転写酵素、 D N Aポ リ メ ラーゼ、 R N a s e H と 2種類のプライマ ーを用いて酵素のカスケー ド反応 によって常温で対象の核酸を增幅させる方法である。 この方 法は增幅のために逆転写酵素が必須である。
一方、 ウィルス学の分野では、 逆転写酵素を標準物質と し て、 ウ ィ ルス中に含まれる逆転写酵素活性によ ってウ ィ ルス を定量する こ とが、 一般的に行われている。 測定される逆転 写酵素の由来と しては、 例えば、 ヒ ト免疫不全ウ ィ ルス 1 型
(Human Immunodef f i ciency Vi rus Type 1 ： H I V— 1 ) 及び 2型 (Human Immunodef f iciency Vi rus Type 2 ： H I V— 2 ) 、 ヒ 卜 Tセ ノレ リ ュ―ケ ミ ア ウイノレ ス 1 型 （Human T cel l Leukemia Vi rus Type 1 ： H T L V— 1 ) 、 サルエイ ズウィ ルス （ S I V ) 、 ネ コエイ ズウイ ノレス （ F I V ) 、 ラ ウス 卜 リ 肉腫ウイノレ ス などの レ 卜 ロ ウイ ノレ スを挙げる こ とが でき る。
これら逆転写酵素は、 通常、 例えば N a C l や M g C l 2 のよ う な 1価あるいは 2価の金属塩、 並びに、 例えばメルカ ブ トエタ ノールゃジチオス レィ トールなどの S H保護剤、 そ して、 5 0 v / v %程度の高濃度のグリ セロ ールを加えた緩 衝液中で一 2 0 °Cから一 8 0 °Cの間で保存されている。
この逆転写酵素の反応を通常 3 7 °Cで行う にあたって、 従 来は、 — 2 0〜一 8 0 °Cの冷却装置内から酵素が不安定とな る 4 °C以上の室温に酵素容器を取り 出 し、 必要量を分取した 後にまた、 一 2 0 °Cから一 8 0 °Cの冷却装置内に戻す方法を と っていた。 しかし、 この方法では、 取扱い時において、 酵 素が不安定と なる温度状態におかれる時間が長いため、 使用 を重ねるに従って活性が失活して しまい、 結果と して一定の 活性を長期間得る こ と が困難である。 また、 前記使用方法に よ る酵素の失活を避けるために、 一 2 0 8 0 °Cの冷却装 置内で短時間の う ちに酵素を分取し、 直ちに反応させる方法 を行われてきた。 しかしこの方法では、 酵素溶液が極度に冷 却されているために粘度が高く 、 所望の酵素活性に相当する 量を正確に分注する こ とができなかった。 また、 安定剤と し てのメ ルカブ トエタ ノ ールなどの S H保護剤の放つ悪臭によ り 、 使用者への悪影響が少なからず存在 した。
また、 （ r A) n ( d T ) , 2-, 8 のテ ンプ レー ト 'プライマ —のハイ ブ リ ッ ド体を用いる逆転写酵素の安定化方法 [Bioc h em i c a 1 and Bio - phys ica l Research Communicat ions V o 1 1 6 7 , ( 2 ) ， p p 6 7 3 ( 1 9 9 0 ) ] が知られて いるが、 4 °C、 3 0 0時間での残存活性が 7 0 %と低く 、 十 分な安定化効果を示したものではなかった。
以上のよ う に、 これまで、 逆転写酵素を用いて実験を行う 場合、 酵素が不安定なため再現性のよい実験研究を行う こ と が困難であった。
近年 H I V感染症の急増によ リ 、 ウィ ルス定量のために逆 転写酵素活性を測定する機会が急増 している。 逆転写酵素は このと きのウィルスを定量するためのス タ ンダ一 ドと して用 いられているが、 逆転写酵素が不安定なために多く の検体を 再現性よ く 測定する こ と は困難である。 そ して、 逆転写酵素 を用いた分子生物学の研究が長期にわたる場合など、 1 つの 酵素容器から何度か分取を繰り 返すに従い残 リ の酵素が失活 して しま う ため、 そのよ う な残余の酵素を捨て、 再度購入も しく は再調製を行わなければならず、 多大なる労力及びコ ス 卜がかかリ 、 研究を時間、 労力、 及び費用の面で圧迫 してき た。
一方、 安定性を改善するために液状よ り も さ らに安定な凍 結乾燥品とする こ とが考えられるが、 従来の保存方法では、 逆転写酵素の保存溶液がグ リ セロールを高濃度で含んでいる ため凍結乾燥品 とする こ と が困難でぁ リ 、 結局、 長期間の安 定性を得る こ と はできなかった。 逆転写酵素の安定性を向上させ、 少なく と も 4 °Cにおける 長期安定性が得られるならば、 一 2 0 〜一 8 0 °Cの保存を行 う ための特別な冷却装置が不要となリ 、 また前述の研究コス トの低減化をはかるこ とができる。
また、 安定に保存できる温度を比較的高く できれば、 酵素 組成物溶液の粘度を低下させ、 所望の酵素活性に相当する量 を正確に分注できるよ う にな リ 、 逆転写酵素を用いた実験の 再現性を高めるこ とが可能となる。 特に、 現在一般に用いら れている、 逆転写酵素活性を指標に してウィルスを定量する 方法において、 逆転写酵素をウィ ルス量のス タ ンダー ドと し て用いるこ とが可能になる。 そして、 再現性の良い実験結果 が得られれば、 近年の検体数の増加に対応でき るよ う にもな る。
従って、 逆転写酵素を用いる様々な技術において、 低コス トで再現性のよい結果を得るために、 逆転写酵素の保存安定 性を向上させるこ とが強く 望まれている。
発明の概要
本発明者らは上記問題を解決すべく 、 更に鋭意研究を行つ た結果、 意外にも、 逆転写酵素に、 ト レハ ロ ー ス及び該逆転 写酵素の転写開始部位を含む核酸からなる群よ リ選ばれる少 なく と も 1 種の有機安定剤と、 水溶液中で 2価陽イ オンを生 じ う る金属塩と を組み合わせて添加する こ とによ り 、 得られ る逆転写酵素組成物が、 少なく と も 4 °Cで極めて安定である こ と を見出 し、 本発明を完成した。
従って、 本発明の 1 つの 目的は、 従来に較べ比較的高い温 度で、 長期にわたって活性が維持される こ とから、 経済的で ぁ リ 且つ再現性のよい測定結果を得る こ とが可能な保存安定 化逆転写酵素組成物を提供する こ と にある。
本発明の他の 1 つの 目的は、 上記した効果を得るための、 逆転写酵素の保存安定化方法を提供する こ と にある。
本発明の上記及びその他の諸目的、 諸特徴ならびに諸利益 は、 次の詳細な説明及び請求の範囲の記載から明 らかになる 発明の詳細な説明
本発明の 1 つの態様によれば、 逆転写酵素と 、 ト レハ ロ ー ス及び逆転写酵素の転写開始部位を含む核酸からなる群よ リ 選ばれる少な く と も 1 種の有機安定剤の安定化有効量、 並び に水溶液中で 2価陽イ オンを生じ う る金属塩の安定化有効量 を含んでなる保存安定化逆転写酵素組成物が提供される。 更に、 本発明の他の 1 つの態様によれば、 逆転写酵素に、 ト レハ ロ ース及び逆転写酵素の転写開始部位を含む核酸から なる群よ リ選ばれる少なく と も 1 種の有機安定剤の安定化有 効量、 並びに水溶液中で 2価陽イ オンを生じ う るの金属塩の 安定化有効量を添加する こ と を特徴とする逆転写酵素の保存 安定化方法が提供される。
本発明において用いられる逆転写酵素は、 レ ト 口 ウ ィ ルス などから得られる R N Aから c D N Aを合成 し う る能力を有 する酵素を含むものであれば何ら限定される ものではなく 、 例えば、 ア ビア ン ミ エ ロ ブラ ス ト ウイ ノレス （Av i an
Mye lob l ast Vi rus) 、 ラ ス ァ ソ シェ一テ ッ ド ウ ィ ルス 2 型
(Ra s Assoc ia t ed Vi rus Type 2) 、 マ ウ スモ ロ ニー ミ ユ リ 一ン リ ュ一ケ ミ ア ウイノレ ス (Mouse Mo 1 o n y Mur ine Leukemi a
Vi rus) 、 ヒ ト免疫不全ウイノレ ス 1 型 （Human
Immunode f f i c i ency Vi rus Type 1) 由来の逆 ¾s写酵素力 s巿販 されてお り 最も入手しやすい。 又、 本発明において用いられ る逆転写酵素は、 ヒ ト免疫不全ウ ィルス 1 型 （Human
Immunodef f i c i ency Vi rus Type 1) 及ひ 2型 (Human
Immunode f f i c i ency Vi rus Type 2) 、 ヒ ト Tセノレ リ ューケミ ァ ゥイ ノレ ス （Human Tcel l Leukemi a Vi rus) 、 サノレエイ ズゥ イ ノレ ス 、 ネ コエイ ズゥイ ノレ ス 、 ラ ウス関連 ト リ 肉腫ウイノレス などの レ ト ロ ゥイ ノレ ス の粒子を ト リ ト ン X — 1 0 0等の界面 活性剤で処理する こ と で得る こ と もでき る。 界面活性剤で処 理して得られる逆転写酵素は所望によ リ精製して用いる こ と ができ る。
本発明において用いられる逆転写酵素は、 市販品でぁ リ 、 使用頻度が高いヒ ト免疫不全ウィ ルス （Human
Immunode f f i c i ency Vi rus) (こ由来する もの力 s好ま しレヽ。 ま た、 安定化する酵素組成物中の逆転写酵素の濃度と しては特 に限定される ものではないが、 例えば、 0 . 0 1 m U / μ 1 〜 1 0 U / 1 の範囲で用いる こ とができ る。 こ こ で、 1 U の酵素活性と は、 ブライマ一と铸型 R N Aのハイ ブ リ ッ ド体 と して、 オリ ゴデォキシチミ ンヌ ク レオチ ド （オリ ゴ d T ) 一ポリ アデニン リ ボヌ ク レオチ ド （ポ リ A ) を用い、 逆転写 酵素をモ ノ ヌ ク レオチ ドと共に 3 7。C、 p H 7 . 4 にて 3 0 分間反応させた時の、 1 0 n m o 1 のヌ ク レオチ ドを合成 D N A と して取 リ 込む活性と して定義する こ とができ る。
本発明においては、 上記の少なく と も 1 種の有機安定剤が ト レハ ロ ース及び該逆転写酵素の転写開始部位を含む核酸で ある こ と が好ま しい。
本発明の酵素組成物溶液において、 有機安定剤の 1 つと し て用いる ト レハロースの分子数は、 逆転写酵素 1 分子に対し て 3 0倍〜 3 . 1 X 1 0 1 1 倍である こ とが好ま し く 、 3 1 倍〜 3 . 0 9 X 1 0 " 倍である こ と が更に好ま し く 、 3 0 0 0倍〜 3 . 0 9 X 1 0 1 1 倍である こ と が最も好ま しい。 また、 ト レハロ ース の量は、 酵素を含む組成物全体に対して 0 . 0 ；! 〜 5 0重量％であってもよい。
本発明においても う 1 つの有機安定剤と して用いる、 逆転 写酵素の転写開始部位を含む核酸と しては、 プライマ一と し ての D N Aと铸型と しての R N Aのハイ ブリ ッ ド体である こ とが好ま し く 、 プライマ一とハイ ブ リ ダイ ズした铸型 R N A が、 プライマ一の 3 ' 側に突出 している ものであれば特に限 定はない。 また、 プライマーの 3 ' 側における R N A鎖の突 出の長さは特に限定されない。 プライマ——铸型の組み合わ せと しては、 実質的にアデニン リ ボヌ ク レオチ ドょ リ なる铸 型 R N Aと実質的にオリ ゴデォキシチミ ンヌ ク レオチ ドょ リ なるプライマーとのハイブ リ ッ ド体、 実質的にゥ リ ジン リ ボ ヌ ク レオチ ドょ リ なる铸型 R N Aと実質的にオリ ゴデォキシ アデニンヌ ク レオチ ドょ り なるプライマーとのハイプリ ッ ド 体、 実質的にグァニ ン リ ボヌ ク レオチ ドょ リ なる铸型 R N A と実質的にオ リ ゴデォキシシチジンヌ ク レオチ ドょ リ なるプ ライマー、 及び実質的にグァニン リ ボヌ ク レオチ ドよ り なる 铸型 R N Aと実質的にオリ ゴデォキシシチジンヌ ク レオチ ド よ リ なるプライマーとのハイプ リ ッ ド体からなる群よ リ選ば れる少なく と も 1種を挙げる こ とができ る。 具体的には、 ォ リ ゴ d T— p o l y A、 オ リ ゴ d A— p o l y U、 オリ ゴ d C - p o 1 y G、 オリ ゴ d G— p o 】 y C等を用いる こ とが でき 、 その中ではオ リ ゴ d T— p o 1 y Aが特に好ま しい。 上記の各ヌ ク レオチ ドの長さは、 逆転写酵素が転写開始部位 を認識でき る よ う な長さが有ればそれでよ く 、 R N A鎖と D N A鎖とが 2重鎖と なっているブライマ一領域が 5塩基以上 ある こ とが好ま しい。 また、 逆転写酵素使用前に、 R N A鎖 と D N A鎖と が互いにハイ プリ ダイ ズでき る よ う な塩基配列 を持った 1 本鎖の D N Aも し く は 1 本鎖の R N Aを別々 に使 用 して も よい。
本発明において用いる逆転写酵素の転写開始部位を含む核 酸の分子数は、 逆転写酵素 1 分子に対して 2 . 5 X 1 0一4 倍〜 6 X 1 0 6 倍である こ とが好ま しく 、 2 . 6 4 X 1 0— 4 倍〜 5 . 2 8 X 1 06 倍である こ とが更に好ま しく 、 2 . 6 4 X 1 0―1〜 2 . 6 4 X 1 06 倍である こ とが最も好ま しい 本発明において用いられる水溶液中で 2価の陽イ オンを生 じ う る金属塩の例と しては、 マグネシウム （ M g ) 、 マンガ ン （ M n ) 、 カルシウ ム （ C a ) 、 亜鉛 （ Z n ) 、 力 ド ミ ゥ ム （ C d ) 、 銅 （ C u ) 等の 2価の金属の塩を挙げる こ と が でき、 具体的には、 M g C l 2 、 M n C 1 2 、 C a C 1 2 、 Z n C 1 2 、 C d C 1 2 、 C u C 1 2 、 M g S O 4 、 M n S O 4 、 C d S O 4 、 C u S O 4 等を挙げる こ と ができ る。 こ れらの中では、 M g C I 2 、 M n C 1 2 、 C a C l 2 及び M g S〇 4が好ま しい。 組成物中の金属塩の分子数は、 逆転写 酵素 1分子に対して、 1倍〜 1 . 2 X 1 0 1 1 倍である こ と が好ま しく 、 1 . 1 7倍〜 1 . 1 7 X 1 0 11 倍である こ と が更に好ま しく 、 1 1 . Ί〜 2 . 3 4 X 1 0 '° 倍である こ と が最も好ま しい。 また、 組成物中の金属塩の量は、 酵素を 含む組成物全体に対 して 0 . 0 1 〜 5 0 0 mM、 好ま しく は 0. l 〜 l 0 0 mMであってもよレ、。 これら金属塩は単独又 は組み合わせて用いても よい。
また、 これら成分を含む溶液中に、 所望にょ リ メ ルカプ ト エ タ ノ ール、 ジチオス レィ ト ール、 ジチォエ リ ト リ ト ール、 還元型ダルタチオンなどの S H保護剤を添加 しても良い。 そ して、 適当な緩衝液、 例えば、 ト リ ス緩衝液、 リ ン酸緩衝液 酢酸緩衝液、 G o o d緩衝液などにょ リ 、 酵素の安定化に至 適な P Hに調整されている こ とが好ま しい。 本発明の酵素組 成物溶液の P H範囲 と しては， 好ま し く は 5〜 1 0 、 更に好 ま し く は 6〜 9であ り 、 所望であれば、 N a C l も し く は K C 1 等の塩を添加した リ 、 また、 保存容器の種類に応 じて、 アルブ ミ ン、 I g G等のタ ンパク 質、 リ ジンやポ リ 一 Lー リ ジンなどのモ ノ 、 も し く はポリ ア ミ ノ酸、 及び界面活性剤を 吸着防止剤と して添加する こ とができ る。 容器の材質はポリ スチ レ ン、 ポ リ プロ ピ レン、 テ フ ロ ン、 ポ リ エチ レン、 メ チ ルベンテ ン榭脂 （ T P X ) 、 フ ッ素樹脂、 ア ク リ ル樹脂、 ポ リ カ一ボネー ト 、 ポ リ ウ レタ ン、 塩化ビュル榭脂等のブラ ス チ ッ ク 、 ステ ン レス 、 アル ミ 、 チタ ン等の金属、 ガラ ス及び ゴム等を用いる こ とができ る。
本発明の酵素組成物の溶液は、 その構成成分である ト レハ ロ ース 、 逆転写酵素の転写開始部位を含む核酸、 水溶液中で 2価陽イ オンを生じ う る安定化有効量の金属塩、 及び場合に よっては上記の様々 な添加剤を、 別々 に添加 して もよ い し、 2種以上をあ らかじめ混合して添加 して もよい。 例えば、 上 記のよ う な緩衝液中に塩化マグネシウム及び ト レハロースを 添加 した溶液、 又は塩化マグネシウム、 ト レハロー ス及びォ リ ゴ d T— p o 1 y Aを添加 した溶液を、 逆転写酵素溶液に 添加 して調製する こ とができ る。
即ち、 本発明によれば、 上記の逆転写酵素、 少な く と も 1 種の有機安定剤及び金属塩のそれぞれが水溶液の状態でぁ リ それによつて、 保存安定性が改善された、 水性逆転写酵素組 成物を得る こ とができ る。
このよ う に して得られる安定化組成物に、 溶液状態での安 定性よ り も さ らに長期の保存安定性が要求される場合は、 上 記の保存安定性が改善された、 水性逆転写酵素組成物を凍結 乾燥する こ と によ り 、 さ らに安定化させる こ と ができ る。 例 えば、 凍結乾燥品の母液と して、 適当な緩衝溶液中に溶解後 に 0 . 0 1 〜 5 0重量0 /。と なる よ う に ト レハロ ー スを、 また 逆転写酵素 1 分子に対して 2 . 6 4 X 1 0— 4 倍〜 5 . 2 8 X 1 06 倍分子存在するよ う に調製した铸型ープライマ ー 、 また、 金属塩と して溶解後に 0 . 0 1 〜 5 0 0 mMの濃度と なる よ う に調製した 2価の陽イオンを含むよ う な金属塩を逆 転写酵素に添加混合 し、 これを凍結乾燥品とすればよい。 凍 結乾燥品母液は、 上記した酵素の安定化に至適な P Hに調製 されている こ とが好ま し く 、 所望にょ リ 、 上記した S H保護 剤、 塩、 吸着防止剤等の添加剤を添加 して もよい。
このよ う に して調製される本発明の保存安定化逆転写酵素 組成物、 及び逆転写酵素の保存安定化方法は、 逆転写酵素に 少な く と も 4 °Cにおける長期安定性を賦与する こ とから、 従 来の逆転写酵素を用いる様々 な技術にかかる労力及びコ ス ト の低減化をはかる こ と ができ る。 また、 このよ う に逆転写酵 素を安定に保存でき る温度が比較的高いこ とから、 酵素組成 物溶液の粘度が低下する。 従って、 所望の酵素活性に相当す る量を正確に分注する こ とができ、 高い再現性でもって実験 を行う こ とができ る。
発明を実施するための最良の形態
以下、 実施例及び参考例を挙げて本発明を さ らに詳細に説 明するが、 本発明は何ら これに限定される ものではない。
以下の実施例及び参考例において、 逆転写酵素活性の測定 方法と して、 中野らの手法 （ 日本国感染症学雑誌， 第 6 8卷 第 7号， 9 2 3— 9 3 1 ， 1 9 9 4年） に従って酵素活性を 測定した。
実施例 1
ガラ スバイ アル中に、 H E P E S (日本国同人化学社製） ( H 7 . 8 ) 0 . 1 M, T r i t o n X— 1 0 0 (米国シ ダマ社製） 0 . 1 %、 牛血清アルブミ ン （米国シグマ社製）
0 . 1 5。/。、 ：《 1 ー 1型逆転写酵素 （ 日本国生化学ェ業社 製） l mU/ μ Ι (比活性 1 0 0 0 0 U//m g〜 2 0 0 0 0 U / m g , 分子量 1 1 7 K d ) 及びオリ ゴ d T 12— 18 - p o 1 y A (ス ウェーデン国フアルマ シア社製 ； 平均分子量 8 8 6 0 0 ) (小文字の 1 2 — 1 8はオリ ゴ d Tの平均塩基長を 意味する） 2 0 g Z /x 】 の溶液を調製 し、 その溶液中に塩 化マグネシウム （日本国和光純薬工業社製） を、 0 、 0 . 5
1 、 2 、 5、 1 0 、 2 0 、 5 0、 1 0 0 、 2 0 0 mMの濃度 になる よ う に調製した溶液を 4 °C、 3 7 °Cにそれぞれ保存し 7 日 後、 保存液を 0 . l % T r i t o n X _ 1 0 0 にて 0 ' 4 m U/m 1 の濃度に調製 した溶液を被検液と して逆転写酵 素活性を測定した。 対照群と してオ リ ゴ d T , 2 _ , 8 — p 0 】 7
y A及び塩化マグネシウムが添加されない溶液で同様の実験 を行い、 その結果を表 1 に示 した。
塩化マグネシウム濃度 逆転写酵素活性
( m M) ( 4 0 5 n m における吸光度）
4 °C 3 7。C
0 (比較例） 2 8 0 4 5 2 0 . 5 3 2 0 0 8
3 4 6 0 8 0 6
2 2 2 2 0 7 4 5 5 2 0 2 0 8 7 1
1 0 4 4 2 0 9 7
2 0 3 3 2 2 3 5 5 0 1 5 2 0 6 0 7 1 0 0 0 6 2 0 0 2
2 0 0 2 7 3 0 0 0 8 対照群 0 . 1 0 2 0 . 0 2 0
この結果から明 らかなよ う に、 オリ ゴ d T — p 0 1 y A及び塩化マグネシウムが添加されていない保存液では得 られなかった安定性が、 オ リ ゴ d T , 2 - , 8— p o 1 y A及び 塩化マグネシウムを添加する こ と によって高め られる こ とが 確認された。
実施例 2
ガラスバイ アル中に、 H E P E S ( 日本国同人化学社製） ( p H 7 . 8 ) 0 . 1 M, T r i t o n X— 1 0 0 (米国シ グマ社製） 0 . 1 %、 牛血清アルブ ミ ン （米国シグマ社製） 0 . 1 5 %、 H I V— 1型逆転写酵素 （ 日本国生化学工業社 製） 1 m U Z 1 及び塩化マ グネ シウム （ 日本国和光純薬ェ 業社製） 2 0 mMの溶液を調製し、 その溶液中に ト レハ ロー ス （分子式 ； C H O ' 2 H 20、 分子量 3 7 8 . 3 ： 米国シグマ社製） を、 0、 1 、 5 、 1 0 、 2 0 、 4 0 %の濃 度になる よ う に調製 した溶液を 4 °Cでそれぞれ保存し、 7 日 後、 保存液を 0 . l % T r i 1 0 1 ー 1 0 0 にて 0 . 4 m U/m 1 の濃度に調製した溶液を被検液と して逆転写酵素活 性を測定した。 逆転写酵素活性測定法は実施例 1 の測定法と 同様に行った。 対照群と して、 塩化マグネシウム及び ト レハ ロースが添加されない保存液で同様の実験を行い、 その結果 を表 2 に示 した。
9
表 2
トレハロース濃度 逆転写酵素活性
(%) (40 5 nm における吸光度）
4°C
0 (比較例） 1 0
3 5 9
5 442
1 0 4 92
20 538
40 24 1 対照群 0 02
この結果から明 らかなよ う に、 ト レハ ロ ース及び塩化マグ ネ シゥムが添加されていない保存液だけでは得られなかつた 安定性が、 ト レハロ ース及び塩化マ グネ シ ウムを添加する こ と によ って高められる こ と が確認された。 実施例 3 ガラ スバイ アル中に、 H E P E S (日本国同人化学社製） ( p H 7 . 8 ) 0 . 1 M、 T r i t o n X— 1 0 0 (米国シ グマ社製） 0 . 1 %、 牛血清アルブ ミ ン （米国シグマ社製） 0 . 1 5 %、 H I V— 1型逆転写酵素 （ 日本国生化学工業社 製） l m UZ I 、 ト レハロース （米国シグマ社製） 4 0 % オ リ ゴ d T 12— 18 - p 0 1 y A (ス ウ ェーデン国フ ァ ルマ ン ァ社製） 2 0 / g Zm l 及び塩化マ グネ シウ ム （日本国和光 純薬工業社製） 2 O mMの溶液を調製した。 その溶液を 4 °C 2 0 °C、 3 7 °Cでそれぞれ保存し、 7 日 後、 保存液を 0 . 1 % T r i t o n X— 1 0 0 にて 0 . 4 m U/m l の濃度に調 製した溶液を被検液と して逆転写酵素活性を測定した。 逆転 写酵素活性測定法は実施例 1 の測定法と 同様に行った。 対照 群と して、 ト レハロース 、 オリ ゴ d T 12— 18 — p o l y A、 及び塩化マグネシウムが添加されない保存液で同様の実験を 行い、 その結果を表 3 に示した。
2
表 3
逆転写酵素活性
(405 nm における吸光度）
4。C 20。C 3 7 °C 実験群 . 4 7 2 . 36 2 342 対照群 0. 1 0 2 0. 054 0. 0 20
この結果力 >ら明 らかなよ う に、 オリ ゴ d T 12-18 - p 0 1 y A、 ト レハロース、 塩化マグネシウムの 3者の組合わせに ょ リ 、 逆転写酵素の、 少なく と も 4 °Cでの安定性を高められ る こ と が確認できた。
実施例 4 ガラスバイ アル中に、 H E P E S ( 日本国同人化学社製） ( H 7 . 8 ) 0 . 1 M , T r i t o n X— 1 0 0 (米国シ ダマ社製） 0 . 1 %、 牛血清アルブ ミ ン （米国シグマ社製） 0 . 1 5 %、 H I V— 1 型逆転写酵素 （ 日本国生化学工業社 製） 1 m U / ju 1 、 ト レハロース （米国シグマ社製） 4 0 % オ リ ゴ d T , - p 0 1 y A (ス ウ ェーデン国フ ァ ノレマ シ ァ社製） 2 0 μ g m 1 、 塩化マグネシウム （ 日 本国和光純 薬工業社製） 2 0 mMの溶液を調製した。 その溶液を 4 °Cで 保存し、 調製当 日 、 2 ヶ月 後、 4 ヶ月 後、 6 ヶ月後、 8 ヶ月 後、 1 0 ヶ月 後、 1 2 ヶ月後の保存液を、 0 %丁 o n X— 1 0 0にて 0 . A mUZin l の濃度に調製し、 被検 液と して逆転写酵素活性を測定した。 逆転写酵素活性測定法 は実施例 1 の測定法と 同様に行った。 対照群と して、 ト レハ ロー ス 、 オ リ ゴ d T！ — p o 1 y A、 及び塩化マグネシ ゥムが添加されない保存液で同様の実験を行い、 その結果を 表 4 に示 した。 表 4
保存期間 逆転写酵素活性
(40 5 nm における吸光度） 実験群 対照群 調製当日 5 2 8 6 05
2ヶ月後 1. 70 7 0. 0 3 1
4ヶ月後 1. 6 54 0. 0 1 8
6ヶ月後 1. 55 8 0. 0 1 1
8ヶ月後 1. 6 5 9 0. 0 1 1
0ヶ月後 1. 5 1 4 0. 0 3 2
2ヶ月後 1. 5 5 6 0. 00 3 この結果から明 らかなよ う に、 オリ ゴ d T , 2— , 8 — p o l y A、 ト レハ ロ ース 、 塩化マグネシウムの 3者の組合わせに ょ リ 、 逆転写酵素を 4 °Cの条件下で少な く と も 1 年間は安定 に保存でき る こ とが確認できた。
実施例 5
ガラスバイ アル中に、 H E P E S (日本国同人化学社製） ( p H 7 . 8 ) 0 . 1 M, T r i t o n X— 1 0 0 (米国シ ダマ社製） 0 . 1 %、 牛血清アルブ ミ ン （米国シグマ社製） 0 . 1 5 %、 H I V— 1 型逆転写酵素 （ 日本国生化学工業社 製） 1 m U / μ 1 、 ト レハ ロ ース （米国シグマ社製） 4 0 % オ リ ゴ d T 12_18 - p 0 1 y A (ス ウ ェーデン国フ ア ルマ シ ァ社製） 2 0 /x g Z m l の溶液を調製した。 その溶液に、 塩 化マ グネシウ ム、 塩化カノレシゥ ム、 塩化マ ンガン （ Π ) 、 硫 酸マ グネ シウ ム （以上、 日本国和光純薬工業社製） を 2価金 属と してそれぞれ 2 O mMの濃度になる よ う に添力 [Iして、 4 。じ、 2 0 °Cでそれぞれ保存し、 7 日後、 保存液を 0 . 1 % T r i t o n X— 1 0 0 にて 0 . m U Z m l の濃度に調製 し た溶液を被検液と して逆転写酵素活性を測定した。 逆転写酵 素活性測定法は実施例 1 の測定法と 同様に行った。 対照群と して、 ト レハロ ース， オリ ゴ d T 1 2— l 8 — p o l y A及び 2 価金属が添加されない保存液で同様の実験を行い、 その結果 を表 5 に示した。 表 5
逆転写酵素活性
(40 5 nm における吸光度）
4°C 20°C 塩化マグネシウム 1. 4 3 3 3 26
塩化カルシゥム 6 1 2 5 5 2
塩化マンガン 1. 54 2 5 26
硫酸マグネシウム 1. 5 24 2 6 3 対照群 0. 080 0. 0 3 9
この結果から明 らかなよ う に、 オリ ゴ d T！ 2一， p 0 1 y A、 ト レハ ロ ース及び塩化マグネシウムの 3者の組合わせ だけではなく 、 塩化マグネシウムの代わ リ に塩化カルシウム 塩化マンガン （ Π ) 、 硫酸マグネシウムのよ う な他の種の 2 価金属塩を添加 しても、 逆転写酵素を少な く と も 4 °Cにおい て安定化させられる こ とが確認で.きた。 実施例 6
ガラ スバイ ァノレ中 H E P E S ( 日 本国同人化学社製）
( p H 7 . 8 ) 0 . 1 M、 T r i t o n X— 1 0 0 (米国シ グマ社製） 0 . 1 %、 牛血清アルブ ミ ン （米国シグマ社製） /15
25
0. 1 5 %、 H I V— 1型逆転写酵素 （ 日本国生化学工業社 製） 1 m U / μ 1 、 ト レハ ロ ース （米国シグマ社製） 4 0 % 及び塩化マグネシウム （日本国和光純薬工業社製） 2 0 mM の溶液を調製した。 その溶液に、 オリ ゴ d T 12— 18 - p o l y A、 オリ ゴ d A , - Ρ ο 1 y U (以上、 ス ウェーデン 国フアルマシア社製） を 2 0 g /m l の濃度になる よ う に それぞれ添加 し、 4 °C、 2 0 °C、 3 7 °Cにおいて保存 し、 7 日後、 保存液を 0 % T 0 11 ー 1 0 0にて 0 4 mU/m 1 の濃度に調製した溶液を被検液と して逆転写酵素 活性を測定した。 逆転写酵素活性測定法は実施例 1 の測定法 と 同様に行った。 対照群と して、 ト レハ ロ ース 、 オリ ゴ d T
- 1 8 一 P o 1 y A及び、 2価金属が添加されない保存液で 同様の実験を行い、 その結果を表 6 に示 した。 表 6
铸型とプライマ一 逆転写酵素活性
の組み合わせ ( 40 5 n m における吸光度）
4 °C オリ ゴ d T ■ - i s - P o 1 y A 1. 5 5 5
オリ ゴ d A . - 1 a - P o 1 y U 4 1 3 対照群 0. 2 この結果から明 らかなよ う に、 オ リ ゴ d T , 2— , 8 - o l y A、 ト レハロー ス及び塩化マグネシウムの 3者の組合わせ だけではなく 、 逆転写酵素の転写開始部位を含む核酸と して オリ ゴ d T l 2— 18 - p o 1 y Aの代わり にオリ ゴ d A 12-18 - p o 1 y Uを添加 しても、 逆転写酵素を安定化させられる こ とが確認できた。
実施例 7
ガラ スバイ アル中に、 H E P E S ( 日本国同人化学社製） ( p H 7 . 8 ) 0 . 1 M、 T r i t o n X— 1 0 0 (米国シ ダマ社製） 0 . 1 %、 牛血清アルブミ ン （米国シグマ社製） 0 . 1 5 %、 H I V— 1型逆転写酵素 （ 日本国生化学工業社 製） 1 m U ju 1 、 ト レハ ロ ース （米国シグマ社製） 4 0 % オリ ゴ d T 12- 18 — p o l y A (ス ウェーデン国フアルマシ ァ社製） Z O g Zm l 及び塩化マグネシウム （ 日本国和光 純薬工業社製） 2 0 mMの凍結乾燥品母液を調製し、 その母 液を 0 . 5 m l ずつ分注し、 凍結乾燥機にて凍結乾燥品を調 製した。 こ の凍結乾燥品の調製当 日 、 2 ヶ月 後、 4 ヶ月 後、 6 ヶ月 後、 8 ヶ月後、 1 0 ヶ月後、 1 2 ヶ月後に 0 . 5 m l の蒸留水に溶解し、 溶解 した液を 0 . l % T r i t o n X - 1 0 0 にて 0 . m U Zm 1 の濃度に調製した溶液を被検液 と して逆転写酵素活性を測定した。 逆転写酵素活性測定法は 実施例 1 の測定法と 同様に行った。 対照群と して、 ト レハ ロ — ス 、 オ リ ゴ d T 12— 18 — p o l y A及び塩化マグネシウム が添加されない保存液で同様の実験を行い、 その結果を表 7 に示した。 表 7
保存期間 逆転写酵素活性
(40 5 nm における吸光度） 実験群 対照群 調製当日 4 2 9 5 5 5
2ヶ月後 1. 70 7 4 3 1
4ヶ月後 1. 6 3 3 2 1 8
6ヶ月後 1. 6 5 8 1 1 1
8ヶ月後 1. 4 9 9 0. 6 2 1
1 0ヶ月後 58 6 0. 4 1 9
1 2ヶ月後 6 34 0. 200
この結果力 ら明 らかなよ う に、 オリ ゴ d T , , s - p o 1 y A、 ト レハ ロ ー ス及び塩化マグネシウムの 3者の組合わせ によ り 、 逆転写酵素を凍結乾燥品 と して少な く と も 1 年間は 安定に保存でき る こ と が確認できた。
実施例 8 ガラスバイ アル中に、 H E P E S ( 日本国同人化学社製）
( p H 7 . 8 ) 0 . 1 M、 T r i o n X - 1 0 0 (米国シ ダマ社製） 0 . 1 %、 牛血淸アルブ ミ ン （米国シグマ社製） 0 . 1 5 %の溶液を調製し、 その溶液中に H I V — 1 型逆転 写酵素 （日本国生化学工業社製） がそれぞれ 1 、 1 m U / μ 1 , 0 . O l m Uノ μ ΐ になる よ う に溶液を調製 した。 それぞれの溶液について ト レハ ロ ース （米国シグマ社 製） 4 0 %、 オ リ ゴ d T 1 2— 1 8 - p 0 1 y A (ス ウ ェーデン 国フ ア ルマ シア社製） 2 0 μ g / 1 及び塩化マ グネ シ ウム (日本国和光純薬工業社製） 2 0 m Mの溶液を調製し、 4 °C 2 0 °C 、 3 7 °C ( 0 . 0 1 m U Z 1 においては 4 °Cのみ） にそれぞれ保存し、 7 日後、 保存液を 0 . l % T r i t o n X — 1 0 0 にて 0 . m U Z rri 1 の濃度に調製 した溶液を被 検液と して逆転写酵素活性を測定した。 逆転写酵素活性測定 法は実施例 1 の測定法と 同様に行った。 対照群と して、 ト レ ノヽ ロ ース 、 オ リ ゴ d T 1 2— 1 8 - p o 1 y A及び塩化マグネシ ゥムが添加されない保存液で同様の実験を行い、 その結果を 表 8 ( l O U / μ Ι 保存液を用いた場合） 、 表 9 ( 1 m U / μ 1 保存液を用いた場合） 、 表 1 0 ( 0 . O l m U Z 1 保 存液を用いた場合 ： 4 °C条件のみ） に示 した。 表 8 l o υ / μ 1 保存液を用いた場合
逆転写酵素活性
( 405 n m における吸光度）
4 °C 20。C 3 7°C 実験群 1. 3 3 9 1. 4 2 2 1. 2 9 9 対照群 0. 00 2 0. 0 5 9 0. 0 3 9
表 9
1 m / μ 1 保存液を用いた場合
逆転写酵素活性
( 405 n m における吸光度）
4 °C 20°C 3 7°C 実験群 1. 4 7 2 1. 3 6 2 1. 34 2 対照群 0. 1 0 2 0 - 054 0. 0 20 表 1 0
0 . O l m UZ /u l 保存液を用いた場合
逆転写酵素活性
(40 5 nm における吸光度）
4 °C 実験群 1. 2 92
対照群 0. 1 5 3
この結果から明らかなよ う に、 オリ ゴ d T 2— , 8 - p 0 1 y A、 ト レ ハロー ス及び塩化マ グネシ ウ ムの 3者の組合わせ によ り 、 逆転写酵素 l O UZ /x 1 〜 0 . O l m U μ 1 の酵 素濃度の保存液の、 少なく と も 4 °Cにおける安定性を高めら れる こ とが確認できた。 参考例 ガラ スバイ アル中に、 H E P E S ( 日本国同人化学社製） ( H 7 . 8 ) 0 . 1 M, T r i 't o n X - 1 0 0 (米国シ ダマ社製） 0 . 1 %、 牛血清アルブ ミ ン （シグマ社製） 0 . 1 5 %、 H I V— 1 型逆転写酵素 （ 日本国生化学工業社製） 1 m U / μ 1 及び ト レハロ ー ス （米国シグマ社製） 4 0 %の 溶液を調製 し 、 その溶液中にオリ ゴ d T 12— 18 - p 0 1 y A (ス ウ ェーデン国フアルマシア社製） を、 0、 0. 2、 2、 2 0、 2 0 0、 2 0 0 0 / g /m l の澳度になる よ う に調製 した溶液を 4 °Cでそれぞれ保存 し、 7 日後、 保存液を 0. 1 % T r i t o n X— 1 0 0にて 0. 4 mUZm l の濃度に調 製した溶液を被検液と して逆転写酵素活性を測定した。 逆転 写酵素活性測定法は実施例 1 の測定法と 同様に行った。 対照 群と して、 ト レハロース及びオリ ゴ d T 12— 18 — p o l y A が添加されない保存液で同様の実験を行い、 その結果を表 1 1 に示 した。
表 1
オリ ゴ d T12— 18 - p o 1 y A 逆転写酵素活性
( μ g /m 1 ) (40 5 nm における吸光度）
4 °C
0 (比較例） 0 3 26
0. 2 0 9 32
2 3 36
20 3 29
200 20 1
2000 0 74 1 対照群 0. 1 0 2
産業上の利用可能性
本発明によれば、 逆転写酵素と 、 ト レハ ロ ース及び該逆転 写酵素の転写開始部位を含む核酸からなる群よ リ選ばれる少 なく と も 1 種の有機安定剤の安定化有効量、 並びに水溶液中 で 2価陽イオンを生 じ う る金属塩の安定化有効量を含んでな る酵素組成物が提供される。 本発明の保存安定化酵素組成物 は、 少な く と も 4 °Cにおいて長期間安定なこ と から、 従来の 逆転写酵素を用いる様々 な技術にかかる労力及びコ ス ト の低 減化をはかる こ と ができ る。 更に、 本発明の組成物は、 粘度 が低いため、 所望の量を正確に分注する こ とができ、 再現性 よ く 実験する こ とができ るので、 逆転写酵素活性を指標とす る、 ウィルス定量のスタ ンダー ドと して有用である。

Claims

請求の範囲
1 . 逆転写酵素と 、 ト レハ ロ ース及び該逆転写酵素の転写開 始部位を含む核酸からなる群よ リ 選ばれる少な く と も 1 種の 有機安定剤の安定化有効量、 並びに水溶液中で 2価陽イオン を生じ う る金属塩の安定化有効量を含んでなる保存安定化逆 転写酵素組成物。
2 . 上記の少なく と も 1 種の有機安定剤が、 ト レハロ ース及 び該逆転写酵素の転写開始部位を含む核酸である請求項 1 に 記載の逆転写酵素組成物。
3 . 該核酸が、 実質的にアデニン リ ボヌ ク レオチ ドよ り なる 铸型 R N Aと実質的にオリ ゴデォキシチミ ンヌ ク レオチ ドょ り なるプライマーと のハイ プ リ ッ ド体、 実質的にゥ リ ジン リ ボヌ ク レオチ ドょ リ なる铸型 R N Aと実質的にオリ ゴデォキ シァデニ ンヌ ク レオチ ドょ リ なる プラ イ マー と のハイ ブ リ ッ ド体、 及び実質的にグァニン リ ボヌ ク レオチ ドよ リ なる铸型 R N A と実質的にオ リ ゴデォキシシチジンヌ ク レオチ ドょ リ なるプライマ一とのハイ プ リ ッ ド体からなる群よ リ選ばれる 少な く と も 1 種を含んでなる請求項 1 に記載の逆転写酵素組 成物。
4 . 該金属塩が、 塩化マ グネ シウ ム、 塩化カルシ ウ ム 、 塩化 マンガン （ Π ) 及び硫酸マグネシウムからなる群よ り 選ばれ る少なく と も 1種である請求項 1 に記載の逆転写酵素組成物
5 . 該 ト レハロ ー ス の分子を、 該逆転写酵素 1 分子に対して 3 0倍〜 3 . 1 X 1 0 1 1 倍含む請求項 1 に記載の逆転写酵 素組成物。
6 . 該核酸の分子を、 該逆転写酵素 1分子に対して 2 . 5 X 1 0 "4 倍〜 6 X 1 0 6 倍含む請求項 1 に記載の逆転写酵素 組成物。
7 . 該金厲塩の分子を、 該逆転写酵素 1 分子に対して 1倍〜 1 . 2 X 1 0 1 1 倍含む請求項 1 に記載の逆転写酵素組成物。
8 . 該組成物が、 水溶液である請求項 1 に記載の逆転写酵素 組成物。
9 . 該組成物が、 凍結乾燥品である請求項 1 に記載の逆転写 酵素組成物。
1 0 . 逆転写酵素に、 ト レハロース及び該逆転写酵素の転写 開始部位を含む核酸からなる群よ リ選ばれる少なく と も 1種 の有機安定剤の安定化有効量、 並びに水溶液中で 2価陽ィォ ンを生じ う る金属塩の安定化有効量を添加する こ と を特徴と する逆転写酵素の保存安定化方法。
1 1 . 上記の少なく と も 1 種の有機安定剤が、 ト レハ ロ ース 及び該逆転写酵素の転写開始部位を含む核酸である請求項 1 0に記載の方法。
1 2 . 該核酸が、 実質的にアデニン リ ボヌ ク レオチ ドよ リ な る铸型 R N Aと実質的にオリ ゴデォキシチミ ンヌ ク レオチ ド よ り なるプライマーと のハイプ リ ッ ド体、 実質的にゥ リ ジン リ ボヌ ク レオチ ドよ り なる铸型 R N Aと実質的にオリ ゴデォ キシアデニンヌ ク レオチ ドょ り なるプライマーと のハイブリ ッ ド体、 及び実質的にグァニ ン リ ボヌ ク レオチ ドよ り なる铸 型 R N Aと実質的にオリ ゴデォキシシチジンヌ ク レオチ ドょ り なるプライマーと のハイプリ ッ ド体からなる群よ リ 選ばれ る少なく と も 1種を含んでなる請求項 1 0に記載の方法。
1 3 . 該金属塩が、 塩化マグネシウム、 塩化カルシウム、 塩 化マンガン （ Π ) 及び硫酸マグネシウムからなる群よ リ 選ば れる少な く と も 1種である請求項 1 0に記載の方法。
1 4 . 該 ト レハ ロ ー ス の分子を、 該逆転写酵素 1 分子に対し て 3 0倍〜 3 . 1 X 1 0 1 1 倍添加する こ と を特徴とする請 求項 1 0に記載の方法。
1 5 . 該核酸の分子を、 該逆転写酵素 1 分子に対して 2 . 5 X 1 0 倍〜 6 X 1 06 倍添加する こ と を特徴とする請求 項 1 0 に記載の方法。
1 6 . 該金厲塩の分子を、 該逆転写酵素 1 分子に対して 1倍 〜 1 . 2 X 1 011 倍添加するこ とを特徴とする請求項 1 0 に記載の方法。
1 7 . 上記の逆転写酵素、 少なく と も 1種の有機安定剤及び 金属塩がそれぞれ水溶液の状態でぁリ 、 それによつて、 保存 安定性が改善された、 水性逆転写酵素組成物を得るこ と を特 徴とする請求項 1 0 に記載の方法。
1 8 . 更に、 上記の保存安定性が改善された、 水性逆転写酵 素組成物を凍結乾燥するこ とを特徴とする請.求項 1 7 に記載 の方法。
PCT/JP1995/002304 1994-11-11 1995-11-10 Composition de transcriptase inverse stable a la conservation WO1996015235A1 (fr)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP95936773A EP0791650B1 (en) 1994-11-11 1995-11-10 Reverse transcriptase composition having improved storage stability
US08/836,380 US5935834A (en) 1994-11-11 1995-11-10 Reverse transcriptase composition having improved storage stability
DE69532717T DE69532717T2 (de) 1994-11-11 1995-11-10 Zusammensetzung der reversen transkriptase mit erhöhter lagerungsstabilität

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP6/277618 1994-11-11
JP6277618A JPH08131171A (ja) 1994-11-11 1994-11-11 逆転写酵素の安定化組成物

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO1996015235A1 true WO1996015235A1 (fr) 1996-05-23

Family

ID=17585936

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP1995/002304 WO1996015235A1 (fr) 1994-11-11 1995-11-10 Composition de transcriptase inverse stable a la conservation

Country Status (5)

Country Link
US (1) US5935834A (ja)
EP (1) EP0791650B1 (ja)
JP (1) JPH08131171A (ja)
DE (1) DE69532717T2 (ja)
WO (1) WO1996015235A1 (ja)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0821058A3 (en) * 1996-07-25 1998-08-05 The Institute Of Physical & Chemical Research Method for enhancing enzyme activity at elevated temperature
CN115354036A (zh) * 2022-10-24 2022-11-18 北京纳捷诊断试剂有限公司 一种逆转录酶的稳定剂

Families Citing this family (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1998002532A1 (de) * 1996-07-16 1998-01-22 Invitek Gmbh Verfahren zur herstellung komplexer multienzymatischer lagerstabiler reaktionsgemische und deren verwendung
JP3206894B2 (ja) * 1996-07-25 2001-09-10 理化学研究所 酵素を熱活性化する方法
WO1998044161A1 (en) 1997-04-03 1998-10-08 Life Technologies, Inc. Compositions and methods for reverse transcriptase-polymerase chain reaction (rt-pcr)
AU7360198A (en) 1997-04-22 1998-11-13 Life Technologies, Inc. Methods for the production of aslv reverse transcriptases composed of multiple subunits
ES2180416B1 (es) * 2001-03-12 2004-06-01 BIOTOOLS BIOTECHNOLOGICAL & MEDICAL LABORATORIES, S.A. Procedimiento para la preparacion de mezclas de reaccion estabilizadas, total o parcialmente desecadas, que comprenden, al menos, una enzima, mezclas de reaccion y kits que las contienen.
EP1418229B1 (en) * 2001-07-02 2009-04-22 Asahi Kasei Pharma Corporation Method of stabilizing alkaline phosphatase
CN1708314A (zh) * 2002-10-29 2005-12-14 阿尔萨公司 稳定化的固态多肽微粒
US20040101859A1 (en) * 2002-11-25 2004-05-27 Cepheid Compositions, methods and kits for polynucleotide amplification reactions and microfluidic devices
JP4557571B2 (ja) * 2004-03-04 2010-10-06 キッコーマン株式会社 フルクトシルペプチドオキシダ−ゼの安定化方法
US20060068398A1 (en) * 2004-09-24 2006-03-30 Cepheid Universal and target specific reagent beads for nucleic acid amplification
JP5702148B2 (ja) * 2007-11-27 2015-04-15 バイオ−ラッド ラボラトリーズ，インコーポレイティド １ステップｒｔ−ｐｃｒの阻害低減
CA2775273A1 (en) 2009-10-22 2011-04-28 Biotools Biotechnological & Medical Laboratories, S.A. Composition, method and kit for detecting bacteria by means of sequencing
WO2012054727A1 (en) 2010-10-22 2012-04-26 Bio-Rad Laboratories, Inc. Reverse transcriptase mixtures with improved storage stability
US11268084B2 (en) 2017-08-08 2022-03-08 Thermo Fisher Scientific Baltics, UAB Glycerol-free formulations for reverse transcriptases
JP7315461B2 (ja) * 2017-09-07 2023-07-26 天野エンザイム株式会社 安定化蛋白質脱アミド酵素乾燥組成物

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH04271785A (ja) * 1991-02-28 1992-09-28 Kao Corp 酵素固形製剤及びその製造方法

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS6339582A (ja) * 1986-08-04 1988-02-20 Takara Shuzo Co Ltd 酵素組成物
IL100040A (en) * 1990-11-13 1995-12-31 Siska Diagnostics Inc Nucleic acid amplification by two enzyme self-sustained sequence replication
US5554498A (en) * 1991-08-30 1996-09-10 Syngenix Limited Nucleic acid amplification using scandium and lanthanum ions
US5599660A (en) * 1993-01-19 1997-02-04 Pharmacia Biotech Inc. Method and preparation for sequential delivery of wax-embedded, inactivated biological and chemical reagents
US5556771A (en) * 1995-02-10 1996-09-17 Gen-Probe Incorporated Stabilized compositions of reverse transcriptase and RNA polymerase for nucleic acid amplification

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH04271785A (ja) * 1991-02-28 1992-09-28 Kao Corp 酵素固形製剤及びその製造方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BIOCHEM. MOL. BIOL. INT., 1993, Vol. 30, No. 3, ARGALL M.E., "The Use of Treha Losestabilized Lyophilized Methanol Dehydrojenase from Hyphomicrobium X for the Detection of Methanol", p. 491-497. *
See also references of EP0791650A4 *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0821058A3 (en) * 1996-07-25 1998-08-05 The Institute Of Physical & Chemical Research Method for enhancing enzyme activity at elevated temperature
US6458556B1 (en) 1996-07-25 2002-10-01 The Institute Of Physical & Chemical Research Method for enhancing enzyme activity at elevated temperature
CN115354036A (zh) * 2022-10-24 2022-11-18 北京纳捷诊断试剂有限公司 一种逆转录酶的稳定剂

Also Published As

Publication number Publication date
DE69532717D1 (de) 2004-04-22
EP0791650A4 (en) 2000-09-20
JPH08131171A (ja) 1996-05-28
EP0791650B1 (en) 2004-03-17
US5935834A (en) 1999-08-10
EP0791650A1 (en) 1997-08-27
DE69532717T2 (de) 2005-03-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU2002246125B2 (en) Process for preparing stabilized reaction mixtures which are partially dried, comprising at least one enzyme, reaction mixtures and kits containing said mixtures
WO1996015235A1 (fr) Composition de transcriptase inverse stable a la conservation
US6300073B1 (en) One step RT-PCR methods, enzyme mixes and kits for use in practicing the same
JP3282819B2 (ja) 核酸増幅用の安定化された酵素組成物
JP4777497B2 (ja) リボ核酸類からの核酸類の生成及び増幅
WO2006036845A1 (en) Universal and target specific reagent beads for nucleic acid amplification
US20080182312A1 (en) Stable reagents and kits useful in loop-mediated isothermal amplification (LAMP)
CN106460040B (zh) 在低盐条件下的等温扩增
US10443094B2 (en) Solid phase isothermal amplification
CN116376869A (zh) 经改变的耐热性dna聚合酶
Burckhardt Amplification of DNA from whole blood.
US20100035238A1 (en) Anti-freeze protein enhanced nucleic acid amplification
JP4284063B2 (ja) 核酸塩基配列決定方法
WO1998048053A1 (en) Reverse transcription method
Mizutani et al. Purification and properties of spleen necrosis virus DNA polymerase
JP2024524334A (ja) 核酸増幅のための酵素製剤および反応混合物
JP2023543602A (ja) 標的化された配列付加
WO2021262013A1 (en) Bst-nec dna fusion polymerase for use in isothermal replication of specific sars cov-2 virus sequences
Eberle et al. [15] Nonisotopic assays of viral polymerases and related proteins
EA004630B1 (ru) Способ образования комплекса
Jones Principles, Procedures, and Parameters
JP2003093055A (ja) Ｄｎａポリメラーゼの調製方法
JP2008079506A (ja) ポリメラーゼ反応安定剤

Legal Events

Date Code Title Description
AK Designated states

Kind code of ref document: A1

Designated state(s): US

AL Designated countries for regional patents

Kind code of ref document: A1

Designated state(s): AT BE CH DE DK ES FR GB GR IE IT LU MC NL PT SE

DFPE Request for preliminary examination filed prior to expiration of 19th month from priority date (pct application filed before 20040101)
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application
WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 1995936773

Country of ref document: EP

Ref document number: 08836380

Country of ref document: US

WWP Wipo information: published in national office

Ref document number: 1995936773

Country of ref document: EP

WWG Wipo information: grant in national office

Ref document number: 1995936773

Country of ref document: EP