JP2007091745A - ペプチド及びその用途 - Google Patents
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Abstract
【課題】本質的にスギ花粉アレルゲンのＴ細胞エピトープのみからなるペプチド、および有効成分として上記ペプチドを含んでなる抗スギ花粉症剤の提供。
【解決手段】本質的にスギ花粉アレルゲンのＴ細胞エピトープのみからなるペプチドをコードする特定のアミノ酸配列から成るペプチド、および前記ペプチドを有効成分とする抗花粉症剤。該ペプチドは、スギ花粉アレルゲンに特異的なイムノグロブリンＥ抗体に反応しないので、アナフィラキシーを引き起こすことなく、スギ花粉に特異的なＴ細胞を不活化することができる。
【選択図】なし
【解決手段】本質的にスギ花粉アレルゲンのＴ細胞エピトープのみからなるペプチドをコードする特定のアミノ酸配列から成るペプチド、および前記ペプチドを有効成分とする抗花粉症剤。該ペプチドは、スギ花粉アレルゲンに特異的なイムノグロブリンＥ抗体に反応しないので、アナフィラキシーを引き起こすことなく、スギ花粉に特異的なＴ細胞を不活化することができる。
【選択図】なし
Description
この発明は、スギ花粉アレルゲンに特異的に反応するＴ細胞を不活性化するペプチド、及び、そのペプチドを有効成分として含んでなる免疫療法剤に関する。
ここ数十年来、我国においては、春先になるとスギ花粉症による鼻炎や結膜炎を訴える人の数が増加し続けている。スギ花粉症はアルレギー症の一種であり、その主因はスギ花粉中の抗原性物質、すなわち、スギ花粉症アレルゲンであるといわれている。大気中に飛散したスギ花粉がヒトの体内に侵入すると、スギ花粉アレルゲンに対するイムノグロブリンＥ抗体が産生する。この状態で次にスギ花粉が侵入すると、その花粉中のアレルゲンとこのイムノグロブリンＥ抗体が免疫反応を起し、アレルギー症状を呈することとなる。
スギ花粉中に抗原性の相違する少なくとも二種類のアレルゲンの存在することが現在までに知られている。その一つは、ヤスエダ等が『ジャーナル・オブ・アレルギー・アンド・クリニカル・イムノロジー』、第７１巻、第１号、第７７〜８６頁（１９８３年）に報告しているアレルゲンであり（非特許文献１）、今日、これは「Ｃｒｙｊ１」と呼称されている。なお、Ｃｒｙｊ１ はその全長アミノ酸配列が決定され、国際出願されている（ＷＯ ９３／０１２１３：特許文献１）。
もう一つは、タニアイ等『エフ・イー・ビー・エス・レターズ』、第２３９巻、第２号、第３２９〜３３２頁（１９８８年）（非特許文献２）やサカグチ等『アレルギー』、第４５号、第３０９〜３１２頁（１９９０年）（非特許文献３）に報告されているアレルゲンであり、今日、これは「Ｃｒｙ ｊ ２」と呼称されている。なお、Ｃｒｙ ｊ ２はその全長アミノ酸配列が決定され、国際出願されている（ＷＯ ９４／１１５１２：特許文献２）。また、 Komiyama らも別個にＣｒｙｊ２の全長アミノ酸配列を決定しているがBiochem. Biophys. Res, Comm., vol.201, No.2, 1021-1028, (1994)（非特許文献４）、ＷＯ ９４／１１５１２（特許文献２）記載のアミノ酸配列とはアミノ酸残基が４か所異なっている。
スギ花粉中には、通常、Ｃｒｙｊ１とＣｒｙｊ２が約５０：１乃至５：１の割合で存在し、花粉症患者から採取した血清の殆どがＣｒｙｊ１にもＣｒｙｊ２にも反応すると云われている。澤谷らは、『アレルギー』、第４２巻、第６号、第７３８〜７４７頁（１９９３年）において、Ｃｒｙｊ２は、皮内反応試験やＲＡＳＴ試験において、Ｃｒｙｊ１と同程度の抗原性を発揮すると報告している（非特許文献５）。
このように、スギ花粉アレルゲンが既に幾つか単離され、その性質、性状もある程度解明されたことから、精製スギ花粉アレルゲンをヒトに投与して減感作することにより、スギ花粉症を治療・予防できる見通しがついてきた。最近ではそのための減感作剤も幾つか考案されており、例えば、特開平１−１５６９２６号公報（特許文献３）や特開平３−９３７３０号公報（特許文献４）には、Ｎ末端からのアミノ酸配列がＡｓｐ−Ａｓｎ−Ｐｒｏ−Ｉｌｅ−Ａｓｐ−Ｓｅｒ又はＡｌａ−Ｉｌｅ−Ａｓｎ−Ｉｌｅ−Ｐｈｅ−Ａｓｎで表わされるスギ花粉アレルゲンに糖質を共有結合せしめ、生成した複合体を減感作剤としてヒトに投与する提案が為されている。
しかしながら、アレルギー症の診断や減感作療法には、通常、高純度のアレルゲンが大量に必要とされ、スギ花粉中のアレルゲンは僅少であるうえに安定性が低く、スギ花粉症の診断剤や減感作剤をスギ花粉だけで賄おうとすると、多大の困難が伴なう。このようなことから、最近のアレルギー疾患の治療・予防においては、これまでのように、患者にアレルゲン全体を投与するのではなく、アレルゲン中のＴ細胞が特異的に認識する最小領域、すなわち、本質的にＴ細胞エピトープのみからなる低分子のペプチドを投与する免疫療法が注目されている。
一般に、アレルゲンは、マクロファージなどの抗原提示細胞に取込まれると、そこで消化され、消化断片が免疫提示細胞表層のＨＬＡ（Human Leucocyte Antigen ）蛋白質に結合し、抗原提示されることとなる。抗原提示される断片は、ＨＬＡ蛋白質に対する親和性などにより、アレルゲンにおける一部の特定領域に限られ、斯かる領域のうち、Ｔ細胞が特異的に認識する領域は、通常、「Ｔ細胞エピトープ」と呼称される。実質的にＴ細胞エプトープのみからなるペプチドを投与する免疫療法には、
(i) ペプチドがＢ細胞エピトープを欠いている、すなわち、アレルゲンに特異的なイムノグロブリンＥ抗体が反応しないので、従来の粗製又は精製アレルゲンで頻発していたアナフィラキシーなどの副作用が起こり得ない。
(ii) 少量からスタートし、有効投与量に達するまでの期間が、従来の減感作剤に比較して、大幅に短縮できる。
(iii) 経口免疫寛容を誘導し、アレルゲンに対するアレルギー反応を減弱することができる。
などの利点がある。
(i) ペプチドがＢ細胞エピトープを欠いている、すなわち、アレルゲンに特異的なイムノグロブリンＥ抗体が反応しないので、従来の粗製又は精製アレルゲンで頻発していたアナフィラキシーなどの副作用が起こり得ない。
(ii) 少量からスタートし、有効投与量に達するまでの期間が、従来の減感作剤に比較して、大幅に短縮できる。
(iii) 経口免疫寛容を誘導し、アレルゲンに対するアレルギー反応を減弱することができる。
などの利点がある。
本発明者らは、上記Ｔ細胞エピトープを構成する最小単位のアミノ酸配列を見出し、本発明を完成した。この発明の第一の課題は、本質的にスギ花粉アレルゲンのＴ細胞エピトープのみからなるペプチドを提供することにある。この発明の第二の課題は、有効成分として上記ペプチドを含んでなる抗スギ花粉症剤を提供することにある。
本発明は、
（１）配列番号７のアミノ酸配列から成るペプチド、
（２）配列番号８のアミノ酸配列から成るペプチド、
（３）配列番号９のアミノ酸配列から成るペプチド、
（４）配列番号１０のアミノ酸配列から成るペプチド、
（５）配列番号１１のアミノ酸配列から成るペプチド、
（６）配列番号７のアミノ酸配列から成るペプチドを有効成分とする抗スギ花粉症剤、
（７）配列番号８のアミノ酸配列から成るペプチドを有効成分とする抗スギ花粉症剤、
（８）配列番号９のアミノ酸配列から成るペプチドを有効成分とする抗スギ花粉症剤、
（９）配列番号１０のアミノ酸配列から成るペプチドを有効成分とする抗スギ花粉症剤、
（１０）配列番号１１のアミノ酸配列から成るペプチドを有効成分とする抗スギ花粉症剤、
（１１）更に、ぶどう糖、果糖、しょ糖、麦芽糖、乳糖、トレハロース、ソルビトール、マンニトール、マルチトールおよび／またはラクチトールを含む、前記抗スギ花粉症剤、
に関する。
（１）配列番号７のアミノ酸配列から成るペプチド、
（２）配列番号８のアミノ酸配列から成るペプチド、
（３）配列番号９のアミノ酸配列から成るペプチド、
（４）配列番号１０のアミノ酸配列から成るペプチド、
（５）配列番号１１のアミノ酸配列から成るペプチド、
（６）配列番号７のアミノ酸配列から成るペプチドを有効成分とする抗スギ花粉症剤、
（７）配列番号８のアミノ酸配列から成るペプチドを有効成分とする抗スギ花粉症剤、
（８）配列番号９のアミノ酸配列から成るペプチドを有効成分とする抗スギ花粉症剤、
（９）配列番号１０のアミノ酸配列から成るペプチドを有効成分とする抗スギ花粉症剤、
（１０）配列番号１１のアミノ酸配列から成るペプチドを有効成分とする抗スギ花粉症剤、
（１１）更に、ぶどう糖、果糖、しょ糖、麦芽糖、乳糖、トレハロース、ソルビトール、マンニトール、マルチトールおよび／またはラクチトールを含む、前記抗スギ花粉症剤、
に関する。
本発明により、本質的にスギ花粉アレルゲンに特異的なＴ細胞エピトープのみからなる新規ペプチド群、さらにはそれらのポリペプチドを有効成分として含んでなる抗スギ花粉症剤を提供することができた。そして、本発明のペプチドは、スギ花粉アレルゲンに特異的なイムノグロブリンＥ抗体に実質的に反応しないので、ヒトを含む哺乳類一般に投与すると、実質的にアナフィラキシーを引起こすことなく、スギ花粉アレルゲンに特異的なＴ細胞を不活性化することができる。
以下、本発明を詳しく説明する。本発明における好ましいペプチドの例は表１の通りである。
なお、上記のペプチド１は、配列表の配列番号１のアミノ酸配列で示されるペプチド、上記のペプチド２は、配列表の配列番号２のアミノ酸配列で示されるペプチド、上記のペプチド３は、配列表の配列番号３のアミノ酸配列で示されるペプチド、上記のペプチド４は、配列表の配列番号４のアミノ酸配列で示されるペプチド、上記のペプチド５は、配列表の配列番号５のアミノ酸配列で示されるペプチド、上記のペプチド６は、配列表の配列番号６のアミノ酸配列で示されるペプチド、上記のペプチド７は、配列表の配列番号７のアミノ酸配列で示されるペプチド、上記のペプチド８は、配列表の配列番号８のアミノ酸配列で示されるペプチド、上記のペプチド９は、配列表の配列番号９のアミノ酸配列で示されるペプチド、上記のペプチド１０は、配列表の配列番号１０のアミノ酸配列で示されるペプチド、上記のペプチド１１は、配列表の配列番号１１のアミノ酸配列で示されるペプチド、をそれぞれ示す。
上記（１）乃至（１１）に記載のペプチドは、「固相法」又は「液相法」として知られる斯界において慣用のペプチド合成法により、容易に調製することができる。例えば、社団法人日本生化学会編『新生化学実験講座』、第１巻、「タンパク質ＶＩ」、第３〜４４頁、１９９２年、東京化学同人発行などにはペプチド合成の詳細が記載されている。また、該ペプチドは、マルチペプチドシンセサイザー SYMPHONY （プロティンテクノロジー社製）を用い、Fmoc (9-fluorenyl methyloxycarbonyl) 固相合成法にて同装置のプロトコールに従って合成することができる。すなわち、合成する各ペプチドのＣ末端に相当するアミノ酸が導入されている Fmoc-L-アミノ酸 Wang 樹脂を上記ペプチド合成装置の反応容器にセットし、デプロテクション溶液を用いて Fmoc を除く。さらにＣ末端から２番目のアミノ酸に相当するアミノ酸溶液とアクチベーター溶液を反応せしめ、反応後再び Fmoc 基のデプロテクションを行い、同様の操作を繰り返すことにより、目的とするペプチドを合成することができる。
本発明のペプチドは化学合成により調製されたものに限定されず、例えば、スギの花粉又は雄花から採取するか、組換えＤＮＡ技術により調製したスギ花粉アレルゲンを適宜分解し、分解物から採取したものであってもよく、また、例えば、上記（１）乃至（１１）に記載されたペプチドをコードするＤＮＡを調製し、これを自律複製可能なベクターに挿入して組換えＤＮＡとし、これを大腸菌、枯草菌、放線菌、酵母などの適宜宿主に導入して形質転換体とし、その培養物からこの発明のペプチドを採取してもよい。
さらに、この発明のペプチドは、斯くして得られるペプチドに糖質やポリエチレングリコールを付加して得られる複合体としての形態、さらには、ペプチドをアセチル化、アミド化及び／又は多官能試験により架橋重合させて得られる誘導体又は重合体としての形態であってもよい。
この発明のペプチドは、比較的粗な形態で投与しても所期の治療・予防効果を発揮するが、通常は使用に先立って精製される。精製には、例えば、濾過、濃縮、遠心分離、ゲル濾過クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、ゲル電気泳動、等電点電気泳動などのペプチド乃至蛋白質を精製するための斯界における慣用の方法が用いられ、必要に応じて、これら方法を適宜組合せればよい。そして、最終使用形態に応じて、精製したペプチドを濃縮、凍結乾燥して液状又は固状にすればよい。本発明のペプチドがＴ細胞エピトープとしての活性を有することは、スギ花粉アレルゲンに特異的なＴ細胞のトリチウム化チミジンの取込を計測することにより確認することができる。
すなわち、フィコール・ハイパック比重遠心法等により花粉症患者の末梢血単核細胞群を分離し、この細胞群をＲＰＭＩ１６４０等の培地に浮遊させ、９６穴マイクロプレート上に分注する。次に、被検物質であるペプチドを加え培養する。この培養の温度、時間等の条件は各実験毎に適宜調整することができるが、３７℃、３日間が好適である。その後トリチウム化チミジンを培地に加え、さらに一定時間培養を続け、単核細胞群におけるトリチウム化チミジンの取込み量を測定することにより、本発明のペプチドのＴ細胞エピトープとしての活性を算定することができる。なお、本発明では、同時にペプチドを含まない系を設けてこれを陰性対照とし、トリチウム化チミジンの取込み量が陰性対照の２倍以上に達した系を「陽性」、達しなかった系を「陰性」とした。
本発明のペプチドは、スギ花粉アレルゲンに特異的なイムノグロブリンＥ抗体に実質的に反応しないので、ヒトを含む哺乳類一般に投与すると、実質的にアナフィラキシーを引き起こすことなく、スギ花粉アレルゲンに特異的なＴ細胞を不活性化することができる。
有効成分としてかかるペプチドを含んでなる本発明の抗スギ花粉症剤は、ヒトを含む哺乳類一般に投与すると、実質的にアナフィラキシーを引起こすことなくスギ花粉症に対して顕著な治療・予防効果を発揮する。有効成分としてこの発明のペプチドを含んでなる抗スギ花粉症剤は、スギ花粉症に罹患したヒトを含む哺乳類一般に投与すると、アナフィラキシーなどの副作用を実質的に引起こすことなく、スギ花粉症を治療することができる。一方、この発明の抗スギ花粉症例を、スギ花粉が飛散し始める前に健常な個体や潜在的なスギ花粉症の個体に投与するときには、スギ花粉症に対して顕著な予防効果を発揮するとともに、発症時のアレルギー症状の緩解に著効を発揮する。
この発明の抗スギ花粉症剤につきさらに詳しく説明すると、この発明の抗スギ花粉症剤は、通常、この発明によるペプチドの１種又は２種以上を０.０１乃至１００％(w/w) 、望ましくは、０.０５乃至５０％(w/v) 、さらに望ましくは、０.５乃至５.０％(w/w) 含んでなる。この発明の抗スギ花粉症剤は、当該ペプチド単独の形態はもとより、その以外の生理的に許容される、例えば、血清アルブミン、ゼラチン、ぶどう糖、果糖、しょ糖、麦芽糖、乳糖、トレハロース、ソルビトール、マンニトール、マルチトール、ラクチトール、りん酸緩衝液剤もしくはクエン酸緩衝液剤を主体とする担体、賦形剤、免疫助成剤および安定剤、さらには、必要に応じて、スギ花粉に特異的な公知のＴ細胞エピトープ、ステロイドホルモンやクリモグリク酸ナトリウムなどの抗炎症剤や抗ヒスタミン剤及び免疫抑制剤を含む１種又は２種以上の他の薬剤との組成物としての形態を包含する。さらに、この発明の抗スギ花粉症剤は、投薬単位形態の薬剤をも包含し、その投薬単位形態の薬剤とは、この発明のポリペプチドを、例えば、１日当たりの用量又はその整数倍（４倍まで）又はその約数（１／４０まで）に相当する量を含有し、投与に適する物理的に分離した一体の剤形にある薬剤を意味する。このような投薬単位形態の薬剤としては、散剤、細粒剤、顆粒剤、丸剤、錠剤、カプセル剤、トローチ剤、シロップ剤、乳剤、軟こう剤、硬膏剤、パップ剤、坐剤、点眼剤、点鼻剤、噴霧剤、注射剤などが挙げられる。
この発明の抗スギ花粉症剤の使用方法について説明すると、この発明の抗スギ花粉症剤は、スギ花粉症の治療・予防を目的に、ヒトを含む哺乳類一般に経皮、経口、点鼻、点眼又は注射投与される。ヒトにおける投与量は、投与の目的や症状に依っても変わるが、通常、対象者の症状や投与後の経過を観察しながら、成人１日当たり本発明のポリペプチドの量にして０.０１乃至１.０g 、望ましくは、０.０１乃至０.１g を目安に、毎週１回乃至毎月１回の頻度で、約１乃至６カ月間、通常、用量を増やしながら反復投与される。
本発明のポリペプチドの急性毒性
常法により、生後２０日のマウスに後述の製剤例１乃至４の方法により得た免疫治療剤を経口又は腹腔内投与した。その結果、これら抗スギ花粉症剤は、いずれの投与経路によっても２００mg/kg 以上のLD50であることが判明した。このことは、この発明のペプチドが、ヒトを含むほ乳類に対する抗スギ花粉症剤に安全に配合使用し得ることを示している。
常法により、生後２０日のマウスに後述の製剤例１乃至４の方法により得た免疫治療剤を経口又は腹腔内投与した。その結果、これら抗スギ花粉症剤は、いずれの投与経路によっても２００mg/kg 以上のLD50であることが判明した。このことは、この発明のペプチドが、ヒトを含むほ乳類に対する抗スギ花粉症剤に安全に配合使用し得ることを示している。
試験例１
スギ花粉症患者由来のＴ細胞を用い、本発明のペプチド１ないし１１がスギ花粉症抗原Ｔ細胞エピトープ活性を有することを以下に記載する方法により確認した。
スギ花粉症患者由来のＴ細胞を用い、本発明のペプチド１ないし１１がスギ花粉症抗原Ｔ細胞エピトープ活性を有することを以下に記載する方法により確認した。
抗スギ花粉アレルゲンIgE反応に陽性を示す患者から４０ｍｌの末梢血を採取した。遠心分離後、バフィーコートを得て、さらにフィコール・ハイパック比重遠心法により、末梢血単核球（Peripheral Blood Mononuclear Cells; ＰＢＭＣ）を採取した。このＰＢＭＣを培地（５％のヒトＡＢ型血清を含むＲＰＭＩ）に懸濁した。
９６穴の平底プレートに１ウェルあたり５×１０5個の細胞を分注し、各ウェル２００ｎｇのペプチド１ないし１１を含む２００μｌの培地中で３７℃、５％炭酸ガス下で７２時間培養した。また別に、ペプチドを含まない培養群を設けてこれを陰性対照とした。その後、０．５μＣｉのトリチウム化チミジンを加え、さらに１６時間培養した。セルハーベスターを用いて各ウェルの細胞をガラス繊維フィルター上に集め、それぞれ液体シンチレーションカウンターで細胞に取込まれたトリチウム化チミジン量を測定した。取込みチミジン量が陰性対照群の取込み量の２倍以上であった群をＴ細胞エピトープ活性「陽性」とし、達しなかった系を「陰性」とした。
この結果を以下の表２に示す。
この結果を以下の表２に示す。
以上の結果より、これらのペプチドは、Ｃｒｙｊ１アレルゲンのＴ細胞エピトープを含有していることが示された。配列表における配列番号１乃至１１に示すアミノ酸配列を有するＴ細胞エピトープは未だ知られておらず、新規Ｔ細胞エピトープと判断される。
以上のように、本発明のペプチドは、ヒトを含む哺乳類一般に投与すると、実質的にアナフィラキシーを引起こすことなく、スギ花粉アレルゲンに特異的なＴ細胞を不活性化することができる。
有効成分として斯かるペプチドを含んでなる本発明の抗スギ花粉症剤は、ヒトを含む哺乳類一般に投与すると、実質的にアナフィラキシーを引起こすことなくスギ花粉症に対して顕著な治療・予防効果を発揮する。有効成分としてこの発明のペプチドを含んでなる抗スギ花粉症剤は、スギ花粉症に罹患したヒトを含む哺乳類一般に投与すると、アナフィラキシーなどの副作用を実質的に引起こすことなく、スギ花粉症を治療することができる。一方、この発明の抗スギ花粉症剤を、スギ花粉が飛散し始める前に健常な個体や潜在的なスギ花粉症の個体に投与するときには、スギ花粉症に対して顕著な予防効果を発揮するとともに、発症時のアレルギー症状の緩解に著効を発揮する。
以下、実施例、製剤例により本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらによりその技術的範囲が限定されるものではない。
〔実施例１〕ペプチド１の合成
樹脂に固定したアミノ酸誘導体に、１個ずつアミノ酸をカルボキシル末端側から結合させていく方法（固相合成法）でペプチドを化学合成した。各サイクルで使用するアミノ酸はアミノ基および残基部分の反応基が保護基でブロックされた特殊なアミノ酸誘導体を用いた。ここで、それぞれのアミノ基がFmoc (9-フルオレニル・メチロキシカルボニル）によりブロックされているアミノ酸を用いた（Fmoc法)。またペプチド合成は樹脂に結合したアミノ酸のアミノ基のFmocを脱保護し、次にカルボキシル基が活性化したアミノ酸誘導体を結合させるという反応を順次繰り返して行なった。
〔実施例１〕ペプチド１の合成
樹脂に固定したアミノ酸誘導体に、１個ずつアミノ酸をカルボキシル末端側から結合させていく方法（固相合成法）でペプチドを化学合成した。各サイクルで使用するアミノ酸はアミノ基および残基部分の反応基が保護基でブロックされた特殊なアミノ酸誘導体を用いた。ここで、それぞれのアミノ基がFmoc (9-フルオレニル・メチロキシカルボニル）によりブロックされているアミノ酸を用いた（Fmoc法)。またペプチド合成は樹脂に結合したアミノ酸のアミノ基のFmocを脱保護し、次にカルボキシル基が活性化したアミノ酸誘導体を結合させるという反応を順次繰り返して行なった。
ペプチド１のぺプチドは、マルチペプチドシンセサイザー（シンフォニー；プロテインテクノロジー社製）を用い、上記のFmoc固相合成法にて同装置のプロトコールに従って合成した。
すなわち、合成するペプチドのＣ末端残基に相当するアミノ酸（Gly)が導入されているFmoc-Gly-Wang樹脂（０．６５ｍｍｏｌ／ｇ）の２５μｍｏｌ相当を上記ペプチド合成装置の反応容器にセットし、デプロテクション溶液（２０％ピぺリジン／ジメチルホルムアミド）１．２５ｍｌを５分間２回反応させ、樹脂に結合しているアミノ酸のFmoc基を除いた。樹脂をジメチルホルムアミド液１．２５ｍｌで３０秒間６回洗浄し、Ｃ末端側から２番目のアミノ酸に相当する１００ｍＭのFmoc-Pheジメチルホルムアミド溶液１．２５ ｍｌに、１００ｍＭのアクチベーター溶液（１００ｍＭ ２−（１Ｈ−ベンゾトリアゾール−１−イル−）−１、１、３、３−テトラメチルウロニウム−ヘキサフルオロホスフェート／４００ｍＭ Ｎ−メチルモルフォリン／ジメチルホルムアミド） １．２５ｍｌを加え （結合アミノ酸に対して５倍等量）、２０分間室温で反応させた。ここで生成した Fmoc- Phe-Gly-Wang 樹脂をジメチルホルムアミド１．２５ｍｌで３０秒間６回洗浄後、再びFmoc基のデプロテクションを行い、ジメチルホルムアミド１．２５ｍｌで３０秒間６回洗浄後、Fmoc-Gln(Trt) 溶液とアクチベーター溶液を加え反応させた。
同様の操作を繰り返すことにより保護ペプチド樹脂(Fmoc- Met-Lys(Boc)-Val-Thr(tBu)-Val-Ala-Phe-Asn(Trt)-Gln(Trt)-Phe-Gly -Wang樹脂)を合成した。
本実施例以下のペプチド合成に使用したアミノ酸は以下の通りである：
Fmoc-Asp(OtBu) Fmoc-Asn(Trt) Fmoc-Ala Fmoc-Glu(OtBu) Fmoc-Gln(Trt) Fmoc-Gly Fmoc-His(Trt) Fmoc-Ile Fmoc-LeuFmoc-Lys(Boc) Fmoc-Met Fmoc-Phe Fmoc-Pro Fmoc-Ser(tBu)Fmoc-Thr(tBu) Fmoc-Trp(Boc) Fmoc-Tyr(tBu) Fmoc-Val
（（ ）内は残基部分の反応基を保護する保護基を表わす。；（株）パーキンエルマージャパンアプライドバイオシステムズ事業部 製）
Fmoc-Asp(OtBu) Fmoc-Asn(Trt) Fmoc-Ala Fmoc-Glu(OtBu) Fmoc-Gln(Trt) Fmoc-Gly Fmoc-His(Trt) Fmoc-Ile Fmoc-LeuFmoc-Lys(Boc) Fmoc-Met Fmoc-Phe Fmoc-Pro Fmoc-Ser(tBu)Fmoc-Thr(tBu) Fmoc-Trp(Boc) Fmoc-Tyr(tBu) Fmoc-Val
（（ ）内は残基部分の反応基を保護する保護基を表わす。；（株）パーキンエルマージャパンアプライドバイオシステムズ事業部 製）
まず、上記のように合成し得られた保護ぺプチド樹脂 (Fmoc- Met-Lys(Boc)-Val-Thr(tBu)-Val-Ala-Phe-Asn(Trt)-Gln(Trt)-Phe-Gly -Wang樹脂)にデプロテクション溶液 1.25ｍｌを5分間2回反応させてＮ末端 Fmoc基を脱保護した。次に1.25mlのＤＭＦにて６回洗浄後、ジクロロメタンにて９回洗浄し、さらに窒素ガスを吹き付けることにより２０分間乾燥させた。
樹脂を取り出し、クリベージ溶液（トリフルオロ酢酸（以下「ＴＦＡ」という）：フェノール：水：チオアニソール：エタンジチオール＝82.5：5：5：5：2.5）を４ｍｌ加え、室温で２時間反応させることにより樹脂からのペプチドの切断およびアミノ酸側鎖保護基の除去を行い、ペプチド溶液を得た［King,D.S.(1990)Int.J.peptide Protein Reg. 36,255]。このぺプチド溶液をフィルターを用いて濾過し、濾液を遠心管に回収した。これに、１０ｍｌの冷エーテルを加え、ペプチドを沈殿させた。しばらく冷却後、これを遠心して（３０００ｒｐｍ，１０分間）沈殿物を集め、再び冷エーテルを加えて分散させては回収する操作を４回繰り返してペプチドを洗浄した。得られたペプチドを乾燥させ、粗ペプチドを得た。以下、上記の操作を「クリベージ反応」という。
得られた粗ペプチドのうち１１．７ｍｇを０．１％のＴＦＡを含む３０％アセトニトリル水溶液に溶解後、高速液体クロマトグラフィー（以下「ＨＰＬＣ」という）に供した。ＨＰＬＣの条件は以下の通りであった。
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相：２５−２８％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，１５分
流速：５ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２２０ｎｍ
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相：２５−２８％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，１５分
流速：５ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２２０ｎｍ
１２〜１４分に溶出された画分を分取し、濃縮後、凍結乾燥を行い目的とするペプチド ４．９ｍｇを得た。この合成したペプチド１００ｐｍｏｌについて、アミノ酸配列装置（ＰＰＳＱ−１０型；島津製作所（株）社製）を用いてアミノ酸配列分析を行なったところ、配列表の配列番号１に示されるアミノ酸配列が確認された。
［実施例２］ペプチド２の合成
C末端がProであるペプチドの合成にはFmoc-Pro-2-Chlorotrityl樹脂を用い実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂 (Fmoc- Ser(tBu)-Met-Lys(Boc)-Val-Thr(tBu)-Val-Ala-Phe-Asn(Trt)-Gln(Trt)-Phe-Gly-Pro-2-Chlorotrityl樹脂 )を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。
C末端がProであるペプチドの合成にはFmoc-Pro-2-Chlorotrityl樹脂を用い実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂 (Fmoc- Ser(tBu)-Met-Lys(Boc)-Val-Thr(tBu)-Val-Ala-Phe-Asn(Trt)-Gln(Trt)-Phe-Gly-Pro-2-Chlorotrityl樹脂 )を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。
得られた粗ペプチドのうち１０ｍｇを０．１％のＴＦＡを含む２０％アセトニトリル水溶液に溶解後、ＨＰＬＣに供した。ＨＰＬＣの条件は以下の通りであった。
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫｇｅｌ ＯＤＳ−８０Ｔ， ７．８ｍｍｘ３００ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相：３０％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，３０分
流速：０．７ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２３０ｎｍ
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫｇｅｌ ＯＤＳ−８０Ｔ， ７．８ｍｍｘ３００ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相：３０％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，３０分
流速：０．７ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２３０ｎｍ
２１〜２２分に溶出された画分を分取し、濃縮後、凍結乾燥を行い目的とするペプチド １．３ｍｇを得た。この合成したペプチド１００ｐｍｏｌについて、アミノ酸配列装置（ＰＰＳＱ−１０型；島津製作所（株）社製）を用いてアミノ酸配列分析を行なったところ、配列表の配列番号２に示されるアミノ酸配列が確認された。
［実施例３］ペプチド３の合成
実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂(Fmoc-Tyr(tBu)-Gly-Leu-Val-His(Trt)-Val-Ala-Asn(Trt)-Asn(Trt)-Asn(Trt)-Tyr(tBu)-Asp(OtBu)-Pro-Trp(Boc)-Thr(tBu)-Ile Wang 樹脂 )を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。
実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂(Fmoc-Tyr(tBu)-Gly-Leu-Val-His(Trt)-Val-Ala-Asn(Trt)-Asn(Trt)-Asn(Trt)-Tyr(tBu)-Asp(OtBu)-Pro-Trp(Boc)-Thr(tBu)-Ile Wang 樹脂 )を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。
得られた粗ペプチドのうち８．９ｍｇを０．１％のＴＦＡを含む２０％アセトニトリル水溶液に溶解後、ＨＰＬＣに供した。ＨＰＬＣの条件は以下の通りであった。
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相：２０−３０％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，２０分
流速：８ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２２０ｎｍ
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相：２０−３０％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，２０分
流速：８ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２２０ｎｍ
１７〜２０分に溶出された画分を分取し、濃縮後、凍結乾燥を行い目的とするペプチド ５．０ｍｇを得た。この合成したペプチド１００ｐｍｏｌについて、アミノ酸配列装置（ＰＰＳＱ−１０型；島津製作所（株）社製）を用いてアミノ酸配列分析を行なったところ、配列表の配列番号３に示されるアミノ酸配列が確認された。
［実施例４］ペプチド４の合成
実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂(Fmoc-Tyr(tBu)-Gly-Leu-Val-His(Trt)-Val-Ala-Asn(Trt)-Asn(Trt)-Asn(Trt)-Tyr(tBu)-Asp(OtBu)-Pro-Trp(Boc)- Wang 樹脂 )を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。得られた粗ペプチドのうち ９ｍｇを０．１％のＴＦＡを含む２０％アセトニトリル水溶液に溶解後、ＨＰＬＣに供した。ＨＰＬＣの条件は以下の通りであった。
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相： ２０−３０％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，２０分
流速：８ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２２０ｎｍ
実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂(Fmoc-Tyr(tBu)-Gly-Leu-Val-His(Trt)-Val-Ala-Asn(Trt)-Asn(Trt)-Asn(Trt)-Tyr(tBu)-Asp(OtBu)-Pro-Trp(Boc)- Wang 樹脂 )を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。得られた粗ペプチドのうち ９ｍｇを０．１％のＴＦＡを含む２０％アセトニトリル水溶液に溶解後、ＨＰＬＣに供した。ＨＰＬＣの条件は以下の通りであった。
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相： ２０−３０％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，２０分
流速：８ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２２０ｎｍ
１３〜１６分に溶出された画分を分取し、濃縮後、凍結乾燥を行い目的とするペプチド ６．４ｍｇを得た。
この合成したペプチド１００ｐｍｏｌについて、アミノ酸配列装置（ＰＰＳＱ−１０型；島津製作所（株）社製）を用いてアミノ酸配列分析を行なったところ、配列表の配列番号４に示されるアミノ酸配列が確認された。
［実施例５］ペプチド５の合成
実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂(Fmoc-Gly-Leu-Val-His(Trt)-Val-Ala-Asn(Trt)-Asn(Trt)-Asn(Trt)-Tyr(tBu)-Asp(OtBu)-Pro-Trp(Boc)-Thr(tBu) Wang 樹脂 )を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。
実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂(Fmoc-Gly-Leu-Val-His(Trt)-Val-Ala-Asn(Trt)-Asn(Trt)-Asn(Trt)-Tyr(tBu)-Asp(OtBu)-Pro-Trp(Boc)-Thr(tBu) Wang 樹脂 )を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。
得られた粗ペプチドのうち８ｍｇを０．１％のＴＦＡを含む２０％アセトニトリル水溶液に溶解後、ＨＰＬＣに供した。ＨＰＬＣの条件は以下の通りであった。
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相： ２０−３０％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，２０分
流速：８ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２２０ｎｍ
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相： ２０−３０％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，２０分
流速：８ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２２０ｎｍ
８〜１１分に溶出された画分を分取し、濃縮後、凍結乾燥を行い目的とするペプチド ４．１ｍｇを得た。
この合成したペプチド１００ｐｍｏｌについて、アミノ酸配列装置（ＰＰＳＱ−１０型；島津製作所（株）社製）を用いてアミノ酸配列分析を行なったところ、配列表の配列番号6に示されるアミノ酸配列が確認された。
［実施例６］ペプチド６の合成
C末端がProであるペプチドの合成にはFmoc-Pro-2-Chlorotrityl樹脂を用い、実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂 (Fmoc-Tyr(tBu)-Gly-Leu-Val-His(Trt)-Val-Ala-Asn(Trt)-Asn(Trt)-Asn(Trt)-Tyr(tBu)-Asp(OtBu)-Pro-2-Chlorotrityl樹脂 )を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。
C末端がProであるペプチドの合成にはFmoc-Pro-2-Chlorotrityl樹脂を用い、実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂 (Fmoc-Tyr(tBu)-Gly-Leu-Val-His(Trt)-Val-Ala-Asn(Trt)-Asn(Trt)-Asn(Trt)-Tyr(tBu)-Asp(OtBu)-Pro-2-Chlorotrityl樹脂 )を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。
得られた粗ペプチドのうち５．５ｍｇを０．１％のＴＦＡを含む２０％アセトニトリル水溶液に溶解後、ＨＰＬＣに供した。ＨＰＬＣの条件は以下の通りであった。
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相： ２１−２６％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，１５分
流速：５ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２２０ｎｍ
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相： ２１−２６％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，１５分
流速：５ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２２０ｎｍ
９〜１０．５分に溶出された画分を分取し、濃縮後、凍結乾燥を行い目的とするペプチド ２．８ｍｇを得た。
この合成したペプチド１００ｐｍｏｌについて、アミノ酸配列装置（ＰＰＳＱ−１０型；島津製作所（株）社製）を用いてアミノ酸配列分析を行なったところ、配列表の配列番号６に示されるアミノ酸配列が確認された。
［実施例７］ペプチド７の合成
実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂(Fmoc- Ser(tBu)- Ser(tBu)-Gly-Lys(Boc)-Tyr(tBu)-Glu(OtBu)-Gly-Gly-Asn(Trt)-Ile-Tyr(tBu)-Thr(tBu)-Lys(Boc)-Lys(Boc)-Glu(OtBu)-Ala-Phe-Asn(Trt)-Val−Wang樹脂）を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。 得られた粗ペプチドのうち １１ｍｇを０．１％のＴＦＡを含む１５％アセトニトリル水溶液に溶解後、ＨＰＬＣに供した。ＨＰＬＣの条件は以下の通りであった。
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相：１５−２５％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，２０分
流速：８ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２２０ｎｍ
実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂(Fmoc- Ser(tBu)- Ser(tBu)-Gly-Lys(Boc)-Tyr(tBu)-Glu(OtBu)-Gly-Gly-Asn(Trt)-Ile-Tyr(tBu)-Thr(tBu)-Lys(Boc)-Lys(Boc)-Glu(OtBu)-Ala-Phe-Asn(Trt)-Val−Wang樹脂）を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。 得られた粗ペプチドのうち １１ｍｇを０．１％のＴＦＡを含む１５％アセトニトリル水溶液に溶解後、ＨＰＬＣに供した。ＨＰＬＣの条件は以下の通りであった。
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相：１５−２５％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，２０分
流速：８ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２２０ｎｍ
１０〜１２分に溶出された画分を分取し、濃縮後、凍結乾燥を行い目的とするペプチド ５．９ｍｇを得た。
この合成したペプチド１００ｐｍｏｌについて、アミノ酸配列装置（ＰＰＳＱ−１０型；島津製作所（株）社製）を用いてアミノ酸配列分析を行なったところ、配列表の配列番号７に示されるアミノ酸配列が確認された。
［実施例８］ペプチド８の合成
実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂(Fmoc- Ser(tBu) -Gly-Lys(Boc)-Tyr(tBu)-Glu(OtBu)-Gly-Gly-Asn(Trt)-Ile-Tyr(tBu)-Thr(tBu)-Lys(Boc)-Lys(Boc)-Glu(OtBu)-Ala-Phe-Asn(Trt)-Val-Glu(OtBu)−Wang樹脂）を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。
実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂(Fmoc- Ser(tBu) -Gly-Lys(Boc)-Tyr(tBu)-Glu(OtBu)-Gly-Gly-Asn(Trt)-Ile-Tyr(tBu)-Thr(tBu)-Lys(Boc)-Lys(Boc)-Glu(OtBu)-Ala-Phe-Asn(Trt)-Val-Glu(OtBu)−Wang樹脂）を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。
得られた粗ペプチドのうち１１ｍｇを０．１％のＴＦＡを含む１５％アセトニトリル水溶液に溶解後、ＨＰＬＣに供した。ＨＰＬＣの条件は以下の通りであった。
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相： １５−２２％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，２０分
流速：８ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２２０ｎｍ
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相： １５−２２％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，２０分
流速：８ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２２０ｎｍ
１０〜１２分に溶出された画分を分取し、濃縮後、凍結乾燥を行い目的とするペプチド ６．４ｍｇを得た。
この合成したペプチド１００ｐｍｏｌについて、アミノ酸配列装置（ＰＰＳＱ−１０型；島津製作所（株）社製）を用いてアミノ酸配列分析を行なったところ、配列表の配列番号８に示されるアミノ酸配列が確認された。
［実施例９］ペプチド９の合成
実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂(Fmoc- Ser(tBu)-Gly-Lys(Boc)-Tyr(tBu)-Glu(OtBu)-Gly-Gly-Asn(Trt)-Ile-Tyr(tBu)-Thr(tBu)-Lys(Boc)-Lys(Boc)-Glu(OtBu)-Ala-Phe-Asn(Trt)-Val −Wang樹脂）を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。
実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂(Fmoc- Ser(tBu)-Gly-Lys(Boc)-Tyr(tBu)-Glu(OtBu)-Gly-Gly-Asn(Trt)-Ile-Tyr(tBu)-Thr(tBu)-Lys(Boc)-Lys(Boc)-Glu(OtBu)-Ala-Phe-Asn(Trt)-Val −Wang樹脂）を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。
得られた粗ペプチドのうち１１ｍｇを０．１％のＴＦＡを含む１５％アセトニトリル水溶液に溶解後、ＨＰＬＣに供した。ＨＰＬＣの条件は以下の通りであった。
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相： １５−２０％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，２０分
流速：８ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２２０ｎｍ
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相： １５−２０％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，２０分
流速：８ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２２０ｎｍ
１６〜１８分に溶出された画分を分取し、濃縮後、凍結乾燥を行い目的とするペプチド ４．８ｍｇを得た。
この合成したペプチド１００ｐｍｏｌについて、アミノ酸配列装置（ＰＰＳＱ−１０型；島津製作所（株）社製）を用いてアミノ酸配列分析を行なったところ、配列表の配列番号９に示されるアミノ酸配列が確認された。
［実施例１０］ペプチド１０の合成
実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂(Fmoc-Gly-Lys(Boc)-Tyr(tBu)-Glu(OtBu)-Gly-Gly-Asn(Trt)-Ile-Tyr(tBu)-Thr(tBu)-Lys(Boc)-Lys(Boc)-Glu(OtBu)-Ala-Phe-Asn(Trt)-Val-Glu(OtBu)−Wang樹脂）を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。
実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂(Fmoc-Gly-Lys(Boc)-Tyr(tBu)-Glu(OtBu)-Gly-Gly-Asn(Trt)-Ile-Tyr(tBu)-Thr(tBu)-Lys(Boc)-Lys(Boc)-Glu(OtBu)-Ala-Phe-Asn(Trt)-Val-Glu(OtBu)−Wang樹脂）を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。
得られた粗ペプチドのうち５．４ｍｇを０．１％のＴＦＡを含む２０％アセトニトリル水溶液に溶解後、ＨＰＬＣに供した。ＨＰＬＣの条件は以下の通りであった。
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相： ２０−３０％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，１５分
流速：５ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２３０ｎｍ
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相： ２０−３０％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，１５分
流速：５ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２３０ｎｍ
９〜１０分に溶出された画分を分取し、濃縮後、凍結乾燥を行い目的とするペプチド ３．６ｍｇを得た。
この合成したペプチド１００ｐｍｏｌについて、アミノ酸配列装置（ＰＰＳＱ−１０型；島津製作所（株）社製）を用いてアミノ酸配列分析を行なったところ、配列表の配列番号１０に示されるアミノ酸配列が確認された。
［実施例１１］ペプチド１１の合成
実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂(Fmoc- Glu(OtBu)-Gly-Gly-Asn(Trt)-Ile-Tyr(tBu)-Thr(tBu)-Lys(Boc)-Lys(Boc)-Glu(OtBu)-Ala-Phe-Asn(Trt)-Val−Wang樹脂）を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。
実施例１と同様の操作により、保護ペプチド樹脂(Fmoc- Glu(OtBu)-Gly-Gly-Asn(Trt)-Ile-Tyr(tBu)-Thr(tBu)-Lys(Boc)-Lys(Boc)-Glu(OtBu)-Ala-Phe-Asn(Trt)-Val−Wang樹脂）を合成しクリベージ反応を行なって、粗ペプチドを得た。
得られた粗ペプチドのうち５ｍｇを０．１％のＴＦＡを含む２０％アセトニトリル水溶液に溶解後、ＨＰＬＣに供した。ＨＰＬＣの条件は以下の通りであった。
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相： ２０−３５％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，１５分
流速：５ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２３０ｎｍ
カラム：ＯＤＳカラム（ＴＳＫガードカラムＯＤＳ， ２１．５ｍｍｘ７５ｍｍ；東ソー（株）社製）
移動相： ２０−３５％アセトニトリル／０．１％ ＴＦＡ，１５分
流速：５ｍｌ／ｍｉｎ．
検出波長：２３０ｎｍ
９．５〜１０．５分に溶出された画分を分取し、濃縮後、凍結乾燥を行い目的とするペプチド ３．５ｍｇを得た。
この合成したペプチド１００ｐｍｏｌについて、アミノ酸配列装置（ＰＰＳＱ−１０型；島津製作所（株）社製）を用いてアミノ酸配列分析を行なったところ、配列表の配列番号１１に示されるアミノ酸配列が確認された。
製剤例１．
液剤
実施例１乃至１１記載の方法により得た１１種類のペプチドのいずれかを最終濃度０.１g/mlになるように安定剤として１％(w/v) 精製ゼラチンを含む蒸留水に溶解し、常法により滅菌濾過して１１種類の液剤を得た。
液剤
実施例１乃至１１記載の方法により得た１１種類のペプチドのいずれかを最終濃度０.１g/mlになるように安定剤として１％(w/v) 精製ゼラチンを含む蒸留水に溶解し、常法により滅菌濾過して１１種類の液剤を得た。
本発明のペプチドに対する感受性は個体毎に変わるのが通例であるから、本品は個々の個体に最も適した組成になるよう、１１種類の液剤を適宜配合して使用する。本品は安定性に優れているので、スギ花粉症を治療・予防するための点眼剤、点鼻剤、口腔内噴霧剤用の液剤として有用である。
製剤例２．
注射剤
安定剤として１％(w/v) ヒト血清アルブミンを含む生理食塩水に実施例１乃至１１記載の方法により得た２４種類のペプチドをそれぞれ最終濃度０.０１、０.１又は１mg/ml になるように溶解し、滅菌濾過した後、滅菌バイアル瓶に２mlずつ分注し、凍結乾燥し、密栓した。
注射剤
安定剤として１％(w/v) ヒト血清アルブミンを含む生理食塩水に実施例１乃至１１記載の方法により得た２４種類のペプチドをそれぞれ最終濃度０.０１、０.１又は１mg/ml になるように溶解し、滅菌濾過した後、滅菌バイアル瓶に２mlずつ分注し、凍結乾燥し、密栓した。
本品は投与に先立ち、まず、バイアル瓶内に注射用蒸留水等を１ml加え、次いで、内容物を均一に溶解して使用する。安定性に優れ、有効成分として本発明による１１種類のポリペプチドを含んでなる本品は、スギ花粉症を治療・予防するための乾燥注射剤として有用である。
製剤例３．
錠剤
平均分子量約20,000ダルトンの精製プルラン２g を蒸留水１００mlに均一に溶解し、溶液に塩化シアヌルの１.７％(w/v) アセトン溶液を２ml加え、５％(w/v)炭酸ナトリウム水溶液でpHを７付近に保ちつつ、攪拌下、５℃で２時間反応させた。その後、同様にして反応物のpHを７付近に保ちながら、４℃の冷水に対して一晩透析し、活性化プルランを含む水溶液２０mlを得た。
錠剤
平均分子量約20,000ダルトンの精製プルラン２g を蒸留水１００mlに均一に溶解し、溶液に塩化シアヌルの１.７％(w/v) アセトン溶液を２ml加え、５％(w/v)炭酸ナトリウム水溶液でpHを７付近に保ちつつ、攪拌下、５℃で２時間反応させた。その後、同様にして反応物のpHを７付近に保ちながら、４℃の冷水に対して一晩透析し、活性化プルランを含む水溶液２０mlを得た。
実施例１乃至１１記載の方法により得たペプチドをそれぞれ０.２mg加え、溶液のpHを７付近に保ちつつ、穏やかに攪拌しながら、３７℃で１２時間反応させた。反応後、反応物にグリシンを４g を加え、穏やかに攪拌しながら、３７℃で５時間インキュベートし、未反応の活性基をブロックした。
反応物を濃縮し、あらかじめ０.１Mリン酸緩衝液（pH 7.0) で平衡化させておいたセファデックス G-50 カラムに負荷し、カラムに新鮮な同一緩衝液を通液して、この発明のペプチドとプルランの複合体を含む画分を採取した。収量は、原料ペプチド固形分当たり、約３０％であった。
常法に従って、この画分を滅菌濾過し、濃縮し、凍結乾燥し、粉砕後、マンニトールを均一に混合し、混合物を打錠して製品１錠（200mg）当たり複合体を２、１０又は５０mg含む錠剤を得た。
摂取性、安定性に優れた本品は、スギ花粉症を治療・予防するための舌下剤として有用である。
製剤例４．
シロップ剤
大腸菌由来の精製リポ多糖１g を１０mMリン酸カルシウム溶液１００mlに溶解し、溶液に１００mM過ヨウ素酸ナトリウムを６ml加え、室温下で２０分間反応させてリポ多糖を活性化した。反応物を４℃の１Mグリシン−塩酸緩衝液（pH 4.4) に対して一晩透析して未反応の過ヨウ素酸を除去した後、０.１M 炭酸水素ナトリウム緩衝液によりpH 9.5付近に調整する一方、別途、実施例１乃至１１記載の方法により得た１１種類のペプチドを0.１M リン酸緩衝液（pH 7.0) １００mlにそれぞれ１０mgずつ溶解し、活性化リポ多糖を含む上記反応物に加え、室温下で１２時間静置して反応させた。
シロップ剤
大腸菌由来の精製リポ多糖１g を１０mMリン酸カルシウム溶液１００mlに溶解し、溶液に１００mM過ヨウ素酸ナトリウムを６ml加え、室温下で２０分間反応させてリポ多糖を活性化した。反応物を４℃の１Mグリシン−塩酸緩衝液（pH 4.4) に対して一晩透析して未反応の過ヨウ素酸を除去した後、０.１M 炭酸水素ナトリウム緩衝液によりpH 9.5付近に調整する一方、別途、実施例１乃至１１記載の方法により得た１１種類のペプチドを0.１M リン酸緩衝液（pH 7.0) １００mlにそれぞれ１０mgずつ溶解し、活性化リポ多糖を含む上記反応物に加え、室温下で１２時間静置して反応させた。
その後、新たに得られた反応物を製剤例３の方法により精製し、得られた本発明のペプチドとリポ多糖の複合体を含む画分を濃縮し、凍結乾燥し、粉砕して固状物とした。収量は、原料ペプチド固形分当たり、約３０％であった。
この固形物を蔗糖をそれぞれ最終濃度が０.１若しくは１mg/ml 又は５０％(w/w) になるように安定剤として精製ゼラチンを１％(w/w) 含む蒸留水に溶解し、溶液を常法により滅菌濾過してシロップ状物を得た。このシロップ状物を２mlずつ滅菌バイアル瓶に分注し、密栓して製品とした。安定性に優れ、有効成分としてこの発明のペプチドとリポ多糖の複合体を含む本品は、スギ花粉症を治療・予防するためのシロップ剤として有用である。
本発明は、免疫療法剤、特にスギ花粉症治療剤として有用である。
配列番号１：合成ペプチド
配列番号２：合成ペプチド
配列番号３：合成ペプチド
配列番号４：合成ペプチド
配列番号５：合成ペプチド
配列番号６：合成ペプチド
配列番号７：合成ペプチド
配列番号８：合成ペプチド
配列番号９：合成ペプチド
配列番号１０：合成ペプチド
配列番号１１：合成ペプチド
配列番号２：合成ペプチド
配列番号３：合成ペプチド
配列番号４：合成ペプチド
配列番号５：合成ペプチド
配列番号６：合成ペプチド
配列番号７：合成ペプチド
配列番号８：合成ペプチド
配列番号９：合成ペプチド
配列番号１０：合成ペプチド
配列番号１１：合成ペプチド
Claims (11)
- 配列番号７のアミノ酸配列から成るペプチド。
- 配列番号８のアミノ酸配列から成るペプチド。
- 配列番号９のアミノ酸配列から成るペプチド。
- 配列番号１０のアミノ酸配列から成るペプチド。
- 配列番号１１のアミノ酸配列から成るペプチド。
- 配列番号７のアミノ酸配列から成るペプチドを有効成分とする抗スギ花粉症剤。
- 配列番号８のアミノ酸配列から成るペプチドを有効成分とする抗スギ花粉症剤。
- 配列番号９のアミノ酸配列から成るペプチドを有効成分とする抗スギ花粉症剤。
- 配列番号１０のアミノ酸配列から成るペプチドを有効成分とする抗スギ花粉症剤。
- 配列番号１１のアミノ酸配列から成るペプチドを有効成分とする抗スギ花粉症剤。
- 更に、ぶどう糖、果糖、しょ糖、麦芽糖、乳糖、トレハロース、ソルビトール、マンニトール、マルチトールおよび／またはラクチトールを含む、請求項６乃至１０のいずれか一項に記載の抗スギ花粉症剤。
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