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WO1996018740A1 - Transfert de genes dans les motoneurones medullaires au moyen de vecteurs adenoviraux - Google Patents

Transfert de genes dans les motoneurones medullaires au moyen de vecteurs adenoviraux Download PDF

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Publication number
WO1996018740A1
WO1996018740A1 PCT/FR1995/001650 FR9501650W WO9618740A1 WO 1996018740 A1 WO1996018740 A1 WO 1996018740A1 FR 9501650 W FR9501650 W FR 9501650W WO 9618740 A1 WO9618740 A1 WO 9618740A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
nucleic acid
adenovirus
motor neurons
interest
genome
Prior art date
Application number
PCT/FR1995/001650
Other languages
English (en)
Inventor
Françoise FINIELS
Minerva Gimenez-Ribotta
Jacques Mallet
Alain Privat
Frédéric Revah
Original Assignee
Rhone-Poulenc Rorer S.A.
Institut National De La Sante Et De La Recherche Medicale
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Rhone-Poulenc Rorer S.A., Institut National De La Sante Et De La Recherche Medicale filed Critical Rhone-Poulenc Rorer S.A.
Priority to AU43502/96A priority Critical patent/AU712775B2/en
Priority to BR9510090A priority patent/BR9510090A/pt
Priority to EP95942249A priority patent/EP0797677A1/fr
Priority to SK745-97A priority patent/SK74597A3/sk
Priority to JP8518369A priority patent/JPH10510428A/ja
Priority to CZ971806A priority patent/CZ180697A3/cs
Priority to FI972491A priority patent/FI972491A7/fi
Publication of WO1996018740A1 publication Critical patent/WO1996018740A1/fr
Priority to US08/785,074 priority patent/US6632427B1/en
Priority to MXPA/A/1997/004102A priority patent/MXPA97004102A/xx
Priority to NO972712A priority patent/NO972712D0/no

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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C12N15/86—Viral vectors
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00—Drugs for disorders of the nervous system
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K48/00—Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011—Details
    • C12N2710/10011—Adenoviridae
    • C12N2710/10311—Mastadenovirus, e.g. human or simian adenoviruses
    • C12N2710/10341—Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2710/10343—Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector

Definitions

  • the present invention relates to the field of gene therapy. It relates more particularly to a new method of treatment of pathologies of the nervous system by transfer of genes into the medullary motor neurons by means of adenoviral vectors.
  • viruses used for this purpose there may be mentioned in particular adenoviruses (Le Gai La Salle et al., Science 259, 988-990), herpes viruses, adeno-associated viruses and retroviruses.
  • adenoviruses Le Gai La Salle et al., Science 259, 988-990
  • herpes viruses adeno-associated viruses
  • retroviruses retroviruses.
  • the studies described in the prior art show that these vectors, and in particular the adenoviruses, are capable of infecting cells of the central nervous system with very high efficiency.
  • the present invention indeed describes a particularly effective method for the selective transfer of genes into the marrow.
  • the present invention derives in particular from the demonstration that it is possible to specifically transfer a gene at the level of the motor neurons by administration, at the level of the muscle, of an adenoviral vector incorporating said gene.
  • the Applicant has now shown that, in a particularly advantageous manner, the adenoviruses are absorbed at the level of the neuromuscular junctions (motor plates), and transported to the cellular bodies of the motor neurons (ventral horn of the spinal cord) by retrograde transport. along motor neuron axons.
  • adenoviral vectors thus constitutes a new very specific method of infection of the motor neurons by retrograde transport, making it possible to precisely target the medullary stage on which it is desired to intervene according to the location of the trauma and / or degeneration.
  • the method according to the present invention is very particularly advantageous since it makes it possible, by following a precise mapping of the neuromuscular junctions, to specifically and unilaterally infect the motor neurons of the different medullary functional stages. It also turns out to be much less traumatic than a stereotaxic injection into the medullary parenchyma, which would in any case be more diffuse and not restrictive to motor neurons.
  • a first object of the invention therefore resides in the use of a recombinant adenovirus comprising in its genome a nucleic acid of interest for the preparation of a pharmaceutical composition intended for the transfer of said nucleic acid into spinal motor neurons by intramuscular administration.
  • the method according to the present invention is very advantageous since it makes it possible to precisely target the motor neurons of each medullary functional stage.
  • the administration is carried out in a muscle carrying a nervous connection with said site.
  • the present invention It is now possible, by a judicious choice of various injections, to infect, specifically and unilaterally, a large number of spinal motor neurons distributed over the different levels.
  • administration into muscles of the upper limbs makes it possible to transfer a gene into the motor neurons at the cervical level; administration in thoracic (pectoral) muscles makes it possible to transfer a gene in the motor neurons at the thoracic level; or administration in muscles of the lower limbs (gastrocnemius) makes it possible to transfer a gene in the motor neurons at the lumbar and sacral levels.
  • Other muscles can of course be used for administration at the level of these motor neurons, and other motor neurons can also be targeted. To this end, it is possible to use precise maps of the neuromuscular junctions in order to determine, as a function of the targeted spinal stage, the muscle or muscles most suitable for administration.
  • Intramuscular administration of adenovirus can be accomplished in different ways. According to a first embodiment, it is performed by injection at several points of the same muscle so as to concern a very large number of motor plates. This embodiment is particularly effective when the point of insertion of the nerve into the muscle in question cannot be identified. When the nerve insertion point is identifiable, the administration is advantageously carried out by one or more injections at or near said point. According to this embodiment, the efficiency of the transfer is greater because a high proportion of administered vector is absorbed at the neuromuscular junction.
  • the intramuscular administration is carried out by injections at several points of the same muscle.
  • the intramuscular administration is carried out by injection (s) at or near the point of insertion of the nerve.
  • the invention relates to the use of a recombinanf adenovirus comprising in its genome a nucleic acid of interest for the preparation of a pharmaceutical composition intended for the transfer of said nucleic acid into the cervical spinal motor neurons by administration in the muscles of the upper limbs (example: biceps, triceps).
  • the invention relates to the use of a recombinant adenovirus comprising in its genome a nucleic acid of interest for the preparation of a pharmaceutical composition intended for the transfer of said nucleic acid into the thoracic spinal motor neurons by administration in the chest muscles (e.g. pectoral).
  • the invention relates to the use of a recombinant adenovirus comprising in its genome a nucleic acid of interest for the preparation of a pharmaceutical composition intended for the transfer of said nucleic acid into the lumbar medullary motor neurons and / or sacred by administration in the muscles of the lower limbs (gastrocnemius for example).
  • the method according to the invention can be implemented using adenoviruses of various origins. Different serotypes of adeno virus, whose structure and properties vary somewhat, have indeed been characterized.
  • adenoviruses of type 2 or 5 Ad 2 or Ad 5
  • Ad 2 or Ad 5 adenoviruses of animal origin
  • adenoviruses of animal origin which can be used in the context of the present invention, mention may be made of adenoviruses of canine, bovine, murine origin (example: Mavl, Beard et al., Nirology 75 (1990) 81), ovine, porcine , avian or even simian (example: SAN).
  • the adenovirus of animal origin is a canine adenovirus, more preferably a CAN2 adenovirus [manhattan or A26 / 61 strain (ATCC NR-800) for example].
  • the adenovirus used is an adenovirus of human origin.
  • the adenovirus is an adenovirus of animal origin.
  • the adenovirus genome includes in particular a repeated inverted sequence (ITR) at each end, an encapsidation sequence (Psi), early genes and late genes.
  • ITR inverted sequence
  • Psi encapsidation sequence
  • the main early genes are contained in the E1, E2, E3 and E4 regions.
  • the genes contained in the El region are necessary for viral replication.
  • the E4 and L5 regions are involved in viral propagation.
  • the main late genes are contained in regions L1 to L5.
  • the genome of the Ad5 adenovirus has been fully sequenced and is accessible on the database (see in particular Genebank M73260).
  • adenoviral vectors used for the implementation of the present invention comprise ITRs, a sequence allowing the encapsidation and the nucleic acid of interest.
  • the genome of the adenovirus used is devoid of all or part of the E1 region.
  • the E1 region is indeed essential for viral replication and its inactivation leads to the formation of defective viruses for replication, i.e. unable to replicate autonomously in infected cells.
  • the E1 region, or any other viral region considered can be made non-functional by any technique known to a person skilled in the art, and in particular by total removal, substitution, partial deletion, or addition of one or more several bases in the genes considered. Such modifications can be obtained in vitro (on isolated DNA) or in situ, for example, by means of genetic engineering techniques, or by treatment with mutagenic agents.
  • the genome of the adenovirus used is devoid of a part of the E1 region corresponding to residues 454 to 3328 (fragment PvuII-BglII) or 382 to 3446 (fragment HinfII-Sau3A).
  • the genome of the adenovirus used is also devoid of all or part of the E3 and or E4 region.
  • the Applicant has now shown that it is possible to construct vectors carrying these different types of deletions. These additional deletions make it possible to increase the safety of the vector and to increase its capacity.
  • the nucleic acid of interest can be inserted at different sites in the adenovirus genome.
  • it is inserted at the level of the region E1, E3 or E4.
  • the defective recombinant adenoviruses according to the invention can be prepared by any technique known to those skilled in the art (Levrero et al., Gene 101 (1991) 195, EP 185 573; Graham, EMBO J. 3 (1984) 2917).
  • Us can be prepared by homologous recombination between an adenovirus and a plasmid carrying inter alia the DNA sequence of interest. Homologous recombination occurs after co-transfection of said adenovirus and plasmid in an appropriate cell line.
  • the cell line used must preferably (i) be transformable by said elements, and (ii), contain the sequences capable of complementing the part of the genome of the defective adenovirus, preferably in integrated form to avoid the risks of recombination.
  • a line mention may be made of the human embryonic kidney line 293 (Graham et al., J. Gen. Virol. 36 (1977) 59) which contains in particular, integrated into its genome, the left part of the genome an Ad5 adenovirus (12%).
  • a first method consists in transfecting the DNA of the recombinant (defective) virus prepared in vitro in a competent cell line, that is to say carrying in trans all the functions necessary for the complementation of the defective virus. These functions are preferably integrated into the genome of the cell, which reduces the risks of recombination, and confers increased stability on the cell line.
  • the preferred line is line 293.
  • a second approach consists in co-transfecting into a suitable cell line the DNA of the defective recombinant virus prepared in vitro and the DNA of one or more viruses or helper plasmids. According to this method, it is not necessary to have a competent cell line capable of complementing all the defective functions of the recombinant adenovirus. Part of these functions is in fact complemented by the helper virus or viruses. This or these helper viruses are themselves defective.
  • the adenoviruses which have multiplied are recovered and purified according to conventional techniques of molecular biology, as illustrated in the examples.
  • the adenoviruses are preferably associated with one or more pharmaceutically acceptable vehicles for an injectable formulation.
  • pharmaceutically acceptable vehicles for an injectable formulation can be in particular saline solutions (monosodium phosphate, disodium, sodium chloride, potassium, calcium or magnesium, etc. or mixtures of such salts), sterile, isotonic, or dry compositions, in particular lyophilized, which, by addition, as appropriate, of sterilized water or physiological saline, allow the constitution of injectable solutes.
  • the doses of virus used for administration can be adapted according to different parameters, and in particular according to the site (muscle) of administration considered, the number of injections, the gene to be expressed, or even the duration of the treatment. wanted.
  • the recombinant adenoviruses according to the invention are formulated and administered in the form of doses of between 10 ⁇ and 10- ⁇ pfu, and preferably 10 ⁇ to 10 ⁇ -O pfu.
  • pfu plaque forming unit
  • plaque forming unit corresponds to the infectious power of a virus solution, and is determined by infection of an appropriate cell culture, and measures, generally after 15 days, the number of plaques of infected cells. The techniques for determining the pfu titer of a viral solution are well documented in the literature.
  • the method according to the present invention is particularly advantageous for the treatment of spinal cord injuries or motor neuron degeneration diseases.
  • Spinal cord injuries correspond more particularly to sections at the level of the motor neurons which deprive them of their afferents from higher centers and cause their degeneration.
  • the transfer of genes coding for growth factors into sub-lesional motor neurons by retrograde transport according to the invention now offers the possibility of reducing or even preventing this degeneration.
  • motor neuron neuropathies there may be mentioned, for example, amyotrophic lateral sclerosis, type I spinal muscular atrophies (Werdnig Hoffman disease) type II or III (Kugelberg-Welander disease), bulbar spinal muscular atrophies (such as Kennedy disease).
  • the transfer of genes coding for growth factors or other molecules known to exert a neurotrophic effect on the degenerating motor neuron according to the present invention also offers a new path for the treatment of this type of pathology.
  • the effectiveness of the process of the invention can in particular be demonstrated on an animal model: model of partial or complete section of the spinal cord, Wobbler mouse (animal model for studying amyotrophic lateral sclerosis (Leestma JE, Am. J.
  • mice (“motoneurone degeneration”: animal model for the study of amyotrophic lateral sclerosis (Messer et al., 1992, Genomics, 18, 797-802)) or pmn mice (“progressive motoneurone neuropathy”: animal model for study motor neuron degeneration during development), as illustrated in the examples. Incorporation, tolerance and safety for humans can be tested on in vitro culture models of human embryonic medullary neurons.
  • the nucleic acid of interest incorporated into the adenoviral vectors according to the invention preferably codes for a neuroactive substance, that is to say capable of exerting a beneficial effect on nerve cells. It can be a substance capable of compensating for a deficit in or reducing an excess of an endogenous substance, or also a substance which confers on cells new properties. It may more particularly be a growth factor, a neurotrophic factor, a cytokine, a neurotransmitter or even an enzyme, or a neurotr ansmitter or hormone receptor.
  • G-CSF colony stimulating factors
  • GM-CSF GM-CSF
  • M-CSF M-CSF
  • CSF fibroblast growth factors
  • NEGF cells vascular
  • the preferred factors are in particular the ciliary neurotrophic factor (C ⁇ TF), the glial cell maturation factors (GMFa.b) GD ⁇ F, BD ⁇ F, ⁇ T3, NT5, etc.
  • the preferred cytokines are interleukins and interferons and, among the enzymes, use is preferably made of the enzymes for biosynthesis of neurotransmitters (tyrosine hydroxylase, acetyl choline transferase, glutamic acid decarboxylase), lysosomal enzymes (hexosaminidases, arylsulfatase, glucocerebrosidase, HGPRT), the enzymes involved in the detoxification of free radicals (superoxide dismutase I, II or III, catalase, gluthation peroxidase).
  • the androgen receptors (implicated in Kennedy's disease) will be used, among others.
  • the nucleic acid can be of natural or artificial origin. It may especially be genomic DNA (gDNA), complementary DNA (cDNA), hybrid sequences or synthetic or semi-synthetic sequences. It can be of human, animal, plant, bacterial, viral, etc. origin. It can be obtained by any technique known to those skilled in the art, and in particular by screening of banks, by chemical synthesis, or also by mixed methods including chemical or enzymatic modification of sequences obtained by screening of banks. They are preferably cDNA or gDNA.
  • the nucleic acid also comprises a promoter region for functional transcription in motor neurons, as well as a region located 3 ′ of the gene of interest, and which specifies a transcriptional end signal and a polyadenylation site. All of these elements constitute the expression cassette.
  • the promoter region it may be a promoter region naturally responsible for the expression of the gene considered when it is capable of functioning in the infected cell. They can also be regions of different origin (responsible for the expression of other proteins, or even synthetic).
  • they may be promoter sequences of eukaryotic or viral genes. For example, they may be promoter sequences originating from the genome of the cell which it is desired to infect.
  • the heterologous nucleic acid may be inserted into the genome of the virus downstream of such a sequence.
  • the present invention also relates to a method for the transfer of nucleic acids into motor neurons comprising. Muscular administration of an adenoviral vector incorporating said nucleic acid into its genome.
  • the method according to the invention is carried out by injection (s) at several points of the same muscle or, when the insertion point of the nerve is detectable, by one or more injections at or near said point (s)
  • FIGURE 1 (PHOTO A):
  • ⁇ diffuse labeling of many motoneuronal cell bodies
  • A highlighting the typical morphology of motoneurons
  • FIGURE 2 (PHOTO B): idem A, higher magnification.
  • FIGURE 3 (PHOTO C):
  • CGRP Calcitonin Gene Related Peptide
  • the study was carried out on a model of partial or complete section of the rat spinal cord practiced at the lower thoracic level having the effect of paralyzing the animal for one or both of its lower limbs.
  • Such a section deprives the motor neurons of their afferents from the upper centers and causes their degeneration.
  • the adn ⁇ ustration was carried out in such a way as to infect the sub-lesional motor neurons by retrograde transport.
  • the viral adeno vector used in this example is the vector Ad.RSV. ⁇ gal.
  • This vector lacks the sequences necessary for its replication, but nevertheless comprises the sequences necessary to penetrate into the cells which can be infected with it as well as all of the essential sequences necessary for the packaging of this adenovirus. It also carries, under the control of the RSV promoter, the ⁇ galactosidase gene from E. coli.
  • the construction of the defective recombinant adenovirus Ad.RSV ⁇ gal has been described in the literature (Stratford-Perricaudet et al., J. Clin. Invest. 90 (1992) 626).
  • the adenovirus Ad.RSVbGal is a defective recombinant adenovirus (deleted from regions E1 and E3) obtained by homologous recombination in vivo between the mutant adenovirus Ad-dl324 (Thimmappaya et al., Cell 31 (1982) 543) and the plasmid pAd.RSVbGal (Akli et al. 1993).
  • the plasmid pAd.RSVbGal contains, in the 5 '-> 3' orientation,
  • the PvuII fragment corresponding to the left end of the Ad5 adenovirus comprising: the ITR sequence, the origin of replication, the packaging signals and the E1A amplifier; - the gene coding for b-galactosidase under the control of the RSN promoter
  • Ad5 adenovirus A second fragment of the genome of the Ad5 adenovirus, which allows homologous recombination between the plasmid pAd.RSVbGal and the adenovirus dl324.
  • the plasmid pAd.RSVbGal and the adenovirus dl324 are co-transfected in Ugnea 293 in the presence of calcium phosphate to allow homologous recombination.
  • the recombinant adenoviruses thus generated are selected by plaque purification.
  • the AD ⁇ of the recombinant adenovirus is amplified in the cell line 293, which leads to a culture supernatant containing the non-purified recombinant defective adenovirus having a titer of approximately 10O pfu / ml.
  • the viral particles are then purified by centrifugation on a gradient. cesium chloride according to known techniques (see in particular Graham et al., Virology 52 (1973) 456).
  • the adenovirus was then used in purified form in a saline phosphate solution (PBS).
  • Ad-RSV-b-Gal adenovirus 10 ⁇ pfu per injection
  • 9 ⁇ l of adenovirus are injected per injection site with the Hamilton syringe.
  • the animals were sacrificed (4% paraformaldehyde infusion) four days after injection, minimum time for retrograde transport to take place from muscle to spinal cord.
  • Three blocks of spinal cord were cut longitudinally at the cervical, thoracic and lumbar levels, in sections 50 mM thick.
  • the sections were treated for the revelation of ⁇ -Galactosidase making it possible to highlight the cells having been infected by the virus.
  • Certain sections have also undergone an anti-"Calcitonin Gene Related Peptide” immunocytochemistry (CGRP), making it possible to specifically mark the motor neurons.
  • CGRP Calcitonin Gene Related Peptide
  • ⁇ -Galactosidase has been revealed from its substrate, X-Gal, and the reaction product gives a blue color.
  • CGRP Calcitonin Gene Related Peptide
  • the anti-CGRP immunocytochemistry coupled with the revelation b-Galactosidase made it possible to demonstrate by a double staining that almost all of the CGRP positive cell bodies (i.e. motor neurons) were infected by the virus (photo C).

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Abstract

La présente invention concerne l'utilisation d'adénovirus recombinants pour le transfert d'acides nucléiques dans les motoneurones médullaires.

Description

Transfert de gènes dans les motoneurones médullaires au moyen de vecteurs adénoviraux
La présente invention concerne le domaine de la thérapie génique. Elle concerne plus particulièrement une nouvelle méthode de traitement des pathologies du système nerveux par transfert de gènes dans les motoneurones médullaires au moyen de vecteurs adénoviraux.
La thérapie génique et l'utilisation de virus modifiés comme vecteurs pour les maladies neurodégénératives constituent des nouvelles approches thérapeutiques particulièrement promotteuses. Parmi les virus utilisés à cet effet dans l'art antérieur, on peut citer en particulier les adénovirus (Le Gai La Salle et al., Science 259, 988-990), les virus de l'herpès, les virus adéno-associés et les rétrovirus. Les études décrites dans l'art antérieur montrent que ces vecteurs, et en particulier les adénovirus, sont capables d'infecter avec une très grande efficacité les cellules du système nerveux central. Ces résultats permettent ainsi de mettre au point des méthodes de traitement des pathologies du système nerveux central par injection directe au niveau du système nerveux central (en particulier par stéréotaxie) d'adénovirus recombinants comprenant un gène thérapeutique.
Concernant la moelle épinière, dans le cadre de certaines maladies neurodégénératives ou de traumatismes, la thérapie génique pourrait également permettre de lutter contre la dégénérescence des neurones moteurs (motoneurones) en apportant certains gènes codant par exemple pour des facteurs de croissance. Néanmoins, ces applications sont encore limitées par l'absence de méthode simple permettant de transférer spécifiquement un gène au niveau de la moelle. La présente invention permet de remédier à ce problème.
La présente invention décrit en effet une méthode particulièrement efficace pour le transfert sélectif de gènes dans la moelle. La présente invention découle en particulier de la démonstration qu'il est possible de transférer spécifiquement un gène au niveau des motoneurones par administration, au niveau du muscle, d'un vecteur adénoviral incorporant ledit gène. En effet, la demanderesse a maintenant montré que, de manière particulièrement avantageuse, les adénovirus sont absorbés au niveau des jonctions neuromusculaires (plaques motrices), et acheminés jusqu'aux corps cellulaires des motoneurones (corne ventrale de la moelle épinière) par transport rétrograde le long des axones motoneuronaux. L'administration intramusculaire de vecteurs adénoviraux selon l'invention constitue ainsi une nouvelle méthode très spécifique d'infection des motoneurones par transport rétrograde, permettant de cibler de façon précise l'étage médullaire sur lequel on désire intervenir en fonction de la localisation du traumatisme et/ou de la dégénérescence.
Le procédé selon la présente invention est tout particulièrement avantageux puisqu'il permet, en suivant une cartographie précise des jonctions neuromusculaires, d'infecter de façon spécifique et unilatérale les motoneurones des différents étages fonctionnels médullaires. Il s'avère de plus beaucoup moins traumatique qu'une injection stéréotaxique dans le parenchyme médullaire, laquelle serait de toutes façons plus diffuse et non restrictive aux motoneurones.
Un premier objet de l'invention réside donc dans l'utilisation d'un adénovirus recombinant comprenant dans son génome un acide nucléique d'intérêt pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée au transfert dudit acide nucléique dans les motoneurones médullaires par administration intramusculaire.
Comme indiqué ci-avant, le procédé selon la présente invention est très avantageux puisqu'il permet de cibler précisément les motoneurones de chaque étage fonctionnel médullaire. Ainsi, selon le site de l'altération à traiter, l'administration est pratiquée dans un muscle portant une liaison nerveuse avec ledit site. Selon la présente invention.il est maintenant possible, par un choix judicieux de diverses injections, d'infecter, de façon spécifique et unilatérale, un grand nombre de motoneurones médullaires répartis sur les différents niveaux. A titre de mode de réalisation préférés, l'administration dans des muscles des membres supérieurs (biceps, triceps) permet de transférer un gène dans les motoneurones au niveau cervical; l'administration dans des muscles du thorax (pectoraux) permet de transférer un gène dans les motoneurones au niveau thoracique; ou encore l'administration dans des muscles des membres inférieurs (gastrocnémien) permet de transférer un gène dans les motoneurones au niveaux lombaire et sacré. D'autres muscles peuvent bien entendu être utilisés pour l'administration au niveau de ces motoneurones, et d'autres motoneurones peuvent également être ciblés. A cet effet, il est possible d'utiliser des cartographies précises des jonctions neuromusculaires afin de déterminer, en fonction de l'étage médullaire ciblé, le ou les muscles les plus appropriés pour .administration. De telles cartographies sont accessibles à l'homme de l'art (voir notamment Nicholopoulos et al., J. Comp. Neurol. 217, 78-85; Peyronnard et Charon, Exp. Brain Res. 50, 125-132). Selon l'étage médullaire qu'il s'avérera opportun d'infecter un ou plusieurs muscles connus pour être innervés par l'étage en question peuvent ainsi être choisis.
L'administration intramusculaire d'adénovirus peut être réalisée de différentes manières. Selon un premier mode de réalisation, elle est pratiquée par injection en plusieurs points d'un même muscle de façon à concerner un très grand nombre de plaques motrices. Ce mode de réalisation est particulièrement efficace lorsque le point d'insertion du nerf dans le muscle considéré n'est pas identifiable. Lorsque le point d'insertion du nerf est repérable, l'administration est avantageusement réalisée par une ou plusieurs injections au niveau ou proche(s) dudit point. Selon ce mode de réalisation, l'efficacité du transfert est plus grande car une proportion élevée de vecteur administrée est absorbée au niveau de la jonction neuromusculaire.
Dans un premier mode préféré de mise en oeuvre de la présente invention, l'administration intramusculaire est réalisée par injections en plusieurs points d'un même muscle.
Dans un autre mode préféré de mise en oeuvre de la présente invention, l'administration intramusculaire est réalisée par injection(s) au niveau ou proche(s) du point d'insertion du nerf.
Selon un objet particulier, l'invention concerne l'utilisation d'un adénovirus recombinanf comprenant dans son génome un acide nucléique d'intérêt pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée au transfert dudit acide nucléique dans les motoneurones médullaires cervicaux par administration dans les muscles des membres supérieurs (exemple : biceps, triceps).
Selon un autre objet particulier, l'invention concerne l'utilisation d'un adénovirus recombinant comprenant dans son génome un acide nucléique d'intérêt pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée au transfert dudit acide nucléique dans les motoneurones médullaires thoraciques par administration dans les muscles du thorax (ex. pectoraux).
Toujours selon un objet particulier, l'invention concerne l'utilisation d'un adénovirus recombinant comprenant dans son génome un acide nucléique d'intérêt pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée au transfert dudit acide nucléique dans les motoneurones médullaires lombaire et/ou sacré par administration dans les muscles des membres inférieurs (gastrocnémien par exemple). La méthode selon l'invention peut être mise en oeuvre en utilisant des adénovirus d'origine diverses. Différents sérotypes d'adéno virus, dont la structure et les propriétés varient quelque peu, ont en effet été caractérisés. Parmi ces sérotypes, on préfère utiliser dans le cadre de la présente invention les adénovirus humains de type 2 ou 5 (Ad 2 ou Ad 5) ou les adénovirus d'origine animale (voir demande FR 93 05954). Parmi les adénovirus d'origine animale utilisables dans le cadre de la présente invention on peut citer les adénovirus d'origine canine, bovine, murine, (exemple : Mavl, Beard et al., Nirology 75 (1990) 81), ovine, porcine, aviaire ou encore simienne (exemple : SAN). De préférence, l'adénovirus d'origine animale est un adénovirus canin, plus préférentiellement un adénovirus CAN2 [souche manhattan ou A26/61 (ATCC NR-800) par exemple].
Selon un mode particulier de réalisation préféré de l'invention, l'adénovirus utilisé est un adénovirus d'origine humaine. Selon un autre mode avantageux, l'adénovirus est un adénovirus d'origine animale.
Le génome des adénovirus comprend notamment une séquence inversée répétée (ITR) à chaque extrémité, une séquence d'encapsidation (Psi), des gènes précoces et des gènes tardifs. Les principaux gènes précoces sont contenus dans les régions El, E2, E3 et E4. Parmi ceux-ci, les gènes contenus dans la région El (Ela et Elb notamment) sont nécessaires à la réplication virale. Les régions E4 et L5 par exemple sont elles impliquées dans la propagation virale. Les principaux gènes tardifs sont contenus dans les régions Ll à L5. Les génome de l'adénovirus Ad5 a été entièrement séquence et est accessible sur base de données (voir notamment Genebank M73260). De même des parties, voire la totalité du génome d'adénovirus de sérotypes différents (Ad2, Ad7, Adl2, etc) ont également été séquencées. Les vecteurs adénoviraux utilisés pour la mise en oeuvre de la présente invention comprenent les ITR, une séquence permettant l'encapsidation et l'acide nucléique d'intérêt.
Dans un mode de réalisation préféré de l'invention, le génome de l'adénovirus utilisé est dépourvu de tout ou partie de la région El. La région El est en effet essentielle à la réplication virale et son inactivation conduit à la formation de virus défectifs pour la réplication, c'est-à-dire incapables de se répliquer de façon autonome dans les cellules infectées. La région El, ou tout autre région virale considérée, peut être rendue non fonctionnelle par toute technique connue de l'homme du métier, et notamment par suppression totale, substitution, délétion partielle, ou addition d'une ou plusieurs bases dans le ou les gènes considérés. De telles modifications peuvent être obtenues in vitro (sur de l'ADN isolé) ou in situ, par exemple, au moyens des techniques du génie génétique, ou encore par traitement au moyen d'agents mutagènes. Avantageusement, le génome de l'adénovirus utilisé est dépourvu d'une partie de la région El correspondant aux résidus 454 à 3328 (fragment PvuII-BglII) ou 382 à 3446 (fragment HinfII-Sau3A).
Selon un mode de réalisation particulièrement avantageux, le génome de l'adénovirus utilisé est également dépourvu de tout ou partie de la région E3 et ou E4. La demanderesse a maintenant montré qu'il est possible de construire des vecteurs portant ces différents types de délétions. Ces délétions supplémentaires permettent d'accroitre la sécurité du vecteur et d'augmenter sa capacité.
L'acide nucléique d'intérêt peut être inséré en différents sites du génome de l'adénovirus. Avantageusement, il est inséré au niveau de la région El, E3 ou E4.
Cependant, il est clair que d'autres sites peuvent être utilisés. En particulier, l'accès à la séquence nucleotidique du génome permet à l'homme du métier d'identifier ou de créer des sites de restriction utilisables à cet effet.
Les adénovirus recombinants défectifs selon l'invention peuvent être préparés par toute technique connue de l'homme du métier (Levrero et al., Gène 101 (1991) 195, EP 185 573; Graham, EMBO J. 3 (1984) 2917). En particulier, Us peuvent être préparés par recombinaison homologue entre un adénovirus et un plasmide portant entre autre la séquence d'ADN d'intérêt. La recombinaison homologue se produit après co-transfection desdits adénovirus et plasmide dans une lignée cellulaire appropriée. La lignée cellulaire utilisée doit de préférence (i) être transformable par lesdits éléments, et (ii), comporter les séquences capables de complémenter la partie du génome de l'adénovirus défectif, de préférence sous forme intégrée pour éviter les risques de recombinaison. A titre d'exemple de lignée, on peut mentionner la lignée de rein embryonnaire humain 293 (Graham et al., J. Gen. Virol. 36 (1977) 59) qui contient notamment, intégrée dans son génome, la partie gauche du génome d'un adénovirus Ad5 (12 %).
Une première méthode consiste à transfecter l'ADN du virus recombinant (défectif) préparé in vitro dans une lignée cellulaire compétente, c'est-à-dire portant en trans toutes les fonctions nécessaires à la complémentation du virus défectif. Ces fonctions sont préférentiellement intégrées dans le génome de la cellule, ce qui réduit les risques de recombinaison, et confère une stabilité accrue à la lignée cellulaire. Dans le cas d'adénovirus dans lesquels seule la région El est déficiente, la lignée préférée est la lignée 293.
Une seconde approche consiste à co-transfecter dans une lignée cellulaire apppropriée l'ADN du virus recombinant défectif préparé in vitro et l'ADN d'un ou de plusieurs virus ou plasmide helper. Selon cette méthode, il n'est pas nécessaire de disposer d'une lignée cellulaire compétente capable de complémenter toutes les fonctions défectives de l'adénovirus recombinant. Une partie de ces fonctions est en effet complémentée par le ou les virus helper. Ce ou ces virus helper sont eux-mêmes défectifs.
Des stratégies de construction de vecteurs dérivés des adénovirus ont également été décrites dans les demandes n° FR93/05954 et FR93/08596.
Ensuite, les adénovirus qui se sont multipliés sont récupérés et purifiés selon les techniques classiques de biologie moléculaire, comme illustré dans les exemples.
Pour leur utilisation selon la présente invention, les adénovirus sont préférentiellement associés à un ou des véhicules pharmaceutiquement acceptables pour une formulation injectable. Il peut s'agir en particulier de solutions salines (phosphate monosodique, disodique, chlorure de sodium, potassium, calcium ou magnésium, etc. ou des mélanges de tels sels), stériles, isotoniques, ou de compositions sèches, notamment lyophilisées, qui, par addition selon le cas d'eau stérilisée ou de sérum physiologique, permettent la constitution de solutés injectables. Les doses de virus utilisées pour l'administration peuvent être adaptées en fonction de différents paramètres, et notamment en fonction du site (muscle) d'administration considéré, du nombre d'injections, du gène à exprimer, ou encore de la durée du traitement recherchée. D'une manière générale, les adénovirus recombinants selon l'invention sont formulés et administrés sous forme de doses comprises entre 10^ et 10-^ pfu, et de préférence 10^ à ÎO^-O pfu. Le terme pfu ("plaque forming unit") correspond au pouvoir infectieux d'une solution de virus, et est déterminé par infection d'une culture cellulaire appropriée, et mesure, généralement après 15 jours, du nombre de plages de cellules infectées. Les techniques de détermination du titre pfu d'une solution virale sont bien documentées dans la littérature.
Le procédé selon la présente invention est particulièrement avantageux pour le traitement des traumatismes médullaires ou des maladies de dégénérescence motoneuronale. Les traumatismes médullaires correspondent plus particulièrement à des sections au niveau des motoneurones qui les privent de leurs afférences provenant des centres supérieurs et entrainent leur dégénérescence. Le transfert de gènes codant des facteurs de croissance dans les motoneurones sous lésionnels par transport rétrograde selon l'invention offre maintenant la possibilité de réduire voire empêcher cette dégénérescence. S'agissant de neuropathies du motoneurone, on peut citer par exemple la sclérose latérale amyotrophique, les amyotrophies spinales de type I (maladie de Werdnig Hoffman) de type II ou III (maladie de Kugelberg-Welander), les amyotrophies spinales bulbaires (telles que la maladie de Kennedy). Le transfert de gènes codant pour des facteurs de croissance ou autres molécules connues pour exercer un effet neurotrophique sur le motoneurone en dégénérescence selon la présente invention offre également une nouvelle voie pour le traitement de ce type de pathologies. L'efficacité du procédé de l'invention peut en particulier être mise en évidence sur modèle animaux : modèle de section partielle ou complète de la moelle épinière, souris Wobbler (modèle animal d'étude de la sclérose latérale amyotrophique (Leestma J. E., Am. J. Pathol., 100, 821-824)); souris mnd ("motoneurone degeneration" : modèle animal d'étude de la sclérose latérale amyotrophique (Messer et al., 1992, Genomics, 18, 797-802)) ou souris pmn ("progressive motoneurone neuropathy" : modèle animal d'étude de la dégénérescence motoneuronale lors du développement), comme illustré dans les exemples. L'incorporation, la tolérance et l'inocuité pour l'homme peuvent être testés sur des modèles in vitro de culture de neurones médullaires embryonnaires humains.
A cet égard, l'acide nucléique d'intérêt incorporé dans les vecteurs adénoviraux selon l'invention code préférentiellement pour une substance neuroactive, c'est-à-dire capable d'exercer un effet bénéfique sur les cellules nerveuses. Il peut s'agir d'une substance capable de compenser un déficit en ou de réduire un excès d'une substance endogène, ou également d'une substance conférant aux cellules des propriétés nouvelles. II peut s'agir plus particulièrement d'un facteur de croissance, d'un facteur neurotrophique, d'une cytokine, d'un neurotransmetteur ou encore d'une enzyme, ou d'un récepteur de neurotr ansmetteur ou d'hormone.
Préférentiellement, parmi les facteurs de croissance, on peut citer les facteurs de stimulation des colonies (G-CSF, GM-CSF, M-CSF, CSF, etc), ou les facteurs de croissance des fibroblastes (FGFa, FGFb) ou des cellules vasculaires (NEGF). Parmi les facteurs neurotrophiques, les facteurs préférés sont notamment le facteur neurotrophique ciliaire (CΝTF), les facteurs de maturation des cellules gliales (GMFa.b) le GDΝF, le BDΝF, le ΝT3, le NT5, etc. Les cytokines préférées sont les interleukines et les interférons et, parmi les enzymes, on utilise préférentiellement les enzymes de biosynthèse de neurotransmetteurs (tyrosine hydroxylase, acétyl choline transférase, glutamic acide décarboxylase), les enzymes lysosomales (héxosaminidases, arylsulfatase, glucocérébrosidase, HGPRT), les enzymes impliqués dans la détoxification des radicaux libres (superoxyde dismutase I, II ou III, catalase, gluthation peroxydase). Parmi les récepteurs, on utilisera entre autres les récepteurs aux androgènes (impliqués dans la maladie de Kennedy).
Ces différents facteurs peuvent être utilisés sous forme native, ou sous forme de variant ou fragment ayant une activité de même type.
Il est également possible de transférer des séquences antisens.
L'acide nucléique peut être d'origine naturelle ou artificielle. Il peut s'agir notamment d'ADN génomique (ADNg), d'ADN complémentaire (ADNc), de séquences hybrides ou de séquences synthétiques ou semi-synthétiques. Il peut être d'origine humaine, animale, végétale, bactérienne, virale, etc. Il peut être obtenu par toute technique connue de l'homme du métier, et notamment par criblage de banques, par synthèse chimique, ou encore par des méthodes mixtes incluant la modification chimique ou enzymatique de séquences obtenues par criblage de banques. Il s'agit préférentiellement d'ADNc ou d'ADNg.
Généralement, l'acide nucléique comprend également une région promotrice de la transcription fonctionnelle dans les motoneurones, ainsi qu'une région située en 3' du gène d'intérêt, et qui spécifie un signal de fin transcriptionnelle et un site de polyadénylation. L'ensemble de ces éléments constitue la cassette d'expression. Concernant la région promotrice, il peut s'agir d'une région promotrice naturellement responsable de l'expression du gène considéré lorsque celle-ci est susceptible de fonctionner dans la cellule infectée. Il peut également s'agir de régions d'origine différente (responsables de l'expression d'autres protéines, ou même synthétiques). Notamment, il peut s'agir de séquences promotrices de gènes eucaryotes ou viraux. Par exemple, il peut s'agir de séquences promotrices issues du génome de la cellule que l'on désire infecter. De même, il peut s'agir de séquences promotrices issues du génome d'un virus, y compris l'adénovirus utilisé. A cet égard, on peut citer par exemple les promoteurs des gènes E1A, MLP, CMV, RSN, etc. En outre, ces régions promotrices peuvent être modifiées par addition de séquences d'activation, de régulation, ou permettant une expression tissu-spécifique ou majoritaire (promoteurs GFAP, enolase, etc). Par ailleurs, lorsque l'acide nucléique hétérologue ne comporte pas de séquences promotrices, il peut être inséré dans le génome du virus en aval d'une telle séquence. La présente invention a également pour objet une méthode pour le transfert d'acides nucléiques dans les motoneurones comprenant .administration musculaire d'un vecteur adénoviral incoporant ledit acide nucléique dans son génome. Préférentiellement, la méthode selon l'invention est réalisée par injection(s) en plusieurs points d'un même muscle ou, lorsque le point d'insertion du nerf est reperable, par une ou plusieurs injections au niveau ou proche (s) dudit point
La présente invention sera décrite plus en détail à l'aide des exemples qui suivent, qui doivent être considérés comme illustratifs et non limitatifs.
Légende des figures
FIGURE 1 (PHOTO A):
Marquage β-Galactosidase de coupes longitudinales (50 μm) de moelle épinière de rat au niveau lombaire, après injection intramusculaire d'adénovirus β-Galactosidase dans le muscle gastrocnémien.
- marquage diffus de nombreux corps cellulaires motoneuronaux (Δ). - marquage plus intense de quelques motoneurones au niveau du corps cellulaire et des neurites, mettant en évidence la morphologie typique des motoneurones (A).
FIGURE 2 (PHOTO B) : idem A, grossissement supérieur.
Marquage β-Galactosidase de coupes longitudinales (50 μm) de moelle épinière de rat au niveau lombaire, après injection intramusculaire d'adénovirus β-Galactosidase dans le muscle gastrocnémien.
FIGURE 3 (PHOTO C):
Co-marquage β-Galactosidase-Immunocytochimie "Calcitonin Gène Related Peptide" (CGRP) de coupes longitudinales (50 μm) de moelle épinière de rat au niveau lombaire, après injection intramusculaire d'adénovirus β-Galactosidase dans le muscle gastrocnémien.
Exemples
1. Injection de l'adénovirus b-Galactosidase dans le muscle gastrocnémien chez le rat intact ou chez le rat ayant subi une hémisection thoracique de la moelle épinière. Cet exemple décrit le transfert du gène b-gal au niveau des motoneurones lombaires par administration dans le muscle gastrocnémien d'un adénovirus incorporant ledit gène.
Plus particulièrement, l'étude a été réalisée sur un modèle de section partielle ou complète de la moelle épinière de rat pratiquée au niveau thoracique bas ayant pour effet de paralyser l'animal pour l'un ou ses deux membres inférieurs. Une telle section prive les motoneurones de leurs afférences provenant des centres supérieurs et en entraine la dégénérescence. L'adnώustration a été réalisée de manière à infecter les motoneurones sous lésionnels par transport rétrograde.
Le vecteur adéno viral utilisé dans cet exemple est le vecteur Ad.RSV.βgal. Ce vecteur est dépourvu des séquences nécessaires à sa réplication, mais comporte néanmoins les séquences nécessaires pour pénétrer dans les cellules infectables par celui- ci ainsi que l'ensemble des séquences essentielles nécessaires à l'encapsidation de cet adénovirus. Il porte également, sous le contrôle du promoteur RSV, le gène de la β galactosidase de E.coli. La construction de l'adénovirus recombinant défectif Ad.RSVβgal a été décrite dans la littérature (Stratford-Perricaudet et al., J. Clin. Invest. 90 (1992) 626). Brièvement, l'adénovirus Ad.RSVbGal est un adénovirus recombinant défectif (délété des régions El et E3 ) obtenu par recombinaison homologue in vivo entre l'adénovirus mutant Ad-dl324 (Thimmappaya et al., Cell 31 (1982) 543) et le plasmide pAd.RSVbGal (Akli et al. 1993).
Le plasmide pAd.RSVbGal contient, dans l'orientation 5'->3',
- le fragment PvuII correspondant à l'extrémité gauche de l'adénovirus Ad5 comprenant : la séquence ITR, l'origine de réplication, les signaux d'encapsidation et l'amplificateur E1A; - le gène codant pour la b-galactosidase sous le contrôle du promoteur RSN
(du virus du sarcome de Rous),
- un second fragment du génome de l'adénovirus Ad5, qui permet la recombinaison homologue entre le plasmide pAd.RSVbGal et l'adénovirus dl324.
Après linéarisation par l'enzyme Clal, le plasmide pAd.RSVbGal et l'adénovirus dl324 sont co-transfectés dans la Ugnée 293 en présence de phosphate de calcium pour permettre la recombinaison homologue. Les adénovirus recombinants ainsi générés sont sélectionnés par purification sur plaque. Après isolement, l'ADΝ de l'adénovirus recombinant est amplifié dans la lignée cellulaire 293, ce qui conduit à un surnageant de culture contenant l'adénovirus défectif recombinant non purifié ayant un titre d'environ lOlO pfu/ml. Les particules virales sont ensuite purifiées par centrifugation sur gradient de chlorure de césium selon les techniques connues (voir notamment Graham et al., Virology 52 (1973) 456). L'adénovirus a ensuite été utilisé sous forme purifiée dans une solution saline phosphate (PBS).
Trois injections d'adénovirus Ad-RSV-b-Gal (10^ pfu par injection) ont été pratiquées dans le muscle gastrocnémien, juste après que l'animal ait subi (ou pas) une hémisection de la moelle épinière (niveau thoracique bas, ayant pour effet de paralyser l'animal pour l'un de ses membres inférieurs). 9 μl d'adénovirus sont injectés par point d'injection à la seringue Hamilton.
Les animaux ont été sacrifiés (perfusion 4% paraformaldéhyde) quatre jours après injection, temps minimum pour que le transport rétrograde s'effectue du muscle à la moelle épinière. Trois blocs de moelle épinière ont été coupés longitudinalement aux niveaux cervical, thoracique et lombaire, en coupes de 50 mM d'épaisseur. Les coupes ont été traitées pour la révélation de la β-Galactosidase permettant de mettre en évidence les cellules ayant été infectées par le virus. Certaines coupes ont de plus subi une immunocytochimie anti-"Calcitonin Gène Related Peptide" (CGRP), permettant de marquer spécifiquement les motoneurones.
La β-Galactosidase a été révélée à partir de son substrat, le X-Gal, et le produit de la réaction donne une coloration bleue.
Le "Calcitonin Gène Related Peptide", CGRP, est un neurotransmetteur, marqueur spécifique des motoneurones. Il est révélé par immunocytochimie avec un anticorps secondaire couplé à la péroxidase et comme substrat de l'enzyme la diaminobenzidine; le produit de la réaction donne une coloration marron.
La révélation de la b-Galactosidase a permis de mettre en évidence la présence de motoneurones infectés, exclusivement au niveau lombaire, sous lésionnel dans le cas des rats hémisectionnés, et du coté correspondant à l'injection.
Deux types de marquage ont été obtenus, un marquage diffus du corps cellulaire d'un grand nombre de motoneurones, et un marquage plus intense du corps cellulaire et des neurites d'un nombre plus limité de motoneurones (photos A et B). Cette différence d'intensité de marquage est probablement due au fait que seulement quelques motoneurones, très proches du site d'injection, ont pu absorber le virus de façon intense.
L'immunocytochimie anti-CGRP couplée à la révélation b-Galactosidase a permis de mettre en évidence par une double coloration que la quasi totalité des corps cellulaires CGRP positifs (i.e. motoneurones) étaient infectés par le virus (photo C).

Claims

REVENDICATIONS
1. Utilisation d'un adénovirus recombinant comprenant dans son génome un acide nucléique d'intérêt pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée au transfert dudit acide nucléique dans les motoneurones médullaires cervicaux par administration dans les muscles des membres supérieurs (exemple :biceps, triceps).
2. Utilisation d'un adénovirus recombinant comprenant dans son génome un acide nucléique d'intérêt pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée au transfert dudit acide nucléique dans les motoneurones médullaires thoraciques par administration dans les muscles du thorax (ex. pectoraux).
3. Utilisation d'un adénovirus recombinant comprenant dans son génome un acide nucléique d'intérêt pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée au transfert dudit acide nucléique dans les motoneurones médullaires lombaire et/ou sacré par administration dans les muscles des membres inférieurs (gastrocnémien par exemple) .
4. Utilisation d'un adénovirus recombinant dont le génome est dépourvu de tout ou partie de la région El et de tout ou partie de la région E3 et/ou E4, comprend un acide nucléique d'intérêt, pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée au transfert dudit acide nucléique dans les motoneurones médullaires par administration intramusculaire.
5. Utilisation selon l'une quelconques des revendications 1 à 4 caractérisée en ce que l'adénovirus est un adénovirus d'origine humaine.
6. Utilisation selon l'une quelconques des revendications 1 à 4 caractérisée en ce que l'adénovirus est un adénovirus d'origine animale.
7. Utilisation selon l'une des revendications précédentes caractérisée en ce que l'acide nucléique d'intérêt est inséré dans le génome de l'adénovirus au niveau de la région El, E3 ou E4.
8. Utilisation selon l'une quelconques des revendications 1 à 4 caractérisée en ce que l'acide nucléique d'intérêt code pour une substance neuroactive.
9. Utilisation selon la revendication 8 caractérisée en ce que l'acide nucléique d'intérêt code pour un facteur de croissance, un facteur neurotrophique, une cytokine, un neurotransmetteur ou une enzyme, ou un récepteur.
10. Utilisation selon la revendication 8 caractérisée en ce que l'acide nucléique d'intérêt comprend en outre des signaux permettant l'expression de la substance neuroactive dans les motoneurones.
11. Utilisation selon l'une quelconques des revendications 1 à 4 caractérisée en ce que administration intramusculaire est réalisée par injections en plusieurs points d'un même muscle.
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